Artículo original

Procedimientos para la producción de setas del género pleurotus con potencial aplicación farmacológica

Procedures for the production of pleurotus genus mushrooms with pharmacological potential application

0000-0002-7149-5069MSc. Yaixa Beltrán-Delgado^{1  *}  , 0000-0002-3916-8594Dr.C. Humberto Morris-Quevedo¹  , 0000-0001-5961-9375Dr.C. Gabriel Llauradó-Maury¹  , Dr.C. Rosa Catalina Bermúdez-Savón¹  , 0000-0001-9120-038XDr.C. Nora García-Oduardo¹ 

¹Centro de Estudios de Biotecnología Industrial. Facultad de Ciencias Naturales y Exactas. Universidad de Oriente, Santiago de Cuba, Cuba

RESUMEN

Diversos procedimientos han sido utilizados para la producción de setas comestibles, basados no solamente en las fermentaciones en estado sólido y sumergida, sino que incorporan otros elementos como los de control de parámetros de crecimiento y requerimientos nutricionales. En la actualidad, la biotecnología se ha convertido en una disciplina prometedora para este propósito, debido a la facilidad con que estos pueden ser cultivados y a las múltiples aplicaciones que poseen. En general, se asocian las características de los sustratos empleados en el cultivo de setas comestibles del género Pleurotus, con sus efectos funcionales, características organolépticas y químicas. En el presente trabajo se realiza una compilación sobre los procedimientos para la producción de las setas comestibles del género Pleurotus, con aplicaciones potenciales desde el punto de vista farmacológico.

Palabras-clave: Pleurotus sp; producción de setas; fermentación sumergida, fermentación sólida

ABSTRACT

Various procedures have been used for the production of edible mushrooms, based not only on solid and submerged fermentation, but also incorporate other elements such as control of growth parameters and nutritional requirements. Today, biotechnology has become a promising discipline for this purpose, due to the ease with which they can be cultivated and the multiple applications they possess. In general, the characteristics of the substrates used in the cultivation of edible mushrooms of the Pleurotus genus are associated with their functional effects, organoleptic and chemical characteristics. In the present work, a compilation on the procedures for the production of edible mushrooms of the Pleurotus genus was made, with potential pharmacological applications.

Key words: Pleurotus sp; mushrooms production; submerged fermentation; solid fermentation

Introducción

Desde hace milenios el hombre ha utilizado las setas comestibles como alimentos y para el tratamiento de diferentes enfermedades.¹ De ahí que, en la actualidad se consideren una fuente promisoria de metabolitos bioactivos con aplicaciones terapéuticas potenciales, útiles para la industria alimenticia y médico-farmacéutica.

Las moléculas bioactivas de estas setas comprenden compuestos tales como polisacáridos, terpenos, fenoles, etc, los cuales muestran varias actividades biológicas ² en el tratamiento de varias enfermedades degenerativas.³ Es por ello, que las setas son consideradas la próxima generación de alimentos.⁴

Dichos compuestos se pueden aislar tanto del micelio como de los cuerpos fructíferos y el medio de cultivo filtrado.⁵ Al respecto, diferentes investigaciones sobre basidiomicetos, han evidenciado que la proporción de estos compuestos varía según la etapa de crecimiento del hongo y el medio de cultivo donde es cultivado.⁶ A su vez, los diferentes sustratos empleados en el cultivo de setas comestibles, sobre todo basidiomicetos, influyen en sus efectos funcionales, características organolépticas y químicas.⁷

En la actualidad, la biotecnología se ha convertido en una disciplina prometedora para la producción de Hongos Comestibles Medicinales debido a la facilidad con que estos pueden ser cultivados y a sus múltiples aplicaciones.

Dentro del grupo de basidiomicetos figuran las especies del género Pleurotus. El cultivo de estas especies ofrece múltiples ventajas, como el poder realizarse en climas tropicales, son fáciles de producir y compatibles con sustratos ricos en celulosa y lignina, ⁸⁾ tales como agrícolas y agroindustriales: cañeros, cafetaleros, paja de arroz, etc.^9-10, además de su significante tolerancia a la variedad de condiciones agroclimáticas.¹¹ De ahí que los sustratos utilizados en cada región dependen de la disponibilidad de subproductos de la agricultura.¹²

Debido a sus características nutricionales y medicinales, en Cuba se ha trabajado en la introducción, producción y consumo de setas del género Pleurotus, en varias provincias dentro del programa de Agricultura Urbana.^13-14

Tomando en consideración estos elementos, el objetivo del presente trabajo es realizar una compilación sobre los procedimientos para la producción del género Pleurotus, con aplicaciones potenciales desde el punto de vista farmacológico, utilizando la fermentación sumergida y en estado sólido.

Desarrollo del tema

Fermentación sumergida y sólida para la obtención de setas comestibles: el caso del género Pleurotus

Diversos procedimientos han sido utilizados para la producción de biomasa de setas comestibles, basados en la fermentación en estado sólido y sumergida.¹⁵ El proceso fermentativo permite que los microorganismos produzcan biomasa y sustancias orgánicas en ausencia o presencia de oxígeno.⁵

En el caso de las fermentaciones en estado líquido, estas constituyen una de las herramientas de preferencia de los biotecnólogos, debido a la facilidad de controlar variables como la temperatura, relación C/N del sustrato, contenido de oxígeno, velocidad de agitación, el pH, etc.^15-16

La fermentación sumergida ha sido desarrollada para una variedad de hongos comestibles, utilizando la propagación del micelio para diferentes aplicaciones como, por ejemplo, la producción de cuerpos fructíferos en sustratos sólidos, la producción de biomasa para la obtención de alimento, suplementos dietéticos, enzimas, entre otras.^15-17

Este tipo de procedimiento ofrece un gran potencial puesto que es mucho más rápido y las condiciones de cultivo son fácilmente reproducibles e independientes de las variaciones climáticas. Además, los productos pueden ser recuperados con facilidad. Por otro lado, la fermentación sumergida puede proveer una biomasa más uniforme y reproducible, en un corto tiempo y con menores probabilidades de contaminación, ¹⁸ lo que resulta de interés para la obtención de productos con valor medicinal.¹⁹

El cultivo sumergido es una alternativa promisoria y poco explorada para la obtención de micelio de hongos comestibles, ²⁰ con el que se puede realizar estudios bioquímicos y fisiológicos.²¹ Este tipo de cultivo, proporciona rendimientos de biomasa superiores comparados con cualquier otro tipo de técnica.²²

