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INTRODUCCIÓN
Perú es un país megadiverso por la variedad de especies de flora y fauna, de ecosistemas y por sus recursos genéticos y culturales (Fajardo et al., 2014). En el país destaca la presencia de plantas de importancia medicinal y alimenticia (De-la-Cruz et al., 2007). Tal es el caso del género Cinchona (C. officinalis L., C. pubescens Vahl, C. micrantha Ruiz y Pav.) cuya corteza contiene alcaloides de quinina (especialmente: quinina, quinidina, cinconina y cinchonidina), los que fueron usados por más de tres siglos como único tratamiento contra el paludismo o malaria (Loayza-O et al., 2010). C. officinalis L. fue explotada durante siglos y sus cortezas fueron exportadas a muchas partes del mundo, las cifras más conservadoras manifiestan que entre el siglo XVII y XVIII se exportó a Europa aproximadamente medio millón de kilogramos de corteza por año (Roersch van der Hoogte y Pieters 2015), de acuerdo con el último estudio realizado hace más de tres décadas, las poblaciones estaban estables, sin embargo, existe bastante presión por la ampliación de la frontera agrícola y madereo (Zevallos 1989).
Los bosques andinos con presencia de especies de Cinchona han estado sujetos a la presión antropogénica en los últimos 350 años (López 2016). Los árboles que quedan de C. officinalis L. se restringen a individuos dispersos situados en hábitats fragmentados producto de la quema y expansión urbana (Huamán et al., 2019). Por lo que, es importante entender aspectos relacionados a su propagación para poder generar planes de manejo y conservación.
Entre los métodos utilizados para revertir la depredación de un área está la instalación de plantaciones forestales (Ferez et al., 2015) ; este mecanismo promueve una rápida recuperación de la estructura del bosque, generando un hábitat adecuado para el restablecimiento de la sucesión ecológica (Holl y Aide 2011).
Diversos factores influyen en el desarrollo de las plántulas durante la etapa de vivero; dentro de los cuales están la disponibilidad de agua, sombra, nutrientes, sustrato, malezas, edad del trasplante, plagas y enfermedades (Poorter et al., 2012a). El efecto de las prácticas de manejo en los viveros sobre la calidad de plantones se ha estudiado estudiado en diferentes especies forestales que incluyen Pinus palustrisMill (South et al., 2005),Acacia koa(Dumroese et al., 2011), estos estudios se enfocaron en el crecimiento de las plántulas, los cuales se realizaron en estaciones de investigación.
Una de las etapas que asegura el éxito dentro de la producción de plantones forestales y posterior instalación en campo definitivo, es el trasplante, por ello es necesario conocer factores como la altura de la plántula, características morfológicas y fisiológicas de la especie y el daño al sistema radicular a fin de asegurar la supervivencia de las plántulas (Calegari et al., 2011). La mayor mortandad en plántulas obtenidas de remanentes boscosos suele observarse en los dos primeros meses posteriores al trasplante (Viani y Rodrigues 2007; Turchetto et al., 2016) esto se asocia al estrés hídrico, cuando el sistema radicular de las plántulas aún no se ha restablecido, lo cual provoca un cierre parcial de los estomas durante un período prolongado (Taiz y Zeiger 2009). Por lo tanto, una vez que las plántulas individuales superan esta etapa, aumentan las posibilidades de supervivencia (Turchetto et al., 2016).
No hay estudios que describan el efecto del tamaño de plántula de C. officinalis L. en la supervivencia posterior al trasplante, sin embargo, se han desarrollado otros tipos de estudios botánicos y ecológicos de esta especie (Zevallos 1989; Aymard 2019) este hecho hace que la investigación sea pionera en el área.
Por lo descrito, con el presente trabajo se busca determinar el efecto del tamaño de plántulas de C. officinalis L. obtenidas en almácigos sobre la supervivencia y características del tallo al trasplantarse a bolsas de polietileno.
MATERIALES Y MÉTODOS
Área de estudio
El ensayo se desarrolló desde el 8 de febrero hasta el 8 de abril de 2021 en la comunidad de La Cascarilla (coordenadas UTM 732697,45 E, 9372588,42 S), provincia de Jaén, Perú, a una altitud de 1 810 m.s.n.m y corresponde a la selva premontana (bhP) (Holdridge 1987). La precipitación anual es de 1 730 mm, temperatura mínima de 13,0 ºC y máxima de 20,5 ºC (Figura 1).
