INTRODUCCIÓN
El cártamo (Carthamus tinctorius L.), originario de Asia y perteneciente a la familia Asteraceae, es considerado una de las más antiguas producciones agrícolas. Se cultiva con diferentes propósitos de uso tales como colorante culinario y textil, para la extracción de aceite, así como para vástagos florales empleados en decoración (Mündel et al., 2004; Emongor y Oagile, 2017; Menegaes et al., 2017)
Además, esta especie se destaca entre los cultivos oleaginosos (semillas) a nivel mundial destinados a la producción de biodiesel. Los datos medios de las cosechas de 2007 a 2012, la ubican en la octava posición, y se cultiva en más de 60 países, en área de aproximadamente un millón de hectáreas con una productividad media de 882 kg ha-1 (Rai et al., 2016; FAOSTAT, 2017)
Sin embargo, en ambientes de alta pluviosidad la productividad de vástagos florales y de semillas de cártamo disminuye por la alta susceptibilidad al ataque de microorganismos. Entre estos últimos se encuentran: Alternaria sp., Aspergillus sp., Botrytis sp., Cercospora sp., Cladosporium sp., Curvularia sp., Fusarium sp. Helminthosporium sp., Macrophomina sp., Oidium sp., Penicillium sp., Phomopsis sp., Phytophthora sp. , Puccinia sp., Ramularia sp., Rhizoctinia sp., Rhizopus sp., Sclerotinia sp. y Verticillium sp., entre otros (Garcia, 1999; Mündel et al., 2004; Coronado, 2010; Galant et al., 2015; Emongor y Oagile, 2017)
En Brasil el cultivo de cártamo todavía es incipiente y está en fase experimental en diferentes regiones. En la década de 1990, fue introducido en la región sur del país como planta ornamental, pero, en virtud de las condiciones climáticas y de la gran incidencia de microorganismos patógenos en todo el ciclo productivo, su cultivo fue reducido gradualmente (Santos y Silva, 2015; Sampaio et al., 2017). Por ello, se requiere de inversión económico-científica para el aumento de la productividad de semillas, con calidad fitosanitaria
El tratamiento de semillas pretende resguardar sus cualidades, sobre todo, las fisiológicas y sanitarias, para que posibilite originar plantas con calidad, así como alta productividad. Sin embargo, estas cualidades se van modificando a lo largo del tiempo, siendo el almacenamiento, un procedimiento complementario, importante para mantener la integridad y viabilidad de las semillas por períodos prolongados (Jose et al., 2010; Marcos-Filho, 2015)
Para el tratamiento de semillas de especies agroeconómicas se utilizan productos de diversos orígenes, como químico, biológico o bioquímico, sin embargo, en Brasil, no hay productos fitosanitarios registrados en el MAPA (Ministerio de la Agricultura, Ganadería y Abastecimiento) para el cultivo del cártamo. En este contexto y buscando una agricultura de bajo impacto ambiental, el tratamientos de semillas con productos de origen vegetal con propiedades antimicrobianas puede convertirse en una alternativa ecológica y prometedora para los cultivos (Medeiros et al., 2015), como el cártamo
Así, el presente trabajo tuvo como objetivo de determinar el efecto de polvo de hojas de tres especies de plantas sobre la calidad fisiológica y sanitaria de semillas de cártamo (Carthamus tinctorius L.) almacenados por diferentes períodos de tiempo
MATERIALES Y MÉTODOS
El experimento fue conducido en el Laboratorio Didáctico y de Investigaciones en Semillas del Departamento de Fitotecnia y en el Laboratorio de Fitopatología Elocy Minussi en el Departamento de Defensa Fitosanitaria en el Campus de la Universidad Federal de Santa María (UFSM), ubicado en Santa María, RS (29°43 'S, 53°43 'W y altitud de 95 m) en 2018
Material vegetal
Se emplearon semillas de cártamo (C. tinctorius) obtenidas del cultivo en el campo del área experimental del Sector de Floricultura del Departamento de Fitotecnia de la UFSM, en Santa María, RS, en la cosecha 2016/2017. Se cosechó en febrero de 2017 y se almacenó en cámara fría a 15 °C y 40% HR (humedad relativa) en bolsas de papel Kraft (tipo pardo de 1 kg), con un grado de humedad medio del 9%. Además, se emplearon hojas de plantas adultas de Melia azedarach L., de Dendranthema grandiflora Tzvelev y de Tagetes erecta L.