Con respecto a la fermentación sumergida de especies de Pleurotus, estudios recientes reportan el uso de caldo dextrosa papa, aminoácidos, licor de maíz, azúcares reductores (principalmente glucosa y xilosa), hidrolizado de caseína, extracto de levadura y peptona, como principales fuentes de carbono y nitrógeno.²³ Las condiciones de cultivo reportadas se refieren a temperaturas de 25 a 30 °C y pH de 4 a 6, además del uso de cultivos estáticos o agitados, estos últimos en un rango de 100-160 rpm.⁵

Pleurotus spp puede también ser cultivada en fermentación sumergida para la producción de proteína fúngica, micelio o como agentes aromatizantes.²⁴

En algunos estudios se ha utilizado la fermentación sumergida de P. ostreatus para la degradación de compuestos orgánicos como los hidrocarburos policíclicos aromáticos,²⁵ mientras que, en otras especies del género, como Pleurotus pulmonarius, ha servido para la producción de aromas.²⁶

En algunos casos se plantea que, la morfología, fisiología y productividad de los hongos filamentosos están influidos por parámetros de proceso en diferentes niveles.²⁷ Los estudios más detallados del crecimiento de Pleurotus ostreatus en fermentación sumergida los refieren.²⁸⁾ Estos autores demostraron que varios factores, como la geometría del impelente, la velocidad y la intensidad de aeración, afectaban el rendimiento de crecimiento y tamaños de los pellets de esta especie de seta.

A través de procesos de optimización de diferentes variables durante el cultivo de este género, se ha podido maximizar el crecimiento y producción de biomasa y metabolitos de interés.

Los estudios cinéticos encontrados sobre Pleurotus spp están dedicados, casi exclusivamente al cultivo sumergido.^29-30) En este sentido, estudiaron la cinética del crecimiento de Pleurotus ostreatus durante la fermentación sumergida para establecer los indicadores de rendimiento y productividad en la producción de biomasa y fenoles totales. ³¹ Los resultados mostraron que la obtención de fenoles totales se maximiza cuando la concentración de glucosa decrece a lo largo del tiempo, característica relacionada con el metabolismo secundario.

Algunos investigadores establecieron una patente de invención y el registro de la marca NUTRISETAS, referidos a los procedimientos para la obtención de preparados inmunocéuticos a partir de Pleurotus ostreatus, utilizando fermentación sumergida y sólida. Todo ello, desarrollado en condiciones controladas, escalables y factibles técnicamente.³²

Se ha observado, por ejemplo, que la producción de la biomasa micelial y los contenidos de polisacáridos de Pleurotus ostreatus en fermentación sumergida dependen de la especie utilizada, los parámetros de crecimiento y sus requerimientos nutricionales.³³

Algunos autores observaron que uno de los parámetros que influía en el crecimiento y producción de polisacáridos de Pleurotus ostreatus era el coeficiente de transferencia de oxígeno inicial (K_La), con mejores rendimientos de estos compuestos a una K_La inicial baja.³⁴

Otras investigaciones, optimizaron el medio de cultivo para la obtención de micelio durante la fermentación sumergida de Pleurotus ostreatus. Las evidencias apuntaron a que las concentraciones de las fuentes de nitrógeno tuvieron una influencia significativa en la producción de biomasa, en comparación con la fuente de carbono.³⁵

Por otro lado, también se ha optimizado la concentración del sustrato para la producción de enzimas extracelulares ligninolíticas oxidativas e hidrolíticas.^17,22

Otro de los procedimientos muy utilizados en la industria biotecnológica, es la fermentación en fase sólida (FES), la cual se efectúa en un sustrato sólido con poca agua, de manera que permita el crecimiento y metabolismo de los microorganismos que en ella se desarrollan.³⁶⁾ Al respecto, la fermentación en fase sólida de los residuos lignocelulósicos se valora como uno de los métodos más prometedores para la producción de proteína no convencional.

La FES, brinda la posibilidad de mejorar los rendimientos de la producción de setas con adecuada composición nutricional, utilizándose subproductos agroindustriales disponibles y fáciles de manipular.³⁷ Existen diferentes metodologías de obtención de setas comestibles por FES, tales como, bolsa, pared, botella, parrilla, bandeja y otras.⁶

A pesar de que se describe a la FES para la producción de macromicetos como un proceso lento, difícil de monitorizar, controlar y escalar,⁵ los cuerpos fructíferos obtenidos bajo buenas prácticas de manufactura pueden ser utilizados en la formulación de bioproductos consistentes y seguros, como alimentos funcionales, nutracéuticos y compuestos activos biológicamente.

Entre el 80 % y 85 % de los productos de Hongos Comestibles Medicinales son a partir de cuerpos fructíferos, los cuales resultan ser considerablemente diversos. Solo el 15 % de todos los productos están basados en extractos del micelio y un pequeño porcentaje del cultivo filtrado.³⁸

Existen pocas investigaciones que utilizan como variable, el crecimiento radial del hongo para referirse a la modelación cinética del crecimiento en fase sólida de especies del género Pleurotus,.³⁹ En el caso del estudio informado por Pineda, se efectuó una modelación matemática de la cinética del crecimiento del cuerpo fructífero de la cepa Pleurotus ostreatus CEBA gliie-010606, sobre residuos de frijol (Phaseolus vulgaris), en el rango de 10 a 30 °C. El modelo logístico utilizado permitió establecer una dependencia entre la temperatura y los parámetros de crecimiento del hongo (máxima concentración de biomasa, X_max y velocidad específica de crecimiento máxima, µ_max).⁴⁰

Producción de Pleurotus sp en pulpa de café

Las especies del género Pleurotus son lignícolas, saprotróficas o parásitas, pertenecientes al grupo de hongos de la pudrición blanca.⁴¹ Muchos son los sustratos que se utilizan para su cultivo, provenientes fundamentalmente de actividades agrícolas, agroindustriales y forestales. Estos sustratos, deben cumplir algunas condiciones: disponibilidad, características físico-químicas, precio, facilidad de manejo y transporte.⁴²

El contenido de material orgánico de los subproductos agroindustriales, está constituido por diferentes porcentajes de celulosa, lignina, hemicelulosa y pectina.⁴³⁾ Dentro de los subproductos lignocelulósicos de origen agroindustrial, susceptibles de ser utilizados como sustratos para la producción de setas comestibles del género Pleurotus, se destaca la pulpa de café, específicamente en el cultivo de especies de Pleurotus ostreatus.⁴⁴

La industria del café utiliza el 9,5% del peso seco del fruto, el 90,5% restante es un residuo. El primer subproducto que se obtiene en el procesamiento del fruto del café es la pulpa, la cual representa, en base húmeda, alrededor del 43,58 % del peso fresco del fruto.

En Cuba, por ejemplo, en la zona montañosa de la región suroriental, abundan grandes volúmenes de subproductos lignocelulósicos. Específicamente, en dicha zona se cultiva el 85% del café que se produce en el país, cuyo procesamiento húmedo genera varios subproductos como pulpa de café, mucílago y aguas de desecho y la cascarilla. Al respecto,³⁷⁾ informaron del no aprovechamiento eficiente de estos subproductos, pudiendo ser vertidos al medio, con la consiguiente contaminación de agua y suelos.

