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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto in vitro del extracto acuoso de Dichrostachys cinerea (L.) Wight & Arn. en el desarrollo de las fases exógenas de estrongílidos gastrointestinales de ovinos]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The in vitro effect of aqueous extract of leaves from Dichrostachys cinerea on egg hatching, larval development and migration of third-stage larvae of gastrointestinal strongyles, was evaluated. The treatments were three concentrations of aqueous extracts of D. cinerea leaves (500, 250 and 125 mg/mL), albendazole and levamisole solutions, as well as Phosphate Buffer Saline (PBS) and dimethyl sulfoxide (DMSO) as controls; the design was completely randomized. The hatching percentages showed significant differences among post-treatments. PBS caused the highest hatching rate (96,68%); 30,51% hatched with albendazole and the D. cinerea leaf extracts showed moderate hatching rates (between 49,75 and 66,54%), seemingly dose-dependent. The development of L1/L2 larvae to L3 treated with aqueous D. cinerea extract also showed dose-dependent effects and significant differences with regards to the positive and negative control groups. The dose of 500 mg/mL inhibited larval development in similar percentages as those of albendazole (8,89 and 1,28%, respectively). The PBS medium did not interfere in the larval migration capacity, while with levamisole the values were reduced from 86,45 to 93,92%; the aqueous extracts also significantly reduced such migration, with values between 77,67% and 48,97%. The aqueous D. cinerea extracts showed in vitro anthelmintic activity in the three development stages of the exogenous cycle of gastrointestinal strongyles in sheep; this activity was more evident in the larval development and migration of these nematodes.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana" size="2">       <strong>ARTÍCULO DE INVESTIGACIÓN </strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="4"><b>Efecto <i>in vitro</i> del extracto acuoso de    <i>Dichrostachys cinerea </i>(L.) Wight &amp;    Arn. en el desarrollo de las fases exógenas de    estrongílidos gastrointestinales de ovinos </b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="3"><b><i>&nbsp;</i></b></font></p>     <p><font face="Verdana" size="3"><b><i>In vitro</i> effect of the aqueous extract of    <i>Dichrostachys cinerea</i> (L.) Wight &amp; Arn. on the development of exogenous stages  of gastrointestinal strongyles in sheep</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"><strong>&nbsp;J. Arece, Yaíma Roche, Y. López y M. Molina </strong></font> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <font face="Verdana" size="2"><i>Estación Experimental de Pastos y Forrajes &quot;Indio Hatuey&quot; </i></font> <font size="2"><i><font face="Verdana">Central España Republicana, CP 44280, Matanzas, Cuba    <br> Email:</font></i><font face="Verdana"><a href="mailto:javier.arece@indio.atenas.inf.cu"> </a><i><a href="mailto:%20javier.arece@indio.atenas.inf.cu">javier.arece@indio.atenas.inf.cu</a></i></font></font></p>     <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p><hr>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>RESUMEN</b> </font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">Se evaluó el efecto <i>in vitro</i> de extractos acuosos de hojas de marabú  (<i>Dichrostachys cinerea</i>) en la eclosión de  huevecillos, el desarrollo larvario y la migración de las larvas del  tercer estadio de estrongílidos gastrointestinales. Los  tratamientos fueron tres concentraciones de extractos acuosos de hojas  de marabú (500, 250 y 125 mg/mL), soluciones de  albendazol y levamisol, así como el Phosphate Buffer Saline (PBS) y el  dimetilsulfóxido (DMSO) como controles; el diseño  fue completamente aleatorizado. Los porcentajes de eclosión presentaron  diferencias significativas entre  postratamientos. El PBS ocasionó la mayor tasa de eclosión (96,68%); el  30,51% eclosionó con el albendazol y los extractos de hojas  de marabú mostraron tasas de eclosión moderadas (entre 49,75 y 66,54%),  al parecer dependientes de la dosis. El  desarrollo de las larvas L1/L2 a las L3 tratadas con extracto acuoso de  marabú también presentó efectos dosis-dependientes  y diferencias significativas con respecto a los grupos controles  positivos y negativos. La dosis de 500 mg/mL inhibió  el desarrollo larvario en porcentajes similares a los del