Obtención de polvo de hojas y tratamiento de las semillas
Las hojas de cada especie fueron recolectadas en el período matutino, para evitar la deshidratación. Se realizaron tres lavados consecutivos en agua corriente. Posteriormente las hojas fueron deshidratadas por ventilación forzada a 30 °C hasta la estabilización de la masa seca y trituradas hasta formar polvo, tamizadas (malla 0.05 mm), envasadas y después de la identificación fueron almacenadas
El polvo de hojas se empleó en las cantidades de: cero (control), 1 g, 2g y 3 g kg-1 de semillas
Los tratamientos de las semillas se realizaron en frascos de vidrio de 500 ml, con adición del polvo de hojas (1 g, 2g y 3 g kg-1 de semillas) y agua destilada (con un volumen equivalente al 1.0% de la masa total de las semillas). Para la adherencia del polvo de hojas a las semillas se agitaron manualmente durante cinco minutos. Para los tratamientos controles el mismo procedimiento fue adoptado, pero se utilizó sólo agua destilada. Las semillas tratadas fueron almacenadas en bolsas de papel Kraft (pardo) en cámara fría (15 °C y 40% HR) en el propio laboratorio
Los períodos de almacenamiento fueron 0, 30 y 60 días después del tratamiento de las semillas. La primera evaluación de la calidad fisiológica y sanitaria de las semillas fue 24 h después de la realización de los tratamientos, siendo esta evaluación considerada como período de cero de almacenamiento. Después de cada período de almacenamiento se realizaron las evaluaciones para la verificación de la calidad fisiológica y sanitaria de las semillas de cártamo por la prueba modelo de germinación, primer recuento de germinación (PRG) e índice de velocidad de germinación (IVG)
Para ello, fueron sembradas cuatro repeticiones de 50 semillas (200 semillas en total por tratamiento), en rollo de papel de germinación, humedecido con agua destilada en la proporción de 2.5 veces la masa del papel seco. Los rodillos se mantuvieron en germinador tipo BOD (Box Organism Development), en oscuridad a 25±2 °C. Las evaluaciones se realizaron a los 4 días después de la siembra (DDS) para PRG y los 14 DDS para germinación (GER), plántulas anormales (están incluidas plántulas dañadas e infectadas) (PAN) y semillas muertas (SEM) (Brasil, 2009a). Para el IVG se realizaron evaluaciones diarias según la metodología descrita por Maguire (1962) , adaptada para cártamo se utilizó como criterio el alargamiento de la raíz principal y la emergencia de los cotiledones (Abud et al., 2010)
Para determinar la longitud y masa seca de las plántula se emplearon cuatro repeticiones de 20 semillas (80 semillas en total por tratamiento), sembradas en dos líneas desencontradas en el tercio superior del papel de germinación y mantenidas en la misma condición del patrón de germinación. A los 4 DDS se midió la longitud de la parte aérea y de la radícula (cm) de diez plántulas normales de cada repetición. En la secuencia se determinó masa seca total (mg planta-1) por secado del material vegetal con ventilación forzada a 65±5 °C por 48 h (Nakagawa, 1999). La emergencia en el campo y el índice de velocidad de emergencia (IVE) se evaluaron en cuatro repeticiones de 50 semillas que fueron sembradas en líneas de 1 m, con espaciamiento entre sí de 0.2 m y en surcos de 0.03 m de profundidad. Para el IVE se realizaron evaluaciones diarias según la metodología descrita por Maguire (1962) , adaptada para el cultivo del cártamo utilizando como criterio el desarrollo de los cotiledones y epicótilo, y la evaluación de la emergencia fue realizada a los 14 DDS (Abud et al., 2010)
Para las variables germinación de plántulas normales y emergencia en el campo, se utilizó como estándar la Instrucción Normativa n.45/2013 del MAPA (Ministerio de La Agricultura, Ganadería y Abastecimiento) (Brasil, 2013). Esta normativa regula los patrones de producción y comercialización de semillas en Brasil, sin embargo, no contempla las semillas de cártamo, así, se eligió el patrón de semillas de Helianthus annuus L. por pertenecer a la misma familia botánica del cártamo, Asteraceae, siendo exigido entre 65-70% de germinación (Brasil, 2013)
La prueba de sanidad en papel-filtro se realizó a través de la incubación en sustrato de papel (Blotter Test), con cuatro repeticiones de 50 semillas. La siembra ocurrió en cajas plásticas transparentes para germinación (Gerbox), preparadas con tres hojas de papel de germinación humedecido con agua destilada correspondiente a 2.5 veces la masa del papel seco. La germinación fue inhibida por el método de congelación por 24 h. Las semillas permanecieron en BOD por cinco días con fotoperiodo de 12 h de luz a 20±2 °C. Se cuantificó el número de semillas infestadas mediante observación en microscopio estereoscopio y se calculó el porcentaje de. Además, se identificaron los microorganismos a nivel de género (Brasil, 2009b)
El índice de incremento de la germinación (II.GER), el índice de incremento de la emergencia en campo (II.ECP) y el índice de control de semillas infestadas totales (IC.SIT) fueron determinados por la metodología adaptada de Ahmad et al. (2012) con las siguientes ecuaciones:
II.GER = ((GER en - GER t) / t GER) * 100
donde GER: germinación del tratamiento con extracto vegetal macerado seco y GER t: germinación del tratamiento control.
