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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Aspersión foliar con biobras-16 estimula el crecimiento de plantas jóvenes de arroz (Oryza sativa L.) sometidas a tratamiento con NaCL]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Biobras-16 foliar spraying enhances rice (Oryza sativa L.) young plant growth under NaCL treatment]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Salinity is one of the most pressing stresses today and brassinosteroids are compounds which, not only stimulate plant growth but also improve plant tolerance to salt stress. In this paper, the effect of foliar spraying with a brassinosteroid analogue (Biobras-16, BB-16) on rice seedlings under this kind of stress was evaluated. For this purpose, rice young plants cv. J-104 were sprayed with BB-16 (0; 0,01; 0,1; 1 µmol L-1), half of them was treated with NaCl (100 mmol L-1) for seven days and later, these plants were transferred to nutrient solution to assess recovery during fourteen days. The growth evaluations (shoot and root length and dry mass) were made at the beginning and the end of saline treatment and seven and fourteen days after the recovery. From the results of this experiment, the best BB-16 concentration was chosen and a second experiment, following the same methodology, was performed and, where, the growth indicators and some biochemical indicators such as malondialdehyde, proline, chlorophylls and the activities of peroxidase and catalase enzymes were determined. Results demonstrated, in general, that the foliar spraying with BB-16 0,1 µmol L-1 increased the length of rice seedlings under saline conditions what appears to be associated with increased antioxidant defenses as well as an increase of the concentration of chlorophylls, chlorophyll a fundamentally]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:14.0pt; ">Aspersi&oacute;n  foliar con biobras-16 estimula el crecimiento de plantas j&oacute;venes de arroz <span style="letter-spacing:-.35pt; ">(<em>Oryza sativa </em>L.) sometidas a tratamiento  con </span>NaCL </span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:14.0pt; ">&nbsp;</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">Biobras-16 foliar spraying  enhances rice (<em>Oryza sativa L</em>.) &nbsp;young  plant growth under NaCL treatment </span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">&nbsp;</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">&nbsp;</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="line-height:107%; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">M.Cs. Yanelis Reyes Guerrero, Lisbel  Mart&iacute;nez Gonz&aacute;lez, Dra.C. Miriam N&uacute;&ntilde;ez V&aacute;zquez</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Instituto  Nacional de Ciencias Agr&iacute;colas. Gaveta Postal 1, San Jos&eacute; de las Lajas,  provincia Mayabeque, CP 32700.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;">&nbsp;</p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;">&nbsp;</p> <hr />     <p><strong><span style="line-height:107%; text-transform:uppercase; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Resumen</span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> </span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">La salinidad es una de las  causas de estr&eacute;s m&aacute;s acuciantes en la actualidad y los brasinoesteroides son  compuestos que, adem&aacute;s, de estimular el crecimiento vegetal <span style="letter-spacing:.3pt; ">aumentan la tolerancia de las plantas al estr&eacute;s  salino. </span>En el presente trabajo, se evalu&oacute; el efecto de la aspersi&oacute;n  foliar <span style="letter-spacing:-.1pt; ">con un an&aacute;logo de brasinoesteroides  (Biobras-16, BB-16),</span> en pl&aacute;ntulas de arroz sometidas a este tipo de estr&eacute;s.  Para ello, se asperjaron plantas j&oacute;venes de arroz del cultivar J-104 con BB-16  (0; 0,01; 0,1; 1 &micro;mol L<sup>-1</sup>), la mitad de ellas se trataron con NaCl  (100 mmol L<sup>-1</sup>) por siete d&iacute;as, y posteriormente, <span style="letter-spacing:-.3pt; ">se transfirieron a soluci&oacute;n nutritiva para evaluar  su recuperaci&oacute;n </span>durante catorce d&iacute;as. Las evaluaciones de crecimiento  (longitudes de la parte a&eacute;rea y de las ra&iacute;ces y masas secas de la parte a&eacute;rea y  de las ra&iacute;ces) se realizaron al inicio y final del tratamiento salino y a los  siete y catorce d&iacute;as de recuperaci&oacute;n. Partiendo de los resultados de este  experimento, se seleccion&oacute; la mejor concentraci&oacute;n de BB-16 y se ejecut&oacute; un  segundo experimento, siguiendo la misma metodolog&iacute;a, donde, adem&aacute;s, de evaluar  los indicadores de crecimiento, se determinaron algunos indicadores bioqu&iacute;micos  como malondialdeh&iacute;do, prolina, clorofilas y las actividades de las enzimas  peroxidasa y catalasa. Los resultados  demostraron que, de forma general, la aspersi&oacute;n foliar con BB-16 a  0,1&micro;mol L<sup>-1</sup> estimul&oacute; la longitud de las pl&aacute;ntulas de arroz en  condiciones salinas lo que parece estar asociado a un incremento de las  defensas antioxidantes, as&iacute; como a un aumento de la concentraci&oacute;n de  clorofilas, fundamentalmente clorofila <em>a</em>. </span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Palabras clave</span></strong><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">:</span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> brasinoesteroides, catalasas, clorofilas, estr&eacute;s salino, prolina.