albendazol  (8,89 y 1,28%, respectivamente). El medio PBS  no interfirió en la capacidad de migración de las larvas, mientras que  con el levamisol los valores se redujeron de 86,45  a 93,92%; los extractos acuosos también redujeron significativamente  dicha migración, con valores entre 77,67 y  48,97%. Los extractos acuosos de <i>D. cinerea</i> presentaron actividad antihelmíntica <i>in vitro</i> en los tres estadios de desarrollo  del ciclo exógeno de los estrongílidos gastrointestinales de ovinos; esta actividad resultó más evidente en el desarrollo y  la migración de las larvas de estos nemátodos. </font> </p>    <p><font face="Verdana" size="2"><strong>Palabras clave</strong>: <i>Dichrostachys cinerea</i>, ovinos, parásitos.</font> </p><hr>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b> </font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">The <i>in vitro</i> effect of aqueous extract of leaves from      <i>Dichrostachys cinerea</i> on egg hatching, larval development  and migration of third-stage larvae of gastrointestinal strongyles, was evaluated. The treatments were three  concentrations of aqueous extracts of <i>D.  cinerea</i> leaves (500, 250 and 125 mg/mL), albendazole and levamisole solutions, as well  as Phosphate Buffer Saline (PBS) and dimethyl sulfoxide (DMSO) as controls; the design was completely randomized.  The hatching percentages showed significant differences among post-treatments. PBS caused the highest hatching  rate (96,68%); 30,51% hatched with albendazole and the  <i>D. cinerea</i> leaf extracts showed moderate hatching rates  (between 49,75 and 66,54%), seemingly dose-dependent. The development of  L1/L2 larvae to L3 treated with aqueous <i>D.  cinerea</i> extract also showed dose-dependent effects and significant differences with regards to the positive and negative  control groups. The dose of 500 mg/mL inhibited larval development in similar percentages as those of albendazole (8,89  and 1,28%, respectively). The PBS medium did not interfere in the larval migration capacity, while with levamisole  the values were reduced from 86,45 to 93,92%; the aqueous extracts also significantly reduced such migration, with  values between 77,67% and 48,97%. The aqueous <i>D.  cinerea</i> extracts showed <i>in vitro</i> anthelmintic activity in the  three development stages of the exogenous cycle of gastrointestinal strongyles in sheep; this activity was more evident in  the larval development and migration of these nematodes. </font> </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2"><strong>Key words</strong>: <i>Dichrostachys cinerea</i>, parasites, sheep.</font> </p><hr>     <p>   <font face="Verdana" size="3"><b></b></font></p>    <p><font face="Verdana" size="3"><b>&nbsp;</b>    <p>&nbsp;</p></font>    <P></p><font face="Verdana" size="3"><b>INTRODUCCIÓN</b></font>     <p><font face="Verdana" size="2">La búsqueda de alternativas que minimicen el uso de los antihelmínticos para el control parasitario en  pequeños rumiantes constituye un reto para la producción animal mundial, ya que su uso indiscriminado ha provocado  una  resistencia generalizada a los principales medicamentos antiparasitarios (Arece  <i>et al</i>., 2004; Wolstenholme <i>et al</i>., 2004), lo que se agudiza por el lento desarrollo a corto plazo de productos con actividad antiparasitaria.    </font> </p>    <p><font face="Verdana" size="2">Actualmente, existen diferentes estrategias encaminadas a solucionar la problemática del  parasitismo gastrointestinal en los ovinos, entre las que se destacan las relacionadas con el uso de plantas que  tienen potencialidades antiparasitarias (Athanasiadou <i>et al</i>., 2001; Githiori <i>et al</i>., 2006; Marie-Magdeleine  <i>et al.</i>, 2010). </font> </p>    <p><font face="Verdana" size="2">En los estudios <i>in vivo</i> con plantas nativas de diferentes países se ha reportado una mejor respuesta de  los animales ante la infestación parasitaria, lo que se atribuye a: 1) los efectos directos, relacionados con la  influencia de algún metabolito secundario de las plantas sobre los parásitos (fundamentalmente taninos condensados), y  2) los efectos secundarios, vinculados a un incremento del estado de resiliencia de los animales, por una mejora  en la dieta, al consumir este tipo de plantas (Kyriazakis <i>et al</i>., 2010). </font> </p>    <p><font face="Verdana" size="2">Por otra parte, también se han realizado investigaciones <i>in vitro</i> para determinar la actividad de los  extractos de plantas en la inhibición de la eclosión de huevecillos, y también en el desarrollo de la migración larvaria y  en la motilidad de parásitos adultos (Marie-Magdeleine, 2009). Estos estudios han permitido la selección de un  gran número de plantas, de las que se tiene alguna evidencia de actividad antiparasitaria. </font> </p>    <p><font face="Verdana" size="2">En Cuba existen experiencias del uso de fitofármacos en el control parasitario; el resultado de mayor  impacto se generó con <i>Bromelia  pinguin</i> (piña de ratón), la cual fue efectiva ante <i>Haemonchus</i> spp. en terneros (Marrero <i>et  al.