Especie de estudio
Cinchona officinalis L. es una especie con dispersión de semillas generalmente anemocórica; en estado arbóreo puede llegar a medir de 11-15 m, con fuste cilíndrico, de 30 a 40 cm de diámetro; la ramificación es simpodial; con copa globosa irregular, sus hojas son simples, opuestas y decusadas, con medidas de 8 a 26,8 cm de largo (sin incluir el pecíolo) y 7 a 18 cm de ancho. Flores en forma de panículas terminales de 20 a 25 cm de longitud, ligeramente pubescentes. Flores hermafroditas, actinomorfas; cáliz gamosépalo de aproximadamente 4 mm de longitud, cilíndrico, con 5 lóbulos pequeños; corola blanco-roja, con pétalos fundidos, de 1,5 cm de largo. Fruto en forma de cápsula de color marrón oscuro, de forma elipsoide, de 0,8 a 2,5 cm de largo y 0,4 a 0,8 cm de ancho, dehiscente (Zevallos 1989).
Material vegetal
Se seleccionaron 90 plántulas de C. officinalis L. de las camas almacigueras, con buena vigorosidad y calidad fitosanitaria, cuya edad fue de cinco meses; éstas fueron clasificadas en tres grupos según su tamaño: 1) de 2,0 a 5,0 cm, 2) de 5,1 a 8,0 cm y 3) mayor a 8,1 cm. Las plántulas fueron retiradas cuidadosamente evitando dañar el sistema radicular; posteriormente se colocaron en recipientes con agua limpia, en la que permanecieron por 30 minutos, hasta el momento de trasplante.
En vivero, las plántulas se colocaron en bolsas de polietileno con volumen de 684,4 cm3 (7,5 cm de diámetro y 15,5 cm de altura); conteniendo un sustrato colectado del bosque, cuyas características físico-químicas fueron; textura: franco arenoso, pH: 4,2 ± 0,1, conductividad eléctrica: 0,5 ± 0,0 dS/m, P: 8,5 ± 2,5 mg/kg, N total: 0,3 ± 0,0 %, Ca: 1,2 ± 0,0 meq/100 g, K: 82,7 ± 1,7 mg/kg, Na: 0,4 ± 0,0 meq/100 g, Mg: 0,3 ± 0,0 meq/100 g.
El trasplante se realizó en la tarde, para evitar la deshidratación y marchitamiento de las plántulas por efecto de la radiación y la temperatura; adicionalmente se cortaron las hojas a 50 % del área total para regular la transpiración de estas. Las plántulas trasplantadas permanecieron en ambientes protegidos por una malla raschel verde (sombra 65 %), se aplicaron dos riegos por día con un sistema nebulizado para mantener la humedad relativa del ambiente y evitar el marchitamiento de plántulas. Las labores culturales en vivero fueron constantes durante toda la fase de estudio.
Diseño experimental
El experimento se instaló bajo un diseño completo al azar con tres tratamientos (grupos), tres repeticiones y diez submuestras por repetición. La duración fue de 60 días (Tabla 1).
Registro de datos
El registro de datos tuvo dos fases, la primera fue diaria (primera semana después del repicado), registrando el número de plántulas vivas y tallos deformes. La segunda fase consistió en la evaluación semanal, registrando los mismos parámetros descritos, hasta concluir la investigación.
RESULTADOS
Tanto en la supervivencia como en la presencia de torceduras del tallo de las plántulas de C. officinalis L. luego del trasplante, se determinó que no existe diferencias significativas entre el grupo 1 y 2, sin embargo, sí las hay entre el grupo 1 y 2 con el grupo 3 de ensayo.
