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<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Obstetricia y Ginecología]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Rev Cubana Obstet Ginecol]]></abbrev-journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Editorial Ciencias Médicas]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Juego para el diagnóstico rápido de la trichomoniasis vaginal en la mujer]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Kit of reagents for the rapid diagnosis of vaginal trichomoniasis in women]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria (CENSA)  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A kit of reagents for the diagnosis of Trichomonas vaginalis is developed starting from latex particles sensitized with immunoglobulins against T. vaginalis, a positive and a negative control. This kit is used in the diagnosis of the protozoo by means of rapid agglutination and no specific equipment is necessary. The results show a sensitivity of 98.7 % and a specificity of 99 % for a limit of detection of 104 cells/mL. The latex sensitivity study was conducted for the negative and positive controls during a year. The results were satisfactory.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[TRICOMONIASIS]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p>Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria (CENSA)     <br> </p><h2>Juego para el  diagn&oacute;stico r&aacute;pido de la trichomoniasis vaginal en la mujer    <br>  </h2>    <p><i><a href="#cargo">Lic. Ivette Maciques Rodr&iacute;guez,<span class="superscript">1</span>  Dra. Magaly Alonso Castellanos<span class="superscript">2</span> y Maricelsa Romero<span class="superscript">3</span></a></i><a name="autor"></a>    <br>  </p><h4>Resumen    <br> </h4>    <p>Se desarrolla un juego de reactivos para el diagn&oacute;stico  de <i>Trichomonas vaginalis</i> a partir de part&iacute;culas de l&aacute;tex  sensibilizadas con inmunoglobulinas contra <i>T. vaginalis</i>, un control positivo  y uno negativo. Este juego se utiliza en el diagn&oacute;stico del protozoo mediante  una aglutinaci&oacute;n r&aacute;pida sin necesidad de emplear ning&uacute;n equipo  espec&iacute;fico. Los resultados mostraron una sensibilidad de 98,7 % y especificidad  de 99 %, para un l&iacute;mite de detecci&oacute;n de 104 c&eacute;lulas/mL. Se  realiz&oacute; el estudio de sensibilidad al l&aacute;tex durante un a&ntilde;o  a los controles positivos y negativos con resultados satisfactorios.</p>    <p><i>DeCS:</i>  TRICOMONIASIS/diagn&oacute;stico; VAGINITIS POR TRICHOMONAS/diagn&oacute;stico;  FEMENINO; TESTS DE FIJACION DE LATEX/m&eacute;todos; ALERGIA AL LATEX.</p>    <p><i>Trichomonas  vaginalis</i> es uno de los principales pat&oacute;genos responsables de vaginitis,  cervicitis y uretritis en la mujer. A pesar de que es necesario un diagn&oacute;stico  seguro para el tratamiento espec&iacute;fico, el diagn&oacute;stico cl&iacute;nico  de rutina depende de la identificaci&oacute;n del par&aacute;sito en las muestras  de exudado vaginal a trav&eacute;s del microscopio &oacute;ptico, que desafortunadamente  detecta solamente el 60 % de las mujeres positivas por cultivo.<span class="superscript">1</span>    <br>  </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El cultivo del exudado en medios selectivos est&aacute; considerado como  el diagn&oacute;stico de certeza de este microorganismo,<span class="superscript">2,3</span>  pero es costoso y se necesita de muchos d&iacute;as de incubaci&oacute;n, tiempo  durante el cual los pacientes infectados contin&uacute;an transmitiendo este par&aacute;sito.