</span></p> <hr />     <p><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">ABSTRACT</span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> </span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Salinity is one of the most pressing stresses today  and brassinosteroids are compounds which, not only stimulate plant growth but  also improve plant tolerance to salt stress. In this paper, the effect of  foliar spraying with a brassinosteroid analogue (Biobras-16, BB-16) on rice  seedlings under this kind of stress was evaluated. For this purpose, rice young  plants cv. J-104 were sprayed with BB-16 </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">(0; 0,01; 0,1; 1 &micro;mol L<sup>-1</sup>), half of them  was treated <span style="letter-spacing:.2pt; ">with NaCl (100 mmol L<sup>-1</sup>)  for seven days and later,</span> these plants were transferred to nutrient  solution to assess recovery during fourteen days. The growth evaluations (shoot  and root length and dry mass) were made at the beginning and the end of saline  treatment and seven and fourteen days after the recovery. From the results of  this experiment, the best BB-16 concentration was chosen and a second  experiment, following the same methodology, was performed and, where, the  growth indicators and some biochemical indicators such as malondialdehyde,  proline, chlorophylls and the activities of peroxidase and catalase enzymes  were determined. Results demonstrated, in general, that the foliar spraying  with BB-16 0,1 &micro;mol L<sup>-1</sup> increased the length of rice seedlings under  saline conditions what appears to be associated with increased antioxidant  defenses as well as an increase of the concentration of chlorophylls,  chlorophyll <em>a</em> fundamentally.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Key  words</span></strong><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">:</span></strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> brassinosteroids, catalases, chlorophylls, salt stress, proline.</span></p> <hr />     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">INTRODUCCI&Oacute;N</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="line-height:107%; letter-spacing:.3pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">La  salinidad es una de las causas de estr&eacute;s m&aacute;s acuciantes en la actualidad. La  inadecuada irrigaci&oacute;n de los suelos, as&iacute; como el cambio </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">clim&aacute;tico  hacen que este fen&oacute;meno alcance un nivel global  (1). En nuestro pa&iacute;s, la superficie agr&iacute;cola est&aacute; afectada en un 14 % y  otro 15 % m&aacute;s presenta peligros potenciales de salinizaci&oacute;n<sup><a href="#nA">A</a></sup><a name="nA1" id="nA1"></a>.<br />   <br />   Para enfrentar esta problem&aacute;tica, se trabaja  en la b&uacute;squeda de soluciones que permitan incrementar la productividad de los  cultivos en estas condiciones, para lo cual no s&oacute;lo se pudieran utilizar  cultivares tolerantes, sino tambi&eacute;n trabajar en la introducci&oacute;n de tecnolog&iacute;as  que permitan minimizar los da&ntilde;os que estos tipos de estr&eacute;s provocan en las  plantas.<br />   <br />   Una de las tecnolog&iacute;as para incrementar los rendimientos agr&iacute;colas que  se desarrolla en los &uacute;ltimos a&ntilde;os, se basa en el uso de productos naturales  inocuos desde el punto de vista ecol&oacute;gico, como los brasinoesteroides (BRs).<br />   <br />   Estos compuestos son potentes reguladores del crecimiento vegetal de naturaleza  esteroidal. Estas hormonas tienen efectos pleiotr&oacute;picos como son: estimulaci&oacute;n  del alargamiento celular y desdiferenciaci&oacute;n de protoplastos, regeneraci&oacute;n de  la pared celular, regulaci&oacute;n de la diferenciaci&oacute;n de elementos traquearios e  incremento de la biomasa y del rendimiento (2). En los &uacute;ltimos a&ntilde;os, varios  autores han estudiado la protecci&oacute;n que los BRs le confieren a las plantas ante  determinados tipos de estr&eacute;s tanto bi&oacute;ticos como abi&oacute;ticos (3, 4).<br />   <br />   En Cuba, se investiga en la s&iacute;ntesis y actividad biol&oacute;gica de algunas  formulaciones, que tienen como ingredientes activos an&aacute;logos espirost&aacute;nicos de  brasinoesteroides (5).