Se observó la menor tasa de supervivencia en el grupo 3 (30,0 ± 10 %) cuya altura del tallo fue mayor a 8,1 cm, mientras que la mayor tasa de supervivencia se registró en el grupo 1 (86,7 ± 5,8 %) el cual estuvo comprendido por plántulas entre 2 a 5 cm de altura (Figura 1AB). La mortandad de las plántulas de C. officinalis L. está concentrada en los primeros seis días posteriores al trasplante, en adelante no se registró mortandad de las plántulas de C. officinalis L. La mayor tasa de mortandad se observó al siguiente día del trasplante para todos los grupos de estudio, siendo mayor en el grupo 3 (4,3 ± 0,5 %) (Figura 2B).
Fig. 2. - Efecto del tamaño de los diferentes grupos sobre la supervivencia al trasplante de plántulas de C. officinalis L.(A) y mortandad diaria posterior al trasaplante de plántulas muertas de C. officinalis L. (B)
Los promedios seguidos de diferentes letras minúsculas indican diferencias significativas entre las medias de acuerdo con la prueba de comparación múltiple de Tukey HSD (P < 0,05).
La Figura 3, muestra el efecto del tamaño de la plántula de C. officinalis L. sobre la presencia de deformaciones en el tallo de la plántula, posterior al trasplante. El grupo 1, presentó menor incidencia de deformación del tallo (20,0 ± 10 %), mientras que, las plántulas del grupo 3 presentaron mayor número de individuos con deformación del tallo (83,3 ± 15,3 %) (Figura 3).
Fig. 3. - Efecto del tamaño de los diferentes grupos sobre la deformación del tallo de plántulas de C. officinalis L
Los promedios seguidos de diferentes letras minúsculas nos indican diferencias significativas entre las medias de acuerdo con la prueba de comparación múltiple de Tukey HSD (P < 0,05).
DISCUSIÓN
Los resultados del estudio indican una estrecha relación entre el tamaño de la plántula con la supervivencia posterior al trasplante y la presencia de deformaciones en el tallo. La mortandad de las plántulas de C. officinalis L. se concentró en los primeros siete días posteriores al trasplante, este resultado es coherente con los resultados obtenidos por Viani y Rodrigues (2007). La mortandad de las plántulas se asocia al estrés hídrico que éstas sufren luego del trasplante, ya que el sistema radicular aún no se ha recuperado, generando un cierre parcial de los estomas por un período prolongado, esto provoca fotoinhibición crónica (Taiz y Zeiger 2009); en consecuencia, cuando las plántulas superan esta etapa, incrementan las probabilidades de supervivencia (Turchetto et al., 2016).
Cuando las plántulas son trasladadas de las camas de germinación hacia las camas de trasplante existe alteraciones en el microclima, como el incremento de temperatura, humedad y luminosidad; tales cambios reducen la capacidad fotosintética de la planta por fotoinhibición y degradación de pigmentos fotosintéticos (Kitao et al., 2000), lo que provoca una disminución en la eficiencia de la carboxilación y reduce la eficiencia del fotosistema II (Gilmore y Govindjee 1999).
Factores como el tamaño de la plántula, condiciones climáticas, características fisiológicas y morfológicas de la especie, el tiempo transcurrido desde la extracción de plántulas de las almacigueras hasta el repicado y el daño ocasionado al sistema radicular, influyen significativamente sobre la supervivencia de plántulas posterior al trasplante (Calegari et al., 2011) .
La mayor tasa de mortandad de plántulas de C. officinalis L. se observó en el tercer grupo de ensayo (altura > 8,1 cm), esto estaría relacionado con el daño ocasionado al sistema radicular lo que genera un desequilibrio hídrico en la plántula, perdiendo más agua de lo que las raíces pueden absorber (Lüttge 2008), además, la biomasa aérea es mayor en plántulas de altura superior a 8,1 cm comparada con plántulas de menor altura, esto genera un desequilibrio hídrico ya que las plántulas de mayor tamaño tienden a ser más exigentes en agua, por lo que las tasas de mortandad son mayores cuando hay estrés hídrico (Turchetto et al., 2016).
CONCLUSIONES
En este estudio se confirmó que el tamaño de las plántulas de C. officinalis L. al momento del trasplante tiene una relación inversamente proporcional con el porcentaje de supervivencia y con las características morfológicas (torceduras) del tallo. Resultando que, cuanto menor sea el tamaño de las plántulas, mayor será; el porcentaje de supervivencia y el número de plántulas de C. officinalis L. sin alteraciones morfológicas del tallo.
