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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Rizobios residentes en la rizosfera de plantas de arroz (Oryza sativa L.) cultivar INCA LP-5]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Residents rhizobia in the rhizosphere of rice plants (Oryza sativa L.) cultivar inca lp-5]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas (INCA)  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The objective of this work was to isolate rhizobia from the rhizosphere of rice plants cultivar INCA LP-5. Rhizobia isolation from rhizospheric soil and rhizoplane of rice plants growing in Petroferric Ferruginous Nodular Gley soil was conducted. The possible taxonomic distribution of the isolates was determinated throught the study of their morpho-cultural and physiological characteristics. In vitro nodulation assays were also performed in Macroptilium atropurpureum (DC.) Urb. (siratro). Fourteen isolates showed similar cultural and morphological characteristics to rhizobia, of which 28,57 % were obtained from the rhizospheric soil and 71,43 % from rhizoplane of rice plants. All isolates were negative to cetolactase test and produced acid. An isolated showed moderate growth on the culture medium while the rest grew faster. Eleven rhizospherics isolated from rice plants produced effective nodules in siratro plants. A possible member of the Mesorhizobium genera and ten possible members of Rhizobiaceae family were identified. Four isolates showed a high effectiveness of the nodulation process in siratro plants and one of them significantly increased the root dry mass. The results obtained in this study provide the first evidence in Cuba where interaction of rhizobia-rice is developed]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:14.0pt; ">Rizobios  residentes en la rizosfera de plantas de arroz (<em>Oryza sativa </em>L.) cultivar  INCA LP-5</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:14.0pt; ">&nbsp;</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">Residents rhizobia in the  rhizosphere of rice plants (<em>Oryza sativa</em> L.) cultivar <span style="text-transform:uppercase; ">inca lp-5</span></span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; text-transform:uppercase; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">&nbsp;</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">&nbsp;</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">M.Cs.  Ionel Hern&aacute;ndez Forte, Dra.C. Mar&iacute;a Caridad N&aacute;poles Garc&iacute;a</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Instituto Nacional de  Ciencias Agr&iacute;colas (INCA), Gaveta postal No.1, San Jos&eacute; de las Lajas.  Mayabeque, Cuba. CP 32700.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;">&nbsp;</p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;">&nbsp;</p> <hr />     <p><strong><span style="line-height:107%; text-transform:uppercase; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Resumen</span></strong><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> </span></strong></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">El objetivo del presente  trabajo fue aislar rizobios <span style="letter-spacing:.1pt; ">de la rizosfera  de plantas de arroz cultivar INCA LP-5.</span> El aislamiento se realiz&oacute; a  partir del suelo rizosf&eacute;rico y del rizoplano de plantas de arroz cultivadas en  suelo Gley Nodular Ferruginoso Petrof&eacute;rrico.<span style="letter-spacing:-.1pt; "> Se determin&oacute; la posible distribuci&oacute;n taxon&oacute;mica de los aislados mediante el  estudio de sus caracter&iacute;sticas morfo-culturales y fisiol&oacute;gicas y se realizaron  bioensayos de nodulaci&oacute;n <em>in vitro </em>en <em>Macroptilium atropurpureum </em>(DC.)  Urb. (siratro). </span>Se obtuvieron 14 aislados con caracter&iacute;sticas culturales  y morfol&oacute;gicas similares a las descritas en los rizobios, de los cuales el  28,57 % se obtuvieron del suelo rizosf&eacute;rico y el 71,43 % del rizoplano de las  plantas de arroz. Todos los aislados resultaron negativo a la prueba de la  cetolactasa y produjeron &aacute;cido. Un aislado tuvo un crecimiento moderado sobre  el medio de cultivo <span style="letter-spacing:.5pt; ">mientras que el resto  crecieron m&aacute;s r&aacute;pidamente.</span> Once aislados provenientes de la rizosfera de  las plantas de arroz produjeron n&oacute;dulos efectivos en las plantas de siratro. Se  identific&oacute; un aislado como posible miembro del g&eacute;nero <em><span style="letter-spacing:.3pt; ">Mesorhizobium</span></em> y diez en la familia <em>Rhizobiaceae</em>. Cuatro aislados presentaron una elevada efectividad del proceso de  nodulaci&oacute;n y uno de ellos increment&oacute; significativamente la masa seca radical.  Los resultados obtenidos en esta investigaci&oacute;n constituyen la primera evidencia  en Cuba donde se aborda la interacci&oacute;n de los rizobios con el cultivo del  arroz.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Palabras clave</span></strong><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">:</span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> aislamiento, <em>Rhizobiaceae,</em> rizobacterias.</span></p> <hr />     <p><strong><span style="line-height:107%; text-transform:uppercase; letter-spacing:.3pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Abstract</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="line-height:107%; letter-spacing:.3pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">The objective of this work was to  isolate rhizobia from the rhizosphere of rice plants cultivar INCA LP-5. Rhizobia  isolation from rhizospheric soil and rhizoplane of rice plants growing in  Petroferric </span><span style="line-height:107%; letter-spacing:.7pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Ferruginous  Nodular Gley soil was conducted.</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> The possible taxonomic distribution of the isolates  was determinated throught the study of their morpho-cultural and physiological  characteristics. <em>In vitro </em>nodulation assays were also performed in <em>Macroptilium  atropurpureum</em> (DC.) Urb. (siratro). </span><span style="line-height:107%; letter-spacing:.1pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Fourteen isolates showed similar  cultural and morphological characteristics to rhizobia, of which 28,57 %</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> were obtained from the  rhizospheric soil and 71,43 % from rhizoplane of rice plants. All isolates were  negative to cetolactase test and produced acid. An isolated showed moderate  growth on the culture medium while the rest grew faster. Eleven rhizospherics  isolated from rice plants produced effective nodules in siratro plants. A  possible member of the <em>Mesorhizobium</em> genera and ten possible members of <em>Rhizobiaceae</em> family were identified. Four isolates showed a high effectiveness of the  nodulation process in siratro plants and one of them significantly increased  the root dry mass. The results obtained in this study provide the first  evidence in Cuba where interaction of rhizobia-rice is developed.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Key  words</span></strong><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">:</span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> isolation, <em>Rhizobiaceae</em>, rizobacteria.</span></p> <hr />     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">INTRODUCCI&Oacute;N</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">El arroz es uno de los  cultivos de mayor importancia para la alimentaci&oacute;n humana, con una producci&oacute;n  mundial de 478 millones de toneladas<sup><a href="#nA">A</a><a name="nA1" id="nA1"></a></sup>. En Am&eacute;rica <span style="letter-spacing:-.4pt; ">Latina, Cuba constituye uno de los pa&iacute;ses de mayor </span><span style="letter-spacing:-.5pt; ">consumo per c&aacute;pita, con alrededor de  60 kg anuales<sup><a href="#nB">B</a></sup><a name="nB1" id="nB1"></a>. </span><span style="letter-spacing:.2pt; ">El cultivar  de arroz INCA LP-5, obtenido en el </span>Instituto Nacional de Ciencias  Agr&iacute;colas, es uno de los de mayor distribuci&oacute;n en el pa&iacute;s por sus elevados  rendimientos y por su resistencia a <em>Pyricularia grisea</em>, principal  pat&oacute;geno del cultivo (1).