<br />   <br />   Desde el punto de vista pr&aacute;ctico, la importancia del uso de an&aacute;logos cubanos en  lugar de compuestos naturales es que estos &uacute;ltimos son m&aacute;s costosos y sus  efectos son de corta duraci&oacute;n en las plantas (6). <span style="letter-spacing:.4pt; ">En cambio, los an&aacute;logos, sintetizados en Cuba,</span> han demostrado ser  productos m&aacute;s baratos e inocuos con utilidad pr&aacute;ctica para incrementar los  rendimientos agr&iacute;colas entre un 10 y 25 % en diferentes especies, incluyendo <em>Oryza  sativa</em>, especie de gran importancia econ&oacute;mica para nuestro pa&iacute;s; por ser un  alimento b&aacute;sico para la poblaci&oacute;n (7). Sin embargo, hasta donde se conoce, no  se ha logrado la optimizaci&oacute;n de la aplicaci&oacute;n de estos compuestos en la protecci&oacute;n  de los cultivos sometidos a diferentes estreses ambientales, debido  fundamentalmente, a que se desconoce el mecanismo en que ellos act&uacute;an en las  plantas en estas condiciones. El conocimiento  del modo de acci&oacute;n de los brasinoesteroides en el cultivo del arroz <span style="letter-spacing:.9pt; ">ante condiciones de estr&eacute;s salino permitir&iacute;a, </span>en un futuro, una aplicaci&oacute;n m&aacute;s efectiva y  racional de estos reguladores del crecimiento. Por esta raz&oacute;n, el objetivo de este trabajo es determinar  si la aspersi&oacute;n foliar con Biobras-16 es capaz de proteger a plantas j&oacute;venes de  arroz de los efectos adversos que provoca el estr&eacute;s salino, as&iacute; como evaluar  algunos indicadores bioqu&iacute;micos asociados a esta respuesta.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">MATERIALES  Y M&Eacute;TODOS</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="line-height:107%; letter-spacing:.4pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Para  dar cumplimiento al objetivo propuesto,</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> se utilizaron semillas de  arroz (<em>Oryza sativa</em> L.) del cultivar Jucarito-104 (J-104) considerado  como susceptible al estr&eacute;s salino<sup><a href="#nB">B</a><a name="nB1" id="nB1"></a></sup>. Las semillas se desinfectaron  con hipoclorito de sodio comercial durante cinco minutos; posteriormente, se  lavaron seis veces con agua destilada est&eacute;ril y luego se sumergieron en agua  durante 24 horas.<br />   <br />   Transcurrido este tiempo, se colocaron en placas de Petri, a temperatura  ambiente en la oscuridad, <span style="letter-spacing:.1pt; ">para propiciar la  germinaci&oacute;n. Luego de 48 horas,</span> las semillas germinadas se trasplantaron  a vasos pl&aacute;sticos de 240 mL que conten&iacute;an suelo Hidrom&oacute;rfico Gley Nodular  Petrof&eacute;rrico (8) proveniente de la UCTB de Los Palacios, Pinar del R&iacute;o. Las  caracter&iacute;sticas de este suelo se encontraban en el rango que permit&iacute;an el crecimiento adecuado de las plantas de arroz (<a href="#t1">Tabla </a></span><a href="#t1"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">I</span></a><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">). Las determinaciones se  realizaron en el Laboratorio de An&aacute;lisis Qu&iacute;mico del Instituto Nacional de  Ciencias Agr&iacute;colas (9).</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:center;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "><a name="t1" id="t1"></a><br />   <img src="/img/revistas/ctr/v38n1/t0120117.gif" width="493" height="234" />  </span></p>     
<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">  Se utilizaron 20 vasos (cada uno con tres plantas en crecimiento) y se  colocaron en cestas pl&aacute;sticas que conten&iacute;an agua corriente. Las cestas se  ubicaron dentro de un umbr&aacute;culo para evitar el efecto de las precipitaciones.<br />   <br />   En el momento de emergencia de la tercera hoja verdadera, se realiz&oacute; la  aspersi&oacute;n foliar con Biobras-16 <span style="letter-spacing:.8pt; ">a las  concentraciones de 0,01; 0,1 y 1 &mu;mol L<sup>-1</sup>. Se asperj&oacute; un volumen  total de 60 mL para 120 plantas. A todas las soluciones se le adicion&oacute; Tween 20  al 0,01 % como detergente.</span> <span style="letter-spacing:-.7pt; ">En ese momento, las plantas se dividieron en dos  grupos, uno se coloc&oacute; en cestas a las cuales se les adicion&oacute; soluci&oacute;n </span>nutritiva Hoagland diluida 1:1 v/v (SN) y el otro  se coloc&oacute; en cestas que conten&iacute;an soluci&oacute;n nutritiva Hoagland diluida  suplementada con NaCl 100 mmol L<sup>-1</sup> (SN+NaCl).<br />   <br />   A los siete d&iacute;as, las plantas que se  sometieron a tratamiento salino, se colocaron en soluci&oacute;n nutritiva Hoagland  diluida, durante 14 d&iacute;as, para su recuperaci&oacute;n.<br />   <br />   Las evaluaciones de crecimiento  (longitud de la parte a&eacute;rea, longitud de las ra&iacute;ces, masa seca de la parte  a&eacute;rea y de las ra&iacute;ces) se realizaron a 12 plantas por tratamiento al iniciar y  finalizar el tratamiento salino y a los siete y 14 d&iacute;as de recuperaci&oacute;n.