Otros trabajos ofrecen la experiencia de cultivo de siete cepas de Pleurotus sp, utilizando como sustrato la pulpa de café (Coffea arábica L.). Este estudio informó que las diferentes cepas colonizaron la totalidad del sustrato a los 18 días y casi todas fructificaron, aproximadamente a los 43 días. Los mejores valores de eficiencia biológica estuvieron en 225,3 %, 204 % y 168, 5%.⁴⁵

Esta forma de cultivo, resulta interesante, pues, por un lado, permite el crecimiento de cuerpos fructíferos de Pleurotus ostreatus para ser utilizados como alimento funcional, nutracéuticos y nutricéuticos y, por otro, implica la eliminación de los problemas de contaminación ambiental que provocan los subproductos agroindustriales de naturaleza lignocelulósica.

Algunos investigadores han observado como la especie Pleurotus ostreatus cultivada en pulpa de café es capaz de degradar la cafeína contenida en el sustrato y luego aumentar el contenido de este alcaloide en los cuerpos fructíferos de la especie, a medida que la seta crece.⁴⁶

Por el contrario Job reportó que esta misma especie, Pleurotus ostreatus, cultivada en borra de café, degradaba completamente la cafeína y no incorporaba esta a los cuerpos fructíferos. Este autor, plantea que este elemento resultaría de interés si estos hongos tuvieran la misma particularidad con otros tipos de sustratos donde son cultivados, lo cual constituiría una herramienta para la incorporación de algún componente de especial interés que pudiera aportar un valor agregado a las especies de este género.⁴⁷

La abundancia y variedad de los metabolitos bioactivos obtenidos en los diferentes tipos de productos derivados de esta seta comestible, están en correspondencia con los sustratos y medios de cultivo donde esta crece y de las condiciones climatológicas y de extracción que se establezcan.

Estos metabolitos bioactivos ejercen potenciales efectos terapéuticos y farmacológicos en enfermedades que, en la actualidad, constituyen un serio problema de salud para la humanidad.

Algunos metabolitos bioactivos del género Pleurotus con potencial terapéutico

Numerosos compuestos bioactivos del género Pleurotus han sido extraídos de extractos crudos, micelios y basidioma, para propósitos investigativos,²³ sobre todo con perspectivas de que los bioproductos de estas setas puedan ser utilizados como agentes terapéuticos en el tratamiento de enfermedades tales como el cáncer, diabetes, obesidad, enfermedades cardiovasculares y neurodegenerativas, entre otras.

Algunos de estos compuestos son polisacáridos, péptidos, glicoproteínas, fenoles, lípidos y enzimas oxidativas e hidrolíticas (Tabla 1). En el presente trabajo haremos referencia a algunos de ellos.

Tabla 1 Algunos compuestos bioactivos y actividades farmacológicas de Pleurotus sp 

COMPUESTOS BIOACTIVOS	ACTIVIDAD FARMACOLÓGICA REPORTADA	ESPECIES DEL GÉNERO PLEUROTUS	REFERENCIAS
Ubiquitina	Antiviral	Pleurotus ostreatus	^15
β-glucano	Antiviral	Pleurotus tuber-regium	^49
Ribonucleasa	Antiviral(VIH)	Pleurotus ostreatus	^50
Lectina	Inhibe la reverso transcriptasa	P. citrinopileatus	^51
Polisacárido	Antineoplásico	Pleurotus ostreatus, P sajor -caju, P.citrinopileatus.	^52
Pleurano(β-glucano)	Antioxidante	P.ostreatus	^53
Flavonoide (quercetina, catequina)	Antioxidante	P.ostreatus, P eous.	^54
Mevinolina	Antilipidémico	P.ostreatus	^55
Pleurano	Antinflamatorio	P. ostreatus	^56
β- glucano, fenoles, vitamina C	Hepatoprotector	Pleurotus sp	^57
Polisacárido	Antitumoral	P. pulmonarius	^58
Compuestos fenólicos, melatonina, seratonina, ergotionina	Antioxidante, contra el envejecimiento	P. ostreatus	^59^)
Glucano	Inmunomodulador	P.ostreatus	^60
Eringiolide A	Efectos citotóxicos contra células HeLa y línea tumoral HepG2	Pleurotus sp	^15

Polisacáridos

Los polisacáridos derivados de hongos comestibles, son las sustancias más potentes con propiedades antitumorales e inmunomoduladoras,.⁶¹ Dentro de los principales exponentes de este grupo se encuentran la quitina, celulosa, α y ß-glucanos, hemicelulosas (mananos, xilanos y galactanos), así como complejos polisacáridos-proteína.⁶² Estos polisacáridos biológicamente activos se pueden encontrar en los cuerpos fructíferos, en el micelio cultivado e incluso ser extraídos del medio donde se cultivan.

Otros investigadores reportaron que una fracción de polisacáridos obtenido del micelio de Pleurotus ostreatus, mediante extracción con oxalato de amonio a 100 °C, inhibió el desarrollo del tumor de Ehrlich y Sarcoma 180.⁶³ También evaluaron la actividad antimicrobiana y el efecto estimulador del complemento/macrófagos en un extracto de micelio de Pleurotus sp obtenido por decocción. El extracto estimuló el sistema autolítico de cepas de bacterias y levaduras, actuando además sobre la inmunidad innata por activación de la vía alternativa del sistema complemento e incrementando las funciones de macrófagos.⁶⁴

Otros investigadores observaron que un extracto de micelial de Pleurotus sp, obtenido por decocción (76,8% de polisacáridos), ejerció actividad antiproliferativa in vitro contra las células de leucemia NB4 humanas, a través de la inducción de la apoptosis y la detención del ciclo celular en la fase G/M. Este extracto podría considerarse un candidato para la radio y quimio terapias, sustentado en sus efectos sobre la fagocitosis de macrófagos y la respuesta de hematopoyesis de ratones expuestos a estos tratamientos.⁶⁵

Otros bioproductos obtenidos de esta seta, tales como el pulverizado de cuerpos fructíferos (55% polisacáridos),⁶⁶ se han utilizado como inmunocéuticos, al ser administrados por vía oral durante 7 días (1000 mg / kg) a ratones tratados con ciclofosfamida, potenciando la respuesta inmunitaria celular y el índice de estimulación linfoproliferativa.