<span class="superscript">1</span>    <br>  </p>    <p>En el hospital ginecoobst&eacute;trico &quot;Ram&oacute;n Gonz&aacute;lez  Coro&quot;, en el primer trimestre de 1996, se investigaron 481 casos, de los  cuales se evidenci&oacute; <i>Trichomonas vaginalis</i> en el 8,3 % de las mujeres  estudiadas, y se consider&oacute; como uno de los 3 microorganismos que con mayor  frecuencia causa vaginitis.    <br> </p>    <p>Contar con un medio de diagn&oacute;stico  r&aacute;pido, sensible y espec&iacute;fico es de suma importancia para el especialista.  Las pruebas de aglutinaci&oacute;n en l&aacute;tex brindan el diagn&oacute;stico  en 5 min y por su sencillez pueden realizarse en la misma consulta por el personal  param&eacute;dico.    <br> </p>    <p>En nuestro trabajo nos propusimos como objetivo  la elaboraci&oacute;n y validaci&oacute;n de un juego de reactivos de l&aacute;tex  para el diagn&oacute;stico r&aacute;pido de la trichomoniasis vaginal en la mujer.    <br>  </p><h4>M&eacute;todos    <br> </h4>    <p>1. <i>Aislamiento y cultivo</i>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </p>    <p>Se  aisl&oacute; <i>Trichomonas vaginalis</i> de un exudado vaginal de una mujer con  signos cl&iacute;nicos de vaginitis. Este aislamiento se cultiv&oacute; en medio  Diamond modificado durante 48 h a 37 &deg;C en microaerofilia. La especie se identific&oacute;  por el estudio morfol&oacute;gico mediante la coloraci&oacute;n de Giemsa.<span class="superscript">4</span>    <br>  </p>    <p>2. <i>Animales</i>    <br> </p><ul>     <li> Conejos: se utilizaron 3 conejos machos,  Nueva Zelandia, blancos, de 2 a 3 kg de peso para cada una de las variantes de  inmun&oacute;genos y 3 conejos controles. Estos se colocaron individualmente en  jaulas, recibieron comida y agua ad libitum, y el ciclo diurno fue de 6 horas  luz.</li>    <li> Carneros: se emplearon 3 carneros Pelibuey de 45 a 50 kg de peso,  que se mantuvieron en condiciones de vida libre, recibieron pienso y forraje 2  veces al d&iacute;a y agua ad<i> libitum</i>.    <br> </li>    </ul>    <p>3. <i>Elaboraci&oacute;n  del ant&iacute;geno</i>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </p><ul>     <li> Ant&iacute;geno crudo: para obtener  el ant&iacute;geno crudo (Agc), los frascos de cultivo del par&aacute;sito de  48 h se colocaron en ba&ntilde;o fr&iacute;o durante 10-15 min, posteriormente  se lavaron 3 veces en soluci&oacute;n salina est&eacute;ril a 2 000 rev/min, durante  10 min y el sedimento obtenido se someti&oacute; a una disrupci&oacute;n ultras&oacute;nica  con un ultrasonicador Modelo CV17 (<i>Bioblock Scientific</i>) 3 veces durante  10 seg a 20 amplitudes.</li>    <li> Ant&iacute;geno soluble: para obtener el ant&iacute;geno  soluble (Ags), parte del Agc se centrifug&oacute; a 100 000 rev/min, durante 1  h a 4 &deg;C, colect&aacute;ndose el sobrenadante.</li>    <li> Ant&iacute;geno fragmentado:  para la obtenci&oacute;n de este ant&iacute;geno se aplic&oacute; el mismo procedimiento  que para el Agc, con la variante de que el sedimento obtenido se congel&oacute;  a -70 &deg;C y se descongel&oacute; para fragmentar las c&eacute;lulas.</li>    <li>  Determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas: El m&eacute;todo  de Bradford<span class="superscript">5</span> se aplic&oacute; para conocer la  concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas de cada ant&iacute;geno, y se seleccion&oacute;  aquel que tuviera una concentraci&oacute;n igual o mayor a 1 mg/mL.    <br> </li>    </ul>    <p>4.  <i>Obtenci&oacute;n de inmunosueros espec&iacute;ficos contra T. vaginalis</i>    <br>  </p><ul>     <li> Inoculaci&oacute;n: cada una de las variantes de inmun&oacute;genos  se inocularon siguiendo el mismo esquema de inoculaci&oacute;n.