<br />   <br />   El experimento se realiz&oacute; en dos  &eacute;pocas del a&ntilde;o, el primero se inici&oacute; el 24 de diciembre del 2009 y el segundo  el 25 de mayo del 2010. En ambos casos se registraron las temperaturas m&iacute;nimas,  medias y m&aacute;ximas y las humedades relativas medias del aire durante las  siguientes etapas: crecimiento inicial de las pl&aacute;ntulas (desde el trasplante  hasta la aplicaci&oacute;n del tratamiento con NaCl), per&iacute;odo de tratamiento con NaCl  (siete d&iacute;as) y fase de recuperaci&oacute;n (14 d&iacute;as) (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/t0220117.gif">Tabla </a></span><a href="/img/revistas/ctr/v38n1/t0220117.gif"><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.1pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">II</span></a><span style="line-height:107%; letter-spacing:-.1pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "></span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">). Estos datos fueron tomados de la Estaci&oacute;n  Meteorol&oacute;gica de Tapaste ubicada aproximadamente a 500 m del &aacute;rea donde se  desarrollaron los experimentos.<br />   <br />     A partir de los resultados del experimento </span><span style="line-height:107%; letter-spacing:.6pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">anterior,  se ejecut&oacute; un segundo experimento,</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> en los meses de abril-mayo  de 2011, donde se utiliz&oacute; la misma metodolog&iacute;a que en el experimento anterior, con la diferencia que la aspersi&oacute;n foliar se realiz&oacute; con Biobras-16 0,1  &mu;mol L<sup>-1</sup>. Las evaluaciones  de crecimiento (longitudes de la parte a&eacute;rea y de las ra&iacute;ces, masas secas de la  parte a&eacute;rea y de las ra&iacute;ces) se realizaron a 12 plantas por tratamiento al iniciar y finalizar el tratamiento salino y a  los 14 d&iacute;as de recuperaci&oacute;n. <span style="letter-spacing:.7pt; ">En el caso de las evaluaciones bioqu&iacute;micas,</span> <span style="letter-spacing:-.4pt; ">realizadas  a las hojas de las plantas, &eacute;stas se efectuaron al finalizar el tratamiento  salino y a los 14 d&iacute;as de recuperaci&oacute;n. </span>Se determinaron los siguientes indicadores: prolina seg&uacute;n el m&eacute;todo de la ninhidrina (10), malondialdeh&iacute;do  (MDA) por el m&eacute;todo del &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico  (11) y clorofilas <em>a</em>, <em>b</em> y  totales por extracci&oacute;n con acetona al 80 % (12); as&iacute; como las actividades de las enzimas antioxidantes peroxidasa (EC 1.11.1.7) (13) y catalasa (EC  1.11.1.6) (14). Adem&aacute;s se  determinaron las prote&iacute;nas totales seg&uacute;n el m&eacute;todo de Bradford (15).<br />     <br />       En todos los experimentos se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente  aleatorizado. Luego de comprobar que los datos obtenidos cumplieron con los  supuestos te&oacute;ricos de normalidad y homogeneidad de varianza, <span style="letter-spacing:.5pt; ">se les realiz&oacute; un ANOVA de clasificaci&oacute;n simple.</span> En los casos en que hubo diferencias  significativas entre tratamientos se realiz&oacute; una comparaci&oacute;n de medias  mediante la prueba de Tukey con p &le; 0,05 (16), utilizando el programa  estad&iacute;stico STATGRAPHICS Plus 5.1 (17).</span></p>     
<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">RESULTADOS  Y DISCUSI&Oacute;N</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">En la <a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0120117.gif">Figura 1</a> se muestra  el comportamiento de la longitud de la parte a&eacute;rea de las pl&aacute;ntulas. Como se  puede observar, en la primera repetici&oacute;n del experimento, el tratamiento con  NaCl no afect&oacute; este indicador en ninguno de los momentos evaluados, ni se observ&oacute;  influencia de la aspersi&oacute;n foliar con BB-16. Sin embargo, en la segunda  repetici&oacute;n, efectuada en los meses de mayo-junio, se observ&oacute; que el tratamiento  con NaCl produjo una disminuci&oacute;n significativa de la longitud de la parte a&eacute;rea  en todos los tratamientos, que se manifest&oacute; durante la recuperaci&oacute;n. La  aspersi&oacute;n foliar con BB-16 0,1 &mu;mol L<sup>-1</sup> fue capaz de proteger a las  pl&aacute;ntulas, estimulando de forma significativa la longitud de la parte a&eacute;rea a  los 14 d&iacute;as de la recuperaci&oacute;n.<br />     
  <br />       En la longitud de las ra&iacute;ces se observa que, en la primera repetici&oacute;n, de forma general, el  tratamiento con NaCl no afect&oacute; este indicador en ninguno de los  tratamientos ni momentos evaluados (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0220117.gif">Figura 2A</a>), mientras que en la segunda  (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0220117.gif">Figura 2B</a>) se observ&oacute; que la salinidad provoc&oacute; un incremento significativo de este indicador en las pl&aacute;ntulas asperjadas con  0,1 &mu;mol L<sup>-1</sup> de BB-16, a los siete d&iacute;as de recuperaci&oacute;n.<br />     