Los polisacáridos, mevalonatos y otros derivados de basidiomicetos, poseen compuestos bioactivos con actividades hipocolesterolémicas. Recientemente se ha reportado que extractos de cuerpos fructíferos de P. citrinopileatus, incrementan los efectos antihiperlipidémicos. Se observó la disminución de los niveles de colesterol total y triglicéridos en ratas hiperlipidémicas, a las que se les administró dichos extractos, mientras que los niveles de lipoproteínas de alta densidad fueron significativamente incrementados.⁶⁷

Polisacáridos escleróticos aislados de extractos hidrosolubles calientes de P. tuber-regium y P. rhinocerus, con estructuras químicas complejas (complejos polisacárido-proteína y ß-glucanos puros), demostraron efecto inmunomodulador, observándose un significativo aumento en el peso del bazo de ratones Balb/C sanos. El estudio in vivo demostró que células de la inmunidad innata y células T-helper son activadas por estos polisacáridos escleróticos.⁶⁸

ß-glucanos

Los polisacáridos de hongos se producen principalmente como glucanos, algunos de los cuales están unidos por enlaces glicosídicos ß (1-3), ß (1-6) y enlaces glucosídicos α- (1-3), pero muchos son heteroglicanos.

Los ß-glucanos son aislados principalmente de la pared celular de las células fúngicas (aproximadamente la mitad de la biomasa de la pared celular está constituida de ß-glucanos), aunque también pueden ser excretados al medio. Poseen actividades inmunoestimuladoras, anticancerígenas, antiinfecciosas, hipocolesterolémicas, hipoglucémicas, antiinflamatorias y analgésicas.⁶⁹

El género Pleurotus es reconocido como la más importante fuente de β-glucanos, particularmente pleurano, debido que se le ha demostrado su bioactividad en humanos y este actualmente se comercializa en el mercado como un inmunoestimulante natural, denominado Inmunoglucano P4H.⁷⁰ Este polisacárido tiene una significativa actividad anticarcinogénica y estimulante de la inmunidad.

Otros investigadores, como,⁷¹ reportaron un (1-3)-β-D glucano, aislado de los cuerpos fructíferos de P. sajor-caju con actividad in vitro frente a macrófagos THP 1 e in vivo en ensayos de peritonitis en ratones.

Polifenoles

Los compuestos fenólicos, también conocidos como polifenoles, se consideran antioxidantes naturales y representan un importante grupo de compuestos bioactivos en los alimentos.⁷²

Estudios realizados en extractos de cuerpos fructíferos de Pleurotus florida con diferentes solventes (acetona, metanol y agua a altas temperaturas), detectaron trece compuestos fenólicos: ácido gálico,ácido homogentisíco, ácido protocatecuico, ácido clorogénico, ácido cafeico, vanillina, ácido ferúlico, naringina, resveratrol, naringenina, hesperetina, formononetinay biochanina-A.⁷³

Se ha reportado que el contenido fenólico total de P. ostreatus, es más alto, en comparación con los valores reportados en otros hongos como, Coriolus versicolor, Ganoderma lucidum, Ganoderma tsugae.⁷⁴

Los flavonoides también están representados en los extractos de cuerpos fructíferos de las especies de Pleurotus y son poseedores de la actividad antioxidante. En este sentido, han constatado una alta concentración de flavonoides como la rutina y crisina en Pleurotus ostreatus.⁷⁵

Algunos compuestos fenólicos y flavonoides han sido identificados y determinados en la especie P. eryngii, comprobándose su actividad secuestradora del radical 1,1-difenil-2-picrilhydrazilo (DPPH) y su capacidad de incrementar la actividad in vitro de la enzima superóxido dismutasa (SOD).⁷⁶

Terpenos

La bioactividad, identificación y aislamiento de monoterpenoides, y sesquiterpenoides obtenidos del micelio de P. cornucopiae fueron reportados.⁶⁰ Cuatro monoterpenoides y un sesquiterpenoide, fueron obtenidos del cultivo sólido de esta especie, fermentada en arroz. Algunos de los compuestos mostraron moderada actividad inhibitoria frente a la producción de óxido nítrico en macrófagos activadores de lipopolisacáridos. Otros exhibieron ligeramente citotoxicidad contra las células cancerígenas HeLay HepG2.

Dentro de los diterpenos, se ha aislado la pleuromutilina de Pleurotus mutilis y Clitopilus passeckerianus (antes llamado Pleurotus passeckerianus), metabolito con marcada acción antibiótica contra infecciones micoplasmáticas en animales, que ha permitido el desarrollo y la producción de este tipo de medicamento a nivel comercial.⁷⁷

Algunos investigadores, aislaron doce sesquiterpenoides del cultivo sólido de la seta comestible Pleurotus cystidiosus.⁷⁸

Investigadores plantean que el hynophilin, el pleurotelol y el ácido pleurotélico son compuestos aislados de fermentaciones de Pleurotellus hypnophilus. Mientras que el pleurotellol y el ácido pleurotélico pertenecen al grupo de los sesquiterpenoides.⁷⁹

El metabolismo secundario de los basidiomicetos es rico en terpenoides, especialmente sesquiterpenoides, muchos de los cuales poseen estructuras que hasta ahora, sólo han sido detectadas en esta clase de microorganismos.

Los triterpenoides (esteroles y esteroides) tienen actividades bioactivas incluyendo anticancerígena, antimicrobina, antioxidante, antiinflamatoria, inmunomoduladora, antifúngica, antitumoral, insecticida, entre otras.⁸⁰

Conclusiones

El empleo de procedimientos de base biotecnológica para el cultivo de setas comestibles, no solo tiene en cuenta el uso de la fermentación sumergida y sólida, sino que aprovecha otros elementos como los referidos al tipo de sustrato o medio de cultivo, así como el control de parámetros de crecimiento y requerimientos nutricionales, dependiendo de la especie de seta comestible que se utilice. En particular las especies del género Pleurotus, pueden ser obtenidas en una variedad de sustratos y bajo condiciones climáticas diferentes, lo cual permite en ocasiones optimizar parámetros para la producción de biomasa y metabolitos de interés. Actualmente, los estudios realizados con setas del género Pleurotus muestran su variedad micoquímica, por lo que esto podría ser utilizado para la obtención de bioproductos con gran aplicación en la industria médico- farmacéutica

Referencias bibliográficas

1.  PETROVIC, J.; GLAMOCLIJA, J.; STOJKOVIC, D.; CIRIC, A.; et al1.  . Nutritional value, chemical composition, antioxidant activity and enrichment of cream cheese with chestnut mushroom Agrocybe aegerita1.  (Brig.) Sing. Journal of Food Science and Technology1.  .2015, 52(10), 6711-6718.ISSN: 0975-8402.

2.  SHANG, H.M.; SONG, H.; XING, Y.L.; NIU, S.L.; et al2.  . Effects of dietary fermentation concentrate of Hericium caput-medusae2.  (Bull.:Fr.) Pers. on growth performance, digestibility, and intestinal microbiology and morphology in broiler chickens. Journal of the Science of Food and Agriculture2.  .2016, 96(1), 215-222. ISSN: 1097-0010.