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Los ant&iacute;genos  crudo y soluble se inocularon con una concentraci&oacute;n entre 1 y 2 mg/mL de  prote&iacute;nas. El ant&iacute;geno completo se prepar&oacute; e inocul&oacute;  con una concentraci&oacute;n de 107 c&eacute;lulas/mL. Las dosis de recuerdo se  elaboraron con la mitad de las concentraciones para cada inmun&oacute;geno.</li>    <li>  Determinaci&oacute;n del t&iacute;tulo de anticuerpos: los t&iacute;tulos de anticuerpos  se determinaron por inmunodifusi&oacute;n en gel de Agarosa (IGA), aplicando diluciones  de los sueros desde 1:2 hasta m&aacute;s de 1:64. El suero se colect&oacute; cuando  el t&iacute;tulo fue superior a 1:32.    <br> </li>    </ul>    <p>5. <i>Obtenci&oacute;n  de las inmunoglobulinas v conjugaci&oacute;n con las part&iacute;culas de l&aacute;tex</i>    <br>  </p><ul>     <li> Inmunoglobulinas: las prote&iacute;nas del suero se purificaron  por precipitaci&oacute;n con sulfato de amonio y se obtuvieron inmunoglobulinas  (Ig) totales, para obtener IgG se realiz&oacute; una cromatograf&iacute;a por  DEAE celulosa<span class="superscript">6</span> y se determin&oacute; la concentraci&oacute;n  de prote&iacute;nas de cada una de ellas por densidad &oacute;ptica a 280 nm.    <br>      <p>Las Ig totales y la IgG se evaluaron por IGA. Para la sensibilizaci&oacute;n  de las part&iacute;culas de l&aacute;tex, las inmunoglobulinas se diluyeron en  soluci&oacute;n tamp&oacute;n de glicina (STG), pH 8,4, con diluciones dobles  desde 1:2 hasta 1:128, teniendo en cuenta la concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas.    <br>  </p></li>    ]]></body>
<body><![CDATA[<li> Calidad del l&aacute;tex utilizado: se utilizaron part&iacute;culas  de l&aacute;tex suministradas por la casa <i>BANGS LAB.</i></li>    <li> Proceso de  conjugaci&oacute;n: para la conjugaci&oacute;n de las part&iacute;culas de l&aacute;tex  se utilizaron 2 esquemas:</li>    <li>Esquema A: se unieron las Ig con las part&iacute;culas  de l&aacute;tex al 0,1 y 0,05 % durante 1 h a 37 &deg;C en agitaci&oacute;n constante  y se bloque&oacute; con alb&uacute;mina bovina al 10 %, adem&aacute;s se unieron  las Ig con el l&aacute;tex al 1 % durante 30 min, en las mismas condiciones. Al  final se le a&ntilde;adi&oacute; azida s&oacute;dica como preservo.</li>    <li>Esquema  B: la conjugaci&oacute;n de las part&iacute;culas de l&aacute;tex se realiz&oacute;  de la misma forma que en el esquema anterior, pero despu&eacute;s de la uni&oacute;n  y del bloqueo con alb&uacute;mina se centrifug&oacute;, eliminando el sobrenadante  y restituyendo nuevamente con STG. Al concluir el proceso se le a&ntilde;adi&oacute;  urea 0,1 M como estabilizador y azida s&oacute;dica como preservo. </li>    <li>Selecci&oacute;n  de la diluci&oacute;n de trabajo de las Ig conjugadas: las Ig anti <i>T.vaginalis</i>  conjugadas con latex, se evaluaron frente a las diferentes concentraciones de  Trichomonas, 103 a 105 trichomonas/mL y se seleccion&oacute; la mayor dilucion  de la Ig que detecto una menor concetraci&oacute;n de microorganismos.    <br> </li>    </ul>    <p>6.  <i>Elaboraci&oacute;n del control positivo</i>    <br> </p>    <p>Para obtener el control  positivo se utilizaron frascos de cultivo de <i>T. vaginalis</i> de 48 h de incubaci&oacute;n,  se colocaron en ba&ntilde;o fr&iacute;o durante 10 a 15 min, pasado este tiempo  se lavaron con STG, pH: 8,4, 3 veces a 2 000 rev durante 10 min, despues de la  &uacute;ltima centrifugaci&oacute;n el sedimento se resuspendi&oacute; en un volumen  entre 10-15 mL y se cont&oacute; en c&aacute;mara de Neubauer. Posteriormente  se sonic&oacute; 3 veces a 14 amplitudes por 10 segundos y se le a&ntilde;adi&oacute;  10 &micro;L de azida s&oacute;dica al 0,1 % por cada mL de la soluci&oacute;n.