<br />   <br />   La aplicaci&oacute;n de fertilizantes nitrogenados y fosfatados al suelo permite  suplir gran parte de las necesidades nutricionales del cultivo del arroz, incrementando  considerablemente los rendimientos (1). Sin embargo, el empleo irracional de  estos productos impacta negativamente los diferentes ecosistemas y encarece el  proceso productivo (2). El aislamiento y caracterizaci&oacute;n de bacterias que se  asocian naturalmente al cultivo del arroz y que potencian su crecimiento, ha  permitido la elaboraci&oacute;n de biopreparados inocuos para el medio ambiente y que  provocan incrementos en los rendimientos agr&iacute;colas, con la consiguiente  disminuci&oacute;n de los costos del proceso productivo (3).<br />   <br />   <em>Azospirillum</em> y <em>Herbaspirillum</em> se encuentran dentro de los g&eacute;neros  bacterianos m&aacute;s representativos en la rizosfera de las plantas de arroz, aunque  tambi&eacute;n se destacan <em>Bacillus, Pseudomonas, Azotobacter</em> y <em>Burkholderia</em> (4). Sin embargo, los rizobios, bacterias que tradicionalmente se han estudiado  por su capacidad de establecer simbiosis con las plantas leguminosas a partir  de la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos radicales donde realizan la Fijaci&oacute;n Biol&oacute;gica de  Nitr&oacute;geno (FBN) (5), tambi&eacute;n se han observado colonizando las ra&iacute;ces de las plantas de arroz y como end&oacute;fitos de este  cultivo (6). La inoculaci&oacute;n de cepas de rizobios en diversas cultivares  de arroz, ha mostrado efectos positivos en el desarrollo, crecimiento y en los  rendimientos del cultivo (7, 8).<br />   <br />   A pesar de los antecedentes expuestos anteriormente, en el mundo se han  realizado escasos estudios sobre la interacci&oacute;n rizobio-arroz y en Cuba hasta  el momento, no existen evidencias documentadas donde se demuestre la presencia  de los rizobios asociados al cultivo del arroz. Por tal motivo, el objetivo del  presente trabajo fue aislar rizobios de la rizosfera de plantas de arroz (<em>Oryza  sativa</em> L.) cultivar INCA LP-5, cultivadas en suelo Gley Nodular Ferruginoso  Petrof&eacute;rrico. Contar con un cepario de rizobios obtenidos de la rizosfera de  plantas de arroz permitir&iacute;a estudiar detenidamente las particularidades que  rigen esta asociaci&oacute;n. Con los aislados de rizobios m&aacute;s promisorios se pudieran  elaborar biopreparados para incrementar el crecimiento y los rendimientos del  arroz, en las condiciones edafoclim&aacute;ticas de Cuba.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">MATERIALES  Y M&Eacute;TODOS</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Muestreo  y caracterizaci&oacute;n qu&iacute;mica del suelo</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Se  colectaron plantas de arroz del cultivar INCA LP-5 cultivadas en las terrazas  de la zona tres, casillas C y H de la Unidad Cient&iacute;fica Tecnol&oacute;gica de Base  &ldquo;Los Palacios&rdquo; (UCTB-LP), ubicada en la provincia Pinar del R&iacute;o. Se muestrearon  cinco sitios</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">, distantes uno de otro en diagonal, para lograr una  representatividad de la microbiota presente en el suelo de la localidad  estudiada.<br />   <br />   Se tomaron cinco muestras de suelo en cada  uno de los sitios muestreados, a una profundidad menor de 30 cm y a m&aacute;s de 20  cm de las ra&iacute;ces de las plantas. Para la determinaci&oacute;n del contenido de sodio (Na<sup>+</sup>), potasio (K<sup>+</sup>),  calcio (Ca<sup>2+</sup>) y magnesio (Mg<sup>2+</sup>). Primeramente se  extrajeron empleando la t&eacute;cnica de Maslova; el contenido de Na<sup>+</sup> y K<sup>+</sup>,  se determin&oacute; por fotometr&iacute;a de llama y el de Ca<sup>2+</sup> y el Mg<sup>2+</sup> empleando EDTA. El contenido de f&oacute;sforo (P) se  evalu&oacute; mediante la t&eacute;cnica de Oniani (9). Se determin&oacute; adem&aacute;s el pH <span style="letter-spacing:.4pt; ">(en KCl) mediante la t&eacute;cnica de potenciometr&iacute;a; </span>as&iacute;  como el contenido porcentual de materia org&aacute;nica por el m&eacute;todo de Walkley-Black  (10).<br />   <br />   <strong>Aislamiento e identificaci&oacute;n de la  presencia de rizobios en la rizosfera y rizoplano de las plantas de arroz</strong></span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="line-height:107%; letter-spacing:.2pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">En el  momento del muestreo, el cultivo se encontraba en la fase vegetativa del  crecimiento y sometido a condiciones de inundaci&oacute;n, fertilizaci&oacute;n y riego seg&uacute;n  lo establecido en el Instructivo T&eacute;cnico del Arroz (1) y no exist&iacute;an  antecedentes de la aplicaci&oacute;n de inoculantes a base de rizobios. Se colectaron  cuatro plantas de arroz en cada uno de los cinco sitios donde se realiz&oacute; el  muestreo de suelo, para un total de 20 plantas. Se extrajeron las plantas  completas, cuidando no da&ntilde;ar el sistema radical y se conservaron a 4&deg;C en bolsas  de polietileno para su posterior procesamiento en el laboratorio.<br />   <br />   </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Para  el aislamiento de rizobios a partir de suelo rizosf&eacute;rico, se tomaron 10 g de  ra&iacute;ces con suelo rizosf&eacute;rico y se colocaron  en Erlenmeyer de 250 mL que conten&iacute;an 100 mL de agua destilada est&eacute;ril.  Los Erlenmeyers se mantuvieron en condiciones de agitaci&oacute;n durante 10 min a 60  r min<sup>-1</sup>. Posteriormente las ra&iacute;ces se extrajeron y a partir de la  suspensi&oacute;n de suelo rizosf&eacute;rico obtenida se realizaron diluciones seriadas en agua destilada est&eacute;ril (10<sup>-1</sup>-10<sup>-6</sup>).  El aislamiento de los rizobios se realiz&oacute; mediante la siembra por  diseminaci&oacute;n de 0,1 mL de las diluciones en placas con medio  levadura-manitol-agar (LMA) (11) con rojo  congo, a pH 6,8. Las placas se incubaron a 29<u style="text-underline:thick;">+</u>1&deg;C  durante diez d&iacute;as (12).<br />   <br />   <span style="letter-spacing:.7pt; ">Para el aislamiento a partir del rizoplano,</span> se tomaron las ra&iacute;ces extra&iacute;das en el  procedimiento anterior y se colocaron nuevamente en frascos Erlenmeyer  de 250 mL que conten&iacute;an 100 mL de agua  destilada est&eacute;ril, los cuales se mantuvieron en condiciones de agitaci&oacute;n durante otros 30 min a 150 r min<sup>-1</sup>.  Las ra&iacute;ces se retiraron nuevamente y se aplic&oacute; a la suspensi&oacute;n obtenida el  mismo procedimiento de aislamiento descrita para el suelo rizosf&eacute;rico.  Paralelamente, las ra&iacute;ces se cortaron en porciones de 1-2 cm con hojas  de bistur&iacute; est&eacute;riles, y posteriormente se colocaron sobre placas que conten&iacute;an  medio Luria-Bertani (13), con el objetivo de permitir el crecimiento de  microorganismos m&aacute;s &iacute;ntimamente adheridos a la  superficie radical. Las placas, en ambos casos, se incubaron a 29<u style="text-underline:thick;">+</u>1&deg;C durante diez d&iacute;as (14).<br />   <br />     Para la purificaci&oacute;n de los posibles aislados de rizobios, se tomaron aquellas  colonias que presentaron caracter&iacute;sticas culturales similares a las descritas  para este grupo microbiano (11). Se realizaron pases sucesivos en medio LMA  hasta obtener cultivos puros. Los aislados se conservaron a 4&deg;C en tubos de  ensayo que conten&iacute;an dicho medio de cultivo.<br />   <br />     Para la selecci&oacute;n de rizobios del conjunto de  aislados bacterianos obtenidos de la rizosfera de las plantas de arroz cultivar  INCA LP-5, se realiz&oacute; una caracterizaci&oacute;n cultural y morfol&oacute;gica. Adem&aacute;s se  tuvo en cuenta el resultado de la prueba de la cetolactasa. Se determin&oacute; la  capacidad de los aislados para producir &aacute;cido/base y se realizaron ensayos de  inoculaci&oacute;n <em>in vitro</em> en plantas de <em>Macroptillium atropurpureum </em>(DC.) Urb. (siratro).