  <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  En cuanto a la masa seca de la parte a&eacute;rea, no se encontraron afectaciones en este indicador  una vez finalizado el tratamiento con  NaCl en ninguna de las dos repeticiones del experimento. Sin embargo, a los  siete d&iacute;as de recuperaci&oacute;n en las pl&aacute;ntulas con el tratamiento NaCl aument&oacute; de  forma significativa la masa seca de las mismas en la primera repetici&oacute;n, y  solamente las concentraciones de 0,01 y 1 &mu;mol L<sup>-1</sup> de BB-16  conservaron este efecto. No obstante, en la segunda repetici&oacute;n se  observ&oacute; una reducci&oacute;n significativa de este  indicador durante la recuperaci&oacute;n,  excepto en los tratamientos de 0,1 y 1 &mu;mol.L<sup>-1</sup>, a los siete d&iacute;as de recuperaci&oacute;n (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0320117.gif">Figura 3</a>).<br />     
  <br />       Al evaluar la masa seca de las ra&iacute;ces, en el estr&eacute;s salino se obtuvo un  aumento significativo de este indicador en la primera repetici&oacute;n (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0420117.gif">Figura 4A</a>),  que no fue observada en las plantas asperjadas con BB-16. El comportamiento en la segunda repetici&oacute;n fue  diferente, ya que la salinidad disminuy&oacute; significativamente la masa seca de  las ra&iacute;ces en las plantas controles al finalizar el per&iacute;odo de  tratamiento con NaCl y a los 14 d&iacute;as de la recuperaci&oacute;n; sin embargo, las  plantas asperjadas con BB-16 1 &mu;mol L<sup>-1</sup> no modificaron  significativamente los niveles de masa seca, una vez finalizado el estr&eacute;s ni  durante la recuperaci&oacute;n (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0420117.gif">Figura 4B</a>).<br />     
  <br />       La salinidad afect&oacute; negativamente la longitud de la parte a&eacute;rea, pero esta  afectaci&oacute;n se produjo en la recuperaci&oacute;n, donde se observ&oacute; una marcada  reducci&oacute;n del crecimiento de las pl&aacute;ntulas. Es bien conocido que la salinidad  inhibe el crecimiento de las plantas y en muchos casos la parte a&eacute;rea es m&aacute;s  afectada que las ra&iacute;ces. Este efecto del estr&eacute;s salino en el crecimiento es  ampliamente conocido ya que tanto el estr&eacute;s h&iacute;drico como la acumulaci&oacute;n de  iones retrasan los procesos de divisi&oacute;n y diferenciaci&oacute;n celular (18).<br />       <br />       Esta disminuci&oacute;n en el crecimiento de las  plantas tratadas, durante la recuperaci&oacute;n, pudiera deberse a que los efectos  t&oacute;xicos de la acumulaci&oacute;n de sales tardan m&aacute;s en manifestarse pero permanecen  en el tiempo, a&uacute;n despu&eacute;s de pasar al per&iacute;odo de recuperaci&oacute;n. Para  corroborar esta hip&oacute;tesis, se ha se&ntilde;alado el hecho de que una vez concluido el  per&iacute;odo de estr&eacute;s y sometidas las plantas durante siete d&iacute;as al tratamiento  control, estas no lograron recuperarse, lo que demuestra el car&aacute;cter  irreversible de los da&ntilde;os ocasionados (19).<br />       <br />       Se apreci&oacute; que la aspersi&oacute;n foliar con BB-16  0,1 mg L<sup>-1</sup> estimul&oacute; la longitud de la parte a&eacute;rea, 14 d&iacute;as  despu&eacute;s de la recuperaci&oacute;n, en comparaci&oacute;n al resto de los tratamientos  estudiados.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[  Es de destacar, la diferencia observada en la  respuesta de las plantas ante el tratamiento con NaCl en las dos repeticiones  efectuadas, la cual pudiera estar relacionada con las condiciones  meteorol&oacute;gicas imperantes durante la ejecuci&oacute;n del experimento. Como se aprecia  en la <a href="/img/revistas/ctr/v38n1/t0220117.gif">Tabla </a></span><a href="/img/revistas/ctr/v38n1/t0220117.gif"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">II</span></a><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">,</span> <span style="line-height:107%; letter-spacing:-.4pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">en el experimento  iniciado en diciembre (primera repetici&oacute;n), </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">tanto  la temperatura m&aacute;xima, como la m&iacute;nima y la </span><span style="line-height:107%; letter-spacing:.2pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">media,  durante la ejecuci&oacute;n del experimento, </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">fue  aproximadamente de 7 a 8 &ordm;C m&aacute;s baja que en el iniciado en mayo (segunda  repetici&oacute;n) y es bien conocido, el efecto que la temperatura ejerce en el  crecimiento del arroz, pues la temperatura &oacute;ptima para la fase vegetativa de  este cultivo es de 25-30 &ordm;C y temperaturas menores ocasionan un retraso en el  crecimiento<sup><a href="#nC">C</a><a name="nC1" id="nC1"></a></sup>.<br />     
