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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The fragile X syndrome is the most frequent form of hereditary mental retardation, with an incidence of 1 in 1 500 males, and 1 in 2 500 females; it is caused by mutations that increase the size of a fragment of specific desoxinucleotic acid (DNA) in the Xq 27.3 region of the X chromosome. The outcome in the introduction and application of the StB12.3 molecular probe in a control group and in affected members of three families, is presented. The x-rays of the Southern blot that show the diagnosis patterns possible to obtain, are exposed. This methodology is more direct, effective and reliable for the diagnosis and prevention of this form of mental retardation.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ Hospital Clinicoquir&uacute;rgico "Hermanos Ameijeiras"  <H2>  Diagn&oacute;stico molecular del S&iacute;ndrome X Fr&aacute;gil en un  grupo control y miembros de 3 familias afectadas</H2>  <I><A HREF="#autores">Lic. Ana Mar&iacute;a Acevedo L&oacute;pez,<SUP>1</SUP>  Lic. Ra&uacute;l Ferreira Capote,<SUP>2</SUP> Dr. Luis A. Gayol Mec&iacute;as<SUP>3</SUP>  y Dra. Dora M&eacute;ndez del Castillo<SUP>4</SUP></A></I>  <H4>  RESUMEN</H4>    <DIR>El s&iacute;ndrome X fr&aacute;gil constituye la forma de retraso  mental hereditario m&aacute;s frecuente con una incidencia de 1 en 1 500  varones y de 1 en 2 500 hembras; es causado por mutaciones que aumentan  el tama&ntilde;o de un fragmento de &aacute;cido desoxinucle&oacute;tico  (DNA) espec&iacute;fico en la regi&oacute;n Xq 27.3 del cromosoma X. Se  presenta el resultado en la introducci&oacute;n y aplicaci&oacute;n de  la sonda molecular StB12.3 en un grupo control y en miembros afectados  de 3 familias. Se exponen las radiograf&iacute;as de los <I>Southern blot</I>  que exhiben los patrones diagn&oacute;sticos posibles a obtener. Esta metodolog&iacute;a  es mucho m&aacute;s directa, eficiente y confiable para el diagn&oacute;stico  y prevenci&oacute;n de esta forma de retraso mental.        <P><I>Palabras clave:</I> SINDROME DE FRAGILIDAD DEL CROMOSOMA X AS/diagn&oacute;stico;  GENETICA BIOQUIMICA; ANALISIS MUTACIONAL DE ADN; SOUTHERN BLOTTING; GRUPOS  CONTROL.</DIR>    <H4>  INTRODUCCION</H4>  El s&iacute;ndrome X fr&aacute;gil es una de las causas m&aacute;s comunes  de retraso mental despu&eacute;s del s&iacute;ndrome de Down. Consiste  fundamentalmente en un retraso mental de grado variable, asociado en ocasiones  con trastornos de conducta, macroorquidismo, as&iacute; como a manifestaciones  cl&iacute;nicas relacionadas con displasia del tejido conectivo.<SUP>1</SUP>        <P>La incidencia de la enfermedad se ha estimado de 1 en 1 500 varones  y de 1 en 2 500 hembras y constituye una de las causas m&aacute;s frecuentes  de retraso mental hereditario.<SUP>2,3</SUP> Se ha encontrado un marcador  cromos&oacute;mico definido como sitio fr&aacute;gil en el extremo distal  del brazo largo del cromosoma X (Xq 27.3).<SUP>4</SUP>        <P>El diagn&oacute;stico citogen&eacute;tico de la enfermedad es un m&eacute;todo  incompleto y poco confiable, que solamente permite detectar los sitios  fr&aacute;giles en el 55 % de las mujeres portadoras, y existe la posibilidad  de diagnosticar falsos positivos.        <P>Recientemente con las t&eacute;cnicas de DNA recombinante se han localizado  marcadores moleculares muy cercanos al locus X (FRAXA) que completan el  diagn&oacute;stico de la enfermedad. Esta regi&oacute;n est&aacute; asociada  con un DNA inestable formado por una secuencia de trinucle&oacute;tidos  p (CGG)n repetitiva de longitud variable. La amplificaci&oacute;n de esta  regi&oacute;n se relaciona fuertemente con el fenotipo cl&iacute;nico y  el grado de expresi&oacute;n de la enfermedad.