<br />   <br />   <strong>Caracterizaci&oacute;n cultural y morfol&oacute;gica  de los aislados bacterianos<br />   <br />   </strong>La pureza de los cultivos bacterianos,  as&iacute; como sus caracter&iacute;sticas tintoriales y la morfolog&iacute;a de las c&eacute;lulas se observ&oacute; mediante la Tinci&oacute;n de Gram (15). Las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas celulares que se  estudiaron fueron, forma de la c&eacute;lula  bacteriana, respuesta a la tinci&oacute;n de Gram y la presencia de esporas.<br />   <br />     Para la determinaci&oacute;n de las caracter&iacute;sticas culturales, los aislados se  cultivaron por agotamiento en medio LMA con rojo congo, a pH 6,8. Se incubaron  durante diez d&iacute;as a 29<u style="text-underline:thick;">+</u>1&deg;C y se determin&oacute;,  mediante microscop&iacute;a estereosc&oacute;pica: color, producci&oacute;n de mucus y di&aacute;metro (mm)  de las colonias (16). Adem&aacute;s se determin&oacute; la tasa de crecimiento de cada  aislado, monitoreando la aparici&oacute;n o no de las colonias en las placas cada 24 h durante diez d&iacute;as de incubaci&oacute;n.  Los aislados cuyas colonias se hicieran visibles en el medio a los 2-3 d&iacute;as de  incubaci&oacute;n, se consideraron de r&aacute;pido crecimiento; las que aparec&iacute;an a partir  de los <span style="letter-spacing:-.3pt; ">4-5 d&iacute;as, se consideraron de  crecimiento moderado y aquellas que se observaban a partir de los siete d&iacute;as,</span> se clasificaron como microorganismos de crecimiento lento (11).<br />   <br />   <strong>Ensayo de la cetolactasa</strong></span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="line-height:107%; letter-spacing:.6pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Los  aislados se cultivaron en medio </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Levadura-Lactosa-Agar  (LLA) (17) e incubados</span><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.1pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> a 29<u style="text-underline:thick;">+</u>1&deg;C durante tres, cinco y siete d&iacute;as, de  acuerdo </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">con su tasa de crecimiento. Posteriormente,</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> se a&ntilde;adieron 10 mL del reactivo de Benedict sobre el </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">crecimiento bacteriano y se mantuvo por 10 min,</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> para observar posible cambio de coloraci&oacute;n del medio.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Producci&oacute;n  de &aacute;cido y base<br />   <br />   </span></strong><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.3pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Los aislados bacterianos se cultivaron en medio LMA </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">a  pH 6,8 con indicador azul de bromotimol. A los siete d&iacute;as de incubaci&oacute;n a 29<u style="text-underline:thick;">+</u>1&deg;C se observ&oacute;  cambio de coloraci&oacute;n en el medio de cultivo durante el establecimiento  de las colonias bacterianas sobre el mismo.<br />   <br />   <strong>Ensayo de inoculaci&oacute;n <em>in vitro</em> en plantas de siratro<br />   <br />   </strong>Se prepararon inoculantes de cada uno de los aislados bacterianos, para lo  cual se utilizaron Erlenmeyers de 20 mL con  5 mL de medio l&iacute;quido LM (levadura manitol) a pH 6,8. Se inocularon con una asada de los microorganismos conservados a 4&deg;C  en medio s&oacute;lido. Los frascos se mantuvieron en condiciones de agitaci&oacute;n  en zaranda orbital a 150 r min<sup>-1 </sup>durante 18-20 h a 29<u style="text-underline:thick;">+</u>1&deg;C.<br />   <br />     La identidad de los rizobios se confirm&oacute; mediante su capacidad de nodular la  leguminosa siratro, tradicionalmente utilizada como planta modelo para este  tipo de estudios (18). Las semillas de esta leguminosa se donaron por la  Estaci&oacute;n Experimental de Pastos y Forrajes de Cascajal, provincia Villa Clara.<br />   <br />     Para la descarificaci&oacute;n de las semillas se  mantuvieron en etanol al 70 % durante cinco minutos, posteriormente se  lavaron con agua destilada y se sometieron a un tratamiento con &aacute;cido sulf&uacute;rico  concentrado durante 10 min. Luego se sumergieron en hipoclorito de sodio al 25  % (v/v) durante 15 minutos y se lavaron seis veces con agua destilada est&eacute;ril.  Seguidamente, las semillas se colocaron en placas con Agar-Agua (0,75 g de agar  en 100 mL de agua destilada) e incubadas a  29<u style="text-underline:thick;">+</u>1&deg;C en la oscuridad durante 24 h.  Las semillas germinadas con ra&iacute;ces de  aproximadamente 1-2 cm de largo se colocaron en frascos de 200 mL que conten&iacute;an  50 mL de medio Norris y Date semis&oacute;lido (15), a raz&oacute;n de una semilla por frasco. Posteriormente, las semillas  se inocularon con 0,5 mL de in&oacute;culo de los diferentes aislados a una  concentraci&oacute;n de 10<sup>8 </sup>UFC mL<sup>-1</sup>.<br />   <br />     Las plantas crecieron en condiciones controladas, con un fotoper&iacute;odo de 12 h luz/12  h oscuridad, a una temperatura d&iacute;a/noche de 26/22&deg;C y humedad relativa del 70 %. Cinco semanas despu&eacute;s, se determin&oacute;  el n&uacute;mero de n&oacute;dulos en la ra&iacute;z principal; n&uacute;mero total de n&oacute;dulos; la  efectividad de los n&oacute;dulos y la efectividad de la nodulaci&oacute;n (EN) seg&uacute;n la  <a href="#e1">expresi&oacute;n</a>:</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:center;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "><a name="e1" id="e1"></a><br />   <img src="/img/revistas/ctr/v38n1/e0105117.gif" width="226" height="72" />  </span></p>     
<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">  donde: NNt y NNte son los valores absolutos del n&uacute;mero de n&oacute;dulos totales y  n&uacute;mero de n&oacute;dulos totales efectivos,  respectivamente. Se determin&oacute;, adem&aacute;s, la masa seca de las ra&iacute;ces de las  plantas (g).<br />   <br />   La efectividad de los n&oacute;dulos se determin&oacute; mediante el m&eacute;todo visual, lo cual  se realiz&oacute; mediante la disecci&oacute;n de los n&oacute;dulos con hojas de bistur&iacute; de acero  inoxidable, detectando o no la presencia de una coloraci&oacute;n rojiza en el  interior de los n&oacute;dulos, caracter&iacute;stico de la prote&iacute;na leghemoglobina (19).<br />   <br />   Se emple&oacute; un dise&ntilde;o completamente aleatorizado, utilizando siete repeticiones  por tratamiento. Se utiliz&oacute; un tratamiento control, sin inocular. Los  resultados procedentes de las variables: n&uacute;mero de n&oacute;dulos en la ra&iacute;z principal  y total, as&iacute; como el n&uacute;mero de n&oacute;dulos efectivos en cada caso, fueron sometidos  a an&aacute;lisis no param&eacute;tricos de Kruskal Wallis. En caso de determinar diferencias  significativas entre tratamientos, se realiz&oacute; la prueba de Mann Witney para establecer diferencias entre los rangos  promedios de las variables en cada uno de los tratamientos establecidos (20).  La variable EN no se someti&oacute; a an&aacute;lisis estad&iacute;stico pues es resultante  de los valores absolutos de la nodulaci&oacute;n efectiva total y la nodulaci&oacute;n total  en cada uno de los tratamientos.<br />   <br />   Los datos procedentes de la masa seca radical de las plantas de siratro se  sometieron a la prueba de normalidad (test de Bartlett) y homogeneidad de  varianza (test de Kormogorov-Smirnov) (21). Posteriormente se aplic&oacute; an&aacute;lisis  de varianza de clasificaci&oacute;n simple, utilizando el test de comparaci&oacute;n de  medias de Tukey para p&lt;0,05 (22); con el objetivo de determinar diferencias  entre las medias (20). Estos datos se graficaron con el programa SigmaPlot  2001.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">RESULTADOS  Y DISCUSI&Oacute;N</span></strong></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">El suelo Gley Nodular  Ferruginoso Petrof&eacute;rrico de la UCTB Los Palacios, Pinar del Rio, se caracteriz&oacute;  por presentar un pH cercano a la neutralidad. El contenido de materia org&aacute;nica  y los niveles de f&oacute;sforo disponibles resultaron ser altos. Sin embargo, seg&uacute;n  el Manual de la Direcci&oacute;n General de Suelos y Fertilizantes (23), este suelo  presenta un bajo contenido de calcio (Ca<sup>2+</sup>), magnesio (Mg<sup>2+</sup>),  sodio (Na<sup>+</sup>) y potasio (K<sup>+</sup>) (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/t0105117.gif">Tabla </a></span><a href="/img/revistas/ctr/v38n1/t0105117.gif"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">I</span></a><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">).<br />     