3.  MAA, G.; YANG, W.; ZHAOA, J.; PEI, F.; et al3.  . A critical review on the health promoting effects of mushrooms nutraceuticals. Food Science and Human Wellness3.  . 2018, 7(2), 125-133. ISSN: 2213-4530.

4.  URBAIN, P.; SINGLER, F.; IHORST, G.; BIESALSKI, H. K.; et al4.  . Bioavailability of vitamin D2 from UV-B-irradiated button mushrooms in healthy adults deficient in serum 25- hydroxyvitamin D: A randomized controlled trial. European Journal of Clinical Nutrition4.  . 2011, 65, 965-971.ISSN: 1476-5640.

5.  SUÁREZ, C.; NIETO, IJ. Cultivo biotecnológico de macrohongos comestibles: una alternativa en la obtención de nutracéuticos. Revista Iberoamericana de Micología5.  . 2012, 30(1), 1-8doi:10.1016/j.riam.2012.03.011. ISSN: 1130-1406.

6.  CHANG, S.T.; MILES, P.G. Mushrooms cultivation, nutritional value, medicinal effect, and environmental impact. 2. ed. Boca Raton, Florida: CRC Press Inc.; 2004.ISBN:0-8493-1043-1.

7.  TEWTRAKUL, S.; TANSAKUL, P.; DAENGROT, C.; PONGLIMANONT, C.; et al7.  . Antiinflammatory principles from Heritiera littoralis7.  bark. Phytomedicine7.  . 2010, 17 (11), 851-855.ISSN:0944-7113.

8.  NIETO, I. J.; CHEGWIN, A.C. Influencia del sustrato utilizado para el crecimiento de hongos comestibles sobre sus características nutracéuticas. Revista Colombiana de Biotecnología8.  .2010, 12(1), 169-178. ISSN: 0123-3475.

9.  BERMÚDEZ, R. C.; GARCÍA, N.; MOURLOT, A. Fermentación sólida para la producción de Pleurotus9.  sp. sobre mezclas de pulpa de café y viruta de cedro. Tecnología Química9.  . 2007, XXVII (2), 55-62. ISSN: 2224-6185.

10.  SANCHES, C. Cultivation of Pleurotus ostreatus10.  and other edible mushrooms. Applied Microbial Biotechnology10.  . 2010, 85, 1321-13377. ISSN:1432-0614.

11.  KHOLOUD, M.A.; NAHLA, A.B.; NADIA, S.; et al11.  , K. Cultivation of oyster mushroom Plerotus ostreatus11.  on date-palm leaves mixed with other agro-wastes in Saudi Arabia. Saudi Journal of Biological Sciences11.  . 2014, 21, 616-625.ISSN: 1319-562X.

12.  BERMÚDEZ, R.C.; GARCÍA, N.; SERRANO, M.; RODRÍGUEZ, M.I.; et al12.  . Conversión de residuales agroindustriales en productos de valor agregado por fermentación en estado sólido. Tecnología Química12.  .2014, XXXIV (3), 217-225. ISSN: 2224-6185.

13.  BERMÚDEZ R.C.; GARCÍA N.; GROSS P.; SERRANO, M. Cultivation of Pleurotus13.  on agricultural substrates in Cuba. Micología Aplicada Internacional13.  . 2001, 13(1):2529. ISSN: 1534-2581.

14.  MORRIS, H.J.; LLAURADÓ, G.; BELTRÁN, Y.; LEBEQUE, Y.; et. al14.  . Immunomodulating and antitumor properties of Pleurotus14.  sp. in Cuba. En J. E. Sánchez, G. Mata y D. J. Royse (Eds.). Updates on Tropical Mushrooms. Basic and Applied Research14.  . El Colegio de la Frontera Sur: San Cristóbal de Las Casas, Chiapas, México. 2018, 159-180. ISBN: 978-607-8429-60-8.

15.  GREGORI, A.; SVAGELJ, M.; POHLEVEN, J. Cultivation techniques and medicinal properties of Pleurotus15.  spp. Food Technology and Biotechnology15.  . 2007, 45, 238-249. ISSN: 1330-9862.

16.  INACIO, F.D.; FERREIRA, R.O.; ARAUJO, C.A.V.; PERALTA, R.M.; DE SOUZA, C.G.M. Production of enzymes and biotransformation of orange waste by oyster mushroom, Pleurotus pulmonarius16.  (Fr.) quel. Advances in Microbiology16.  . 2015, 5, 1-8. ISSN: 2165-3410.

17.  RODRÍGUEZ, S.; FERNÁNDEZ, M.; BERMÚDEZ, R.C.; MORRIS, H. Tratamiento de efluentes industriales coloreados con Pleurotus17.  spp. Revista Iberoamericana Micología17.  . 2003; 20, 164-168. ISSN: 1130-1406.

18.  DAS, AR.;BORTHAKUR, M.;SAHA, AK.; JOSHI, SR.; DAS, P. Growth of mycelial biomass and fruit body cultivation of Lentinus squarrosulus18.  collected from home garden of Tripura in Northeast India. Journal of Applied Biology and Biotechnology18.  . 2015, 3, 17-19. ISSN: 2347-212X.

19.  RATHORE, H.; PRASAD, S.; SHARMA, S. Mushroom nutraceuticals for improved nutrition and better human health: A review. PharmaNutrition19.  , 2017, 5, 35-46. ISSN: 2213-4344.

20.  MAU, JL.; CHANG, C.N.; HUANG, S.J.; CHEN, C.C. Antioxidant properties of methanolic extracts from Grifola frondosa20.  , Morchella esculenta20.  and Termitomyces albuminosus20.  mycelia. Food Chemistry20.  . 2004, 87, 111-118.ISSN:0308-8146.

21.  WAN, W. A. A. Q. I.; AB KADIR, S.; SAARI, N. The morphology of Ganoderma lucidum21.  mycelium in a repeated-batch fermentation for exopolysaccharide production. Biotechnology Reports21.  . 2016, 2-11. ISSN: 2215-017X.

22.  RATHORE, H.; PRASAD, S.; KAPRI, M.; TIWARI, A.; SHARMA, S. Medicinal importance of mushroom mycelium: Mechanisms and Applications. Journal of Functional Foods22.  .2019, 56, 182-193.ISSN:1756-4646.

23.  GOMES-CORREA, R.C.; BRUGNARI, T.; BRACHT, A.; PERALTA, RM.; FERREIRA, I.C.F.R. Biotechnological, nutritional and therapeutic uses of Pleurotus23.  spp. (Oyster mushroom) related with its chemical composition: A review on the past decade findings. Trends in Food Science & Technology23.  .2016, 50, 103-117.ISSN:0924-2244.