</i>, 1994). En México se empleó  contra<i> Oesophagostomum</i> <i>columbianum </i>en ovinos (Olivares, 2001).  </font> </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">Dentro de los principales metabolitos secundarios a los que se les atribuyen efectos antiparasitarios se  encuentran los taninos condensados TC (Wolstenholme      <i>et al</i>., 2004). El marabú (<i>Dichrostachys  cinerea</i> (L.) Wight &amp; Arn.) es un arbusto con elevados niveles de este metabolito (Pedraza <i>et al</i>.,  2008), por lo que posee potencial para el control parasitario ya que  sus TC no necesitan ser desactivados (adición de polietilenglicol o  NaOH) antes de suplementar a los pequeños rumiantes con el follaje ya  sea fresco o en forma de harina (Mlambo <i>et al</i>., 2004).  </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">En Cuba esta planta constituye una fuente importante de alimento en muchos de los sistemas productivos  de ovejas y cabras, fundamentalmente durante el periodo poco lluvioso. Es por ello que el objetivo del trabajo  fue evaluar las propiedades antiparasitarias <i>in vitro  </i>de extractos acuosos de <i>D. cinerea</i>, en tres fases del  ciclo biológico de estrongílidos gastrointestinales en ovinos. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>   <font size="3">MATERIALES Y MÉTODOS </font></b> </font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">El estudio se desarrolló en el laboratorio de parasitología de la EEPF &quot;Indio Hatuey&quot;. Las hojas de marabú  se cosecharon en el área de pastoreo de la institución, en el horario de la mañana. Se realizó una extracción  acuosa con solución de Phosphate Buffer Saline (PBS) en fresco, con el uso de nitrógeno líquido, mediante el  método descrito por Díaz <i>et  al</i>. (2010). Se preparó una solución madre de 500 mg/mL, a partir de la cual se  prepararon tres concentraciones para utilizarlas en los ensayos: 500, 250 y 125 mg/mL, identificadas como  MAR-500, MAR-250 y MAR-125, respectivamente. </font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><i>&nbsp;</i></font></p> <font face="Verdana" size="2"><i>Prueba de eclosión de huevos </i>(PEH)</font>     <p><font face="Verdana" size="2"> Los ensayos se hicieron a partir de las modificaciones a las    técnicas descritas por Hubert y Kerboeuf (1984) y Marie-Magdeleine <i>et al</i>. (2010). Se evaluaron seis tratamientos,    que correspondieron a las tres concentraciones del extracto de hojas de marabú (MAR-500, MAR-250 y    MAR-125), el PBS y el dimetilsulfóxido (DMSO) como controles positivos, y el albendazol 0,5% (ABZ), como    control negativo. Se colectaron huevos de estrongílidos de animales infestados (Hubert y Kerboeuf, 1992) y se    depositaron en placas de cultivo celular de 24 pocillos, para ser enfrentados con las diferentes soluciones o    tratamientos experimentales. Los huevos se incubaron durante 48 h y, transcurrido ese tiempo, se detuvo la eclosión con    100 µL de solución de Lugol. Las larvas y los huevos se contaron en 20 alícuotas de 10 µL y se determinó    el porcentaje de eclosión. El diseño fue completamente aleatorizado, con seis réplicas por tratamiento. </font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><i>&nbsp;</i></font></p> <font face="Verdana" size="2"><i>Prueba de desarrollo larvario </i>(PDL)</font>     <p><font face="Verdana" size="2">Los estudios se hicieron a partir de las modificaciones realizadas a    las técnicas descritas por Hubert y Kerboeuf (1984) y Assis <i>et al</i>. (2003). Se emplearon los mismos tratamientos    que en la PEH. El principio del ensayo consistió en exponer los huevos eclosionados a las distintas soluciones,    para evaluar el desarrollo de las larvas L1/L2 hacia    L3 o larvas infestantes, según la técnica propuesta por    Marie-Magdeleine <i>et al</i>. (2010). Las L1/L2 se obtuvieron mediante el procedimiento descrito en la PEH