  <br />       Lo  anterior demuestra que las afectaciones de la salinidad en las pl&aacute;ntulas  tambi&eacute;n dependen de otros factores, puesto que en el experimento iniciado en el  mes de diciembre, donde la temperatura fue m&aacute;s baja, las plantas controles  mostraron un menor crecimiento enmascarando el efecto provocado por el estr&eacute;s  salino. Adem&aacute;s las bajas temperaturas tambi&eacute;n pueden haber disminuido la  absorci&oacute;n de agua, y por ende de NaCl, en las pl&aacute;ntulas de arroz.<br />       <br />         En las <a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0520117.gif">Figuras 5</a> y <a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0620117.gif">6</a> se presentan los  resultados de la influencia de la aspersi&oacute;n foliar con Biobras-16 (0,1 &micro;mol L<sup>-1</sup>)  en los indicadores de crecimiento de las pl&aacute;ntulas de arroz sometidas o no a  tratamiento con NaCl 100 mmol L<sup>-1</sup> durante siete d&iacute;as. Se pudo  observar que al finalizar el tratamiento  con NaCl, no se afect&oacute; ninguno de los indicadores del crecimiento evaluados;  sin embargo, las plantas que se colocaron en medio salino exhibieron, de forma  general, un menor crecimiento despu&eacute;s de catorce d&iacute;as de recuperaci&oacute;n. As&iacute;, en  la <a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0520117.gif">Figura 5</a> se muestran las longitudes de la parte a&eacute;rea y de las ra&iacute;ces. Se  aprecia un efecto protector del BB-16 en la longitud de las ra&iacute;ces (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0520117.gif">Figura 5B</a>),  confirmando lo encontrado en la segunda repetici&oacute;n del experimento anterior  (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0220117.gif">Figura 2B</a>).<br />     
  <br />         En cuanto a la masa seca (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0620117.gif">Figura 6</a>), hubo un efecto protector del BB-16  en la parte a&eacute;rea, donde la aspersi&oacute;n del compuesto increment&oacute; la masa seca  durante el per&iacute;odo de estr&eacute;s y a los siete d&iacute;as de recuperaci&oacute;n, en comparaci&oacute;n con las plantas que crecieron en  soluci&oacute;n nutritiva (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0620117.gif">Figura 6A</a>). Es interesante se&ntilde;alar, que la salinidad  increment&oacute; la masa seca de las ra&iacute;ces al finalizar el per&iacute;odo de estr&eacute;s, mientras  que la aspersi&oacute;n foliar con BB-16 no modific&oacute; este indicador en las plantas  tratadas o no con NaCl; sin embargo, durante la recuperaci&oacute;n se apreci&oacute; una  reducci&oacute;n significativa de la masa seca de las ra&iacute;ces de las plantas sometidas  a tratamiento con NaCl independientemente de que fueran asperjadas o no con  BB-16 (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0620117.gif">Figura 6B</a>).<br />     
  <br />         Este &uacute;ltimo resultado, que muestra el  aumento de la biomasa de la ra&iacute;z al finalizar el tratamiento salino, se repite  en varios experimentos y se han encontrado varios autores que observan un comportamiento similar (20). A pesar de que las ra&iacute;ces se encuentran en  contacto directo con la sal, su crecimiento se ve menos afectado que el de la  parte a&eacute;rea, aumentando la raz&oacute;n ra&iacute;z: parte a&eacute;rea (18). Esto pudiera  ser una adaptaci&oacute;n de la planta para aumentar el &aacute;rea de absorci&oacute;n de agua y disminuir el &aacute;rea de transpiraci&oacute;n. Sin embargo,<span style="letter-spacing:-.9pt; "> en</span><span style="letter-spacing:-.6pt; "> el  per&iacute;odo de recuperaci&oacute;n, la biomasa de la ra&iacute;z disminuye </span>en las  pl&aacute;ntulas que fueron previamente estresadas sugiriendo que los efectos a largo  plazo de la salinidad afectan la velocidad de crecimiento de este &oacute;rgano.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[    Por otra parte, se debe se&ntilde;alar que se ha  informado la efectividad del  tratamiento a las semillas con BB-16 0,005 mg L<sup>-1</sup> para revertir los efectos adversos que la salinidad provoc&oacute; en el crecimiento inicial de  las plantas de los cultivares de  arroz J-104 e INCA LP-7, mientras que la respuesta de otro an&aacute;logo (BB-6)  dependi&oacute; del cultivar (7).<br />       <br />         M&aacute;s recientemente, se evalu&oacute; la influencia del tratamiento a las  semillas con varias concentraciones de BB-16 y 24-epibrasin&oacute;lida (EBL), un  brasinoesteroide natural, en el crecimiento de las pl&aacute;ntulas de dos cultivares  de arroz (J-104 y Gin&eacute;s) en medio salino. Tanto la EBL como el BB-16 fueron  capaces de revertir parcialmente la inhibici&oacute;n que en el crecimiento de las  pl&aacute;ntulas de ambos genotipos de arroz provoc&oacute; la presencia de NaCl; siendo m&aacute;s  efectivos los tratamientos en el cultivar tolerante Gin&eacute;s (21).<br />       <br />         Como se puede apreciar, los resultados mostrados en la literatura, se refieren  al tratamiento a la semilla como modo de aplicaci&oacute;n, por lo que estos  constituyen los primeros resultados que muestran que la aspersi&oacute;n foliar del  Biobras-16 pudiera proteger a las plantas j&oacute;venes de arroz del estr&eacute;s salino.<br />       <br />         El estr&eacute;s salino no modific&oacute; la  concentraci&oacute;n de malondialdeh&iacute;do (MDA) en las pl&aacute;ntulas en ninguno <span style="letter-spacing:.6pt; ">de los dos momentos evaluados; no obstante,</span> la aspersi&oacute;n foliar con BB-16 disminuy&oacute; la  concentraci&oacute;n de este compuesto con  respecto a las plantas controles (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0720117.gif">Figura 7A</a>). El MDA es uno de los productos  finales de bajo peso molecular de la descomposici&oacute;n de los hidroper&oacute;xidos  lip&iacute;dicos. Este compuesto es el m&aacute;s utilizado como medida de la peroxidaci&oacute;n  lip&iacute;dica en la membrana celular, como consecuencia directa de la acci&oacute;n de las  especies reactivas de ox&iacute;geno.<br />     