<SUP>5,6</SUP> Investigaciones  moleculares han demostrado que el s&iacute;ndrome X fr&aacute;gil se debe  a la amplificaci&oacute;n de esta secuencia CGG repetida en el gen FMR-1,  la cual provoca la p&eacute;rdida de la expresi&oacute;n del gen.<SUP>7</SUP>        <P>Adyacente a la secuencia p(CGG)n existe una zona caracterizada por una  alta densidad de grupos CpG, llamados "islotes CpG", sensibles a la metilaci&oacute;n.<SUP>6,8</SUP>  La mutaci&oacute;n en esta zona constituye un incremento en el tama&ntilde;o  de un fragmento de DNA espec&iacute;fico.        <P>Este incremento en tama&ntilde;o es de grado variable seg&uacute;n la  forma de expresarse la enfermedad. En varones normales transmisores que  son fenot&iacute;picamente normales y no expresan el sitio fr&aacute;gil  por pruebas citogen&eacute;ticas, la secuencia amplificada es de 100 a  600 bp y el cromosoma X activo est&aacute; no metilado y se nombra premutaci&oacute;n.  Cuando esta amplificaci&oacute;n es mayor de 600 bp existe una metilaci&oacute;n  anormal, el fenotipo se manifiesta en el 100 % de los varones y en el 50  % de las hembras y se considera mutaci&oacute;n completa. Un tercer patr&oacute;n  de mutaci&oacute;n se puede encontrar en menor grado, los llamados individuos  mosaicos que muestran los fragmentos peque&ntilde;os no metilados y los  grandes metilados o un <I>smear</I>.<SUP>9-11</SUP>        <P>En la regi&oacute;n CpG <I>Oberl&eacute;, et al.</I>,<SUP>6</SUP> aislaron  la sonda molecular StB12-3 que hibridiza con el DNA y permite detectar  con manera confiable y directa los estados de metilaci&oacute;n, sobre  la base del an&aacute;lisis del DNA, lo que no era posible con el empleo  de t&eacute;cnicas anteriores. Nosotros presentamos una doble digesti&oacute;n  con enzimas de restricci&oacute;n EcoRI/EagI, de un grupo control y en  miembros de 3 familias afectados que detecta las mutaciones y los estados  de metilaci&oacute;n.  <H4>  MATERIAL Y METODO</H4>  El DNA de un grupo control no relacionado y de miembros de familias X fr&aacute;gil  se analiz&oacute;. El DNA se extrajo de los leucocitos por m&eacute;todo  convencional. Una doble digesti&oacute;n de los DNA con EcoRI y EagI se  realiz&oacute; durante 48 horas en un <I>buffer</I> que conten&iacute;a  20mM de una soluci&oacute;n de Mg Cl<SUB>2</SUB>. Los DNA digeridos se  corrieron en un gel de agarosa 0,8 % con una migraci&oacute;n de 20 cm  del bromofenol azul. Los DNA se inmovilizaron en un filtro Hybond N+ (Amersham)  e hibridados en 40 % de formamida a 42 <SUP><FONT FACE=Symbol>o</FONT></SUP>C  con la sonda StB12.3 radiomarcada con 40uCi de P.<SUP>3,2 </SUP>Los lavados  poshibridaci&oacute;n se realizaron en una soluci&oacute;n 0,5 X SSC y  0,1 % SDS, uno a temperatura ambiente y otro a 60 <SUP><FONT FACE=Symbol>o</FONT></SUP>C.  El filtro se expuso durante 5 d&iacute;as a -70 <SUP><FONT FACE=Symbol>o</FONT></SUP>C  y se obtuvieron las autorradiograf&iacute;as que se muestran.  <H4>  RESULTADOS</H4>  Una doble digesti&oacute;n con las enzimas de restricci&oacute;n EcoRI  y EagI revela la presencia de los estados de mutaci&oacute;n y metilaci&oacute;n.  Los resultados se muestran en la figura. Con la sonda StB12.3, en varones  normales, se obtiene un fragmento de 2.8 kb EcoRI/EagI correspondiente  al cromosoma X activo (l&iacute;nea 1 y 9); en hembras normales, se obtiene  un fragmento EcoRI adicional de 5.2 kb correspondiente al cromosoma X inactivo  metilado (l&iacute;neas 2,3,4 y 10).        <P>Fig.        <P>Un fragmento de 5.8 kb EcoRI se presenta en un var&oacute;n con la mutaci&oacute;n  X fr&aacute;gil, mutaci&oacute;n completa, metilada (l&iacute;nea 5). En  hembras afectadas aparecen un fragmento de 2.8 kb y un <I>smear </I>por  encima de 5.7 kb que corresponde con la mutaci&oacute;n completa (l&iacute;neas  6, 8 y 11). La l&iacute;nea 7 muestra un patr&oacute;n t&iacute;pico de  hembra portadora con fragmentos de 2.8 y 5.2 kb normales, correspondientes  a los cromosomas X activo no metilado y X inactivo metilado respectivamente  y los fragmentos de 2.9 y 5.8 kb que corresponden a la premutaci&oacute;n.        ]]></body>