y se    alimentaron con una solución nutritiva. A las 48 h se aplicaron las soluciones y después de ocho días se detuvo el proceso    de   muda con 100 µL de solución de Lugol. Se contaron las    L1/L2 y las L3, y se determinó el porcentaje de    larvas infestantes. </font></p>     <p>&nbsp;</p> <font face="Verdana" size="2"><i>Prueba de migración larvaria </i>(PML)</font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">El principio de esta prueba consistió en enfrentar las larvas del    tercer estadio obtenidas mediante coprocultivos (Roberts y O´Sullivan, 1952) a las tres concentraciones del    extracto acuoso, a un control positivo (PBS) y a uno negativo (levamisol, LV). Se empleó el método descrito por    Marie-Magdeleine <i>et al</i>. (2010), que consistió en enfrentar una  cantidad conocida de larvas    L3 a las soluciones, en un tubo de ensayo Falcon® cónico, durante dos  horas. Después de sucesivos lavados con PBS, se pusieron a    migrar a través de un tamiz de 20 µm en un dispositivo preparado con  este fin. A continuación se determinó la    cantidad de larvas migradas y se calculó el porcentaje de migración. </font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><i>&nbsp;</i></font></p> <font face="Verdana" size="2"><i>Análisis estadístico</i></font>     <p><font face="Verdana" size="2">Los datos se procesaron con el paquete estadístico SPSS®. Los valores    porcentuales (X) de cada prueba se transformaron    (arcoseno<i>Ö </i>X ), para realizar un análisis de varianza de    clasificación simple. Se comprobó la homogeneidad de las varianzas y la distribución normal de los datos. Las    diferencias entre las medias se calcularon mediante la prueba de comparación de rangos múltiples de Duncan (1955). </font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>&nbsp;</b></font></p> <font face="Verdana" size="2"><b> <font size="3">RESULTADOS Y DISCUSIÓN </font></b> </font>     <p><font face="Verdana" size="2">En la <a href="#f1">figura 1</a> se muestra el efecto de los extractos acuosos de marabú y los respectivos grupos controles,  en la eclosión de los huevecillos. Los porcentajes de eclosión mostraron diferencias significativas  (p<u>&lt;</u>0,01): el PBS tuvo las mayores tasas de eclosión (96,68%), mientras que ante el albendazol eclosionó el 30,51% de estos,  lo cual demuestra la efectividad de este fármaco sobre la viabilidad de los huevecillos de los  nemátodos gastrointestinales (Martin <i>et  al</i>., 1997).  </font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/pyf/v35n3/f0106312.gif" width="571" height="393" longdesc="/img/revistas/pyf/v35n3/f0106312.gif"><a name="f1"></a></p>     <p align="left"><font face="Verdana" size="2">Por su parte, los extractos acuosos de hojas de marabú permitieron tasas de eclosión moderadas (entre    49,75 y 66,54%), al parecer dosis-dependientes. Estos valores fueron similares a los obtenidos con extractos    acuosos de semillas de papaya (<i>Carica      papaya</i>) e inferiores a los de hojas de yuca    (<i>Manihot esculenta</i>) (12,35%) y plátano    (<i>Musa paradisiaca</i>) (6,14%), informados en el Caribe oriental (Guadalupe) por Marie-Magdeleine (2009).    </font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">El desarrollo de las larvas L1/L2 a las L3 con el extracto acuoso de marabú también presentó efectos  dosis-dependientes (<a href="/img/revistas/pyf/v35n3/f0206312.gif">fig. 2</a>) y diferencias significativas  (p<u>&lt;</u>0,01) con respecto a los grupos controles positivos y  negativos. La dosis de 500 mg/mL inhibió el desarrollo larvario en porcentajes similares a los del albendazol (8,89 y  1,28%, respectivamente; p<u>&lt;</u>0,01). Estos valores son inferiores a los reportados para el extracto acuoso de semilla de  <i>C. papaya</i> (Marie-Magdeleine, 2009) y similares a los obtenidos con semillas de  <i>Cucurbita moschata </i>(Marie-Magdeleine <i>et  al</i>., 2009) y follaje de paradiso (<i>Melia  azedarach</i>) (Cala <i>et al</i>., 2012). En el presente estudio,  los principales efectos se observaron en las larvas del primer y el segundo estadio (desarrollo larvario),  aunque también fueron considerables en las  L3 pues inhibieron significativamente  (p<u>&lt;</u>0,01) la actividad migratoria de estas (<a href="#f3">fig. 3</a>). Cala  <i>et al</i>. (2012) obtuvieron un comportamiento similar en  <i>M. azedarach</i> y <i>Trichilia claussenii</i>.