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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Obtención de la toxina tetánica a partir de hidrolizado de caseina de producción nacional]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The production of the tetanus toxoid is developed from the chemically detoxified and purified tetanus toxin. A good yielding of the tetanus toxin has a great importances, since it is fundamental to obtain the amount of necessary doses at a low cost. Here the authors present the results of the production of the tetanus toxin from the nationally produced casein hydrolysate, through chemical, microbiological, and immunological tests, and it is confirmed that the yield is higher than the one obtained with the imported casein hydrolysate (triptone T, Oxoid).]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ Empresa de Productos Biol&oacute;gicos "Carlos J. Finlay"  <H2>  Obtenci&oacute;n de la toxina tet&aacute;nica a partir de hidrolizado de  caseina de producci&oacute;n nacional</H2>  <I>Isis Garc&iacute;a, Miriam D&iacute;az, Rosa Gonz&aacute;lez, Zuleyka  L&oacute;pez y Rebeca Gonz&aacute;lez<SUP>4</SUP></I>  <H4>  RESUMEN</H4>  La producci&oacute;n de toxoide tet&aacute;nico se realiza a partir de  la toxina tet&aacute;nica destoxificada y purificada por m&eacute;todos  qu&iacute;micos. Un buen rendimiento de la toxina tet&aacute;nica reviste  gran importancia, pues &eacute;ste es fundamental para obtener el n&uacute;mero  de dosis necesarias a un bajo costo. Se presentan los resultados obtenidos  en la producci&oacute;n de toxina tet&aacute;nica a partir de hidrolizado  de case&iacute;na de producci&oacute;n nacional, mediante la realizaci&oacute;n  de pruebas qu&iacute;micas, microbiol&oacute;gicas e inmunol&oacute;gicas,  y se comprueba que el rendimiento es superior al obtenido con el hidrolizado  de case&iacute;na de importaci&oacute;n (triptona T, Oxoid).        <P><I>Palabras clave:</I> TOXOIDE TETANICO; TOXINA TETANICA; HIDROLIZADOS  DE PROTEINAS; CASEINAS.  <H4>  INTRODUCCION</H4>  El t&eacute;tanos es una enfermedad producida por el <I>Clostridium tetani,</I>el  cual excreta una neurotoxina capaz de causar la muerte en poco tiempo despu&eacute;s  de haber infectado un organismo a trav&eacute;s de heridas punzantes, quemaduras  o a trav&eacute;s del cord&oacute;n umbilical.<SUP>1</SUP> Este proceso  de producci&oacute;n acelerada de esta potente y mortal toxina solamente  se produce en condiciones de anaerobiosis y en presencia de sustancias  ricas en prote&iacute;nas; <I>in vitro</I> s&oacute;lo se logra con la  adici&oacute;n al medio del hidrolizado de case&iacute;na que le aporta  al microorganismo la fuente de nitr&oacute;geno necesaria para que se sintetice  esta toxina que est&aacute; compuesta por 18 amino&aacute;cidos diferentes,  lo cual confiere una estructura de prote&iacute;na simple present&aacute;ndose  en 2 estados, el mon&oacute;mero t&oacute;xico y el d&iacute;mero at&oacute;xico.<SUP>2</SUP>        <P>El medio de cultivo tambi&eacute;n requiere de otros componentes importantes  para el crecimiento del microorganismo, como son: fuentes de carbono, sales  minerales, vitaminas y factores de crecimiento.<SUP>3</SUP>        <P>El objetivo de este trabajo fue la producci&oacute;n de una toxina de  mayores rendimientos a partir del hidrolizado de case&iacute;na de producci&oacute;n  nacional para garantizar el toxoide tet&aacute;nico, tanto para el consumo  nacional como para la exportaci&oacute;n, logr&aacute;ndose adem&aacute;s  la sustituci&oacute;n de importaciones.  <H4>  MATERIAL Y METODO</H4>  Se prepararon 6 lotes de medios de cultivo en paralelo, 3 con hidrolizado  de case&iacute;na de la firma Oxoid (Triptona T) y 3 con un mismo lote  de hidrolizado de case&iacute;na de producci&oacute;n nacional (BACINA),  los dem&aacute;s componentes del medio no tuvieron variaciones. Este medio  fue preparado seg&uacute;n la Norma de Empresa de Toxoide Tet&aacute;nico  Adsorbido, marzo 1985.        <P>Para la producci&oacute;n de toxina se utiliz&oacute; un in&oacute;culo  preparado a partir de la cepa <I>Clostridium tetani</I> (Massachusetts),  en medio de tioglicolato.        <P>Se inocularon los 6 lotes con vol&uacute;menes iguales de un mismo in&oacute;culo,  para evaluar los rendimientos obtenidos con las 2 variantes. Se incubaron  6 d&iacute;as a 34 " 0,5 EC, y se tomaron muestras antes de pasar los cultivos  a temperatura de 4-8 EC durante 24 h para su posterior recogida.        <P>Las pruebas de control<SUP>4</SUP> fueron las siguientes:  <DIR>- Comprobaci&oacute;n de pH antes y despu&eacute;s de esterilizado  el medio.      <BR>- Microscopia al cultivo (empleando la tinci&oacute;n de Gram).      <BR>- Pruebas en caldo de coraz&oacute;n y las placas agar sangre en condiciones  de aerobiosis, con el objetivo de comprobar pureza.      <BR>- Para la titulaci&oacute;n del ant&iacute;geno por la t&eacute;cnica  de floculaci&oacute;n de Ra-m&oacute;n se utiliz&oacute; antitoxina tet&aacute;nica  de 100 UI/mL y soluci&oacute;n salina fosfatada pH: 7,4 para la diluci&oacute;n  de &eacute;sta. Las concentraciones de la antitoxina tet&aacute;nica para  la toxina experimental fueron 45, 50, 55, 65, 70 UI/mL y para las toxinas  de referencia fueron 20, 25, 30, 35, 40, 45 UI/mL.      ]]></body>
