Artículo Original

Estandarización de un ELISA para la cuantificación de anticuerpos IgG humanos contra células enteras de Bordetella pertussis

Standardization of an ELISA for the quantification of human IgG antibodies against whole cells of Bordetella pertussis

0000-0001-8740-4937Dayle Martínez-Bedoya^{1  *}  , 0000-0002-1657-6130Rocmira Pérez-Nicado^{1  **}  , 0009-0000-7080-9794Samantha Fernández-González¹  , 0000-0001-5218-4169Yamilka Soroa-Millán¹  , 0009-0001-1758-938XYisabel Aranguren-Mazorra¹  , 0009-0007-7265-2103Aylín Amador-Gómez¹  , 0000-0003-0171-4681Laura M. Rodríguez-Noda¹  , 0000-0002-2099-1791Dagmar García-Rivera¹ 

¹ Instituto Finlay de Vacunas. La Habana, Cuba.

RESUMEN

Bordetella pertussis es un patógeno exclusivo de humanos que causa la tos ferina, enfermedad respiratoria aguda que afecta principalmente a la población pediátrica. Existen dos tipos de vacunas comercializadas contra este patógeno: celulares y acelulares. Las vacunas celulares han sido extensamente utilizadas y siguen teniendo gran relevancia. El presente trabajo tuvo como objetivo la estandarización de un ELISA para la cuantificación de anticuerpos IgG contra células enteras de Bordetella pertussis. Para ello se determinó la concentración de recubrimiento, el rango lineal de la curva, los parámetros de precisión intra e interensayo, la especificidad, el valor de corte y el límite de detección. Se determinó como concentración de recubrimiento 0,5 UO/mL de células enteras. La curva estándar utilizando un suero de referencia internacional presentó un buen ajuste a una función polinómica en un intervalo entre las diluciones 1/100 y 1/24.300 con un coeficiente de correlación R²≥0,98. Los coeficientes de variación en los ensayos de precisión intra e interensayo estuvieron en los intervalos establecidos para cada uno (≤10%, ≤20% respectivamente). Los resultados obtenidos avalan el empleo de este ELISA cuantitativo para la evaluación de la respuesta a células enteras de Bordetella pertussis en ensayos clínicos.

Palabras-clave: Bordetella pertussis; tos ferina; vacunas; ELISA; anticuerpos; IgG

ABSTRACT

Bordetella pertussis is a pathogen exclusive to humans that causes pertussis, an acute respiratory disease that mainly affects the pediatric population. There are two types of vaccines commercially available against this pathogen: cellular and acellular. Cellular vaccines have been widely used and continue to be of great relevance. The aim of the present work was to standardize an ELISA for the quantification of IgG antibodies against whole cells of Bordetella pertussis. For this purpose, the coating concentration, the linear range of the curve, the intra- and inter-assay precision parameters, the specificity, the cut-off value and the detection limit were determined. The coating concentration was determined as 0.5 UO/mL of whole cells. The standard curve using an international reference serum presented a good fit to a polynomial function in a range between dilutions 1/100 and 1/24,300 with a correlation coefficient R2≥0.98. The coefficients of variation in the intra- and inter-assay precision tests were in the intervals established for each (≤10%, ≤20% respectively). The results obtained support the use of this quantitative ELISA for the evaluation of whole-cell response to Bordetella pertussis in clinical trials.

Key words: Bordetella pertussis; whooping cough; vaccines; ELISA; antibodies; IgG

Introducción

Bordetella pertussis es un patógeno exclusivo de humanos, en los que produce una enfermedad respiratoria aguda altamente contagiosa llamada tos ferina, tos convulsa o coqueluche.¹ Esta bacteria produce la exotoxina pertussis, que impide la síntesis de proteínas en las células ciliadas del tracto respiratorio y produce necrosis por la acumulación de monofosfato de adenosina cíclico, lo que inmoviliza los cilios incrementando la producción y secreción de mucus en las vías respiratorias.²