  <br />       El valor de pH en el suelo (6,87), propicia el establecimiento de los rizobios,  los cuales requieren valores muy similares para su multiplicaci&oacute;n (24). Aunque  no es determinante, el establecimiento del cultivo del arroz resulta &oacute;ptimo a pH cercano a la neutralidad (1). El pH del suelo de esta localidad afectar&iacute;a  positivamente el establecimiento del cultivo y de los rizobios, as&iacute; como la  interacci&oacute;n entre ambos organismos.<br />       <br />       Los contenidos de calcio, magnesio,  sodio y potasio en este suelo son bajos, lo que pudiera afectar negativamente la multiplicaci&oacute;n de los rizobios. Sin embargo, los altos contenidos de  f&oacute;sforo y de materia org&aacute;nica que posee, propician la proliferaci&oacute;n de estas  bacterias y el establecimiento y desarrollo de las plantas de arroz. La materia org&aacute;nica condiciona, en gran  medida, la distribuci&oacute;n de los principales grupos microbianos en el suelo y potencia su crecimiento en  aquellas zonas donde existe una mayor disponibilidad de los nutrientes (25).<br />       <br />       En el momento del muestreo, las plantas de arroz cultivar INCA LP-5 se  encontraban en condiciones de inundaci&oacute;n, propiciada por el riego al que estuvo  sometido el cultivo y por las caracter&iacute;sticas descritas con anterioridad para  este tipo de suelo. Se plantea que el suelo de la UCTB Los Palacios clasifica  como Hidrom&oacute;rfico Gley Nodular Ferruginoso Petrof&eacute;rrico, de textura fina, con  un gran contenido de arcillas y de poco drenaje (26).<br />       <br />       Una relaci&oacute;n directamente proporcional entre el contenido de humedad del  suelo y la distancia recorrida por <em>Azospirillum</em> se describi&oacute; con anterioridad (27). Esto sugiere que la elevada humedad  presente en el suelo muestreado a las que estaban sometidas las plantas de  arroz cultivar INCA LP-5, pudiera haber favorecido el movimiento de bacterias  flageladas como los rizobios hacia las ra&iacute;ces.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  El proceso de aislamiento de rizobios de la rizosfera de las plantas de arroz  cultivar INCA LP-5 se realiz&oacute; tomando como criterio primario las  caracter&iacute;sticas culturales de las colonias descritas para el grupo de los  rizobios (15). En el medio LMA, las cepas de crecimiento r&aacute;pido originan colonias  mucosas de 1 a 5 mm luego de 3 a 5  d&iacute;as de incubaci&oacute;n, mientras que en las de crecimiento  lento, con una superficie m&aacute;s seca, las colonias no exceden un di&aacute;metro  de 1 mm en un per&iacute;odo de diez d&iacute;as (15).<br />       <br />       Para la selecci&oacute;n de las colonias t&iacute;picas de rizobios, otro elemento esencial  fue la falta de absorci&oacute;n del rojo congo, pues generalmente los cultivos  j&oacute;venes de estos microorganismos forman colonias transl&uacute;cidas, blanquecinas o  ligeramente rosadas en el centro (28). Teniendo en cuenta lo anterior, se  aislaron 78 colonias que reun&iacute;an las caracter&iacute;sticas de tama&ntilde;o y mucosidad t&iacute;picas de los rizobios, pues se  observaron como colonias grandes (2-4 mm) y mucosas, a los 2-3 d&iacute;as; excepto  un aislado en el cual se visualizaron colonias secas de 1-2 mm de di&aacute;metro a  los 4-5 d&iacute;as de incubaci&oacute;n.<br />       <br />       El 44,87 % de las 78 colonias bacterianas se obtuvieron a partir de las  muestras de suelo rizosf&eacute;rico, mientras que el 55,13 % restante, se encontraron  en el rizoplano de las plantas de arroz. De este &uacute;ltimo grupo, el 90 % de los  aislados se detectaron ligeramente adheridos al rizoplano, ya que se obtuvieron  en las diluciones seriadas que se realizaron con las ra&iacute;ces de las plantas. El  10 % restante, se identific&oacute; sobre el tejido epitelial, observ&aacute;ndose como una  pel&iacute;cula fina, mucosa y blanquecina que cubr&iacute;a las ra&iacute;ces a los cinco d&iacute;as de  haberlas colocado sobre el medio Luria-Bertani. <br />       <br />       La tinci&oacute;n de Gram se emple&oacute; como segundo criterio de clasificaci&oacute;n. Los  resultados de esta determinaci&oacute;n permitieron agrupar a los 78 aislados en siete  grupos, considerando las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas de las c&eacute;lulas  bacterianas, as&iacute; como la respuesta a la Tinci&oacute;n de Gram (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/t0205117.gif">Tabla II</a>).<br />     
  <br />         La caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica y tintorial  permiti&oacute; identificar tres tipos morfol&oacute;gicos de c&eacute;lulas: uno cocobacilar  (predominante) y otros dos donde las c&eacute;lulas presentaban forma de cocos o  bacilos. La mayor parte de los aislados rizosf&eacute;ricos (42,3 %) correspondieron a  cocobacilos esporulados, Gram negativos; mientras que el grupo menos  representativo (1,28 %) estuvo conformado por bacilos esporulados Gram  negativos.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[    La tinci&oacute;n de Gram permiti&oacute; observar  una gran diversidad en las c&eacute;lulas bacterianas en la rizosfera de las plantas  de arroz cultivar INCA LP-5. El alto contenido de materia org&aacute;nica y de f&oacute;sforo  presente en el suelo de las &aacute;reas arroceras de la UCTB Los Palacios,  pudiera estar favoreciendo el establecimiento de la diversidad bacteriana que  se observ&oacute; en esta investigaci&oacute;n.<br />       <br />         Los rizobios se han descrito como bacilos finos, Gram negativos, no esporulados (17). Estas caracter&iacute;sticas son similares  a las que se observaron en el 17,95 % de los aislados bacterianos (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/t0205117.gif">Tabla II</a>, grupo 3); ya que se <span style="letter-spacing:.6pt; ">observaron como cocobacilos o bacilos finos,</span> con extremos redondeados y en ocasiones afinados, no esporulados y con  respuesta negativa a la tinci&oacute;n de Gram. Este porcentaje corresponde con  catorce aislados, de los cuales el 21,43 % (cuatro aislados) se obtuvieron del  suelo rizosf&eacute;rico y el 78,57 % (once aislados) se obtuvieron a partir del  rizoplano (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/t0305117.gif">Tabla III</a>).<br />     
  <br />         Todos los aislados que se estudiaron produjeron colonias semitransl&uacute;cidas en el  medio LMA (pH 6,8); sin embargo, se observ&oacute; una diversidad de coloraciones  tenues hacia el centro de las colonias, sobre todo en aquellos aislados  provenientes del suelo rizosf&eacute;rico de las plantas de arroz. Resultados  alcanzados por otros autores difieren a los obtenidos en esta investigaci&oacute;n, ya  que obtuvieron colonias blanquecinas en el 100 % de los aislados de rizobios  que se estudiaron (29).<br />       <br />         Se realiz&oacute; la prueba de la cetolactasa, con el objetivo de diferenciar los  aislados en estudio&nbsp; del g&eacute;nero <em>Agrobacterium</em> ya que ambos grupos presentan caracter&iacute;sticas culturales y morfol&oacute;gicas  similares. Por otra parte, el g&eacute;nero <em>Agrobacterium</em> se estudia usualmente  por su capacidad de producir agallas o tumores en las ra&iacute;ces y tallo de las  plantas, estructura muy similar a los n&oacute;dulos que forman los rizobios en las  plantas leguminosas (30).<br />       <br />         La prueba de la cetolactasa, permite observar  la capacidad de <em>Agrobacterium</em> (no en los g&eacute;neros de la familia<em> Rhizobiaceae</em>) para reducir el &oacute;xido de cobre I (Cu<sub>2</sub>O) presente en el reactivo de B&eacute;nedict que se emplea en esta prueba (31). En este trabajo todos los aislados seleccionados  como posibles rizobios, por sus  caracter&iacute;sticas culturales y morfol&oacute;gicas, resultaron cetolactasa negativos. Esta respuesta corrobora la posible ubicaci&oacute;n  taxon&oacute;mica de los aislados en estudio como rizobios (32). Al determinar la  capacidad de producir &aacute;cido o base en medio LMA con azul de bromotimol, se  observ&oacute; en todos los casos un cambio de coloraci&oacute;n de verde a amarillo  alrededor del crecimiento bacteriano, lo cual indica la capacidad de estos  microorganismos para producir &aacute;cido.