24.  COHEN, R.; PERSKY, L.; HADAR, Y. Biotechnological applications and potential of wood-degrading mushrooms of the genus Pleurotus24.  . Applied Microbial Biotechnology24.  . 2002, 58, 582-594. ISSN: 1432-0614.

25.  BEZALEL, L.; HADAR, Y.; CERNIGLIA, C.E. Mineralization of polycyclic aromatic hydrocarbons by the white rot fungus Pleurotus ostreatus25.  . Applied Environmental Microbiology25.  . 1996, 62(1), 292-295.ISSN:1098-5336.

26.  BELINKY, P.A.; MASAPHY, S.; LEVANON, D.; HADAR, Y.; DOSORETZ, C.G. Effect of medium composition on 1-octen-3-ol formation in submerged cultures of Pleurotus pulmonarius26.  . Applied Microbial Biotechnology26.  . 1994, 40, 629-633.ISSN:1098-5336.

27.  EHGARTNER, D.; HERWIG, C.; FRICKE, J. Morphological analysis of the filamentous fungus Penicillium chrysogenum27.  using flow cytometry-the fast alternative to microscopic image analysis. Applied Microbial Biotechnology27.  . 2017, 101(20), 1-14. https://doi.org/10.1007/s00253-017-8475-2. ISSN: 1098-5336.

28.  MARQUEZ-ROCHA, F.; GUILLEN, N.G.K.; SANCHEZ, V.J.E.; VAZQUEZ-DUHALT, R. Growth characteristics of Pleurotus ostreatus28.  in bioreactor. Biotechnology Techniques28.  .1999, 132, 29-32. ISSN: 1573-6784.

29.  BENKORTBI, O.; HANINI, S.; BENTAHAR, F. Batch kinetics and modelling of Pleuromutilin production by Pleurotus mutilis29.  . Biochemical Engineering Journal29.  . 2007, 36, 14-8. ISSN: 1369-703X.

30.  BETTIN, F.; ROSA, L.O.; MONTANARI, Q.; CALLONI, R.; GAIO, T.A.; MALVESSI, E.; et. al30.  . Growth kinetics, production, and characterization of extracellular laccases from Pleurotus sajor-caju30.  PS-2001. Process Biochemistry30.  . 2011, 46, 758-764. ISSN: 1359-5113.

31.  FERRER, J.C.; BELTRÁN, Y.; MAS-DIEGO, S.M.; MORRIS HJ.; DÍAZ, U. Estudio cinético de la producción de biomasa y compuestos fenólicos por Pleurotus ostreatus31.  en fase sumergida. Rev. Cubana Química31.  . 2019, 31(1), 16-30. ISSN: 2224-5421.

32.  MORRIS, H.J.; LLAURADÓ, G.; BELTRAN, Y.; LEBEQUE, Y.; FONTAINE, R.; BERMUDEZ, R.C.; et. al32.  . Procedure for the obtainment of an immunoceutical preparation from Pleurotus32.  spp. Cuban Patent 23717 (1754/2011) Ref: 2011/1337. (In Spanish), 2011.

33.  ROSADO F.R.; GERMANO, S.; CARBONERO, E.R.; DA COSTA, S.M.G.; et. al33.  . Biomass and exopolysaccharide production in submerged cultures of Pleurotus ostreatus33.  Sing. and Pleurotus ostreatusʻ33.  florida’ (Jack.: Fr.) Kummer. Journal of Basic Microbiology33.  . 2003, 43, 230-237. ISSN:1521-4028.

34.  GERN, R.M.M.; WISBECK, E.; RAMPINELLI, J.R.; NINOW, J.L.; et. al34.  . Alternative medium for production of Pleurotus ostreatus34.  biomass and potential antitumor polysaccharides. Bioresource Technology34.  . 2008, 99(1), 76-82. ISSN: 1873-2976.

35.  FERRER, J.C.; MAS-DIEGO, S.M.; BELTRÁN, Y.; RODRÍGUEZ, Y.; et. al35.  . Optimización del medio de cultivo para la producción de biomasa y compuestos fenólicos por Pleurotus ostreatus35.  en fase sumergida utilizando la metodología de superficie de respuesta. Revista Tecnología Química35.  . 2019(a), 39(1), 5-21. ISSN: 2224-6185.

36.  FAZENDA, M.; SEVIOUR, R.; MCNEIL, B.; HARVEY, L. Submerged culture fermentation higher fungi: the macrofungi. Advances in Applied Microbiology36.  . 2008, 63, 33-92. ISSN: 0065-2164.

37.  BERMÚDEZ, R.C.; GARCÍA, N. Cultivo de setas comestibles (Pleurotus37.  ) en el Centro de Estudios de Biotecnología Industrial (CEBI), Cuba". En: D. Martínez-Carrera, N. Curvetto, M. Sobal, P. Morales & V. M. Mora (Eds). Hacia un Desarrollo Sostenible del Sistema de Producción-Consumo de los Hongos Comestibles y Medicinales en Latinoamérica: Avances y Perspectivas en el Siglo XXI. México: Red Latinoamericana de Hongos Comestibles y Medicinales: Producción, Desarrollo y Consumo. Colegio de Posgraduados, 2010. 489-512.ISBN:970-9752-01-4.

38.  LINDEQUIST, U.; NIEDERMEYER, T.H.; JÜLICH, W.D. The pharmacological potential of mushrooms. EC Alternative Medicine38.  . 2005, 2, 285-99. ISSN: 1741-4288.

39.  SARICAYA, A.; LADISCH, M.R. An Unstructured Mathematical Model for Growth of Pleurotus ostreatus39.  on Lignocellulosic Material in Solid-State Fermentation Systems. Applied Biochemistry and Biotechnology39.  . 1997, 62(1), 71-85. ISSN: 1559-0291.

40.  PINEDA, J.A.; RAMOS, L.B.; SOTO, C. P. Cinética del crecimiento de Pleurotus ostreatus40.  en la etapa de producción del cuerpo fructífero. ICIDCA. Sobre los Derivados de la Caña de Azúcar40.  . 2013, 47(3), 56-61. ISSN: 0138-6204.

41.  ANDRINO, A.; MORTE, A.; ONRUBIA, M. Caracterización y cultivo de tres cepas de Pleurotus eryngii41.  (Fries) Quélet sobre sustratos basados en residuos agroalimentarios/Characterization and culture of three Pleurotus eryngii41.  (Fries) Quélet strains on food and agricultura wastes. In Anales de Biología41.  . 2011, 33, 53. ISSN: 1989-2128.

