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Revista Cubana de Medicina Tropical

versión On-line ISSN 1561-3054

Rev Cubana Med Trop v.61 n.3 Ciudad de la Habana sep.-dic. 2009

 

ARTÍCULO ORIGINAL

 

Evaluación de la toxicidad de extractos de plantas cubanas con posible acción antiparasitaria utilizando larvas de Artemia salina L.

Evaluation of toxicity of Cuban plant extracts with possible antiparasitic action based on the use of Artemia salina larvae

 

 

Aymé Fernández-Calienes ValdésI; Judith Mendiola MartínezII; Lianet Monzote FidalgoIII; Marley García ParraIV; Idalia Sariego RamosV; Deyanira Acuña RodríguezVI; Ramón Scull LizamaVII; Yamilet Gutiérrez GaiténVIII

I Máster en Bioquímica. Investigadora Auxiliar. Departamento de Parasitología, Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kourí" (IPK). Ciudad de La Habana, Cuba.
II Máster en Bioquímica. Investigadora Auxiliar. Instructora. IPK. Ciudad de La Habana, Cuba.
III Máster en Farmacia. Investigadora Agregada. IPK. Ciudad de La Habana, Cuba.
IV Máster en Parasitología. Aspirante a Investigador. IPK. Ciudad de La Habana, Cuba.
V Máster en Parasitología. Investigadora Auxiliar. IPK. Ciudad de La Habana, Cuba.
VI Técnica. IPK. Ciudad de La Habana, Cuba.
VII Máster en Farmacia. Departamento de Farmacia, Instituto de Farmacia y Alimentos (IFAL). Ciudad de La Habana, Cuba.
VIII Máster en Farmacia. IFAL. Ciudad de La Habana, Cuba.

 

 


RESUMEN

INTRODUCCIÓN: el ensayo de letalidad de Artemia salina es considerado una herramienta útil para la determinación preliminar de toxicidad de extractos de plantas. En nuestros laboratorios se estudian las potencialidades antiparasitarias de varias especies de plantas.
OBJETIVO: evaluar la mortalidad causada por extractos etanólicos de plantas medicinales cubanas sobre larvas de A. salina.
MÉTODOS: las larvas de A. salina se expusieron durante 24 h a 4 concentraciones de los 35 extractos etanólicos, pertenecientes a 34 especies de plantas. Se determinó la concentración letal media (CL50), lo cual permitió asignar cada extracto a las categorías de extremadamente tóxico, muy tóxico, moderadamente tóxico y no tóxico.
RESULTADOS: del total de extractos evaluados solo 5 (Artemisia absinthium, Luffa cylindrica, Melia azedarach, Melaleuca leucadendron y Simarouba glauca) resultaron extremadamente tóxicos o muy tóxicos, 13 moderadamente tóxicos, mientras que 17 extractos (48,5 %) se clasificaron como no tóxicos al exhibir valores de CL50 superiores a 1 000 µg/mL.
CONCLUSIONES: la mayoría de los extractos evaluados mostraron baja toxicidad en este modelo, lo cual resulta favorable. Los 5 extractos de mayor toxicidad no serán incluidos en estudios posteriores.

Palabras clave: toxicidad, extractos de plantas, Artemia salina.


ABSTRACT

INTRODUCTION: Artemia salina lethality assay is considered a useful tool to determine preliminary toxicity of plant extracts. In our labs some plant species are studied because of their antiparasitic potentials.
OBJECTIVE: to evaluate A. salina nauplii mortality caused by ethanol extracts of Cuban medicinal plants.
METHODS: A. salina larvae were exposed to four concentrations of 35 ethanol extracts from 34 plant species, for 24 hours. Mean Lethal Concentration (LC50) was determined to classify each extract into the categories of extremely toxic, highly toxic, mildly toxic or non toxic.
RESULTS: out of the tested extracts, only 5 (Artemisia absinthium, Luffa cylindrica, Melia azedarach, Melaleuca leucadendron and Simarouba glauca) were classified as extremely or highly toxic, 13 as mildly toxic whereas 17 extracts (48,5 %) were non toxic exhibiting LC50 values over 1 000 µg/mL.
CONCLUSIONS: most of the evaluated extracts showed low toxicity, which is a positive result. The five extremely toxic extracts will not be included in further studies.

Key words: toxicity, plant extracts, Artemia salina.