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[    Los &aacute;cidos org&aacute;nicos que se producen  por los microorganismos rizosf&eacute;ricos incrementan la disponibilidad de  micronutrientes como el f&oacute;sforo, el hierro, el zinc y el manganeso en el suelo,  al disminuir el pH en la rizosfera, o  por la quelaci&oacute;n de estos micronutrientes. La detoxificaci&oacute;n de metales en el suelo se ha informado como otra  de las funciones que realizan los &aacute;cidos org&aacute;nicos que escretan por  estos microorganismos (33).<br />       <br />         Los estudios de la producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos por los rizobios mayormente  se enfocan a la promoci&oacute;n del crecimiento vegetal, como por ejemplo el &aacute;cido  3-indolac&eacute;tico (AIA) y aquellos que se relacionan con la solubilizaci&oacute;n de  fosfatos en los suelos (34, 35).<br />       <br />         La tasa de crecimiento de los rizobios es  uno de los aspectos a tener en cuenta durante los estudios taxon&oacute;micos, ya que  su capacidad de multiplicarse r&aacute;pida, moderada  o lentamente en el medio de cultivo, es una caracter&iacute;stica fenot&iacute;pica muy  relacionada al g&eacute;nero al cual pertenecen las especies de este grupo bacteriano  (28).<br />       <br />         El estudio de la tasa de crecimiento  de los diferentes aislados sobre el  medio LMA a pH 6,8 permiti&oacute; detectar un crecimiento r&aacute;pido en la mayor&iacute;a de los aislados, ya que pudo  constatarse al menos una colonia de estos microorganismos sobre el medio  de cultivo a las 48 horas de incubaci&oacute;n. El aislado Rf7, a diferencia del  resto, present&oacute; un crecimiento moderado pues sus colonias se comenzaron a  visualizar a partir del cuarto-quinto d&iacute;a de incubaci&oacute;n (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/t0305117.gif">Tabla III</a>).<br />     
  <br />         S&oacute;lo el 8 al 20 % de la superficie de las  ra&iacute;ces se coloniza por las bacterias. En las zonas de mayor exudaci&oacute;n se  observa un mayor establecimiento microbiano (36). Una mayor efectividad en la  colonizaci&oacute;n de la rizosfera por ciertos microorganismos se debe, entre otros  factores, a su r&aacute;pida multiplicaci&oacute;n. Esta capacidad les permite utilizar una  gran cantidad y diversidad de nutrientes presentes en los exudados radicales  como amino&aacute;cidos, &aacute;cidos org&aacute;nicos, az&uacute;cares, vitaminas, enzimas, iones  inorg&aacute;nicos y mol&eacute;culas gaseosas como fuentes de carbono, ox&iacute;geno, nitr&oacute;geno,  f&oacute;sforo y azufre (37).<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[    La capacidad de producir n&oacute;dulos como parte de la simbiosis  rizobio-leguminosa, constituye una de las premisas a tener en cuenta para la  ubicaci&oacute;n taxon&oacute;mica de una rizobacteria en el grupo de los rizobios (8).  Siratro constituye una planta modelo para evaluar la capacidad de infecci&oacute;n y  la efectividad de la nodulaci&oacute;n de aislados de bacterias bajo condiciones  controladas. Esta planta se utiliza en investigaciones de este tipo, pues  responde como hospedero a un amplio espectro de cepas de rizobios provenientes  de una gran diversidad de leguminosas (38).<br />       <br />         El ensayo de inoculaci&oacute;n <em>in vitro</em> en  las plantas de siratro permiti&oacute; observar que todos, excepto Rf13, Rf33 y Rpd10, produjeron n&oacute;dulos efectivos en las ra&iacute;ces  de estas plantas (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/t0305117.gif">Tabla III</a>). El ensayo permiti&oacute; concluir que 11 aislados  bacterianos provenientes del suelo rizosf&eacute;rico y del rizoplano de plantas de arroz INCA LP-5, pertenecen al grupo  de los rizobios. Estos resultados constituyen la primera evidencia en Cuba de la interacci&oacute;n de bacterias del grupo de los rizobios con el cultivo  del arroz.<br />     
  <br />         Los resultados que se obtuvieron en esta investigaci&oacute;n fueron similares a los  que se encontraron en los primeros estudios sobre la interacci&oacute;n de los  rizobios con el cultivo del arroz (39). En estas investigaciones se demostr&oacute;, a  trav&eacute;s de bioensayos con las leguminosas tr&eacute;bol blanco (<em>Trifolium repens</em> var. Dutch) y alfalfa (<em>Medicago sativa</em> var. Gemini), que eran rizobios los end&oacute;fitos que se encontraron en las  plantas de arroz. Estos microorganismos produjeron n&oacute;dulos en dichas  leguminosas.<br />       <br />         Los avances en t&eacute;cnicas moleculares han permitido realizar una reubicaci&oacute;n  gen&eacute;rica de especies bacterianas dentro del grupo de los rizobios, teniendo en  cuenta su capacidad de realizar la FBN y de formar n&oacute;dulos radiculares en las  plantas leguminosas. Actualmente 14 g&eacute;neros bacterianos  conforman al grupo de los rizobios,de ellos 11 son <em>Rhizobium,  Mesorhizobium, Ensifer, Bradyrhizobium, Phyllobacterium, Microvirga,  Azorhizobium, Ochrobactrum, Methylobacterium, Devosia y Shinella</em>, en la  clase alfa-proteobacterias; dos: <em>Burkholderia</em> y <em>Cupriavidus</em>,  dentro de la clase beta-proteobacterias y el g&eacute;nero<em> Pseudomonas</em> en la  clase gamma-proteobacterias (5).<br />       <br />         A pesar de que la caracterizaci&oacute;n que se realiz&oacute; en es te trabajo no es suficiente  para ubicar taxon&oacute;micamente a los aislados de rizobios, en todos ellos; con  excepci&oacute;n de Rf7, se identificaron aspectos <span style="letter-spacing:1.0pt; ">fenot&iacute;picos  de la familia <em>Rhizobiaceae</em> (40).</span> La formaci&oacute;n de n&oacute;dulos  efectivos en la FBN, la produci&oacute;n de &aacute;cido y r&aacute;pido crecimiento en medio LMA,  permitir&iacute;a clasificarlos dentro de los g&eacute;neros <em>Rhizobium, Ensifer</em> o <em>Shinella,</em> de la familia <em>Rhizobiaceae</em>.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[    El aislado Rf7, que tambi&eacute;n induce la  formaci&oacute;n de n&oacute;dulos, produce &aacute;cido y presenta una tasa de crecimiento moderada  pudiera ubicarse dentro del g&eacute;nero <em>Mesorhizobium,</em> en la familia <em>Phyllobacteriaceae</em> (41, 42).<br />       <br />         La determinaci&oacute;n de la presencia de 11 aislados de rizobios en la  rizosfera de las plantas de arroz cultivar INCA LP-5, resultados que se  muestran en esta investigaci&oacute;n, constituye la primera evidencia documentada en  Cuba sobre la interacci&oacute;n de rizobio-arroz. La implementaci&oacute;n de estos  resultados en la investigaci&oacute;n b&aacute;sica y en la elaboraci&oacute;n de bioproductos para  el cultivo del arroz, abre nuevas puertas al conocimiento de esta interacci&oacute;n  en el pa&iacute;s.<br />       <br />         El aislamiento de rizobios de la rizosfera de plantas de arroz cultivar INCA  LP-5 que se realiz&oacute; en este trabajo, permiti&oacute; identificar una mayor cantidad y  diversidad de estos microorganismos en el rizoplano que en el suelo rizosf&eacute;rico  de estas plantas (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/t0305117.gif">Tabla III</a>).  El rizoplano es la zona de la rizosfera m&aacute;s influenciada por los exudados  radicales y donde la concentraci&oacute;n de estos  compuestos es m&aacute;xima, pues una vez en el suelo, los exudados se van dispersando  (43). La presencia de altas concentraciones de nutrientes en el  rizoplano, lo convierte en una zona atractiva para la colonizaci&oacute;n microbiana.  Esto pudiera explicar el qie se encontrara mayor n&uacute;mero y diversidad de rizobios  en el rizoplano respecto al suelo risof&eacute;rico.<br />     