II.ECP = ((ECP en - ECP t) / ECP t) * 100
donde ECP: emergencia del tratamiento con extracto vegetal macerado seco y ECP t: germinación del tratamiento control
ICSIT = ((SIT t -SIT en) / SIT t) * 100
donde SIT en: semillas infestadas en el tratamiento con extracto vegetal macerado seco y SIT t: germinación del tratamiento control
Diseño experimental y análisis estadístico
Se empleó un diseño experimental completamente al azar en factorial 10x3 (diez combinaciones de polvo de hojas de cada planta y tres períodos de almacenamiento de semillas), con cuatro repeticiones. Los datos expresados en porcentaje se transformaron en arco-seno. Se realizaron análisis de varianza de los datos y las medias se compararon por la prueba de Scott-Knott, a nivel del 5% de error, por el programa estadístico SISVAR (Ferreira, 2014)
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
En este estudio se constató que las semillas no sufrieron deterioro en virtud de las condiciones de almacenamiento y los tratamientos con los polvos de hojas. Tanto en el primer recuento de germinación (PRG), como para las variables porcentaje de plántulas anormales entre las que se incluyeron aquellas dañadas e infectadas (PAN), las semillas muertas (SEM) y el índice de velocidad de germinación (IVG) no se comprobaron diferencias significativas entre los tratamientos de las combinaciones de polvos de hojas y dosis con los periodos de tiempo almacenamiento de semillas tratadas
La interacción de los factores fue significativa para la germinación (GER) y las semillas totales infestadas (SIT). La GER se incrementó con el tiempo de almacenamiento sin diferencias significativas entre los tratamientos y el control. Sin embargo, se verificó que las semillas tratadas con el polvo de hojas en los diferentes períodos de almacenamiento obtuvieron mayor expresión del potencial de vigor expresado en la germinación (GER) en relación con el tratamiento control, excepto para los tratamientos con T. erecta y 3 g de D. grandiflora kg-1 de semillas a los 60 días de almacenamiento (Tabla 1)
La calidad fisiológica inicial del lote de semillas de cártamo en promedio, fue de 70 y 66% para germinación y emergencia en el campo, respectivamente, y se caracterizaron como lotes comerciales según los patrones del MAPA (Brasil, 2013). La utilización de las diferentes combinaciones de polvos de hojas de tres especies de plantas promovió una mejora en la expresión del potencial fisiológico de estas semillas, donde la germinación y emergencia de plántulas presentaron valores porcentuales dentro y/o por encima del rango aceptable del MAPA. La interacción de los factores fue significativa para las variables porcentaje de emergencia en el campo (ECP) e índice de velocidad de emergencia (IVE). El mayor valor para RCP fue obtenido con el tratamiento de 1 g de T. erecta kg-1 de semillas con un periodo de almacenamiento de 60 días (Tabla 2)
Aunque se observó una disminución en el IVE con el tiempo de almacenamiento en algunos tratamientos, se comprobó que las variables relacionadas con la longitud (CPR y CPA) y masa (MSR y MSP) de las plántulas no presentaron diferencias significativas entre las combinaciones de polvo de hojas y dosis con períodos de almacenamiento. Este resultado indicó que no hubo efecto fitotóxico para las semillas de cártamo y se reflejó en el número de plántulas anormales (PAN) y de semillas muertas (SEM) sin diferencias entre los tratamientos (Tabla 2). En este sentido, Jose et al. (2010) apuntaron que el mantenimiento de la integridad y de la viabilidad de las semillas en los períodos de almacenamiento es esencial para la expresión de su potencial fisiológico
Relacionado con lo anterior, Marcos-Filho (2015) refirió que la velocidad de germinación o emergencia depende del grado de deterioro de las semillas y en las condiciones que fueran expuestas para el inicio del proceso germinativo. De igual forma, Medeiros et al. (2015) puntualizaron la importancia del tratamiento de semillas previo, sobre todo, con plantas con actividad antifúngica, para auxiliar en la promoción del pleno desarrollo de las plántulas, favorecer la interacción entre las plantas, el suelo y el ambiente de cultivo en una agricultura de bajo impacto ambiental