42.  RODRIGUEZ, N.; ZULUAGA, J. Cultivo de Pleurotus pulmonarius42.  (Fr.) Quél. en pulpa de café. Cenicafé42.  , 1994, 45(3), 81-92. ISSN: 0120-0275.

43.  SAVAL, S. Aprovechamiento de Residuos Agroindustriales: Pasado, Presente y Futuro. BioTecnología43.  . 2012, 16 (2), 14-46. ISSN: 0188-4786.

44.  MARTÍNEZ-CARRERA, D.; AGUILAR, A.; MARTÍNEZ, W.; BONILLA, M.; et. al44.  . Commercial production and marketing of edible mushrooms cultivated on coffee pulp in Mexico. Capítulo 45 En: Coffee Biotechnoly and Quality. Sera T, Soccol CR, Pandey A, Roussos S. (eds.) Kluwer Academics Publisher. 2000, 471-488. Springer, Dordrecht. BRASIL. ISBN: 978-90-481-5565-1.

45.  BERMÚDEZ, R.C.; GARCÍA, N.; KEKELI, K.; SERRANO, M. Evaluación de la productividad de dos cepas de Pleurotus45.  spp sobre pulpa de café Coffea canephora45.  Pierre ex Frhoener. Tecnología Química45.  . 201845.  , 38(2), 246-255. ISSN: 2224-6185.

46.  SALMONES, D.; MATA, G.; WALISZEWSKI, K.N. Comparative culturing of Pleurotus46.  spp. on coffee pulp and wheat straw: Biomass production and substrate biodegradation. Bioresource Technology46.  . 2005, 96, 537-544.ISSN:0960-8524.

47.  JOB, D. Use of coffee spent industry residues for production of Pleurotus ostreatus47.  (Jacq.: Fr.) Kummer in solid state fermentation. Revista Iberoamericana de Micología47.  . 2004, 21, 195-197.ISSN:1130-1406.

48.  PIRAINO, F.; BRANDT C.R. Isolation and partial characterization of an antiviral, RC-183, from the edible mushroom Rozites caperata48.  . Antiviral Research48.  .1999, 43, 67-78. ISSN: 0166-3542.

49.  NOMURA, A.; SHIGEMOTO, R.; NAKAMURA, Y.; OKAMOTO, N.; et. al49.  . Developmentally regulated postsynaptic localization of a metabotropic glutamate receptor in rat rod bipolar cells. Cell49.  .1994, 77(3), 361-369.ISSN:0092-867.

50.  DABA, A.S.; EZERONYE, O.U. Anti-cancer effect of polysaccharides isolated from higher basidiomycetes mushrooms. African Journal of Biotechnology50.  .2003, 2(12), 672-678. ISSN50.  : 1684-5315.

51.  ZHANG, M.; CHEUNG, P.C.; ZHANG, L.; CHIU, C.M.; et al51.  . Carboxymethylated β-glucans from mushroom sclerotium of Pleurotus tuber-regium51.  as novel water-soluble antitumor agent. Carbohydrate polymers51.  . 2004, 57(3), 319-325. ISSN: 1879-1344.

52.  BOBEK, P.; GALBAVY, S. Effect of pleuran (beta-glucan from Pleurotus ostreatus52.  ) on the antioxidant status of the organism and on dimethylhydrazine-induced precancerous lesions in rat colon. British Journal of Biomedical Science52.  .2001, 58(3), 164. ISSN: 2474-0896.

53.  RAMKUMAR, L.; RAMANATHAN, T.; THIRUNAVUKKARASU, P., ARIVUSELVAN, N. Antioxidant and radical scavenging activity of nine edible mushrooms extract. International Journal of Pharmacology53.  .2010, 6(6), 950-953. ISSN: 1811-7775.

54.  HASSAN, F.R.H.; MEDANY, G.M. Effect of pretreatments and drying temperatures on the quality of dried Pleurotus54.  mushroom spp. Egypt54.  . Journal of Agriculture Research54.  . 2014, 92, 1009-1023. ISSN: 1110-6336.

55.  JOSE, N.; AJITH, T.A.; JANARDHANAN, K.K. Methanol extract of the oyster mushroom, Pleurotus florida55.  , inhibits inflammation and platelet aggregation. Phytotherapy Research: An International Journal Devoted to Pharmacological and Toxicological Evaluation of Natural Product Derivatives55.  . 2004, 18(1), 43-46. ISSN55.  : 1099-1573.

56.  MUSZYNSKA, B.; SULKOWSKA K.; EKIERT, H. Phenolic acids in selected edible basidiomycota species: Armillaria mellea56.  , Boletus badius56.  , Boletus edulis56.  , Cantharellus cibarius56.  , Lactarius deliciosus56.  and Pleurotus ostreatus56.  . Acta Scientiarum Polonorum Hortorum Cultus56.  . 2013, 12, 107-116. ISSN:1644-0692.

57.  ADEBAYO, E. A.; MARTÍNEZ‐CARRERA, D.; MORALES, P.; SOBAL, M.; et. al57.  . Comparative study of antioxidant and antibacterial properties of the edible mushrooms Pleurotus levis57.  , P. ostreatus57.  , P. pulmonarius57.  and P. tuber‐regium57.  . International Journal of Food Science & Technology57.  . 2018, 53(5), 1316-1330.

58.  WOLDEGIORGIS, A.Z.; ABATE, D.; HAKI, G.D.; ZIEGLER, G.R. Antioxidant property of edible mushrooms collected from Ethiopia. Food Chemistry58.  . 2014, 157, 30-36. ISSN:‎ 0308-8146.

59.  DEVI, R. Diversity of wild edible mushrooms in indian subcontinent and its neighboring countries. Recent Advances in Biology and Medicine59.  . 2015. Vol. 1, Pages 69-76.ISSN: 2378-654X.

60.  WANG, S.; BAO, L.; ZHAO, F.; WANG, Q.; ET AL60.  . Isolation, identification, and bioactivity of monoterpenoids and sesquiterpenoids from the mycelia of edible mushroom Pleurotus cornucopiae60.  . Journal of Agricultural and Food Chemistry60.  . 2013, 61, 5122-5129. ISSN: 0021-8561.

61.  MIZUNO, M.; NISHITANI, Y. Immunomodulating compounds in Basidiomycetes. Journal of Clinical Biochemistry and Nutrition61.  .2013, 52(3), 202-207.doi:10.3164/jcbn.13-3. ISSN: 0912-0009.

62.  ZHANG, M.; CUI, S.W.; CHEUNG, P.C.K.; WANG, Q. Antitumor polysaccharides from mushrooms: A review on their isolation, structural characteristics and antitumor activity. Trends in Food Science and Technology62.  . 2007, 18, 4-19. ISSN: 0924-2244.