  <br />         Los resultados de este trabajo indicaron que el tratamiento con NaCl  durante siete d&iacute;as no provoc&oacute; da&ntilde;o oxidativo en las membranas de las c&eacute;lulas de  las plantas de este cultivar de arroz hasta los 14 d&iacute;as de recuperaci&oacute;n y la  aspersi&oacute;n con BB-16 no modific&oacute; este comportamiento.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[    En cuanto a la prolina, el tratamiento con NaCl no modific&oacute; la concentraci&oacute;n de  este metabolito en las plantas controles al final del mismo; sin embargo, la  aspersi&oacute;n de BB-16 aument&oacute; los niveles de este amino&aacute;cido en las pl&aacute;ntulas no  estresadas. Por otra parte, en la recuperaci&oacute;n se evidenci&oacute; el incremento en la  concentraci&oacute;n de este metabolito producto del tratamiento salino y las plantas  asperjadas con BB-16 presentaron valores similares de prolina en sus hojas,  independientemente, que hubieran sido tratadas o no con sal (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0720117.gif">Figura 7B</a>).<br />     
  <br />         Otros autores, han observado que la EBL logr&oacute;  disminuir el eflujo de electrolitos y la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica en pl&aacute;ntulas de  frijol y pepino expuestas a estr&eacute;s salino, lo que favoreci&oacute; el &iacute;ndice de estabilidad  de las membranas (22, 23). Algo similar se ha informado en la literatura en el  caso de plantas de trigo sometidas a estr&eacute;s salino y asperjadas con diferentes  concentraciones de EBL (24). Igualmente, en pl&aacute;ntulas de frijol  sometidas a estr&eacute;s salino la aspersi&oacute;n foliar con EBL aument&oacute; la concentraci&oacute;n  de prolina tanto en las hojas como en las  ra&iacute;ces (22). Sin embargo, la concentraci&oacute;n de este amino&aacute;cido disminuy&oacute;  en hojas de plantas de arroz estresadas, cuyas semillas fueron tratadas con EBL  (25) y en semillas de frijol tratadas con EBL (5 &micro;mol L<sup>-1</sup>) y  sometidas a estr&eacute;s salino por ocho d&iacute;as, con respecto a las pl&aacute;ntulas  estresadas (26).<br />       <br />         Aunque la acumulaci&oacute;n de prolina se ha observado en arroz expuesto a  estr&eacute;s salino, hoy est&aacute; claro que este amino&aacute;cido tiene m&uacute;ltiples funciones.  Numerosos autores plantean que los cultivares m&aacute;s susceptibles a la salinidad  tienen mayor contenido de prolina que los  cultivares tolerantes (27, 28). Por esta raz&oacute;n, la acumulaci&oacute;n de prolina se correlaciona con el grado de deterioro  inducido por el estr&eacute;s (29) y, hay autores que plantean que el aumento de este  amino&aacute;cido podr&iacute;a deberse auna necesidad de la planta de eliminar el exceso de  amonio (30).<br />       <br />         Por otro lado, recientemente, se ha descrito  el posible papel de la prolina como un antioxidante no enzim&aacute;tico; ya que es  capaz de comportarse como aceptor final de los radicales libres como el ox&iacute;geno  singlete y el radical hidroxilo, por lo que la acumulaci&oacute;n de prolina en el  tejido puede ser importante en prevenir el da&ntilde;o oxidativo causado por las  especies reactivas de ox&iacute;geno (31). La prolina, adem&aacute;s, estabiliza las  membranas y los componentes subcelulares, incluyendo el complejo II de la  cadena de transporte electr&oacute;nico mitocondrial, y estabilizador del potencial  redox por reaprovisionamiento de NADP<sup>+ </sup>(32). Se ha demostrado que la  aplicaci&oacute;n ex&oacute;gena de prolina proporciona una acci&oacute;n protectora contra el da&ntilde;o  oxidativo inducido por el estr&eacute;s salino. Existen informes que plantean  que la aplicaci&oacute;n de prolina fue capaz de  disminuir la concentraci&oacute;n de H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> y aumentar la actividad de la enzima ascorbato peroxidasa (APX) en dos  cultivares de arroz que difieren en su tolerancia a la salinidad, mientras que  tambi&eacute;n aument&oacute; la actividad de las enzimas peroxidasa y catalasa en el  cultivar sensible, tanto en el periodo de estr&eacute;s como en la recuperaci&oacute;n (33). Otros  autores, tambi&eacute;n han demostrado que la aplicaci&oacute;n de prolina ex&oacute;gena disminuye  el da&ntilde;o oxidativo e incrementa las defensas antioxidantes en diferentes  cultivos bajo estr&eacute;s salino (34, 35).<br />       <br />         Al analizar los resultados sobre los  pigmentos clorof&iacute;licos, al final del tratamiento con NaCl, se observ&oacute; una  disminuci&oacute;n de la clorofila <em>a</em> y de las clorofilas totales en las  pl&aacute;ntulas estresadas; mientras que la aspersi&oacute;n foliar con esta concentraci&oacute;n  de BB-16 fue capaz de contrarrestar este efecto (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0820117.gif">Figura 8A</a>). En la  recuperaci&oacute;n, este comportamiento se mantuvo  en el caso de la clorofila <em>a</em> y por ende, en las clorofilas totales  (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0820117.gif">Figura 8B</a>). Este resultado concuerda con diferentes autores que han observado  la disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de este pigmento ante estr&eacute;s salino en  numerosos cultivos como: lechuga, arroz, pepino y trigo (23, 27, 28, 36).<br />     