  <br />         Los exudados radicales establecen un ambiente selectivo en la rizosfera, de  manera que propician la colonizaci&oacute;n de ciertos microorganismos y desfavorecen  el desarrollo de otros (38). Diferencias en los requerimientos nutricionales de  los microorganismos en la rizosfera, as&iacute; como sus respuestas quimiot&aacute;cticas,  cobran vital importancia en la especificidad entre las plantas y los  microorganismos (44).<br />       <br />         Diferencias en la movilidad de cada aislado de rizobio, su respuesta  quimiot&aacute;ctica a los exudados radicales, el efecto selectivo que ejerce la  especificidad de estos compuestos, as&iacute; como las caracter&iacute;sticas genot&iacute;picas y  fisiol&oacute;gicas intr&iacute;nsecas del cultivar de arroz INCA LP-5, pudieran haber  influido en la localizaci&oacute;n de los rizobios en la rizosfera de las plantas  estudiadas.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[    En esta investigaci&oacute;n adem&aacute;s, se pudo constatar diferencias entre los aislados  de rizobios que se obtuvieron del rizoplano de las plantas, teniendo en cuenta  su capacidad para adherirse a la superficie radical. Un grupo de estos aislados  se caracteriz&oacute; por adherirse m&aacute;s estrechamente a las c&eacute;lulas epid&eacute;rmicas de la  ra&iacute;z y otro mantuvo una relaci&oacute;n menos estrecha con la superficie radical  (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/t0305117.gif">Tabla III</a>). Cuatro de los aislados  de rizobios (Rpr1, Rpr2, Rpr3 y Rpr11) se encontraron fuertemente unidos a la superficie  radical. Se ha documentado la capacidad de los rizobios para la formaci&oacute;n de  biopel&iacute;culas sobre el rizoplano, mecanismo mediante el cual logra mantener una  estrecha relaci&oacute;n con los exudados de las ra&iacute;ces de las plantas (45).<br />     
  <br />         Estudios gen&oacute;micos han aportado elementos importantes que explican los  mecanismos involucrados en la expresi&oacute;n de los genes de RapA1. Esta prote&iacute;na  tiene una importancia crucial en la uni&oacute;n de los rizobios al rizoplano y en la  formaci&oacute;n de las biopel&iacute;culas en las ra&iacute;ces de las plantas (39). La presencia  de flagelos en los rizobios, as&iacute; como la producci&oacute;n de exopolisac&aacute;ridos,  tambi&eacute;n tienen una funci&oacute;n importante en la  formaci&oacute;n de estas asociaciones, ya que mutaciones en genes relacionados  con la s&iacute;ntesis de estos componentes afectan la estabilidad de las biopel&iacute;culas  (40).<br />       <br />         El efecto de la inoculaci&oacute;n de los 11 aislados que produjeron n&oacute;dulos efectivos  en las plantas de siratro y que se consideran rizobios se muestra en la <a href="/img/revistas/ctr/v38n1/t0405117.gif">Tabla IV</a>.</span></p>     
<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">En las plantas que se  inocularon con el aislado Rpr11 se observaron los mejores resultados en el  n&uacute;mero de n&oacute;dulos. Se observaron diferencias  significativas entre Rpr11 y el resto  de los aislados, excepto con Rpr3 en el n&uacute;mero de n&oacute;dulos totales. Ambos  aislados, adem&aacute;s, mostraron los mayores porcentajes de EN.<br />   <br />   Adem&aacute;s de los aislados mencionados anteriormente,  se destacaron Rpr1 y Rpr2, que superaron al resto en las variables  n&uacute;mero de n&oacute;dulos totales, n&uacute;mero de n&oacute;dulos totales efectivos y en la  efectividad del proceso.<br />   <br />   La abundante nodulaci&oacute;n en las plantas de siratro que se inocularon con Rpr1, Rpr2, Rpr3 y  Rpr11,microorganismos que se  encontraron fuertemente adheridos a la superficie radical, permite sugerir la  presencia de mecanismos en estos microorganismos que les permite colonizar m&aacute;s  efectivamente diferentes puntos de la ra&iacute;z e invadir los pelos radicales de las  plantas de siratro. Ambas fases constituyen las primeras etapas de la formaci&oacute;n  de los n&oacute;dulos (46, 47).<br />   <br />   Los n&oacute;dulos que se ubican sobre la  ra&iacute;z principal poseen una mayor efectividad en el aporte de nitr&oacute;geno fijado,  lo cual se traduce en un incremento en el desarrollo foliar y los rendimientos  del cultivo. La cercan&iacute;a de estas estructuras a los vasos conductores hace que  el microsimbionte tenga un mayor acceso a los fotosintatos, y la planta al  nitr&oacute;geno proveniente de la FBN que realizan los rizobios (48).<br />   <br />   El amonio que se produce durante la  fijaci&oacute;n del nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico por las c&eacute;lulas de rizobios se emplea por la  leguminosa para la s&iacute;ntesis de amino&aacute;cidos, enzimas y prote&iacute;nas  estructurales (49). La disecci&oacute;n de los  n&oacute;dulos presentes en las ra&iacute;ces de las plantas de siratro permiti&oacute; observar que  todos los aislados bacterianos produjeron n&oacute;dulos efectivos, ya que se observ&oacute;  una coloraci&oacute;n rojiza en el interior de estas estructuras, caracter&iacute;stica de la  presencia de la leghemoglobina. Esta prote&iacute;na constituye un indicador de la  efectividad de los n&oacute;dulos para realizar el proceso de fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno y  del establecimiento exitoso de la simbiosis rizobio-leguminosa (20). La  presencia de un gran n&uacute;mero de n&oacute;dulos en la ra&iacute;z principal de las plantas de  siratro inoculadas con Rpr11, muchos de los cuales fueron efectivos en la FBN,  pudiera explicar el efecto positivo de este aislado sobre la masa seca de las  ra&iacute;ces de las plantas (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0105117.gif">Figura</a>).<br />   <br />   El n&uacute;mero y efectividad de los n&oacute;dulos de las plantas que se inocularon  con Rpr3 super&oacute; a aquellas donde se emple&oacute; Rpr2. Sin embargo, este  microorganismo produjo un mayor efecto en el crecimiento radical. El  comportamiento pudiera deberse a una mayor actividad de la enzima nitrogenasa  en Rpr2. Este aislado producir&iacute;a entonces mayores niveles de amonio que Rpr3,  traduci&eacute;ndose en un incremento del crecimiento radical de las plantas de  siratro. Resultados similares se encontraron  en soya, pues se observaron incrementos de la altura de las plantas ante un  aumento de la actividad de la enzima nitrogenasa (50).<br />   <br />   Los aislados que produjeron el mayor n&uacute;mero de n&oacute;dulos en las ra&iacute;ces de las  plantas (Rpr1, Rpr2, Rpr3 y Rpr11) coincidieron con aquellos que presentaron  los porcentajes de EN m&aacute;s elevados, y en el caso de Rpr11 tambi&eacute;n con un efecto  superior en la masa seca radical. Con este ensayo se confirma la pertenencia de  estos aislados al grupo de los rizobios y se destacan algunos en su capacidad  de nodular plantas de siratro.</span></p>     
<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">CONCLUSIONES</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Las  caracter&iacute;sticas del suelo Gley Nodular Ferruginoso Petrof&eacute;rrico de la UCTB Los  Palacios, Pinar del R&iacute;o propiciaron la proliferaci&oacute;n de poblaciones de rizobios  en la rizosfera de plantas de arroz cultivar INCA LP-5. E</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">sta investigaci&oacute;n permiti&oacute; contar con nuevos aislados de  rizobios que defirieron en el nivel de interacci&oacute;n que establecieron en la  rizosfera de las plantas de arroz y en su efectividad en la nodulaci&oacute;n de  siratro.</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Estos hallazgo  constituyen la primera evidencia en Cuba donde se aborda la interacci&oacute;n de los  rizobios con el cultivo del arroz.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; letter-spacing:.2pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">NOTAS AL PIE</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><sup><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "><a href="#nA1">A</a></span></sup><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "><a name="nA" id="nA"></a>Consejo  Internacional de cereales. <em>Informe de Mercado de Cereales</em>. Resumen de las  perspectivas para cereales y oleaginosas clave, Inst. Consejo Internacional de  cereales, 2015, 8 p.<br />   <br />   <sup><a href="#nB1">B</a><a name="nB" id="nB"></a></sup>FAO y IAEA. <em>Programme. Rice production: what Cuba can teach the world? Nuclear  Techniques in Food and Agriculture. Inst</em>. FAO, 2014, Austria, 1 p.