Las semillas de cártamo presentaron alta incidencia de hongos filamentosos con presencia de especies de los géneros Aspergillus, Botrytis, Fusarium, Penicillium, Rhizoctonia y Sclerotinia con un promedio del 53% de las semillas totales infestadas (SIT) en la prueba de sanidad en el tratamiento control. Coronado (2010) y Hussain et al. (2015) informaron que en regiones de alta pluviosidad la posibilidad de incidencia de enfermedades es mayor que en regiones de media y baja pluviosidad, resultando en la alta infestación de microorganismos patógenos asociados a las semillas. En el municipio de Santa María, RS, donde fue realizado el experimento, región de alta pluviosidad, se favoreció la incidencia de hongos filamentosos y se afectó negativamente la calidad sanitaria de las semillas de cártamo
Sin embargo, excepto en el tratamiento con 1 g de M. azedarach kg-1de semillas a los 60 días de almacenamiento, se observó una reducción significativa de la infestación por microorganismos en las semillas tratadas con los extractos vegetales macerados secos en relación con el tratamiento control (Tabla 1). Esta reducción es beneficiosa para la calidad fisiológica y sanitaria de las semillas de cártamo. Flávio et al. (2014) informaron que la diseminación de patógenos vía semilla afecta negativamente el establecimiento de plantas en el campo, sobre todo su productividad. De igual forma, Medeiros et al. (2015) apuntaron que el control fúngico de las semillas promueve una reducción de la micoflora, resultando en la mejor expresión porcentual de su calidad fisiológica
En correspondencia con lo anterior, en la prueba de sanidad se observaron diferencias significativas entre los tratamientos con respecto a la incidencia de los géneros Aspergillus , Botrytis y Fusarium para los períodos de almacenamiento evaluados sin una distribución homogénea en los periodos de almacenamiento (Tabla 3). Estos géneros de hongos se han informado como agentes patógenos de semillas. En este sentido, Souza et al. (2007) observaron que Fusarium spp., además de producir micotoxinas sobre las semillas de Zea mays L., provocaron manchas y pudriciones anticipando su deterioro. Reverberi et al. (2010) informaron que especies del género Aspergillus, son agentes fitopatógenos característicos del almacenamiento y también se han referido por producir micotoxinas y también causan intoxicaciones a los seres humanos, animales y plantas. Otros autores como Flávio et al. (2014) trabajando con semillas de Sorghum bicolor L. Moench tratadas con extractos vegetales, verificaron alta incidencia de Aspergillus spp. y Fusarium spp. sobre las semillas y afectaron negativamente la expresión de su potencial fisiológico
En el caso del cultivo de cártamo, Garcia (1999) mencionó que Botrytis spp. está entre los principales causantes de daños pues, la presencia de estos microorganismos en la fase de floración atacan las lígulas, se hospedan dentro del capítulo, hacen despreciable el valor ornamental de los vástagos florales e inviabilizan la germinación de las semillas
Los índices de incremento de germinación, de emergencia en campo y de control de semillas infestadas totales promovidos por el uso de polvo de hojas mostraron porcentajes variables para cada tratamiento y entre tratamientos superiores al 1% excepto para el tiempo cero de almacenamiento cuando se emplearon 2 g (II.GER) o 3 g de T. erecta (II.ECP) kg-1 de semillas (Tabla 4)
En general, los polvos de hojas de M. azedarach y de D. grandiflora incidieron en una mejor respuesta en el potencial fisiológico de las semillas de cártamo que el obtenido de T. erecta. En este contexto, este trabajo corrobora los resultados de Khan et al. (2001) que refieren la eficiencia de extractos de M. azedarach como fungicida, bactericida y protozoaricida
No obstante, tanto a los 30 como a los 60 días de almacenamiento con 1 g de polvo de hojas de T. erecta kg-1 de semillas se obtuvieron los máximos valores de incremento de la emergencia de plántulas en el campo. Restello et al. (2009) han comprobado el efecto de T. erecta como fungicida, repelente e insecticida ideal para el almacenamiento de granos y semillas
Por otra parte, los índices de control de microorganismos patógenos promovido por los tratamientos de semillas con polvo de hojas fueron beneficiosos para la calidad fisiológica y sanitaria de las semillas de cártamo comparado con el tratamiento control. Flávio et al. (2014) y Medeiros et al. (2015) verificaron que plantas con propiedades antifúngicas son alternativas eficientes y económicas de tratamiento de semillas para el control de microorganismos patógenos asociados a estas, sin ocasionar otros daños y mantener su calidad fisiológica