<body><![CDATA[<P>En este estudio se present&oacute; un simple <I>test</I> diagn&oacute;stico  para el s&iacute;ndrome X fr&aacute;gil, que detecta con alta sensibilidad  y especificidad las anomal&iacute;as en el DNA asociadas con los estados  de metilaci&oacute;n y mutaci&oacute;n en la enfermedad. El uso de este  m&eacute;todo para identificar todos los portadores, incluyendo los no  cl&iacute;nicamente afectados, revela una alta proporci&oacute;n de personas  nor-males que portan la premutaci&oacute;n (l&iacute;nea 7). La metilaci&oacute;n  de los islotes CpG muestra la completa correlaci&oacute;n entre el grado  de amplificaci&oacute;n de la secuencia de p(CCG)n repetitiva localizada  proximal al locus FRAXA y el fenotipo X fr&aacute;gil en individuos afectados  (l&iacute;neas 5,6,8 y 11).  <H4>  DISCUSION</H4>  El s&iacute;ndrome X fr&aacute;gil, una de las m&aacute;s comunes enfermedades  gen&eacute;ticas, se caracteriza por un mecanismo gen&eacute;tico &uacute;nico  inusual de herencia, que incluye el fen&oacute;meno de anticipaci&oacute;n  conocido como paradoja de Sherman<SUP>12</SUP> y la presencia de varones  normales transmisores que puede ahora ser explicada por el sucesivo incremento  en el tama&ntilde;o de la secuencia p(CCG)n. En varones, puede aparecer  adem&aacute;s, una banda difusa cerca de la banda normal, este sujeto tiene  entonces retraso mental; la predicci&oacute;n del retraso mental en mujeres  portadoras no ha podido ser posible.<SUP>13</SUP> Aqu&iacute; se ha presentado  la detecci&oacute;n del s&iacute;ndrome X fr&aacute;gil con alta sensibilidad  y especificidad mediante el an&aacute;lisis directo del DNA, que permite  el diagn&oacute;stico diferencial de la enfermedad. Para la evaluaci&oacute;n  sistem&aacute;tica en ni&ntilde;os y ni&ntilde;as con retraso mental inexplicable,  retraso en el comienzo del habla, autismo o comportamiento hiperactivo,  aun sin historia familiar de retraso mental, recomendamos el uso de una  digesti&oacute;n simple EcoRI. Recientemente el desarrollo de la t&eacute;cnica  de reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) ha facilitado el entendimiento  del amplio espectro de mutaci&oacute;n en esta regi&oacute;n CGG repetitiva.<SUP>14</SUP>        <P>En conclusi&oacute;n, el s&iacute;ndrome X fr&aacute;gil se puede detectar  por el an&aacute;lisis directo de la mutaci&oacute;n y sus estados de metilaci&oacute;n  al nivel de DNA que facilita el diagn&oacute;stico prenatal y posnatal  de la enfermedad y la identificaci&oacute;n de portadores en familias en  riesgo y proponer un consejo gen&eacute;tico adecuado. El an&aacute;lisis  citogen&eacute;tico en el diagn&oacute;stico deber&aacute; ahora ser reevaluado.<SUP>15</SUP>  <H4>  SUMMARY</H4>  The fragile X syndrome is the most frequent form of hereditary mental retardation,  with an incidence of 1 in 1 500 males, and 1 in 2 500 females; it is caused  by mutations that increase the size of a fragment of specific desoxinucleotic  acid (DNA) in the Xq 27.3 region of the X chromosome. The outcome in the  introduction and application of the StB12.3 molecular probe in a control  group and in affected members of three families, is presented. The x-rays  of the Southern blot that show the diagnosis patterns possible to obtain,  are exposed. This methodology is more direct, effective and reliable for  the diagnosis and prevention of this form of mental retardation.        <P><I>Key words:</I> FRAGILE X SYNDROME/diagnosis; GENETICS; BIOCHEMICAL;  DNA MUTATIONAL ANALYSIS; BLOTTING, SOUTHERN; CONTROL GROUPS.  <H4>  REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS</H4>    <OL>      <!