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">BIBLIOGRAF&Iacute;A</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">1. MINAGRI. <em>Instructivo  T&eacute;cnico del Arroz</em>. Ed. Centro Nacional de Sanidad Vegetal, Instituto de  Investigaciones del Arroz, 2005, Cuba, 22 p., ISBN 959-246-037-X.<br />       <br />       2. Biau, A.; Santiveri, F.;  Mijangos, I. y Lloveras, J. &ldquo;The impact of organic and mineral fertilizers on  soil quality parameters and the productivity of irrigated maize crops in semiarid  regions&rdquo;. <em>European Journal of Soil Biology</em>, vol. 53, 2012, pp. 56-61,  ISSN 1164-5563, DOI 10.1016/j.ejsobi.2012.08.008.<br />       <br />         3. Mehnaz, S. &ldquo;Azospirillum: A Biofertilizer for Every Crop&rdquo; [en l&iacute;nea]. En:  ed. Kumar N. A., <em>Plant Microbes Symbiosis</em>: Applied Facets, Ed. Springer  India, New Delhi, 2015, pp. 297-314, ISBN 978-81-322-2067-1,  [Consultado: 16 de noviembre de 2016], Disponible en:  &lt;<a href="http://link.springer.com/10.1007/978-81-322-2068-8_15" target="_blank">http://link.springer.com/10.1007/978-81-322-2068-8_15</a>&gt;.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  <span style="letter-spacing:-.25pt; ">4. Hern&aacute;ndez, R. A.; Rives, R. N.; Acebo,  G. Y.; D&iacute;az, de la O. A.; Heydrich, P. M. y Divan, B. V. L. &ldquo;Potencialidades de  las bacterias diazotr&oacute;ficas asociativas en la promoci&oacute;n del crecimiento vegetal  y el control de <em>Pyricularia oryzae</em> (Sacc.) en el cultivo del arroz (<em>Oryza  sativa</em> L.)&rdquo;. <em>Revista de Protecci&oacute;n Vegetal</em>, vol. 29, no. 1, 2014, pp.  1-10, ISSN 1010-2752.<br />       <br />       </span>5. Berrada, H. y  Fikri-Benbrahim, K. &ldquo;Taxonomy of the Rhizobia: Current Perspectives&rdquo;. <em>British  Microbiology Research Journal</em>, vol. 4, no. 6, 2014, pp. 616-639, ISSN  2231-0886, DOI 10.9734/BMRJ/2014/5635.<br />       <br />         6. Chen, C. y Zhu, H. &ldquo;Are common symbiosis genes required for endophytic  rice-rhizobial interactions?&rdquo;. </span><em><span style="line-height:107%; letter-spacing:.35pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Plant  Signaling &amp; Behavior</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">, vol. 8, no. 9,  2013, ISSN 1559-2324, DOI 10.4161/psb.25453, [Consultado: 16 de noviembre de 2016],  Disponible en: &lt;<a href="http://www.tandfonline.com/doi/abs/10.4161/psb.25453" target="_blank">http://www.tandfonline.com/doi/abs/10.4161/psb.25453</a>&gt;.<br />       <br />       7. Mia, M.  A. B.; Shamsuddin, Z. H. y Mahmood, M. &ldquo;Effects of rhizobia and plant growth  promoting bacteria inoculation on germination and seedling vigor of lowland  rice&rdquo;. <em>African </em></span><em><span style="line-height:107%; letter-spacing:.65pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Journal of Biotechnology</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">, vol. 11, no. 16, 2012, pp. 3758&ndash;3765, ISSN 1684-5315,  DOI 10.5897/AJB09.1337.<br />       <br />       </span><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.35pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">8. Hasan,  M.; Bano, A.; Hassan, S. G.; Iqbal, J.; Awan, U.; Rong-ji, D. y Khan, K. A.  &ldquo;Enhancement of rice growth and production of growth-promoting phytohormones by  inoculation with <em>Rhizobium</em> and other rhizobacteria&rdquo;. <em>World Applied Sciences  Journal</em>, vol. 31, no. 10, 2014, pp. 1734-1743, ISSN 1818-4952, DOI  10.5829/idosi.wasj.2014.31.10.364.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">9.  Oniani, O. G. &ldquo;Determinaci&oacute;n del f&oacute;sforo y potasio del suelo en una misma  soluci&oacute;n de los suelos Krasnozen y Pods&oacute;licos en Georgia&rdquo;. </span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Agrojima</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">, vol. 6, 1964, p. 25.<br />       <br />         10. Walkley, A. y Black, I. A. &ldquo;An examination of the Degtjareff method for  determining soil organic matter, and a proposed modification of the chromic  acid titration method.&rdquo;<em>Soil Science</em>, vol. 37, no. 1, 1934, pp. 29&ndash;38,  ISSN 0038-075X, 1538-9243.<br />       <br />       11. Wang, T.; Romero-Mart&iacute;nez, J. y L&oacute;pez-Lara, I.  &ldquo;<em>Rhizobium</em> y su destacada simbiosis con plantas&rdquo;. En: <em>Microbiolog&iacute;a en  l&iacute;nea,</em> Ed. Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, M&eacute;xico, 2001, pp.  344-386, ISBN 978-968-36-8879-8.<br />       <br />       12. Vincent,  J. M. <em>A manual for the practical study of root-</em></span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">nodule bacteria</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">. (ser. IBP  Handbook, no. ser. 15),</span><span style="line-height:107%; letter-spacing:.25pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> Ed. International Biological Programme, 1970, Oxford, 164 p., ISBN  978-0-632-06410-6.<br />       <br />       </span><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.25pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">13. Bertani,  G. &ldquo;Studies on lysogenesis. I. The mode of phage liberation by lysogenic  Escherichia coli&rdquo;. <em>Journal </em></span><em><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.45pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">of Bacteriology,</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> vol. 62, no. 3, 1951, pp.  293-300, ISSN 0021-9193.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  14. Knief, C.; Delmotte, N.;  Chaffron, S.; Stark, M.; Innerebner, G.; Wassmann, R.; von Mering, C. y  Vorholt, J. A. &ldquo;Metaproteogenomic analysis of microbial communities in the  phyllosphere and rhizosphere of rice&rdquo;. <em>The ISME Journal</em>, vol. 6, no. 7,  2012, pp. 1378-1390, ISSN 1751-7362, DOI 10.1038/ismej.2011.192.<br />       <br />       <span style="letter-spacing:.45pt; ">15. Norris, D. O. y Date, R. A. &ldquo;Legume  bacteriology&rdquo;. En: Shaw N. H. y Bryan W. W., Tropical pasture research:  principles and methods, (ser. Commonwealth Bureau of Pastures and Field Crops,  no. ser. 51)</span><span style="letter-spacing:1.25pt; ">,</span> Ed. </span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Commonwealth  Agricultural Bureaux,</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> Farnham Royal, England, 1976, pp. 134-174,  ISBN 978-0-85198-358-5.<br />       <br />         16. Frioni, L. &ldquo;Ecolog&iacute;a microbiana del  suelo&rdquo;. En: <em>Procesos Microbianos</em>, Ed. Editorial de la fundaci&oacute;n  universidad nacional de rio cuarto, Montevideo, 1990, pp. 205&ndash;253, ISBN  950-665-110.<br />       <br />       17. Thies, J. E.; Singleton, P. W. y Bohlool, B. B. &ldquo;Modeling Symbiotic  Performance of Introduced Rhizobia in the Field by Use of Indices of Indigenous  Population Size and Nitrogen Status of the Soil&rdquo;. <em>Applied and Environmental  Microbiology,</em> vol. 57, no. 1, 1991, pp. 29-37, ISSN 0099-2240, 1098-5336.<br />       <br />       18. L&oacute;pez-L&oacute;pez, A.;  Rogel-Hern&aacute;ndez, M. A.; Barois, I.; Ortiz Ceballos, A. I.; Mart&iacute;nez, J.;  Ormeno-Orrillo, E. y Mart&iacute;nez-Romero, E. &ldquo;<em>Rhizobium grahamii</em> sp. nov., from  nodules of <em>Dalea leporina</em>, <em>Leucaena leucocephala</em> and <em>Clitoria ternatea</em>, and  <em>Rhizobium mesoamericanum</em> sp. nov., from nodules of <em>Phaseolus vulgaris</em>, siratro,  cowpea and <em>Mimosa pudica</em>&rdquo;. <em><span style="letter-spacing:.35pt; ">International  Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology</span></em>, vol. 62,  no. 9, 2012, pp. 2264-2271, ISSN 1466-5026, 1466-5034, DOI  10.1099/ijs.0.033555-0.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[    19. V&aacute;zquez-Lim&oacute;n, C.; Hoogewijs, D.;  Vinogradov, S. N. y Arredondo-Peter, R. &ldquo;The evolution of land plant  hemoglobins&rdquo;. </span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Plant Science</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">, <span style="letter-spacing:-.35pt; ">vol. 191-192, 2012, pp. 71-81,</span> ISSN  0168-9452, DOI 10.1016/j.plantsci.2012.04.013.