La B. pertussis se transmite de persona a persona a través de la inhalación o el contacto de las mucosas con gotitas de aerosol generadas al hablar, toser o estornudar, o procedentes de secreciones respiratorias de personas infectadas. El período de incubación oscila entre 1 y 2 semanas hasta causar tos ferina. A pesar de ser considerada una enfermedad de la infancia, eventualmente podría afectar a cualquier grupo de edad, como adolescentes y adultos jóvenes en los que muchas veces no se identifica la enfermedad como tal, pero actúan como fuente de contagio para neonatos y lactantes. La edad en que ocurre la mayor incidencia es en lactantes menores de 4 meses, que no han completado el esquema de tres dosis de vacunación, razón por la cual este grupo es más vulnerable a complicaciones como neumonía e infecciones graves asociadas a altas tasas de mortalidad. Globalmente se estima que cada año se reportan más de 16 millones de casos de tos ferina y aproximadamente 195.000 muertes.³

La vacunación es la principal medida preventiva frente a la tos ferina, ya que posee una eficacia demostrada del 80-85%, lo que ha permitido reducir la incidencia de la enfermedad y su mortalidad. Actualmente, existen dos tipos de vacunas comercializadas contra B. pertussis, una compuesta por células enteras inactivadas y la otra constituida por antígenos altamente purificados o vacuna acelular. Estas vacunas son usualmente combinadas con otros antígenos (difteria, tétanos, hepatitis B, Haemophilus influenzae tipo b, poliovirus inactivados). Según los esquemas de vacunación, se deben administrar tres dosis durante el primer año de vida y, al menos, una dosis de refuerzo antes de los 2 años de edad.³

Varios estudios han demostrado que la protección que brinda la vacunación disminuye con el tiempo, esto explica por qué se afectan más los adolescentes y adultos jóvenes que recibieron la vacuna hace varios años, así como los lactantes que no están protegidos por los anticuerpos de su madre a través de la lactancia.⁴ Existe poca información de la duración exacta de la respuesta inmune inducida por ambos tipos de vacunas y esto se debe a no contar con un correlato de protección fiable. Investigaciones recientes han sugerido que las vacunas compuestas por células enteras inactivadas protegen durante períodos más largos de tiempo que las acelulares.⁵ Cuba produce y utiliza vacunas combinadas que incluyen células enteras inactivadas de B. pertussis.⁶

La cuantificación de anticuerpos IgG contra células enteras de B. pertussis por la técnica de ELISA (Enzyme linked immunosorbent assay, por sus siglas en inglés) se utiliza para estudiar la respuesta inmune inducida por estas vacunas.⁷ Debido a inconvenientes en la adquisición de estuches comerciales, nos hemos propuesto como objetivo estandarizar un ensayo inmunoenzimático tipo ELISA para la cuantificación de IgG contra células enteras de B. pertussis en muestras de sueros de niños entre 1 y 5 años de edad.

Materiales y Métodos

Determinación de la concentración de recubrimiento

Para determinar la concentración de recubrimiento, placas de 96 pocillos MaxiSorp (Nunc, Dinamarca) se recubrieron con diluciones seriadas dobles de células enteras inactivadas de B. pertussis (100 μL/pocillo), en el rango de 8 - 0,04 Unidades de opacidad (UO)/mL, disueltas en solución salina tamponada con fosfatos (SSTF) 1X (137 mM NaCl; 2,7 mM KCl; 4,3 mM Na₂HPO₄*7H₂O; 1,4 mM KH₂PO₄), pH 7,2 ± 0,2. Después de incubadas las placas durante 12-18 h a 4ºC, fueron lavadas tres veces con solución de lavado (SSTF 1X y 0,05% de Tween 20). Se empleó como control positivo el suero de referencia internacional (SRI) 06/142 del NIBSC; como control negativo, sueros de humanos no reactivos a la bacteria y el blanco reactivo fue la solución de anticuerpos (SSTF 1X; 0,05% Tween 20 y NaN_3; pH 7,2 ± 0,2).