</p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>7.  <i>Elaboraci&oacute;n del l&aacute;tex control negativo y el control negativo  del juego</i>    <br> </p><ul>     <li> Latex control negativo: Para la elaboracion del  l&aacute;tex control negativo se obtuvieron las inmunoglobulinas totales de carneros  sanos, no inmunizados y se sensibilizaron con las part&iacute;culas de l&aacute;tex  aplicando el mismo procedimiento que para el l&aacute;tex anti <i>T. vaginalis</i></li>    <li>  Control negativo: el control negativo del juego es STG, pH-7.    <br> </li>    </ul>    <p>8.  <i>Estabilidad de los reactivos del juego</i>    <br> </p><ul>     <li> Prueba de estabilidad:  3 lotes del juego de l&aacute;tex-globulina anti <i>T. vaginalis</i> se colocaron  en un refrigerador dom&eacute;stico con una temperatura entre 2-8 &deg;C, durante  un a&ntilde;o, y se evalu&oacute; su funcionabilidad mensualmente frente a diluciones  de la cepa.</li>    <li> Reacciones cruzadas: se prepararon suspensiones de microorganismos  como: <i>E. coli, Staphylococcus spp, Streptococcus spp. </i>y<i> Lysteria spp</i>,  con una concentraci&oacute;n de 106 c&eacute;lulas/mL, evaluada por la t&eacute;cnica  de Mc Facland y se enfrentaron al l&aacute;tex inmunoglobulina anti <i>T. vaginalis</i>.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  </li>    </ul>    <p>9. <i>Validaci&oacute;n de la prueba r&aacute;pida de l&aacute;tex</i>    <br>  </p><ul>     <li> Prueba de l&aacute;tex: la prueba r&aacute;pida de l&aacute;tex  globulina se realiz&oacute; depositando en una superficie de cristal 20 &micro;L  del reactivo de l&aacute;tex acoplado y 20 &micro;L del sedimento del exudado  vaginal; con un removedor se mezclaron ambas gotas y se procedi&oacute; a imprimir  un movimiento de rotaci&oacute;n por 3 min. Durante ese tiempo se observ&oacute;  contra una superficie oscura y se determin&oacute; la positividad por la presencia  de aglutinaci&oacute;n, igual a la del control positivo.</li>    <li> Cultivo: el  cultivo se utiliz&oacute; como t&eacute;cnica de referencia. Se colocaron alrededor  de 100 &micro;L del exudado vaginal en un tubo de cultivo de tapa de rosca que  conten&iacute;a 5 mL de medio Diamond modificado. Posteriormente se incub&oacute;  a 37 &deg;C durante 48 h; pasado ese tiempo se tom&oacute; una gota del sedimento  con ayuda de una pipeta Pasteur, se coloc&oacute; sobre un portaobjeto y se cubri&oacute;  con un cubreobjeto para observarla en el microscopio en el lente de 40X.    <br> </li>    </ul>    <p>10.  <i>Indicadores de calidad</i>    <br> </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los indicadores de calidad, sensibilidad,  especificidad y eficiencia se obtuvieron seg&uacute;n las f&oacute;rmulas empleadas  por <i>Argote</i> y <i>L&oacute;pez</i>.<span class="superscript">7</span>    <br>  </p><h4>Resultados    <br> </h4>    <p>Las l&aacute;minas coloreadas evidenciaron la morfolog&iacute;a  caracter&iacute;stica del protozoo: 4 flagelos anteriores, un cuerpo en forma  de pera con una membrana ondulante t&iacute;pica m&aacute;s corta que el cuerpo,  sin flagelo posterior.    <br> </p>    <p>Los inmunosueros obtenidos de los conejos inmunizados  con ant&iacute;geno crudo tuvieron t&iacute;tulos de anticuerpos superiores a  1:64, mientras que los inmunosueros obtenidos de los conejos inmunizados con ant&iacute;geno  fragmentado y ant&iacute;geno soluble tuvieron t&iacute;tulos de anticuerpos hasta  1:8 y 1:16, respectivamente en cada uno de los animales inoculados, por lo que  las siguientes inmunizaciones se realizaron con ant&iacute;geno crudo.    <br> </p>    <p>El  t&iacute;tulo de anticuerpo en los sueros de carneros inmunizados con ant&iacute;geno  crudo tuvieron t&iacute;tulos superiores a 1:128.    <br> </p>    <p>Se seleccionaron  las Ig totales para la conjugaci&oacute;n con las part&iacute;culas de l&aacute;tex,  ya que el t&iacute;tulo de anticuerpos obtenido con las IgG fue inferior a 1:8,  mientras que con las Ig totales el t&iacute;tulo de anticuerpos fue mayor de 1:32.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  </p>    <p>En el esquema A de la conjugaci&oacute;n, los l&aacute;tex que se obtuvieron  aglutinaban ligeramente con el control negativo y no eran estables por m&aacute;s  de 2 semanas. Los l&aacute;tex obtenidos por el esquema B no aglutinaban con el  control negativo y se mantuvieron estables por m&aacute;s de 2 semanas, por lo  que se continu&oacute; la sensibilizaci&oacute;n con este esquema, utilizando  el l&aacute;tex al 0,1 %.    <br> </p>    <p>En la tabla 1 se observan los resultados  de la evaluaci&oacute;n de las diferentes diluciones de los conjugados frente  a diferentes concentraciones de <i>T. vaginalis</i>. Se observa que la mejor diluci&oacute;n  del conjugado es 1:64, ya que es la mayor diluci&oacute;n de las Ig que detecta  la menor concentraci&oacute;n de microorganismos.    <br> </p>    <p align="center"><b>Tabla  1.</b> <i>Evaluaci&oacute;n de las diferentes diluciones de Ig anti T. vaginalis  conjugadas con l&aacute;tex</i></p><table width="75%" border="1" align="center">  <tr> <td rowspan="2">Trichomonas/mL</td><td colspan="7">     <div align="center">Diluciones  de las Ig conjugadas</div></td></tr> <tr> <td>     <div align="center">2</div></td><td>      <div align="center">4</div></td><td>     <div align="center">8</div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">16</div></td><td>      <div align="center">32</div></td><td>     <div align="center">64</div></td><td>     <div align="center">128</div></td></tr>  <tr> <td>10<span class="superscript">3</span></td><td>     <div align="center"><font face="Symbol">-</font></div></td><td>      <div align="center"><font face="Symbol">-</font></div></td><td>     <div align="center"><font face="Symbol">-</font></div></td><td>      <div align="center"><font face="Symbol">-</font></div></td><td>     <div align="center"><font face="Symbol">-</font></div></td><td>      <div align="center">+</div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center"><font face="Symbol">-</font></div></td></tr>  <tr> <td>10<span class="superscript">4</span></td><td>     <div align="center"><font face="Symbol">-</font></div></td><td>      <div align="center"><font face="Symbol">-</font></div></td><td>     <div align="center">+</div></td><td>      <div align="center">+</div></td><td>     <div align="center"><font face="Symbol">-</font></div></td><td>      <div align="center">+</div></td><td>     <div align="center"><font face="Symbol">-</font></div></td></tr>  <tr> <td>10<span class="superscript">5</span></td><td>     <div align="center"><font face="Symbol">-</font></div></td><td>      <div align="center"><font face="Symbol">-</font></div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">+</div></td><td>      <div align="center">+</div></td><td>     <div align="center">+</div></td><td>     <div align="center">+</div></td><td>      <div align="center"><font face="Symbol">-</font></div></td></tr> </table>    <p align="left">La  estabilidad de los reactivos que componen el juego de <i>T. vaginalis</i> fue  de 12 meses y no se evidenci&oacute; reacci&oacute;n cruzada con los microorganismos  estudiados, que forman parte de la flora vaginal de la mujer.    <br> </p>    <p align="left">La  validaci&oacute;n de nuestra prueba se realiz&oacute; en diferentes centros asistenciales  del pa&iacute;s. En la tabla 2 se muestran los porcentajes de mujeres que resultaron  positivas a <i>T. vaginalis</i> por l&aacute;tex y por cultivo (t&eacute;cnica  de referencia) en cada uno de los centros de estudio.    <br> </p>    <p align="center"><b>Tabla  2.</b> <i>Porcentaje de mujeres que resultaron positivas a T. vaginalis por l&aacute;tex  y cultivo en diferentes centros asistenciales del pa&iacute;s</i></p><table width="75%" border="1" align="center">  <tr> <td rowspan="2">Centro asistencial</td><td rowspan="2">     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">No.  de muestras</div></td><td colspan="2">     <p align="center"> </p>    <p align="center">  Positivas por</p></td></tr> <tr> <td>     <div align="center">L&aacute;tex </div></td><td>      <div align="center">Cultivo</div></td></tr> <tr> <td>&quot;Ram&oacute;n Gonz&aacute;lez  Coro&quot; </td><td>     <div align="center">564</div></td><td>     <div align="center">33  </div></td><td>     <div align="center">33</div></td></tr> <tr> <td>Materno de San  Jos&eacute; </td><td>     <div align="center">166</div></td><td>     <div align="center">23</div></td><td>      ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">22</div></td></tr> <tr> <td>Higiene y Epidemiolog&iacute;a  </td><td>     <div align="center">167</div></td><td>     <div align="center">15 </div></td><td>      <div align="center">14</div></td></tr> <tr> <td>Policl&iacute;nico del Este</td><td>      <div align="center">47 </div></td><td>     <div align="center">7</div></td><td>     <div align="center">7</div></td></tr>  <tr> <td>&quot;Hijas de Galicia&quot;</td><td>     <div align="center">185</div></td><td>      <div align="center">78 </div></td><td>     <div align="center">80</div></td></tr>  <tr> <td>Total %</td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">1 129</div></td><td>     <div align="center">156  (13,5 %)</div></td><td>     <div align="center">156 (13,5 %)</div></td></tr> </table>    <p align="left">  Para determinar la sensibilidad, especificidad y eficiencia de la prueba r&aacute;pida  de l&aacute;tex se utiliz&oacute; el cultivo como t&eacute;cnica de referencia  y se tomaron como verdaderos positivos y verdaderos negativos las muestras en  que se aislaron o no microorganismos por esta t&eacute;cnica respectivamente (tabla  3).    <br> </p>    <p align="center"><b>Tabla 3.</b> <i>Indicadores de calidad de la  prueba r&aacute;pida de l&aacute;tex</i></p><table width="75%" border="1" align="center" bordercolor="#999999">  <tr> <td>Indicadores de calidad</td><td>     <div align="center">L&aacute;tex     <br>  (%)</div></td></tr> <tr> <td> Sensibilidad</td><td>     <div align="center">98,7</div></td></tr>  <tr> <td>Especificidad</td><td>     <div align="center">99</div></td></tr> <tr> <td>Eficiencia  </td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">99</div></td></tr> </table><h4>Discusi&oacute;n    <br>  </h4>    <p>Las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas observadas en el presente  aislamiento corresponden a las descritas por <i>Levine</i> en 1973<span class="superscript">8</span>  para la especie <i>T. vaginalis</i>; por otra parte, con estas caracter&iacute;sticas  solo puede estar presente esta especie en los exudados vaginales.    <br> </p>    <p>El  cultivo del par&aacute;sito es sin duda la t&eacute;cnica de elecci&oacute;n para  confirmar un resultado positivo,<span class="superscript">1,9,10</span> no obstante,  otros investigadores se&ntilde;alan que la prevalencia de la trichomoniasis est&aacute;  subestimada cuando se diagnostica solamente por este m&eacute;todo.