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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de la criopreservación de semen de conejo Nueva Zelanda (Oryctolagus cuniculus) sobre su viabilidad y estado acrosomal]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of cryopreservation on viability and the acrosomal state of new zeland rabbit (Oryctolagus cuniculus) semen]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The effect of cryopreservation on the viability and the acrosomal state of spermatozoa of New Zeeland rabbits (Oryctolagus cuniculus) was studied. Forty six ejaculates, obtained with an artificial vagina, were used to determine the percentages of viability and mortality with and without acrosomal reaction (VsRA, VcRA, MsRA and McRA, respectively) in fresh and post-thawed semen by staining with fluorescein isothiocianato conjugated with lectine from Arachis Hypogaea and propidium iodide (FITC-PNA/IP). The values obtained in fresh semen were 73.6+4.9%, 5.5+2.4%, 15.2+3.7% and 5.6+2.3%, respectively, and 40.0+4.8%, 10.4+3.1%, 38.1+6.1 y 11.5+3.6, respectively, in post-thawed semen. Statistically significant differences (p<0.05) were determined between the spermatic characteristics in fresh and post-thawed semen, which were caused by the effects of cryopreservation. It is concluded that, even when the viability and the acrosomal state of the spermatozoa are affected by cryopreservation, a sufficient quantity of spermatozoa remains alive and without acrosomal reaction capable to fulfill the fertilization.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <P align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>COMUNICACI&Oacute;N    CORTA</B></font>     <P align="right">&nbsp;     <P align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="4">Efecto    de la criopreservaci&oacute;n de semen de conejo Nueva Zelanda (O<I>ryctolagus    cuniculus</I>) sobre su viabilidad y estado acrosomal</font></B></font>     <P align="left">&nbsp;     <P align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">Effect    of cryopreservation on viability and the acrosomal state of new zeland rabbit    (<i>Oryctolagus cuniculus</i>) semen </font></b></font>     <P align="left">&nbsp;     <P align="left">&nbsp;     <P align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>P.J.E.    Hern&aacute;ndez<SUP>I</SUP>, R.F. Fern&aacute;ndez<SUP> I</SUP>, S.J.L. Rodr&iacute;guez<SUP>    I</SUP>, R.M. Negrete<SUP> II</SUP>, M.Y.G. Soto<SUP> II</SUP>, R.A.D. Garc&iacute;a<SUP>    II</SUP></b></font> <B></B>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><SUP>I</SUP>Laboratorio    Manejo de la Reproducci&oacute;n. Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana-Xochimilco.    Calzada del Hueso 1100, Colonia Villa Quietud, Coyoac&aacute;n 04960. M&eacute;xico,    D.F. email: <U><a href="mailto:ehernan@correo.xoc.uam.mx">ehernan@correo.xoc.uam.mx</a></U>.    <SUP>    <br>   II</SUP>Cl&iacute;nica privada. M&eacute;xico, D.F. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;     <P>&nbsp;  <hr noshade size="1">     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>RESUMEN</B></font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El objetivo del    estudio fue investigar el efecto de la criopreservaci&oacute;n sobre la viabilidad    y estado acrosomal de espermatozoides de conejo de la raza Nueva Zelanda (<I>Oryctolagus    cuniculus</I>). Se utilizaron 46 eyaculados, obtenidos mediante vagina artificial,    evalu&aacute;ndose las siguientes caracter&iacute;sticas en semen fresco y post-descongelado:    % de viabilidad sin y con reacci&oacute;n acrosomal (VsRA y VcRA, respectivamente),    y % de mortalidad sin y con reacci&oacute;n acrosomal (MsRA y McRA, respectivamente),    mediante la tinci&oacute;n de Isotiocianato de fluoresce&iacute;na conjugada    con la lectina de <I>Arachis Hypogaea</I> y Ioduro de Propidio (FITC-PNA/IP).    