Se escogió como concentración de recubrimiento, la menor concentración donde se alcanzaron las densidades ópticas (D.O) deseadas para el suero control positivo sin la ocurrencia de valores de fondos, es decir, donde se observó la mayor diferencia entre las D.O del suero control positivo y el blanco reactivo.⁸

ELISA

Para las diferentes evaluaciones se utilizó un ensayo inmunoenzimático en fase sólida, cuantitativo, de tipo indirecto. Se realizó el recubrimiento con la concentración seleccionada, tal como se describió en el acápite anterior. Luego de lavadas las placas, se procedió a adicionar 100 μL/pocillo (por duplicado) de las muestras de los sueros problema, los controles y la curva estándar a partir del SRI, diluidas en solución de anticuerpos. Las placas se incubaron 1 h a temperatura ambiente y se lavaron posteriormente de la forma descrita. Luego se adicionó 100 μL/pocillo del anticuerpo anti-IgG humano conjugado a fosfatasa alcalina (Sigma-Aldrich, EUA) preparado en solución de anticuerpos. Las placas se incubaron nuevamente 2 h a temperatura ambiente y más tarde se lavaron de la forma descrita. Posteriormente, se aplicaron 100 μL de la disolución cromogénica p-nitrofenil fosfato hexahidratado (0,5 mg/mL), diluida en tampón sustrato (dietanolamina, MgCl₂*6H₂O, HCl 6M, pH 9,8 ± 0,05). La reacción se desarrolló durante 30 min a temperatura ambiente, protegida de la luz y se detuvo con 50 μL/pocillo de NaOH 3M. Las lecturas se realizaron en un lector de microplacas (TECAN, Austria) acoplado a una computadora haciendo uso del programa Magellan 7; la absorbancia se midió con una longitud de onda de 405nm con 690nm de referencia.

Determinación del rango lineal de la curva y titulación del conjugado

Se realizaron tres ensayos en los que se evaluaron 12 diluciones seriadas con factor 3 del SRI 06/142 del NIBSC, comenzando desde 1/100. En cada ensayo se procesaron seis réplicas de cada suero. Se seleccionó el segmento de la curva correspondiente a aquellas diluciones que alcanzaran un coeficiente de determinación (R²) ≥ 0,98, un coeficiente de correlación (r) ≥ 0,99, así como un coeficiente de variación (CV) menor del 10% entre las concentraciones de cada punto, una vez corregidas por el factor de dilución. Los parámetros de la ecuación se determinaron mediante regresión no lineal polinómica. El CV debe ser menor del 20% para los tres ensayos realizados.⁹ El SRI recibió una asignación arbitraria de 100 unidades arbitrarias por mililitro (UA/mL), para su empleo como curva de calibración.

La dilución del anticuerpo anti-IgG humano conjugado a fosfatasa alcalina se tituló igualmente en diluciones entre 1:10.000 y 1:20.000, con incrementos de 5.000 con las mismas curvas del SRI. Se seleccionó como dilución óptima aquella cuya razón suero positivo/suero negativo fue mayor.

Precisión del ensayo

Precisión intraensayo

La repetibilidad del ensayo se evaluó utilizando tres sueros de diferentes concentraciones dentro del rango de la curva estándar, a través del análisis de cinco réplicas. Se determinaron la media, la desviación estándar (DS) y el CV. Para considerar la precisión intraensayo como adecuada, el coeficiente de variación no debe superar el 10% entre las determinaciones realizadas.⁹

Precisión interensayo

La precisión interensayo se evaluó con los sueros referidos en el acápite anterior, por duplicado, en cuatro diluciones dobles seriadas. La evaluación se realizó bajo las condiciones de: un analista en días diferentes, tres analistas en un mismo día y entre dos laboratorios y se utilizaron las mismas soluciones y equipos excepto cuando se realizó en el otro laboratorio. La temperatura durante el ensayo se mantuvo en un rango de 18°C a 24°C. Para cumplir con este parámetro, el CV no debe superar el 20% para cada uno de los casos.⁸

