Introducción
Neisseria meningitidis es el agente causal fundamental de la meningitis severa y otras formas de enfermedades meningocócicas como la sepsis y la septicemia. En estudios epidemiológicos realizados por la Organización Mundial de la Salud, se han identificado hasta 12 serogrupos de este microorganismo; seis de ellos (A, B, C, W, X y Y) son los responsables de la inmensa mayoría de las epidemias.
El factor de virulencia más importante de esta bacteria, para la mayoría de los serogrupos, es su cápsula polisacarídica. Por eso, desde hace más de tres décadas, se aplican en el mundo vacunas compuestas por polisacáridos capsulares aislados a partir del cultivo bacteriano. El principio fundamental de esta acción se basa en que la respuesta inmune contra la cápsula es capaz de iniciar la destrucción de la bacteria, lográndose la protección contra las enfermedades. Su uso en las epidemias cíclicas en el llamado cinturón de la meningitis en África, así lo demuestra.
Una segunda generación son las vacunas conjugadas, más complejas, pues se realiza la modificación química del polisacárido que se acopla a una proteína portadora, con lo que se logra generar memoria inmunológica en los niños.1
Se han descritos casos ocasionados por serogrupos de esta bacteria antes considerados poco frecuentes, comenzando a emerger el serogrupo X, en diferentes países como Burkina Faso2, Níger3,4, Tongo5 y Ghana.6
En la epidemia del año 2010 se informaron más de 6.500 casos de meningitis. En Burkina Faso se estimó que alrededor de 1.000 fueron provocados por el meningococo serogrupo X, con localidades que informaron incidencias de 120 casos por cada 100. 000 habitantes.7 Ninguna de las vacunas comerciales contra Neisseria meningitidis incluye al serogrupo X.
La adición del serogrupo X a cualquier vacuna polivalente está considerada una necesidad. En el Instituto Finlay de Vacunas (IFV), se han iniciado las investigaciones para la obtención de un candidato vacunal, que tendrá entre sus componentes, el polisacárido correspondiente a este serogrupo, conjugado a una proteína portadora, en este caso el toxoide diftérico o tetánico.
La cápsula polisacarídica en el meningococo serogrupo X está constituida por unidades repetitivas de N-acetil-glucosaaminafosfodiester, siendo el método de Chen y col.8 , (9) el más utilizado para la cuantificación del contenido del grupo fosfato presente en la unión fosfodiéster de los monosacáridos. Este método es uno de los más reportados para la cuantificación de fosfatos.
Los métodos analíticos que se utilizan en los laboratorios se deben estandarizar y validar como garantía de la calidad del producto.10 La estandarización y la validación son metodologías para la obtención de pruebas que documentan y demuestran experimentalmente que un proceso es lo suficientemente fiable para producir el resultado previsto dentro de los intervalos definidos.11 Las normas de Buenas Prácticas de Fabricación, la Convención de Farmacopeas y la Conferencia Internacional de Armonización plantean que la estandarización y validación debe aplicarse tanto a los procesos de fabricación como a los métodos de análisis y control.12
Materiales y Métodos
Muestras y disoluciones empleadas
Los polisacáridos capsulares del serogrupo X de meningococo se suministraron por el Grupo de Fermentación de la Dirección de Desarrollo.
Los productos intermedios (polisacáridos fragmentados y modificados) se suministraron por el Grupo de Glicoconjugación perteneciente a la Dirección de Investigaciones.
El material de referencia del polisacárido de meningococo serogrupo X, se suministró por el Laboratorio de Control de Calidad, de la Dirección de Control de Calidad, todos pertenecientes al IFV, Cuba.
Todos los reactivos utilizados fueron suministrados por Merck y son de calidad puros para análisis.
Disolución estándar de dihidrógeno fosfato de potasio monobásico: 43,8 µg/mL (cada 100 µL contiene 100 µg de fosforo elemental).
Mezcla de reactivos desarrolladores de color: se utilizó para la cuantificación del polisacárido capsular y los productos intermedios, se preparó inmediatamente antes de su uso y se obtuvo mediante la mezcla de disoluciones de ácido sulfúrico 6 mol/L, molibdato de amonio 2,5% (m/v), agua destilada y ácido ascórbico 10% (m/v) en una proporción 1:1:2:1 (v:v:v:v).