<body><![CDATA[<BR>- Inmunodifusi&oacute;n radial para comprobar la titulaci&oacute;n  del ant&iacute;geno:<SUP>5</SUP></DIR>  Se prepararon placas con gel de agarosa al 1 % en PBS pH: 7,4 y se realizaron  pruebas de inmunodifusi&oacute;n radial, teniendo en cuenta los resultados  de la floculaci&oacute;n, se escogieron las mismas concentraciones para  la antitoxina tet&aacute;nica utilizadas en la floculaci&oacute;n de Ram&oacute;n,  las cuales fueron colocadas en los pozuelos, alrededor del pozuelo de la  muestra de cada uno de los lotes ensayados; en todos los casos se utiliz&oacute;  un patr&oacute;n de referencia de toxina tet&aacute;nica de producci&oacute;n  nacional con un t&iacute;tulo que oscil&oacute; de 25 a 30 Lf/mL.        <P>Estas placas fueron coloreadas con amido negro y decoloradas con &aacute;cido  ac&eacute;tico al 5 %.  <H4>  RESULTADOS</H4>  En la tabla 1 se presentan los resultados obtenidos despu&eacute;s del  cultivo; s&oacute;lo hay diferencias significativas en cuanto a los valores  de rendimiento obtenidos con los lotes procesados con hidrolizado de case&iacute;na  de producci&oacute;n nacional.      <CENTER>TABLA 1. <I>Resultados de la prueba de control del proceso</I></CENTER>        <CENTER>&nbsp;</CENTER>        <CENTER><TABLE BORDER CELLPADDING=4 WIDTH="100%" >  <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">Pruebas&nbsp;</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>L-E 1/92</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>L-59/92</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>L-E 2/92</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>L-66/9</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>L-E 3/92</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>L-70/92</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">pH antes de esterilizar</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>7,75</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>7,80</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>7,70</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>7,70</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>7,70</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>7,70</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">pH despu&eacute;s de esterilizar</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>6,90</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>7,00</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>7,03</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>7,02</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>7,02</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>6,90</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">Prueba de esterilidad</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>OK</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>OK</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>OK</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>OK</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>OK</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>OK</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">Microscopia</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>Bacilos caracter&iacute;sticos</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>Bacilos caracter&iacute;sticos</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>Bacilos caracter&iacute;sticos</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>Bacilos caracter&iacute;sticos</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>Bacilos caracter&iacute;sticos</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>Bacilos caracter&iacute;sticos</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">Floculaci&oacute;n (Lf/mL)</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>65</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>25</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>65</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>25</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      <CENTER>60</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="14%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>30</CENTER>  </TD>  </TR>  </TABLE></CENTER>  E - 1/92: Lote experimental con hidrolizado de case&iacute;na (producci&oacute;n  nacional).      <BR>L - 59/92: Lote de referencia que se realiz&oacute; en paralelo con  E 1/92 (hidrolizado de case&iacute;na, Oxoid).      <BR>E - 2/92: Lote experimental con hidrolizado de case&iacute;na (producci&oacute;n  nacional).      <BR>L - 66/92: Lote de referencia que se realiz&oacute; en paralelo con  E 2/92 (hidrolizado de case&iacute;na, Oxoid).      <BR>E - 3/92: Lote experimental con hidrolizado de case&iacute;na (producci&oacute;n  nacional).      <BR>L - 70/92: Lote de referencia que se realiz&oacute; en paralelo con  E 3/92 (hidrolizado de case&iacute;na, Oxoid).        <P>En la tabla 2 observamos la composici&oacute;n de los 2 hidrolizados  de case&iacute;na utilizados en este trabajo, donde hay diferencias en  la concentraci&oacute;n de algunos componentes.      <CENTER>TABLA 2. <I>Composici&oacute;n de los hidrolizados de case&iacute;na</I></CENTER>        <CENTER><TABLE BORDER CELLPADDING=4 WIDTH="100%" >  <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">&nbsp;</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>Lote 0001</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>Lote 23643885</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">Indice Producci&oacute;n nacional&nbsp;</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>Firma</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>0xoid</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">Nitr&oacute;geno total, %</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>12,60</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>11,70</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">Nitr&oacute;geno am&iacute;nico, %</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>5,52</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>3,90</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">Nitr&oacute;geno de proteosas totales, %</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>0,55</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>0,60</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">Nitr&oacute;geno de proteosas primarias, %</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>0,35</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      ]]></body>