Paralelismo

Se procesaron en el mismo ensayo, dos réplicas de cada punto de la curva de calibración a las diluciones previamente seleccionadas, con al menos seis réplicas de cuatro diluciones de suero, desde 1/100 hasta 1/800, de siete muestras procedentes de niños previamente vacunados. Se calculó el R² de cada curva obtenida que debe ser ≥ 0,98, así como el CV entre las concentraciones de cada muestra, una vez corregidas por el factor de dilución, que debe ser inferior al 10%.⁹

Valor de corte y límite de detección

Para establecer el valor de corte y límite de detección se utilizaron los sueros positivos y negativos (sueros positivos a tétano y difteria) como se describe en el acápite anterior. El límite de detección se calculó como la media de la respuesta de anticuerpos de las muestras de sueros no relacionadas más tres veces la DS expresada en UA/mL.

Especificidad

Para determinar la especificidad de la técnica, se evaluaron sueros humanos inmunizados con diferentes inmunógenos: células enteras de B. pertussis, toxoide tetánico (TT) y toxoide diftérico (TD) con una concentración conocida de anticuerpos en cada caso. El criterio de aceptación fue que los sueros positivos para otros antígenos resultaran no respondedores para B. pertussis según el criterio seleccionado anteriormente.⁹

Aplicación del ELISA en Ensayos Clínicos

Para evaluar el uso del ELISA, se determinaron las concentraciones de anticuerpos contra B. pertussis en sueros de niños procedentes del Ensayo Fase II/III “Evaluación de la inmunogenicidad y eficacia del candidato vacunal heptavalente contra neumococos en niños pre-escolares (ISCANI, RPCEC00000182)”; este candidato vacunal en estudio se aplicó de manera concomitante con otras vacunas del calendario nacional de vacunación. Se evaluaron dos grupos etarios comprendidos entre 12-23 meses y 2-5 años.

Resultados y Discusión

Las vacunas de células enteras contra B. pertussis han sido utilizadas desde 1940 con cierto éxito en el control de la tos ferina. Por su reactogenicidad, fueron sustituidas en algunos esquemas de inmunización por las vacunas acelulares. A pesar de ello, el microorganismo sigue re-emergiendo, aun cuando existe alta cobertura y esquemas de inmunización eficientes a nivel mundial. Las causas de esta re-emergencia son multifactoriales por lo que se impone la necesidad de evaluar continuamente el estado serológico de las poblaciones pediátricas.¹⁰

Los ensayos inmunoenzimáticos ELISA han sido extensamente utilizados en estudios inmunoepidemiológicos de B. pertussis. Estos ensayos se realizan con frecuencia mediante la evaluación directa de los anticuerpos específicos contra la toxina pertussis relacionada estrechamente con la protección.¹¹ Adicionalmente, el seguimiento y evaluación de la respuesta de anticuerpos contra la célula entera constituye una herramienta necesaria como diagnóstico y evaluación de la inmunogenicidad vacunal.¹²⁾ Estos ensayos permitirían además determinar y caracterizar la respuesta de anticuerpos específicos en esquemas de vacunación combinados o concomitantes con vacunas como la anti-neumococica.

Recubrimiento

En la Figura 1 se puede apreciar una curva sigmoidal con un ligero ascenso de las concentraciones de recubrimiento. En este caso se escogió 0,5 UO/mL de células enteras de B. pertussis, donde se alcanzó la mayor señal posible con el menor valor de blanco y se comienza a observar un discreto ascenso de la respuesta, ya que cualquier concentración superior de antígeno no proporcionará una respuesta superior.

Fig. 1 Determinación de la concentración de recubrimiento de células enteras de B. pertussis (UO/mL). D.O: densidad óptica. 

Establecimiento del rango lineal de la curva y el título del conjugado

Al evaluar la dilución adecuada del anticuerpo anti IgG humana conjugado a fosfatasa, se determinó que la mayor relación entre el suero control positivo y el suero control negativo se observó con la dilución 1:10.000.