-- ref --><LI>  Turner G, Opitz JM, Brown WT. Conference report. Second International Workshop  of the Fragile X and on X-linked mental retardation. Am J Med Genet 1986;23:11-67.</LI>    <!-- ref --><LI>  Sutherland GR, Hecht F. Fragile sites on human cromosomes. New York: Oxford  University, 1985.</LI>    <!-- ref --><LI>  Turner G, Robinson H, Laing S, Purvis-Smith S. Preventive screening for  the fragile X syndrome. N Engl J Med 1986;315:607-9.</LI>    <!-- ref --><LI>  Webb T, Jacobs PA, Fragile Xq27.3 in female heterozygotes for the Martin-Bell  syndrome. J Med Genet 1990;27:627-31.</LI>    <!-- ref --><LI>  Heitz D, Rousseau F, Devys D, Saccone S, Abdrrahim H, Le Paslier D, et  al. Isolation of sequence that span the fragile X and identification of  a fragile related CpG island. Science 1991;251:1236-9.</LI>    <!-- ref --><LI>  Oberl&eacute; I, Rousseau F, Heitz D, Kretz C, Devys D, Hanauer A, et al.  Instability of 550-base pair DNA segment and abnormal methylation in fragile  X syndrome. Science 1991;252:1097-102.</LI>    <!-- ref --><LI>  Hirst MC, Knight SJL, Christodoulou Z, Grewal J, Fryns JP, Davies KE. Origen  of the fragile X syndrome mutation. J Med Genet 1993;30:647-50.</LI>    <!-- ref --><LI>  Yu S, Pritchard M, Kremer E, Lynch M, Nacarrow J, Baker E, et al. Fragile  X genotipe characterized by an unstable region of DNA. Science 1991;1179-81.</LI>    <!-- ref --><LI>  Rousseau F, Heitz D, Biancalana V, SC M, Blumenfeld S, Kretz C, et al.  Direct diagnosis by DNA analysis of the fragile X syndrome of mental retardation.  N Engl J Med 1991;1673-81.</LI>    <!-- ref --><LI>  Mandel JL, Heitz D. Molecular genetics of the fragile X syndrome:a novel  type of unstable mutation. Curr Opin Genet Dev 1992;2:422-30.</LI>    <!-- ref --><LI>  Sutherland GR, Gedeo A, Korman L, Donnelly A, Byard RW, Mulley JC, et al.  Prenatal diagnosis of fragile X syndrome by direct detection of the unstable  DNA sequence. N Engl J Med 1991;325:1720-2.</LI>    <!-- ref --><LI>  Sherman SL, Morton NE, Jacobs PA, Tuner G. Further segregation analysis  of the fragile X syndrome with special reference to transmiting males.  Hum Genet 1985;69:3289-99.</LI>    <!-- ref --><LI>  Oostra AB, Verkerk AJMH. The fragile X syndrome: isolation of the FMR-1  gene and characterization of the fragile X mutation. Chromosoma 1992;101:381-7.</LI>    <!-- ref --><LI>  Jacobs PA, Bullman H, Macpherson J, Youings S, Rooney V, Watson A, et al.  Population studies of the fragile X: a molecular approach. J Med Genet  1993;30:454-9.</LI>    <!-- ref --><LI>  Yamauchi M, Nagata S, Seki N, Toyama Y, Harada N, Niikawa N, et al. Prenatal  diagnostisis of the fragile X syndrome by direct detection of the dynamic  mutation due to an unstable DNA sequence. Clin Genet 1993;44:169-72.</LI>    </OL>  Recibido: 5 de diciembre de 1995. Aprobado: 11 de enero de 1996.        <P>Lic. <I>Ana Mar&iacute;a Acevedo L&oacute;pez.</I> Laboratorio de Gen&eacute;tica,  Instituto de Neurolog&iacute;a y Neurocirug&iacute;a. Calle 29 y D, El  vedado, municipio Plaza de la Revoluci&oacute;n, Ciudad de La Habana, Cuba.  <OL>      ]]></body>
<body><![CDATA[<LI>  <A NAME="autores"></A>Licenciada en Biolog&iacute;a. Investigadora Aspirante.  Instituto de Neurolog&iacute;a y Neurocirug&iacute;a.</LI>        <LI>  Licenciado en Bioqu&iacute;mica. Especialista Superior de Laboratorio Cl&iacute;nico.  Hospital Clinicoquir&uacute;rgico "Hermanos Ameijeiras".</LI>        <LI>  Doctor en Ciencias M&eacute;dicas. Especialista de II Grado en Gen&eacute;tica  Cl&iacute;nica. Instituto de Neurolog&iacute;a y Neurocirug&iacute;a.</LI>        <LI>  Especialista de II Grado en Gen&eacute;tica Cl&iacute;nica. Hospital Clinicoquir&uacute;rgico  "Hermanos Ameijeiras".</LI>      </OL>          ]]></body><back>
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