<span class="superscript">11</span>    <br>  </p>    <p>Estudios comparativos de la t&eacute;cnica de cultivo y la PCR en el diagn&oacute;stico  de la trichomoniasis vaginal han evidenciado resultados similares de sensibilidad  y especificidad,<span class="superscript">1,2,12</span> lo que demuestra que la  t&eacute;cnica molecular puede ser incorporada junto con otras metodolog&iacute;as  para el diagn&oacute;stico de enfermedades de transmisi&oacute;n sexual.<span class="superscript">13,14  </span>si analizamos los datos anteriores, podr&iacute;an ser similares los resultados  de la prueba de l&aacute;tex y la PCR.    <br> </p>    <p>No obstante los valiosos resultados  que se han obtenido con la aplicaci&oacute;n de la PCR, este m&eacute;todo problamente  no remplazar&aacute; los m&eacute;todos actuales que se utilizan para el diagn&oacute;stico  de rutina de esta enfermedad en pa&iacute;ses subdesarrololados, por el alto costo  que presenta.<span class="superscript">15</span>    <br> </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El juego de reactivo  de l&aacute;tex producido en nuestro centro, tuvo una sensibilidad, especificidad  y eficiencia de 98,7, 99 y 99 %, respectivamente. Esta t&eacute;cnica no requiere  de equipos especializados, es de f&aacute;cil realizaci&oacute;n y el resultado  se obtiene en un tiempo breve, por lo que el mismo d&iacute;a se puede conocer  el resultado del diagn&oacute;stico y de ser necesario, el m&eacute;dico en la  misma consulta, puede indicar el tratamiento a la paciente; adem&aacute;s brinda  la opci&oacute;n de poder refrigerar o congelar las nuestras para ser investigadas  con posterioridad, lo cual es imposible realizar cuando este diagn&oacute;stico  se realiza por microscopia o cultivo; los resultados son de f&aacute;cil lectura  y se comparan con un control positivo y negativo que descarta cualquier posibilidad  de error; estas caracter&iacute;sticas lo hacen muy &uacute;til para el diagn&oacute;stico  de la trichomoniasis vaginal en los laboratorios cl&iacute;nicos de los hospitales  especializados en nuestro pa&iacute;s, y en otros pa&iacute;ses en los cuales  esta parasitosis ocasione da&ntilde;os a la poblaci&oacute;n vulnerable.    <br> </p>    <p>Este  diagn&oacute;stico posibilitar&iacute;a ampliar la atenci&oacute;n primaria al  m&eacute;dico de la familia, centros de trabajo y centros estudiantiles, lo que  constituir&iacute;a un ahorro de tiempo al paciente, al m&eacute;dico y al laboratorista.  Permite adem&aacute;s que el enfermo pueda iniciar con m&aacute;s rapidez el tratamiento  y con ello, evitar una mayor difusi&oacute;n de la enfermedad.    <br> </p>Con el  uso de esta t&eacute;cnica diagn&oacute;stica de alta sensibilidad y especificidad,  es posible controlar los casos infectados por esta parasitosis y por la tanto  disminuir la prevalencia de esta enfermedad, aspectos que son muy importantes  para la salud de nuestro pa&iacute;s y a nivel mundial, por lo que se contin&uacute;a  trabajando para obtener resultados m&aacute;s alentadores.<span class="superscript">13</span>  <h4>Summary</h4>    <p>A kit of reagents for the diagnosis of <i>Trichomonas vaginalis</i>  is developed starting from latex particles sensitized with immunoglobulins against  <i>T. vaginalis</i>, a positive and a negative control. This kit is used in the  diagnosis of the protozoo by means of rapid agglutination and no specific equipment  is necessary. The results show a sensitivity of 98.7 % and a specificity of 99  % for a limit of detection of 104 cells/mL. The latex sensitivity study was conducted  for the negative and positive controls during a year. The results were satisfactory.    <br>  </p>    <p><i>Subject headings:</i> TRICHOMONIASIS/diagnosis; TRICHOMONAS VAGINITIS/diagnosis;  FEMALE; LATEX FIXATION TESTS/methods; LATEX ALLERGY.</p><h4>Referencias bibliogr&aacute;ficas    <br>  </h4><ol>     <li> Shaio FM, Lin RP, Liu YJ. Colorimetric one-tube tested PCR for  detection of <i>Trichomonas vaginalis</i> in vaginal discharges. J Clin Microbiol  1997;35(1):132-8.</li>    <li> Levi MH, Torres J, Pina C, Flein RS. Comparison of  the Inpouch TV culture system and Diamond&acute;s modified medium for detection  of <i>Trichomonas vaginalis</i>. J Clin Microbiol 1997;35(12):3308-10.</li>    ]]></body>