Luego de evaluar 12 diluciones seriadas triples del suero de referencia se escogió el segmento de la curva comprendido entre 1/100 y 1/72.900 por ser el segmento que mejor ajuste mostraba con una curva polinómica de grado 3 con un coeficiente de determinación R² de 0,994 y coeficiente de correlación (r) de 0,995 (Fig. 2). El suero estándar dilución 1/100 recibió una asignación arbitraria de 100 UA/mL para su empleo como curva estándar.

Fig. 2 Curva de calibración del ELISA de cuantificación de anticuerpos contra células enteras de B. pertussis. Se grafica la densidad óptica (D.O) contra el logaritmo del inverso de la dilución del intervalo seleccionado. El valor promedio de las determinaciones de las curvas realizadas en días diferentes se muestra en línea continua. Las líneas discontinuas representan el valor promedio ± 2 desviaciones estándar (DS). 

Precisión

Precisión intraensayo

La precisión intraensayo es el parámetro que se utiliza para evaluar la variabilidad intrínseca del método. Es llevada a cabo sobre la base de un número suficiente de determinaciones, en las mismas condiciones, por un mismo analista, en el mismo laboratorio, con los mismos equipos y reactivos; generalmente en un corto intervalo de tiempo.¹³

En la Tabla 1 se muestran los CV para tres réplicas de cada muestra, siendo estas menores del 10%, por lo tanto, el ensayo posee una variabilidad intrínseca aceptable.⁹ Esto significa que el método posee una buena precisión entre determinaciones independientes realizadas en las mismas condiciones.

Tabla 1 Precisión intraensayo. 

Precisión interensayo

La reproducibilidad es la medida de la precisión de los resultados de un método analítico que se efectúa sobre la misma muestra, pero en condiciones diferentes: analistas, laboratorios, equipos y días, entre otras. Es decir, evalúa la variabilidad debida a un factor extrínseco al método.¹³ En la Tabla 2 se muestran las medias de las concentraciones obtenidas para cada una; el CV interensayo para todos los casos fue inferior al 20%. De acuerdo con estos resultados puede afirmarse que el método posee una reproducibilidad satisfactoria.¹³

Tabla 2 Precisión interensayo. 

Paralelismo

Se evaluó, además, el paralelismo entre la respuesta de la curva de calibración y la obtenida en sueros de niños participantes en el Ensayo ISCANI. Los sueros individuales de cada sujeto fueron evaluados para medir la respuesta específica contra B. pertussis. En la Figura 3 se muestran los valores promedios de cada suero con respecto a la curva de calibración obtenida a partir del SRI. En todos los casos los R² obtenidos fueron superiores a 0,98 y el CV entre las concentraciones de cada muestra fue inferior al 10%, una vez corregido los valores obtenidos por el factor de dilución, lo que avala la linealidad de la respuesta.⁹

Fig. 3 Paralelismo. Respuesta de IgG de células enteras de B. pertussis. Se grafican los valores de densidad óptica (D.O) de IgG en función de los logaritmos de las diluciones. 

Límite de detección

El límite de detección calculado fue de 0,04 UA/mL. Los sueros negativos con valores asignados para otros antígenos no relacionados presentaron valores de respuesta bajos, inferiores al límite de detección. Las muestras de los sueros no relacionados que resultaron negativas se encontraron por debajo del límite de detección, por lo que este también se convierte en el valor de corte del ensayo. Dado este valor los sujetos con valores por encima del mismo serán considerados respondedores.

Especificidad

La especificidad se define como la capacidad del ensayo para identificar o medir el analito en una muestra en presencia de otros componentes previsibles en el producto (impurezas, productos de degradación, otros componentes de la formulación). Este criterio define la propiedad del método de detectar el anticuerpo de interés, sin que otros anticuerpos afecten o influyan sobre el valor obtenido. Se puede determinar adicionando a la muestra una cantidad conocida de impurezas en concentraciones adecuadas y demostrar que el análisis no resulta afectado por la adición de esta sustancia.¹⁴⁾ Para la determinación de la especificidad se evaluaron sueros humanos inmunizados contra células enteras de B. pertussis, incluyendo otros positivos a TT y diftérico TD.