Mezcla de fusión (F): tres volúmenes de ácido sulfúrico concentrado (H2SO4 98,079g/mol; 1,83g/cm³; 95-97% y dos volúmenes de ácido perclórico (HClO4 100,46g/mol; 1,67g/cm³; 72%).
Procedimiento basado en el método de Chen
A un volumen de 0,1 mL de la muestra, se le añadió 0,1 mL de la mezcla de fusión y se calentó por 20 min a 200°C en baño seco. A continuación, se enfrió hasta temperatura ambiente y se adicionó 3,9 mL de agua destilada.
A un volumen de 1 mL de las muestras digeridas, el blanco (agua destilada) y el patrón de trabajo de fósforo elemental, se les añadió 1 mL de la disolución desarrolladora de color (descrita previamente en: muestras y disoluciones empleadas).
Se calentó a 37°C por 90 min en un baño de agua. Se midió la absorbancia a 820 nm en un espectrofotómetro modelo JENWAY 6705.
Para el procesamiento de los resultados se empleó una hoja de cálculo en Microsoft Excel, versión 2016. Se determinó el valor de concentración de cada punto de la curva de calibración a partir de las absorbancias y se obtuvo un ajuste lineal a partir de la ecuación: y = mx + a. La concentración de las muestras se calculó a partir de los valores de absorbancias mediante el método de mínimos cuadrados. Se promediaron los valores de las concentraciones (mg/mL) obtenidas, cuyas absorbancias estuvieran dentro del rango de la curva de calibración y que su coeficiente de variación (CV) intraensayo fuera inferior al 5%. Se utilizó el programa STATGRAPHICS 5 plus, para realizar los cálculos y procesamientos estadísticos.
Especificidad
Se realizó la evaluación, utilizando el procedimiento basado en el método de Chen, a muestras de proteínas portadoras: anatoxina tetánica (TT) y diftérica (TD) y de polisacáridos (dextrana) sin presencia de fosfatos en su estructura (sin realizarle una previa dilución antes de aplicarle el procedimiento en estudio), así como a muestras de dos lotes de MenX como comparador.
Linealidad
Para ello se evaluó la curva de calibración en el intervalo de 1-9 µg de fósforo elemental, evaluando cada una de las concentraciones por cuadruplicado. Mediante los programas Microsoft Excel versión 2016 y STATGRAPHICS 5 plus, se calculó la ecuación de la recta, su coeficiente de correlación (r), el coeficiente de variación del factor respuesta (CVf), la desviación estándar relativa de la pendiente (Sbrel), así como se realizó la prueba de proporcionalidad para el intercepto, demostrándose que no hay diferencia estadística del intercepto con cero.14
Exactitud
Se realizó mediante la cuantificación de un material de referencia del polisacárido capsular del meningococo serogrupo X, con un valor nominal, determinado a través de procedimientos de resonancia magnética nuclear cuantitativa, HPLC con detector DIONEX, método de determinación de fosforo inorgánico y electroforesis capilar.9 Se evaluó que no existiera diferencia estadísticamente significativa entre los valores obtenidos usando el procedimiento y su valor nominal. Para ello, utilizando el programa STATGRAPHICS 5 plus, se realizó una comparación de la media obtenida experimentalmente de la cuantificación del material de referencia y el valor nominal de este material.
Precisión
Se evaluó en condiciones de repetibilidad (estudio intraensayo) y precisión intermedia (estudio interensayo).
Para el estudio de repetibilidad, se realizó la determinación, por sextuplicado en estudio intraensayo, de muestras de polisacárido capsular del serogrupo X a tres niveles de concentración (bajo, medio y alto), por un mismo analista, en las mismas condiciones de día, laboratorio y equipamiento.