<body><![CDATA[<li>  Barenfanger J, Drake C, Hanson C. Timing of inoculation of the pouch makes no  difference in increased detection of Trichomonas vaginalis by the Inpouch tv methods.  J Clin Microbiol 2002;40(4):1387-89.</li>    <li> Diego RJ, Castellanos AM, Blandino  T, Abreu RG, G&oacute;mez E. Manual de t&eacute;cnicas parasitol&oacute;gicas.  La Habana: Enpes; 1987:81-4.</li>    <li> Krueger JN. The Bradford Methods for Protein  Quantitation. Totowa: Humana Press Inc; 1994:33-40.</li>    <li> Harlow ED, Lane D.  Antibodies a laboratory manual. Chapter 8; Storing and purifying antibodies. United  States of America: Cold Spring Harbor Laboratory; 1988. P. 298-9.</li>    <li> Argote  E, L&oacute;pez G. Pautas para evaluar la calidad de los juegos diagn&oacute;sticos  basados en la t&eacute;cnica ELISA. Rev Cubana Cienc Vet 1995;24(2):16-9.</li>    <li>  Levine DN. Protozoan parasites of domestic animals and of man. The Trichomonads.  Chapter 5. 2. ed. Minneapolis: Burgess Publishing Company;1973. P. 100-101.</li>    <li>  Schwebke JR, Venglarik FM, Morgan SC. Delayed versus immediate bedside inoculation  of culture media for diagnosis of vaginal trichomonosis. J Clin Microbiol 1999;37(7):2369-70.</li>    <li>  Demirezen S. Trichomonas vaginalis in vaginal smears in women using intrauterine  contraceptive device. Cent Euro J Public Helath 2001;9(4):176-8.</li>    <li> Petersen  CS, Carl L, Alnor D, Thomsen U, Thomsen HK. Ignored Trichomonal infestation diagnosed  by Papanicolaou smear. Genitourin Med 1995;71(4):257-8.</li>    <li> Madico G, Quinn  TC, Rompalo A, McKee KT Jr, Gaydos CA. Diagnosis of <i>Trichomonas vaginalis</i>  infections by PCR using vaginal swab samples. J Clin Microbiol 1998;36(11):3205-10.</li>    ]]></body>
<body><![CDATA[<li>  Van der Chee C, Van BA, Zwijgers L, Van der BE, O Neil EL, Luijendjik A, et al.  Improved diagnosis of <i>Trichomonas vaginalis</i> infection by PCR using vaginal  swabs and urine specimens compared to diagnosis by wet mount microscopy, culture,  and fluorescent staining. J Clin Microbiol 1999;37(12):4127-30.</li>    <li> Okuyama  T, Takahashi R, Mori M, Osaka M, Kobayashi TK, Maeda S. Polymerase chain reaction  amplification of <i>Trichomonas vaginalis</i> DNA from Papnicolaou-stained smears.  Diagn Cytopathol 1998;19(6):437-40.</li>    <li> Singh B. Molecular methods for diagnosis  and epidemiological of parasitic infections. Int J Parasitol 1997;27(10):1135-45.</li>    </ol>    <p>Recibido:  10 de diciembre de 2002. Aprobado: 21 de enero de 2003.    <br> Lic. <i>Ivette Maciques  Rodr&iacute;guez</i>. Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria (CENSA). Carretera  Tapaste y Autopista Nacional. Apartado 10, CP 32700, San Jos&eacute; de Las Lajas,  La Habana, Cuba.    <br> </p>    <p><span class="superscript"><b><a href="#autor">1</a></b></span><a href="#autor">  M&aacute;ster en Ciencias. Investigadora Agregada. Departamento de Parasitolog&iacute;a.    <br>  <span class="superscript"><b>2</b></span> Profesora Titular. Departamento de Parasitolog&iacute;a.    <br>  <span class="superscript"><b>3</b></span> Especialista. Departamento de Producci&oacute;n  de Medicamentos. </a><a name="cargo"></a></p>     ]]></body>
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