En la Figura 4A se observan los valores de las D.O de los sueros que se evaluaron. Los dos sueros negativos no relacionados presentaron respuestas bajas en todos los casos, estadísticamente significativas (p=0,002), con respecto al suero control positivo contra B. pertussis. La absorbancia del suero positivo contra células enteras de B. pertussis fue superior a la de los sueros específicos para otros antígenos. Lo que demuestra que el ensayo cuantifica los anticuerpos anti células completas de B. pertussis sin que los valores sean afectados por la presencia de interferencias en el suero.

Aplicación del Ensayo

En el ensayo se utilizaron sueros de 200 niños participantes en el Ensayo ISCANI, del candidato vacunal cubano contra neumococo PCV7-TT. En la Figura 4B se muestran las medias geométricas de las concentraciones calculadas para cada grupo etario evaluado, el grupo comprendido de 12-18 meses mostró valores de anticuerpos más altos que los encontrados en el grupo de 2-5 años. La inmunización de refuerzo de células enteras de B. pertussis que recibe la población infantil a los 12 y 18 meses pudiera ser la razón del por qué los títulos de anticuerpo son superiores, los cuáles van decayendo en el tiempo y por esto se ve una disminución en el grupo de 2-5 años.

Fig. 4 Especificidad y aplicación del ELISA de cuantificación en ensayos clínicos. A) Pertussis (suero positivo contra células enteras de B. pertussis), Tétanos (suero positivo contra TT) y Difteria (suero positivo contra TD). B) Se observan las medias geométricas de las concentraciones de los sueros procedentes del ensayo ISCANI. Las barras de error corresponden a las desviaciones estándar calculadas. D.O: densidad óptica. 

Conclusiones

El ELISA de cuantificación permitirá determinar de manera precisa y específica los anticuerpos IgG inducidos por la vacuna de células enteras de B. pertussis.

Referencias

1.  Keech C, Miller V, Rizzardi B, Hoyle C, Pryor MJ, Ferrand J, et al. Inmunogenicity and safety of BPZE1, an intranasal live attenuated pertussis vaccine, versus tetanus-diphtheria-acellular pertussis vaccine: a randomised, double-blind, phase 2b trial. Lancet. 2023; 401:843-55. doi: https://10.1016/S0140-6736(22)02644-7.

2.  Carbonetti NH. Contribution of pertussis toxin to the pathogenesis of pertussis disease. Pathog Dis. 2015;73(8):ftv073. doi: https://10.1093/femspd/ftv073.

3.  World Health Organization (WHO). Pertussis Vaccines: WHO Position Paper. Ginebra: WHO; 2015. Disponible en: https://www.who.int/publications/i/item/WHO-WER90353.  . (Consultado en línea: 10 de abril de 2023).

4.  Locht C. The Path to New Pediatric Vaccines against Pertussis. Vaccines. 2021;9(3):228. doi: https://10.3390/vaccines9030228.

5.  Gambhir M, Clark TA, Cauchemez S, Tartof SY, Swerdlow DL, Ferguson NM. A Change in Vaccine Efficacy and Duration of Protection Explains Recent Rises in Pertussis Incidence in the United States. PLoS Comput Biol. 2015;11(4): e1004138. doi: https://10.1371/journal.pcbi.1004138.

6.  Reed G, Galindo MA. Cuba's National Immunization Program. MEDICC Review. 2007;9(1):5-7. Disponible en: https://www.redalyc.org/pdf/4375/437542063002.pdf6.  . (Consultado en línea: 8 de abril de 2023).

7.  Sharma H, Yadav S, Lalwani S, Kapre S, Jadhav S, Parekh S, et al. Antibody persistence of two pentavalent DTwP-HB-Hib vaccines to the age of 15-18 months, and response to the booster dose of quadrivalent DTwP-Hib vaccine. Vaccine. 2013;31(3):444-7. doi: https://10.1016/j.vaccine.2012.11.038.