 

 

INTRODUCCIÓN

Desde tiempos muy antiguos las plantas han sido utilizadas como medicinas. Varias especies de plantas han demostrado su potencial para proveer drogas efectivas contra enfermedades parasitarias, por lo que, muchos grupos de investigación se dedican a evaluar extractos vegetales como estrategia para hallar nuevas alternativas terapéuticas frente a estas afecciones.

Sin embargo, es bien conocido que muchas plantas pueden ocasionar reacciones tóxicas a quienes las utilizan.1 Por esta razón, se llevan a cabo investigaciones con el propósito de determinar, además de la acción farmacológica, la toxicidad de las plantas medicinales.

La evaluación toxicológica preclínica se realiza rutinariamente en ratones. El elevado costo de estas pruebas así como el sufrimiento causado a los animales ha motivado el reemplazo de experimentos que utilicen animales de laboratorio, la reducción del número de animales usados en cada prueba o el perfeccionamiento de las metodologías existentes con el propósito de reducir el dolor y el estrés a los animales.2

El ensayo de letalidad de Artemia salina se basa en la posibilidad de causar la muerte de larvas de este crustáceo cultivadas en el laboratorio. Este método fue propuesto por Michael y otros,3 y posteriormente desarrollado por Vanhaecke y otros,4 así como Sleet y Brendel,5 con el propósito de contar con una herramienta útil y sencilla para la determinación de toxicidad. Este método, en el cual se determina el valor de la concentración letal media (CL50) de compuestos y extractos en medio salino, ha sido utilizado para la detección de toxinas de hongos6 y cianobacterias,7 toxicidad de extractos de plantas,8,9 metales pesados10 y para predecir citoxicidad de compuestos puros.11

El presente estudio tuvo el propósito de realizar un primer tamizaje de la toxicidad mostrada por extractos de especies de plantas cubanas de interés medicinal, para valorar su inclusión en la evaluación posterior de la actividad antiparasitaria.

 

MÉTODOS

 

Colecta de las plantas y preparación de los extractos

Se colectaron partes de 34 especies de plantas, seleccionadas por su utilización como antiparasitarias después de la revisión de literatura etnobotánica. La colecta e identificación de las especies se realizó en el Jardín Botánico Nacional (JBN) por un especialista, en agosto de 2006. El código de entrada al jardín (numeración hecha por los especialistas del JBN) de los especímenes utilizados en el estudio fue registrado como referencia para colectas posteriores. La parte de la planta a evaluar se seleccionó de la información encontrada en la literatura respecto a la forma de utilización de la especie por la población. Cada órgano de la planta se colectó con cuidado para evitar la contaminación con otras partes o con materiales extraños. El material vegetal se secó en una incubadora con ventilación a 30 °C y después se pulverizó en partículas de aproximadamente 5 mm.

Se prepararon 35 extractos etanólicos. La extracción líquida del material seco procesado se realizó mediante la maceración durante 7 d en etanol 80 %. El solvente se eliminó por evaporación a presión reducida por 24 h y el residuo se mantuvo en congelación a - 70 °C al menos 48 h antes de su liofilización.

De cada muestra liofilizada se prepararon soluciones concentradas de 50 mg/mL en dimetilsulfóxido (DMSO) 100 %. Estas soluciones se conservaron a 4 °C hasta su utilización.

 

Obtención de las larvas

Quistes de A. salina, donados gentilmente por especialistas del Centro de Investigaciones Pesqueras de Cuba, fueron puestos a eclosionar en un recipiente con agua de mar esterilizada, a temperatura ambiente durante 48 h bajo régimen continuo de luz. Después de la incubación, se colocó una fuente de luz a un lado del recipiente para atraer a las larvas y separarlas de los huevos aún sin eclosionar. Los crustáceos se colectaron y trasladaron a los pozos de la placa de ensayo utilizando una pipeta Pasteur. El número de larvas colectadas y añadidas a la placa se determinó utilizando un microscopio estereoscópico.

 

Ensayo de letalidad

El ensayo consistió en exponer grupos de larvas a 4 concentraciones de extracto (1 000, 100, 10 y 1 µg/mL) durante 24 h a temperatura ambiente y bajo régimen continuo de luz. Primero, se prepararon placas de 24 pozos, se añadió a cada uno 1,5 mL de agua de mar suplementada con extracto de levadura (6 mg/mL) y con diluciones del extracto correspondiente. Seguidamente, se transfirieron entre 10 y 15 larvas a cada pozo.