<br />       <br />           20. Sigarroa, A. Biometr&iacute;a y Dise&ntilde;o Experimental. 1.<sup>a</sup> ed., Ed. Pueblo y Educaci&oacute;n, 1985, La Habana, Cuba, 393  p.<br />       <br />       21. Allen, M. E.  <em>Kolmogorov-Smirnov test for discrete distributions</em> [en l&iacute;nea]. Master  Thesis, Naval Postgraduate School, marzo de 1976, Monterey, California, 93 p., [Consultado: 26 de mayo de 2016], Disponible en: &lt;<a href="http://calhoun.nps.edu/handle/10945/17830" target="_blank">http://calhoun.nps.edu/handle/10945/17830</a>&gt;.<br />       <br />       </span><span style="line-height:107%; letter-spacing:.45pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">22. Tukey,  J. W. &ldquo;Bias and confidence in not quite large samples&rdquo;. <em>The Annals of  Mathematical Statistics</em>,</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> vol.  29, no. 2, junio de 1958, pp. 614-623, ISSN 0003-4851, DOI  10.1214/aoms/1177706647.<br />       <br />       23. Mesa, A.; Naranjo, M.; Cancio, R.; Mart&iacute;n, A.;  Clemente, B.; Su&aacute;rez, O. y Pacheco, E. <em>Manual de interpretaci&oacute;n de los &iacute;ndices  f&iacute;sico-qu&iacute;micos y morfol&oacute;gicos de los suelos cubanos</em>. 2.<sup>a</sup>     ed., Ed. Pueblo y  Educaci&oacute;n, 1984, La Habana, Cuba, 10 p.<br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  <br />         24. Marquina, M. E.; Gonz&aacute;lez, N. E. y Castro, Y. &ldquo;Caracterizaci&oacute;n fenot&iacute;pica y  genot&iacute;pica de doce rizobios aislados de diversas regiones geogr&aacute;ficas de  Venezuela&rdquo;.<em> Revista de Biolog&iacute;a Tropical</em>, vol. 59, no. 3, 2011, pp.  1017-1036, ISSN 0034-7744.<br />       <br />       25. Ruiz, S. &ldquo;Influencia de microorganismos sobre  caracteristicas fisicoquimicos de los suelos de cultivo de cacao (<em>Theobroma  cacao</em> L.), en tingo maria&rdquo;. <em>Revista Investigaci&oacute;n y Amazon&iacute;a,</em> vol. 2,  no. 1,2, 2013, pp. 67-74, ISSN 2224-445X.<br />       <br />       26.  Hern&aacute;ndez, A.; Ascanio, M. O.; Morales, M. y Le&oacute;n, A. <em>La historia de la  clasificaci&oacute;n de los suelos de Cuba</em>. Ed. F&eacute;lix Varela, 2006, La Habana, Cuba,  98 p., ISBN 959-07-0145-0.<br />       <br />         27. Bashan, Y.; Holgu&iacute;n, G. y Ferrera-Cerrato, R. &ldquo;Interacciones entre plantas  y microorganismos ben&eacute;ficos. III. Procedimientos para el aislamiento y  caracterizaci&oacute;n de hongos micorr&iacute;zicos y rizobacterias promotoras del  crecimiento de plantas&rdquo;. <em>Terra</em>, vol. 14, no. 2, 1996, pp. 159-194, ISSN  0187-5779.<br />       <br />       28. Dur&aacute;n, D.; Rey, L.;  S&aacute;nchez-Ca&ntilde;izares, C.; Jorr&iacute;n, B.; Imperial, J. y Ruiz-Arg&uuml;eso, T.  &ldquo;Biodiversity of Slow-Growing Rhizobia: The Genus Bradyrhizobium&rdquo;. En: eds.  Rodelas G. M. B. y Gonzalez-L&oacute;pez J., <em>Beneficial plant-microbial interactions:  ecology and applications</em>, Ed. CRC Press, Boca Raton, FL, 2013, pp. 20-37, ISBN  978-1-4665-8717-5.<br />     ]]></body>
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<body><![CDATA[  <br />       </span>39. Y<span style="letter-spacing:.25pt; ">anni, Y. G.; Rizk, R. Y.; Corich, V.; Squartini, A.; Ninke, K.;  Philip-Hollingsworth, S.; Orgambide, G.; de Bruijn, F.; Stoltzfus, J.; Buckley,  D.; Schmidt, T. M.; Mateos, P. F.; Ladha, J. K. y Dazzo, F. B. &ldquo;Natural  endophytic association between <em>Rhizobium leguminosarum</em> bv. trifolii and rice  roots and assessment of its potential to promote rice growth&rdquo;. <em>Plant and  Soil</em>, vol. 194, no. 1/2, 1997, pp. 99-114, ISSN 0032-079X, DOI 10.1023/A:1004269902246.<br />       <br />       </span>40. Santi, C.; Bogusz, D. y Franche, C. &ldquo;Biological nitrogen fixation in  non-legume plants&rdquo;. <em>Annals of Botany</em>, vol. 111, no. 5, 2013, pp.  743-767, ISSN 0305-7364, 1095-8290, DOI 10.1093/aob/mct048.<br />       <br />         41. Degefu, T.; Wolde-meskel, E.; Liu, B.;  Cleenwerck, I.; Willems, A. y Frostegard, A. &ldquo;<em>Mesorhizobium shonense</em> sp. nov.,  <em>Mesorhizobium hawassense</em> sp. nov. and <em>Mesorhizobium abyssinicae</em> sp. nov.,  isolated from root nodules of different agroforestry legume trees&rdquo;.  <em>International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology</em>, vol. 63, no. 5, 2013, pp. 1746-1753,  ISSN 1466-5026, 1466-5034, DOI 10.1099/ijs.0.044032-0.<br />       <br />         42. Zheng, W. T.; Li, Y.; Wang, R.; Sui, X.  H.; Zhang, X. X.; Zhang, J. J.; Wang, E. T. y Chen, W. X. &ldquo;<em>Mesorhizobium qingshengii</em> sp. nov., isolated  from effective nodules of <em>Astragalus sinicus</em>&rdquo;. <em>International Journal  of Systematic and Evolutionary Microbiology</em>, vol. 63, no. 6, 2013, pp. 2002-2007, ISSN 1466-5026, 1466-5034, DOI  10.1099/ijs.0.044362-0.<br />       <br />         43. de Lima, T. E. F.; Bezerra, J. L. y de Queiroz, C. M. A. &ldquo;Fungi from  the rhizosphere and rhizoplane from the grapevine  <em>Vitis labrusca</em> in Pernambuco, Brazil&rdquo;. <em>Nova Hedwigia</em>, vol. 99, no. 3,  2014, pp. 531-540, ISSN 0029-5035, DOI 10.1127/0029-5035/2014/0204.<br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  <br />         44. Philippot, L.; Raaijmakers, J. M.; Lemanceau, P. y van der Putten, W. H.  &ldquo;Going back to the roots: the microbial ecology of the rhizosphere&rdquo;. <em>Nature  Reviews Microbiology,</em> vol. 11, no. 11, 2013, pp. 789-799, ISSN  1740-1526, 1740-1534, DOI 10.1038/nrmicro3109.<br />       <br />         45. Nogales, J.; P&eacute;rez-Mendoza, D.; Gallegos,  M. T. y Soto, M. J. &ldquo;Importance of Motile and Biofilm Lifestyles of Rhizobia  for the Establishment of Symbiosis with Legumes&rdquo;. En: Rodelas G. M. B. y  Gonzalez-L&oacute;pez J., <em>Beneficial plant-microbial interactions: ecology and  applications</em>, Ed. CRC Press, Boca Raton, FL, 2013, pp. 47-55, ISBN  978-1-4665-8717-5.<br />       <br />         46. Frederix, M.; Edwards, A.; Swiderska, A.; Stanger, A.; Karunakaran,  R.; Williams, A.; Abbruscato, P.; Sanchez-Contreras, M.; Poole, P. S. y Downie,  J. A. &ldquo;Mutation of <em>praR</em> in <em>Rhizobium leguminosarum</em> enhances root biofilms,  improving nodulation competitiveness by increased  expression of attachment proteins&rdquo;. <em>Molecular Microbiology</em>, vol. 93, no. 3, 2014, pp. 464-478, ISSN 0950-382X, DOI 10.1111/mmi.12670.<br />       <br />         47. Murray, J. D. &ldquo;Invasion by Invitation:  Rhizobial Infection in Legumes&rdquo;.<em> Molecular Plant-Microbe Interactions,</em> vol. 24, no. 6, 2011, pp. 631-639, ISSN 0894-0282,  DOI 10.1094/MPMI-08-10-0181.<br />       <br />         48. McDermott, T. R. y Graham, P. H. &ldquo;Bradyrhizobium japonicum Inoculant Mobility,  Nodule Occupancy, and Acetylene Reduction in the Soybean Root System&rdquo;. <em>Applied  and Environmental Microbiology</em>, vol. 55, no. 10, 1989, pp. 2493-2498, ISSN  0099-2240, 1098-5336.<br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  <br />         49. Gil-Quintana, E.; Larrainzar, E.; Seminario, A.; D&iacute;az-Leal, J. L.; Alamillo,  J. M.; Pineda, M.; Arrese-Igor, C.; Wienkoop, S. y Gonzalez, E. M. &ldquo;Local  inhibition of nitrogen fixation and nodule metabolism in drought-stressed  soybean&rdquo;. <em>Journal of Experimental Botany</em>, vol. 64, no. 8, 2013, pp.  2171-2182, ISSN 0022-0957, 1460-2431, DOI 10.1093/jxb/ert074.<br />       <br />         50. Mubarik, N. R. y Sunatmo, T. I. &ldquo;Symbiotic of nitrogen fixation between  acid aluminium tolerant Bradyrhizobium japonicum and soybean&rdquo;. En: Ohyama T.,  <em>Advances in biology and ecology of nitrogen fixation</em>, Ed. Intech,  Rijeka, Croatia, 2014, pp. 259-272, ISBN 978-953-51-1216-7.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Recibido: 09/10/2015<br />   Aceptado: 22/04/2016</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">M.Cs.  Ionel Hern&aacute;ndez Forte,</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> Instituto Nacional de Ciencias  Agr&iacute;colas (INCA), Gaveta postal No.1, San Jos&eacute; de las Lajas. Mayabeque, Cuba.  CP 32700. Email: <a href="mailto:ionel@inca.edu.cu">ionel@inca.edu.cu</a></span></p>     ]]></body>
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