8.  Ochoa R, Martínez JC, Ferriol X, Estrada E, García AM, Blanco R, et al. Guía para la estandarización de técnicas inmunoenzimáticas en ensayos de vacunas. Vaccimonitor. 2000;9(3):13-8. Disponible en: http://scielo.sld.cu/pdf/vac/v9n3/vac033000.pdf8.  . (Consultado en línea: 24 de marzo del 2023).

9.  Mandiarote-Llanes A, Gutiérrez N, Valmaseda-Pérez T, Sosa R, Ontivero I, Talavera-Coronel A, et al. Estandarización de ensayos inmunoenzimáticos (ELISA) para la cuantificación de anticuerpos IgG inducidos por una vacuna de vesículas de membrana externa de los serogrupos A y W135 de Neisseria meningitidis. Vaccimonitor. 2012;21(2):16-23. Disponible en: https://vaccimonitor.finlay.edu.cu/index.php/vaccimonitor/article/view/689.  . (Consultado en línea: 10 de marzo de 2023).

10.  van der Lee S, Hendrikx LH, Sanders EAM, Berbers GAM, Buisman AM. Whole-Cell or Acellular Pertussis Primary Immunizations in Infancy Determines Adolescent Cellular Immune Profiles. Front Immunol. 2018; 9:51. doi: https://10.3389/fimmu.2018.00051.

11.  Riffelmann M, Thiel K, Schmetz J, Wirsing von Koenig CH. Performance of commercial enzyme-linked immunosorbent assays for detection of antibodies to Bordetella pertussis. J Clin Microbiol. 2010;48(12):4459-63. doi: https://10.1128/JCM.01371-10.

12.  van der Zee A, Schellekens JF, Mooi FR. Laboratory Diagnosis of Pertussis. Clin Microbiol Rev. 2015;28(4):1005-26. doi: https://10.1128/CMR.00031-15.

13.  Ochoa R. Técnicas inmunoenzimáticas para ensayos clínicos de vacunas y estudios inmunoepidemiológicos. La Habana: Finlay Ediciones; 2012.

14.  CECMED. Anuario Científico CECMED 2019. La Habana: CECMED; 2019. Disponible en https://www.cecmed.cu/sites/default/files/adjuntos/anuario/CECMED2019%20r.pdf14.  . (Consultado en línea: 8 de abril de 2023).

Recibido: 09 de Junio de 2023; Aprobado: 01 de Noviembre de 2023

Autor para correspondencia: [e-mail]; [e-mail]

Los autores no declaran conflictos de intereses.

Dayle Martínez-Bedoya: lideró la investigación, estableció sus objetivos y diseño, participó en el análisis de los datos del estudio, ejecución de la investigación y en la elaboración del artículo.

Rocmira Pérez-Nicado: lideró la investigación, estableció sus objetivos y diseño, participó en el análisis de los datos del estudio, ejecución de la investigación y en la elaboración del artículo.

Samantha Fernández-González: estableció sus objetivos y diseño, participó en el análisis de los datos del estudio, ejecución de la investigación y en la elaboración del artículo.

Yamilka Soroa-Millán: participó en el diseño, ejecución de la investigación.

Yisabel Aranguren-Mazorra: supervisión y revisión de la escritura del manuscrito.

Aylín Amador-Gómez: ejecución de la investigación

Laura M. Rodríguez-Noda: responsabilidad de gestión y coordinación de la planificación y ejecución de la actividad de investigación

Dagmar García-Rivera: responsabilidad de supervisión y liderazgo en la planificación y ejecución de actividades de investigación.

Todos los autores revisaron y aprobaron la versión final de este manuscrito.

⁽ Lic. Bioquímica y Biología Molecular. Aspirante a Investigador. Instituto Finlay de Vacunas. La Habana, Cuba.

^** Lic. Biología, Investigadora agregada. Investigador Agregado. Instituto Finlay de Vacunas. La Habana, Cuba.