</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/pyf/v35n3/f0306312.gif" width="577" height="345" longdesc="/img/revistas/pyf/v35n3/f0306312.gif"><a name="f3"></a></p>     <p align="left"><font face="Verdana" size="2">El efecto de los extractos acuosos en la migración de las larvas    L3 se muestra en la <a href="#f3">figura 3</a>. El PBS no interfirió notablemente en la capacidad de migración de las larvas, mientras que el levamisol mostró una    reducción de 86,45 a 93,92% (p<u>&lt;</u>0,01) en este indicador. Por su parte, los extractos de marabú también    redujeron significativamente (p<u>&lt;</u>0,01) la migración, con valores entre 77,67 y 48,97%. Esto pudo deberse a los    efectos directos de los taninos condensados libres presentes en esta planta, los cuales interfieren en la capacidad    de movimiento de las larvas, o a la intervención directa en la pérdida de la cutícula. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">El marabú es considerado como una planta tanífera, con valores de 178,4 g/kg de MS de este  metabolito secundario (Mlambo <i>et al</i>., 2004). En Cuba, Pedraza  <i>et al</i>. (2008) reportaron contenidos de polifenoles  totales de 120 g/kg de MS.  </font> </p>    <p><font face="Verdana" size="2">La forma en que actúan los TC continúa en debate, y existen dos hipótesis; la primera de ellas se sustenta  en los posibles efectos directos de estas sustancias, al poseer la capacidad de formar complejos con las  proteínas libres de los parásitos del tracto gastrointestinal (Mueller-Harvey, 2006), por lo que se reduce la capacidad  de asimilación de los nutrientes. Además, estos son capaces de unirse a la cutícula de la larva (rica en  glicoproteínas) y causar su muerte (Cala <i>et al</i>., 2012). Por otro lado, se ha demostrado que los TC disminuyen la capacidad  de fecundación de los parásitos (Martínez-Ortíz de Montellano <i>et al</i>., 2010) y tienen efectos directos sobre  los estadios adultos que causan lesiones estructurales de importancia, lo cual propicia la muerte del  parásito (Manolaraki <i>et al</i>., 2010; Martínez-Ortíz de Montellano, 2010). </font> </p>    <p><font face="Verdana" size="2">La segunda hipótesis se basa en que los taninos condensados pueden interferir indirectamente en la  biología parasitaria, a través del incremento en la respuesta inmunológica de los animales (Hoste <i>et al</i>., 2006). Ello pudiera estar relacionado con el incremento del flujo y la absorción de proteínas y aminoácidos directamente  en el intestino delgado, como resultado de una menor degradación de estas en el rumen, debido a la presencia de  los taninos. En este sentido, Aróstica (2011) informó bajas tasas de infestación parasitaria en cabras, en áreas  de pastoreo con predominio de marabú, la cual constituye prácticamente la única fuente de alimentación durante  el periodo poco lluvioso en las condiciones de Cuba. </font> </p>    <p><font face="Verdana" size="2">Este estudio evidenció la existencia de posibles efectos dosis-dependientes en la eclosión y el  desarrollo larvario, que no quedaron tan claros en el caso de la migración larvaria, ya que las dosis más altas fueron  más efectivas en los dos ensayos sobre las primeras fases de vida de estos parásitos. Probablemente estos  efectos estén relacionados con la presencia de la cutícula en las  L3, lo que las hace más resistentes que los  estadios anteriores (L1 y L2). </font> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">La investigación demostró los efectos antihelmínticos <i>in vitro</i> del extracto acuoso de hojas de marabú,  con efectos dosis-dependientes en la eclosión y el desarrollo larvario. Los mejores resultados se obtuvieron con  la concentración de 500 mg/mL. Se recomienda el diseño de estudios <i>in vivo</i> que permitan confirmar la actividad antiparasitaria en los parásitos adultos. </font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>&nbsp;</b></font></p> <font face="Verdana" size="2"><b> <font size="3">AGRADECIMIENTOS</font></b> </font>     <p><font face="Verdana" size="2">Esta investigación fue financiada por la International Foundation for Science (Proyecto B/4610) y la  Estación Experimental de Pastos y Forrajes &quot;Indio Hatuey&quot;  (Proyecto Institucional 9567). </font></p>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>&nbsp;</b></font></p> <font face="Verdana" size="2"><b> <font size="3">REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS </font></b></font>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">1.     Arece, J. <i>et al</i>.  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