63.  FACCHINI, J. M.; ALVES, E. P.; AGUILERA, C.; GERN, R. M. M.; et. al63.  . Antitumor activity of Pleurotus ostreatus63.  polysaccharide fractions on ehrlich tumor and sarcoma 180. International Journal of Biological Macromolecules63.  . 2014, 68, 72-77. ISSN: 0141-8130.

64.  LLAURADO, G.; MORRIS, H. J.; FERRERA, L.; CAMACHO, M.; et. al64.  . In-vitro antimicrobial activity and complement/macrophage stimulating effects of a hot-water extract from mycelium of the oyster mushroom Pleurotus64.  sp. Innovative Food Science & Emerging Technologies64.  . 2015, 30, 177-183.ISSN:1466-8564.

65.  MORRIS, H.J.; HERNÁNDEZ, E.; LLAURADÓ, G.; TEJEDOR, M.C.; et. al65.  . In vitro anti-proliferative effects on NB4 human leukemia cells and physicochemical screening of Pleurotus65.  sp. (higher Basidiomycetes) mycelia from Cuba. International Journal of Medicinal Mushrooms65.  . 2014, 16, 239-245.ISSN: ‎1521-9437.

66.  LLAURADÓ, G.; MORRIS, H.J.; TAMAYO, V.; LEBEQUE, Y.; et. al66.  . Haematopoiesis radioprotection in Balb/c mice by an aqueous mycelium extract from the Basidiomycete Pleurotus ostreatus66.  mushroom. Natural product research66.  . 2015, 29(16), 1557-1561.ISSN:1478-6419.

67.  HU, S.H.; WANG, J.C.; LIEN, J.L.; LIAW, E.T.; et. al67.  . Antihyperglycemic effect of polysaccharide from fermented broth of Pleurotus citrinopileatus67.  . Applied Microbiology and Biotechnology67.  . 2006,7067.  , 107-113.ISSN:1432-0614

68.  WONG, K.; CONNIE, K.M.; LAI, C.K. Immunomodulatory activities of mushroom sclerotial polysaccharides. Food Hydrocolloids68.  . 2011, 25, 150-158.ISSN:0268-005X.

69.  SMIDERLE, F.R.; OLSEN, L.M.; CARBONERO, E.R.; BAGGIO, C.H.; et. al69.  . Anti-inflammatory and analgesic properties in a rodent model of a (1→ 3), (1→ 6)-linked β-glucan isolated from Pleurotus pulmonarius69.  . European Journal of Pharmacology69.  . 2008, 597(1-3), 86-91. ISSN: 0014-2999.

70.  JESENAK, M.; MAJTAN, J.; RENNEROVA, Z.; KYSELOVIC, J.; et. al70.  . Immunomodulatory effect of pleuran (β-glucan from Pleurotus ostreatus70.  ) in children with recurrent respiratory tract infections. Int. Immunopharmacol70.  . 2013, 15, 395-399. ISSN: 1567-5769.

71.  SILVEIRA, M.L.L.; SMIDERLE, F.R.; MORAES, C.P.; BORATO, D.G.; et. al71.  . Structural characterization and anti-inflammatory activity of a linear β-D-glucan isolated from Pleurotus sajor-caju71.  . Carbohydrate Polymers71.  . 2014, 113, 588-596. ISSN: 0144-8617.

72.  BARROS, L.; FERREIRA, M. J.; QUEIROS, B.; FERREIRA, I. C.; BAPTISTA, P. Total phenols, ascorbic acid, β-carotene and lycopene in Portuguese wild edible mushrooms and their antioxidant activities. Food Chemistry. 2007, 103(2), 413-419.ISSN:0308-8146.

73.  HOAN K, K.T.; NGUYEN, D.B.S.; RIM, L.; SOO, T. Appraisal of antioxidant and anti-inflammatory activities of various extracts from the fruiting bodies of Pleurotus florida73.  . Molecules73.  . 2014, 19, 3310-3326; doi:10.3390/molecules19033310. ISSN:1420-3049.

74.  MAU, J.; LIN, H.; SONG, S. Antioxidant properties of several specialty mushrooms. Food Research International74.  . 2002, 35, 519-526. ISSN: 0963-9969.

75.  JAYAKUMAR, T.; THOMAS, P.A.; GERALDINE, P. In-vitro antioxidant activities of an ethanolic extract of the oyster mushroom, Pleurotus ostreatus75.  . Innovative Food Science & Emerging Technologies75.  . 2009, 102, 28-234. ISSN: 1466-8564.

76.  KIM, M.Y.; SEGUIN, P.; AHN, J.K.; KIM, J.J.; ET AL76.  . Phenolic compound concentration and antioxidant activities of edible and medicinal mushrooms from Korea. Journal of Agricultural and Food Chemistry76.  .2008, 56, 7265-7270. ISSN: 1520-5118.

77.  BENKORTBI, O.; HANINI, S.; BENTAHAR, F. Batch kinetics and modelling of pleuromutilin production by Pleurotus mutilis77.  . Biochemical Engineering Journal77.  . 2007, 36(1), 14-18. ISSN: 1369-703X.

78.  TAO, Q.; MA, K.; YANG, Y.; WANG, K.; et. al78.  . Bioactive sesquiterpenes from the edible mushroom Flammulina velutipes78.  and their biosynthetic pathway confirmed by genome analysis and chemical evidence. The Journal of Organic Chemistry78.  . 2016, 81(20), 9867-9877. ISSN: 0022-3263.

79.  BRIZUELA, M.A.; GARCÍA, L.; PÉREZ, L.; MANSUR, M. Basidiomicetos: nueva fuente de metabolitos secundarios. Revista Iberoamericana de Micología79.  . 1998, 15, 69-74. ISSN: 1130-1406.

80.  VOCAK, K.; BUDESINSK, Y M.; HARMATHA, J.; PÍS, J. New ergostane type ecdysteroids from fungi. Ecdysteroid constituents of mushroom Paxillus Kocjan atrotomentosus80.  . Tetrahedron80.  . 1998, 54, 1657-66. ISSN: 0040-4020

Recibido: 04 de Diciembre de 2019; Aprobado: 30 de Abril de 2020

^*Autor para la correspondencia. correo electrónico: [e-mail]

Los autores expresan que no hay conflictos de intereses en el manuscrito presentado.

Yaixa Beltrán Delgado. Participó en la compilación de la revisión del tema y realizó la revisión y aprobación de la versión final del trabajo.

Humberto Morris Quevedo. Participó en la compilación de la revisión del tema y realizó la revisión y aprobación de la versión final del trabajo.

Gabriel Llauradó Maury. Realizó la revisión y aprobación de la versión final del trabajo.

Rosa Catalina Bermúdez Savón. Realizó la revisión y aprobación de la versión final del trabajo.

Nora García Oduardo. Realizó la revisión y aprobación de la versión final del trabajo.