Al finalizar las 24 h de exposición, se contó el número de organismos muertos y se calculó el porcentaje de mortalidad. Las larvas se consideraron muertas si no exhibían movimiento durante varios segundos de observación al microscopio estereoscópico. El experimento se consideró válido si el porcentaje de mortalidad en los controles (pozos preparados e incubados en las mismas condiciones pero en ausencia de extracto) no excedió de 10 %.

Cada concentración se evaluó por triplicado y cada extracto se ensayó 2 veces. La concentración letal media (CL50) se calculó mediante interpolación lineal de los valores del porcentaje de mortalidad, para cada concentración, en cada experimento.

El grado de toxicidad del extracto se definió en función del rango en que se encontraron los valores de CL50 de acuerdo con las categorías siguientes: extremadamente tóxico (CL50< 10 µg/mL), muy tóxico (10< CL50 <100), moderadamente tóxico (100< CL50 <1 000) y no tóxico (CL50> 1 000 µg/mL).12

 

RESULTADOS

En la tabla se muestran los valores de CL50 para los 35 extractos evaluados. Los extractos más letales fueron los de A. absinthium, M. leucadendron, M. azedarach, S. glauca y L. cilindrica, que exhibiendo valores menores que 100 µg/mL. De los 30 extractos restantes, cuyos valores de CL50 fueron mayores de 100 µg/mL, 17 (48,5 %) mostraron valores de CL50 superiores a 1 000 µg/mL.

 

Tabla. Especies de plantas medicinales cubanas incluidas en el estudio. Valores de concentración letal media (CL50) y clasificación según la toxicidad mostrada frente a larvas de A. salina, de  extractos etanólicos de estas especies

Especie

Nombre común

Código

Parte colectada

CL50 (µg/mL)

Categoría de  toxicidad

Artemisia absinthium L.

Incienso

9700183

follaje

5,17

Extremadamente tóxico

Annona glabra L.

Bagá

8300098

follaje

> 1000

No tóxico

Allium  sativum L.

Ajo

sr

bulbo

> 1000

No tóxico

Bambusa  vulgaris Schrad.

Caña brava

9500087

follaje

> 1000

No tóxico

Bidens pilosa L.

Romerillo

9700169

follaje

296,48

Moderadamente tóxico

Bixa orellana L.

Bija

9600288

semilla

213,84

Moderadamente tóxico

Bursera  simaruba Sarg.

Almácigo

8603305

follaje

163,56

Moderadamente Tóxico

Cymbopogon  citratus (DC.) Stapf.

Caña santa

8700008

follaje

> 1000

No tóxico

Cassia grandis L.

Cañandonga

8300069

follaje

> 1000

No tóxico

Curcuma longa L.

Yuquilla

9700178

rizomas

> 1000

No tóxico

Cucurbita maxima L.

Calabaza

sr

semilla

> 1000

No tóxico

Cecropia peltata L.

Yagruma

8603239

follaje

794,3

Moderadamente tóxico

Cupressus sempervirens L.

Ciprés

8603788

follaje

394,2

Moderadamente tóxico

Hura  crepitans L.

Salvadera

8600198

follaje

110,76

Moderadamente tóxico

Indigoffera  suffructicosa Mill.

Añil cimarrón

0100079

follaje

511,2

Moderadamente tóxico

Lepidium virginicum L.

Mastuerzo

8700259

follaje

928,9

Moderadamente tóxico

Luffa cylindrica (L.) Roem.

Estropajo

8600366

follaje

48,4

Muy tóxico

Melia azedarach L.

Paraíso

8402273

corteza de la raíz

59,8

Muy tóxico

Momordica charantia L.

Cundeamor

9700180

follaje

> 1000

No tóxico

Manguifera indica L.

Mango

9700183

follaje

> 1000

No Tóxico

Melaleuca leucadendron L.

Cayeput

8501918

follaje

7,4

Extremadamente tóxico

Ocimum sanctum L.

Albahaca morada

9200485

follaje

> 1000

No tóxico

Petiveria alliacea L.

Anamú

0000244

follaje

> 1000

No tóxico

Parthenium hysterophorus L.

Escoba amarga

9700175

follaje 

309,67

Moderadamente tóxico

raíz

> 1000

No tóxico

Punica granatum L.

Granado

8300050

corteza del fruto

418,5

Moderadamente tóxico

Picramnia pentandra Sw.

Aguedita

8303268

follaje

> 1000

No tóxico

Pluchea odorata Cass. & aut.

Salvia

9700158

follaje

123,3

Moderadamente tóxico

Portulaca oleracea L.