Se obtuvieron los siguientes valores en semen fresco: 73.6<U>+</U>4.9%, 5.5<U>+</U>2.4%,    15.2<U>+</U>3.7% y 5.6<U>+</U>2.3%, respectivamente; y para semen post-descongelado:    40.0<U>+</U>4.8%, 10.4<U>+</U>3.1%, 38.1<U>+</U>6.1 y 11.5<U>+</U>3.6, respectivamente.    Se determinaron diferencias estad&iacute;sticamente significativas (p&lt;0.05)    entre las caracter&iacute;sticas esperm&aacute;ticas en fresco y post-descongeladas,    causadas por los efectos de la criopreservaci&oacute;n. Se concluye que a&uacute;n    cuando la viabilidad y el estado acrosomal de los espermatozoides se ven afectados    por la criopreservaci&oacute;n, queda suficiente cantidad de espermatozoides    vivos y sin reacci&oacute;n acrosomal capaces de realizar la fertilizaci&oacute;n.    </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Palabras clave:    </B>criopreservaci&oacute;n, viabilidad, reacci&oacute;n acrosomal, FITC-PNA/IP,    <I>Oryctolagus cuniculus.</I> </font> <hr noshade size="1">         <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>ABSTRACT</b></font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">The effect of cryopreservation    on the viability and the acrosomal state of spermatozoa of New Zeeland rabbits    (<I>Oryctolagus cuniculus</I>) was studied. Forty six ejaculates, obtained with    an artificial vagina, were used to determine the percentages of viability and    mortality with and without acrosomal reaction (VsRA, VcRA, MsRA and McRA, respectively)    in fresh and post-thawed semen by staining with fluorescein isothiocianato conjugated    with lectine from<I> Arachis Hypogaea </I>and propidium<I> </I>iodide (FITC-PNA/IP).    The values obtained in fresh semen were 73.6<U>+</U>4.9%, 5.5<U>+</U>2.4%, 15.2<U>+</U>3.7%    and 5.6<U>+</U>2.3%, respectively, and 40.0<U>+</U>4.8%, 10.4<U>+</U>3.1%, 38.1<U>+</U>6.1    y 11.5<U>+</U>3.6, respectively, in post-thawed semen. Statistically significant    differences (p&lt;0.05) were determined between the spermatic characteristics    in fresh and post-thawed semen, which were caused by the effects of cryopreservation.    It is concluded that, even when the viability and the acrosomal state of the    spermatozoa are affected by cryopreservation, a sufficient quantity of spermatozoa    remains alive and without acrosomal reaction capable to fulfill the fertilization.    </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Palabras clave:    </B>cryopreservation, viability,<I> </I>acrosomal reaction l, FITC-PNA/IP, <I>Oryctolagus    cuniculus.</I> </font> <hr noshade size="1">     <P>&nbsp;      <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El conejo es un    valioso animal de laboratorio utilizado tanto en investigaciones dirigidas a    estudiar la funci&oacute;n del espermatozoide en la fertilizaci&oacute;n; como    en estudios sobre toxicolog&iacute;a, teratolog&iacute;a, inmunolog&iacute;a,    microbiolog&iacute;a y transg&eacute;nesis (1, 2, 3). De ah&iacute; la necesidad    de investigar m&eacute;todos m&aacute;s confiables para la conservaci&oacute;n    de recursos gen&eacute;ticos de conejo de manera eficiente en bancos de criopreservaci&oacute;n.    Por otro lado, los espermatozoides de conejo se usan para investigar nuevos    crioprotectores y m&eacute;todos de congelaci&oacute;n, en funci&oacute;n de    que son altamente sensibles a dicho proceso (2, 4). </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se conoce que la    Inseminaci&oacute;n Artificial (I.A) en los sistemas de producci&oacute;n de    conejos es una pr&aacute;ctica com&uacute;n (5), en base al uso de semen fresco    o refrigerado, resultando en altas tasas de concepci&oacute;n como las obtenidas    con monta natural que es de 80.0% (6, 7), sin embargo cuando se usa semen