Los resultados obtenidos se procesaron estadísticamente, con la utilización de las herramientas de Microsoft Excel versión 2016; se calcularon los CV de cada nivel de concentración y se compararon con el valor del coeficiente aceptado para metodologías basadas en métodos espectrofotométricos, que debe ser inferior al 3%.15
Para el estudio de precisión en condiciones de precisión intermedia, se cuantificaron muestras de polisacárido del serogrupo X a tres niveles de concentración (bajo, medio y alto), por dos analistas en tres días diferentes, en iguales condiciones de laboratorio y equipamiento.16,17Para demostrar su cumplimiento se evaluó que los CV fueran inferiores al 5% entre los resultados obtenidos, para ambos analistas, durante los tres días, para tres niveles de concentración (baja, media, alta).18
Resultados y Discusión
La estandarización y validación de los métodos analíticos utilizados en las actividades de Investigación-Desarrollo desempeñan un papel determinante, pues de ellos depende la comprobación confiable y reproducible de los índices de calidad de los resultados obtenidos para el desarrollo de los diferentes candidatos vacunales que se investigan y se desarrollan.
El método analítico establecido se clasificó como ensayo cuantitativo, de acuerdo con la clasificación de las agencias reguladoras del uso de medicamentos,13 por tratarse de un ensayo destinado a cuantificar contenido de analitos mayoritarios. El diseño de la estandarización que se empleó, se realizó teniendo en cuenta la clasificación reguladora por lo que se evaluaron los parámetros siguientes: especificidad, linealidad, precisión (precisión intraensayo e interensayos) y exactitud.11
Se estudió la especificidad del método mediante la evaluación de muestras de proteínas que se utilizan frecuentemente como portadoras en la obtención de conjugados y polisacáridos que no presentan fosfato en su estructura, sin realizarle diluciones previas para el análisis. Los resultados obtenidos se muestran en la Tabla 1. Se observó que aun siendo altas las concentraciones de las muestras estudiadas, las absorbancias medidas son muy pequeñas, lo que demuestra que el procedimiento es específico para analitos que tengan fósforo en su estructura.
Muestra | A1 | A2 | Am |
---|---|---|---|
Dextrana | 0,005 | 0,003 | 0,004 |
TT(H2O)1708 | 0,012 | 0,010 | 0,011 |
DT(H2O)1709 | 0,018 | 0,021 | 0,020 |
Men X lote A | 0,619 | 0,625 | 0,609 |
Men A lote B | 0,432 | 0,429 | 0,426 |
TT: anatoxina tetánica. TD: anatoxina diftérica. A1,2…n: absorbancia de cada réplica. Am: absorbancia media.
El estudio de la linealidad de la curva de calibración en el rango de trabajo, resultó que es satisfactoria (Tabla 2). Se observó que los resultados de los análisis estadísticos obtenidos en todos los casos cumplieron con el criterio de aceptación propuestos para cada prueba: la ecuación de curva de calibración obtenida fue: y = 0,1073 x - 0,0091 y el coeficiente de correlación (r) igual a 0,9994. El CVf (Absorbancia/Concentración) fue de 4,08%. La Sbrel calculada tiene un valor de 0,84%. Al aplicar la prueba de proporcionalidad del intercepto, el intervalo de confianza resultó ser [-0,0199; 0,0017].
Parámetros | Teórico | Experimental |
---|---|---|
Ecuación de la recta | y= mx + a | y= 0,1073x - 0,0091 |
r | ≥ 0,99 | 0,9994 |
CVf | ≤ 5 % | 4,08 |
Sbrel | ≤ 2 % | 0,84 |
Intercepto(a) | 0 incluido en IC a | [-0,0199; 0,0017] |
Los resultados del estudio de exactitud del procedimiento analítico se muestran en la Tabla 3. Se compara la concentración media de un material de referencia (por cuadruplicado), evaluada mediante el procedimiento en estudio, con su valor nominal, utilizando la prueba t student; se demuestra que no existe diferencia estadísticamente significativa entre el valor obtenido experimentalmente y el valor nominal del material utilizado para un nivel de confianza del 95%, por lo que el método es exacto bajo las condiciones del estudio.
Los resultados de la evaluación de la precisión (repetibilidad y precisión intermedia) cumplen los criterios de aceptación preestablecidos, los CV son inferiores al 3% para la repetibilidad (Tabla 4) e inferior al 5% para la precisión intermedia (Tabla 5).
Conclusiones
Los resultados de la estandarización del procedimiento basado en el método de Chen demostraron que puede utilizarse en Investigación-Desarrollo al mantener un control analítico adecuado y demostrarse que es específico, lineal en el intervalo de concentraciones estudiadas, preciso en condiciones de repetibilidad y precisión intermedia y exacto.