Verdolaga

sr

semilla

> 1000

No tóxico

Simarouba glauca DC.

Gavilán

8300710

follaje

16,32

Muy tóxico

Stachytarpheta jamaicensis (L.) Vahl

Verbena cimarrona

9200475

follaje

273,13

Moderadamente tóxico

Tabernaemontana citrifolia L.

Huevo de gallo

8500720

follaje

> 1000

No tóxico

Tradescantia discolor  L’Her.

Cordobán

9200504

follaje

> 1000

No tóxico

Tamarindus indica L.

Tamarindo

8300068

Corteza del tallo

> 1000

No tóxico

Turnera ulmifolia L.

Marilope

8602024

follaje

261,03

Moderadamente tóxico

sr: sin número de registro en el Jardín Botánico.

 

La clasificación de los extractos según su grado de toxicidad (tabla) evidencia que 85,7 % de los extractos evaluados se ubican en las categorías de menor toxicidad (moderadamente tóxico y no tóxico).

 

DISCUSIÓN

La detección de extractos de plantas medicinales cubanas con acción antiparasitaria específica es el propósito final de las investigaciones. La fuerte acción citotóxica de un extracto vegetal o la demostración de toxicidad in vivo constituyen limitaciones relevantes para la búsqueda.

El ensayo de letalidad de larvas de A. salina ha sido utilizado con eficiencia para detectar componentes con acción citotóxica11-14 y ha demostrado buena correlación al evaluar extractos de plantas con la toxicidad aguda oral en ratones.9 Estos hallazgos refuerzan la importancia de la utilización de este ensayo como prueba alternativa de toxicidad.

Con vistas a correlacionar la acción tóxica mostrada por extractos de plantas con otras actividades biológicas o con la presencia de determinados componentes químicos, varios autores reportan una clasificación de la toxicidad según el valor de la CL50 del extracto. Aunque estas clasificaciones poseen variaciones entre sí, todas coinciden en agrupar los extractos con CL50 inferiores a 100 µg/mL en las categorías de mayor toxicidad, mientras, los que muestran valores superiores a 1 000 µg/mL se clasifican como no tóxicos.12,13,15 Este estudio reveló la presencia de 17 extractos no tóxicos y 5 extractos con elevada toxicidad (clasificados como muy tóxicos o extremadamente tóxicos).

A. absinthium es una especie utilizada como antiparasitaria y antipirética, tanto en Cuba1 como en otros países.16 Su elevada toxicidad frente a larvas de A. salina ya había sido reportada por otros autores cubanos, al evaluar un extracto diferente de esta planta.9 El extracto del presente estudio se evaluó con anterioridad frente a un panel de protozoos y células humanas sin mostrar acción selectiva alguna.17

M. leucadendron es utilizada para combatir infecciones.1,18 La acción antiprotozoaria y antifúngica de este extracto fue considerada inespecífica por causa de la citotoxicidad demostrada frente a células humanas.17

S. glauca pertenece a la familia Simaroubacea, caracterizada por la presencia de cuasinoides, cuya acción antimalárica,19 citotóxica19 y tóxica frente a larvas de A. salina11,20 ha sido bien demostrada. El extracto del presente estudio no constituye una excepción al mostrar elevada toxicidad y citotoxicidad, lo cual hace del todo inespecífica su potente acción antiprotozoaria.17

Los extractos de M. azedarach y L. cylindrica no han sido evaluados previamente por su acción antiparasitaria o citotóxica. Sin embargo, es muy conocida la acción tóxica de la primera especie, en especial la ingestión de los frutos, por causa de la presencia de tetranortriterpenoides.1,21

En general, los resultados del presente trabajo son favorables ante el hecho de que los extractos evaluados mostraron, mayoritariamente, baja toxicidad en este modelo. La elevada acción tóxica exhibida por los extractos de A. absinthium, M. leucadendron, S. glauca, M. azedarach y L. cylindrica hacen descartar la posibilidad de continuar estudios farmacológicos en esas especies.

 

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Recibido: 22 de junio de 2009.
Aprobado: 16 de julio de 2009.

 

 

Lic. Aymé Fernández-Calienes. Laboratorio de Malaria, Departamento de Parasitología, Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kourí". Autopista Novia del Mediodía Km 6 1/2. AP 601. Marianao 13. Ciudad de La Habana, Cuba. Teléf.: 53-7-202-0650. Correo electrónico: ayme@ipk.sld.cu

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