pos-descongelado,    se reporta descenso en los porcentajes de fertilidad hasta un 47.0% (8). La    congelaci&oacute;n-descongelaci&oacute;n incrementan la capacitaci&oacute;n    y reacci&oacute;n acrosomal (RA) esperm&aacute;tica. En ese proceso, se debe    considerar que la evaluaci&oacute;n del acrosoma es importante debido a que    es fundamental durante la fecundaci&oacute;n. Los da&ntilde;os en el acrosoma    provocan que se liberen las enzimas que alberga en su interior, perdiendo la    capacidad de fecundaci&oacute;n (9). En el semen principalmente post-descongelado    es importante saber qu&eacute; porcentaje est&aacute;n vivos y sin RA, que son    los que interesan para usarse en t&eacute;cnicas de reproducci&oacute;n asistida.    Una herramienta muy precisa para evaluar la viabilidad del espermatozoide y    su estado acrosomal es la tinci&oacute;n de Isotiocianato de fluoresce&iacute;na    conjugada con la lectina de Arachis Hypogaea y Ioduro de Propidio (FITC-PNA/IP).    En espermatozoides sin RA, los acrosomas permanecen sin te&ntilde;ir, mientras    que los espermatozoides con RA, se ti&ntilde;en de verde (10). El Ioduro de    Propidio (IP) es una tinci&oacute;n espec&iacute;fica de DNA que no puede entrar    en membranas intactas y solo penetran en las c&eacute;lulas que han perdido    la integridad de la membrana ti&ntilde;&eacute;ndolos de color rojo (11). En    investigaciones anteriores utilizando la tinci&oacute;n FITC-PNA/IP, para evaluar    espermatozoides obtenidos de eyaculados de la especie ovina (12), as&iacute;    como espermatozoides recuperados de cola de epid&iacute;dimo de equinos (13)    y sujetos al proceso de criopreservaci&oacute;n se llego a la conclusi&oacute;n    de que se obtienen suficiente cantidad de espermatozoides vivos y sin reacci&oacute;n    acrosomal &uacute;tiles para su empleo en t&eacute;cnicas de reproducci&oacute;n    asistida. Al no encontrarse reportes sobre la viabilidad y estado acrosomal    utilizando la tinci&oacute;n de FITC-PNA/IP en semen post-descongelado de conejo    El objetivo de esta investigaci&oacute;n fue determinar el efecto de la criopreservaci&oacute;n    sobre la viabilidad y estado acrosomal de espermatozoides de conejo con el empleo    de la tinci&oacute;n referida como criterio evaluativo. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El presente estudio    se llev&oacute; a cabo con 46 eyaculados obtenidos con vagina artificial a dos    conejos de la raza Nueva Zelanda (<I>Oryctolagus cuniculus</I>), sexualmente    activos a los que se les brind&oacute; comida y agua <I>ad libitum</I>, con    temperatura controlada de 18&#176;C., a 20&#176;C., y ciclos de luz-oscuridad    de 12x12 horas (14), dichas muestras fueron evaluadas en el Laboratorio &#171;Manejo    de la Reproducci&oacute;n&#187; de la Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana    Unidad Xochimilco. La viabilidad y estado acrosomal de los espermatozoides,    se determin&oacute; mediante la tinci&oacute;n de Isotiocianato de fluoresce&iacute;na    conjugada con la lectina de <I>Arachis Hypogaea</I> y Ioduro de Propidio (FITC-PNA/IP),    seg&uacute;n la metodolog&iacute;a de Garc&iacute;a-Rosell&oacute; <I>et al.</I>    (15). Los espermatozoides se clasificaron de acuerdo al patr&oacute;n de tinci&oacute;n    en vivos o muertos y con o sin reacci&oacute;n acrosomal (16). El semen fue    congelado con el diluyente Tris-&aacute;cido c&iacute;trico-glucosa incluyendo    1.75M de DMSO y 0.05M de sucrosa y envasado en pajillas de 0.5 mL a una concentraci&oacute;n    de 30x10<SUP>6</SUP>/mL (3), descongel&aacute;ndolas a 37&#176;C., por 45 segundos.    Los indicadores evaluados a los espermatozoides fueron: vivos sin RA VsRA, vivos    con RA VcRA , muertos sin RA MsRA y muertos con RA McRA. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">An&aacute;lisis    estad&iacute;stico. Los datos fueron analizados con el paquete estad&iacute;stico    SPSS 13.0, para comparar las caracter&iacute;sticas esperm&aacute;ticas se realizaron    pruebas estad&iacute;sticas de ANOVA y &#171;t&#187; de Student con nivel de    significaci&oacute;n 0,05 (17). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Existe diferencia    significativa (p&lt;0.05) entre las caracter&iacute;sticas esperm&aacute;ticas    evaluadas en fresco y pos-descongeladas de semen de conejo (<a href="/img/revistas/rsa/v34n3/t0109312.gif">Tabla    1</a>). </font>      
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En semen fresco    se determin&oacute; un 73.6% de espermatozoides vivos sin RA y solo un 5.5%    de espermatozoides vivos con RA, siendo el resto (20.8%) de espermatozoides    muertos sin y con RA. La mayor&iacute;a de las investigaciones solo reportan    el porcentaje de espermatozoides con o sin RA, si lo consideramos as&iacute;    en esta investigaci&oacute;n se tendr&iacute;an 88.8% de espermatozoides sin    RA y 11.2% de espermatozoides con RA. Lo anterior es similar a lo reportado    por Castellini <I>et al</I>. (8) y Viudes de Castro <I>et al. </I>(18) que reportan    un 12.2% y 13.0% de espermatozoides con reacci&oacute;n acrosomal, determin&aacute;ndolo    mediante la tinci&oacute;n FITC-PNA y contraste de fase, respectivamente, pero    superior a lo reportado por Hern&aacute;ndez <I>et al</I>. (19), con 9.5%, usando    azul de Comassie. El porcentaje de espermatozoides sin RA debe ser superior    al 80.0% en semen fresco, ya que si hay un porcentaje elevado de espermatozoides    con acrosomas da&ntilde;ados en el eyaculado, la fertilidad se reduce (20).    Mientras que en semen post-descongelados se determin&oacute; un 40.0% de espermatozoides    vivos sin RA, que son los que mantienen la capacidad de fecundar. Sin tomar    en cuenta la viabilidad, el porcentaje de espermatozoides con RA se increment&oacute;    a 21.9% en semen descongelado, sin embargo este valor es inferior a lo reportado    por Si <I>et al</I>. (14) y Castellini <I>et al</I>. (8) que reportan un 61.5%    y 55.3%, respectivamente de espermatozoides con RA sin especificar qu&eacute;    porcentaje de ellos estaban vivos o muertos. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se concluye que    la viabilidad y el estado acrosomal de los espermatozoides se ven afectados    por la criopreservaci&oacute;n, no obstante queda suficiente cantidad de espermatozoides    vivos y sin reacci&oacute;n acrosomal capaces de realizar la fertilizaci&oacute;n.</font>     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">REFERENCIAS</font></B></font>      <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1. Arriola J,      Foote RH. Accesory sperm as an indication of fertilizing ability of rabbit      spermatozoa frozen egg yolk-acetamide with detergent. J Androl. 2001; 22(3):458-463.          </font>         <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2. Kashiwazaki    N, Okuda Y, Seita Y, Hisamatsu S, Sonoki S, Shino M, et al. Comparison of glycerol,    lactamide, acetamide and dimethylsulfoxide as cryoprotectants of japanese white    rabbit spermatozoa. J Reprod Dev. 2006;52(4):511-516.     </font>      <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">3. Moc&eacute;      E, Vicente JS. Rabbit sperm cryopreservation: A review. Anim Reprod Sci. 2009;      110:1-24.     </font>        <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">4. Dalimata AM,      Grahamn JK. Cryopreservation of rabbit spermatozoa using acetamide in combination      with trehalose and methyl cellulose. Theriogenology. 1997;48:831-841.     </font>        <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">5. L&oacute;pez      FJ, Alvari&ntilde;o JMR. 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