<body><![CDATA[<CENTER>0,30</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">Nitr&oacute;geno de proteosas secundarias, %</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>0,20</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>0,30</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">Nitr&oacute;geno de peptonas, %</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>5,14</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>3,57</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">Humedad, %</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>8,09</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>3,30</CENTER>  </TD>  </TR>    <TR>  <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">Cloruros (NaCl), %</TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>5,85</CENTER>  </TD>    <TD VALIGN=TOP WIDTH="33%">      <CENTER>4,90</CENTER>  </TD>  </TR>  </TABLE></CENTER>    <H4>  DISCUSION</H4>  Los rendimientos obtenidos con el hidrolizado de case&iacute;na de producci&oacute;n  nacional fueron superiores a los obtenidos con el hidrolizado de case&iacute;na  de importaci&oacute;n.        <P>En la inmunodifusi&oacute;n radial simple realizada a los lotes experimentales  en comparaci&oacute;n con el lote de toxina tet&aacute;nico de referencia,  se observa que no aparecen l&iacute;neas de precipitaci&oacute;n en el  rango de concentraciones de la antitoxina de 45 a 70 UI/mL para el lote  de referencia, lo que corrobora los valores obtenidos de floculaci&oacute;n.        ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Para los 3 lotes experimentales obtuvimos l&iacute;neas de precipitaci&oacute;n  en el rango de concentraci&oacute;n de la antitoxina tet&aacute;nica de  45 a 70 UI/mL, por lo que la concentraci&oacute;n de la toxina tet&aacute;nica  est&aacute; por encima de 45 Lf/mL mientras que para los lotes de referencia  est&aacute; por debajo de 45 Lf/mL, lo que demuestra el alto rendimiento  obtenido en los lotes experimentales.  <H4>  CONCLUSIONES</H4>  De acuerdo con los resultados obtenidos el hidrolizado de case&iacute;na  de producci&oacute;n nacional utilizado en este trabajo da resultados superiores  en el rendimiento de la toxina tet&aacute;nica producida, por lo que se  puede obtener un mayor n&uacute;mero de dosis de toxoide tet&aacute;nico  con la misma cantidad de materia prima.        <P>Se logr&oacute; un rendimiento de toxina reproducible, pues los valores  oscilaron entre 60 y 65 Lf/mL, lo que permite una producci&oacute;n estable.        <P>Estas experiencias se deben repetir con otros lotes de hidrolizado de  case&iacute;na de producci&oacute;n nacional, para llegar a la certeza  de la sustituci&oacute;n del hidrolizado de la firma Oxoid.  <H4>  AGRADECIMIENTOS</H4>  <I>Agradecemos la colaboraci&oacute;n de los compa&ntilde;eros del Laboratorio  de Medio de Cultivo del BIOCEN por facilitarnos el hidrolizado de case&iacute;na  de producci&oacute;n nacional para nuestro estudio.</I>  <H4>  SUMMARY</H4>  The production of the tetanus toxoid is developed from the chemically detoxified  and purified tetanus toxin. A good yielding of the tetanus toxin has a  great importances, since it is fundamental to obtain the amount of necessary  doses at a low cost. Here the authors present the results of the production  of the tetanus toxin from the nationally produced casein hydrolysate, through  chemical, microbiological, and immunological tests, and it is confirmed  that the yield is higher than the one obtained with the imported casein  hydrolysate (triptone T, Oxoid).        <P><I>Key words:</I> TETANUS TOXOID; TETANUS TOXIN; PROTEIN HYDROLYSATES;  CASEINS.  <H4>  REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS</H4>    <OL>      <!-- ref --><LI>  <FONT SIZE=-1>Resik P. T&eacute;tanos. Series: Informaci&oacute;n Ciencias  M&eacute;dicas. 1978;13:5-12.</FONT></LI>    <!-- ref --><LI>  <FONT SIZE=-1>Samuel A, Salomon K, Thomas CM. Microbial toxins. New York:  Academic Press, 1970;t1:24-6.</FONT></LI>    <!-- ref --><LI>  <FONT SIZE=-1>Well CL, Balish E. <I>Clostridium tetani</I> growth and production.  Infect Inmun 1983;2:30-4.</FONT></LI>    <!-- ref --><LI>  <FONT SIZE=-1>Toxoide tet&aacute;nico adsorbido. Proceso de producci&oacute;n.  Normas de Empresa de Medicamento. NESP. 1758.070. La Habana, 1985.</FONT></LI>    <!-- ref --><LI>  <FONT SIZE=-1>Randi W, Banto M. The identification of diphteria. Tetanus  and pertussis vaccines by single radial and double inmunodiffusion tecniques.  1985;13:31-4.</FONT></LI>    </OL>  Recibido: 13 de abril de 1994. Aprobado: 14 de septiembre de 1995.        ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Lic. <I>Isis Garc&iacute;a.</I> Concepci&oacute;n 759 entre 15 y 16,  Lawton, Ciudad de La Habana, Cuba.          ]]></body><back>
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