  <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[    La reducci&oacute;n en el contenido de clorofila en las hojas en condiciones de estr&eacute;s  salino ha sido atribuida a varias causas: la destrucci&oacute;n de los pigmentos  clorof&iacute;licos por el incremento de la actividad clorofilasa y la supresi&oacute;n de  enzimas de la bios&iacute;ntesis como la porfobilin&oacute;geno desaminasa. Tambi&eacute;n puede  estar ocasionada por la interferencia de los iones salinos con la s&iacute;ntesis de  novo de prote&iacute;nas y componentes estructurales de la clorofila (37).<br />       <br />         La estimulaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de  clorofila <em>a</em> en las hojas de las plantas asperjadas con BB-16 y sometidas  al tratamiento con NaCl, confirma lo obtenido por otros autores quienes  han informado que el tratamiento a las semillas con brasin&oacute;lida,  24-epibrasin&oacute;lida y homobrasin&oacute;lida (3 &micro;mol L<sup>-1</sup>) disminuy&oacute; la  p&eacute;rdida de los pigmentos fotosint&eacute;ticos  provocada por el estr&eacute;s salino (NaCl  150 mmol L<sup>-1</sup>) en pl&aacute;ntulas de arroz (3).<br />       <br />         En otros cultivos, tambi&eacute;n se demostr&oacute; el efecto de los BRs en la restituci&oacute;n  de las mol&eacute;culas de clorofila ante estr&eacute;s salino. Por ejemplo, en <em>Phaseolus  vulgaris</em> y <em>Hordeum vulgare</em> el pretratamiento a las semillas con  brasinoesteroide (5 &micro;mol L<sup>-1</sup>) revirti&oacute; la disminuci&oacute;n del contenido  de clorofila provocado por el estr&eacute;s salino (150 mmol L<sup>-1</sup>)  alcanzando niveles similares a las plantas controles (26). De igual forma, la  aspersi&oacute;n foliar de EBL en plantas de frijol sometidas a estr&eacute;s salino revirti&oacute;  la disminuci&oacute;n en las clorofilas provocadas por este estr&eacute;s (22).<br />       <br />         En la <a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0920117.gif">Figura 9</a> se observan las respuestas de  las enzimas peroxidasa y catalasa de las pl&aacute;ntulas de arroz cultivar J-104  sometidas a estr&eacute;s salino. La actividad de ambas enzimas disminuy&oacute;  significativamente al finalizar el tratamiento con NaCl. La aspersi&oacute;n foliar  con BB-16 revirti&oacute; este comportamiento, incrementando la actividad espec&iacute;fica  de ambas enzimas (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0920117.gif">Figura 9A</a>).</span></p>     
<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Catorce d&iacute;as despu&eacute;s de la  recuperaci&oacute;n, se encontr&oacute; que las plantas tratadas con NaCl presentaron un  incremento significativo de las actividades de ambas enzimas y la aspersi&oacute;n  foliar de BB-16 no modific&oacute; este comportamiento (<a href="/img/revistas/ctr/v38n1/f0920117.gif">Figura 9B</a>).<br />   <br />   La influencia del an&aacute;logo BB-16 en el  comportamiento de algunas enzimas antioxidantes de pl&aacute;ntulas de arroz crecidas <em>in  vitro</em> en presencia de NaCl 75 mM, mostraron que la exposici&oacute;n durante 16  d&iacute;as al BB-16 0,01 mg L<sup>-1</sup> increment&oacute;, significativamente, la  actividad de las enzimas catalasa (CAT), super&oacute;xido dismutasa (SOD), glutati&oacute;n  reductasa y ligeramente la actividad de la ascorbato peroxidasa (3). Por otra  parte, la aplicaci&oacute;n de 1 &micro;mol L<sup>-1</sup> de DI-31, ingrediente activo del  BB-16, a plantas de lechuga sometidas a tratamiento de NaCl 100 mmol L<sup>-1</sup> durante cinco d&iacute;as fue capaz de revertir los efectos adversos que la salinidad  provoc&oacute; en estas plantas (38).<br />   <br />   En frijol sometido a estr&eacute;s salino, la  aspersi&oacute;n foliar de EBL caus&oacute; un incremento en la actividad SOD y no produjo  modificaciones en la actividad POX en  comparaci&oacute;n con las plantas controles (22).Igualmente, se obtuvo un incremento en la SOD y la CAT por la aplicaci&oacute;n  ex&oacute;gena de brasinoesteroides en  posturas de pepino sometidas a estr&eacute;s salino (23). Por otra parte, en guisante, el tratamiento a las semillas con EBL provoc&oacute; un incremento de la  actividad de las enzimas CAT, POX y SOD en comparaci&oacute;n con las plantas  controles (39). Recientemente, se ha  demostrado que, en arroz, la  efectividad de la aplicaci&oacute;n de la EBL en proteger a las pl&aacute;ntulas ante el  estr&eacute;s de metales pesados (Cr) est&aacute; asociada a la sobre-regulaci&oacute;n de las  enzimas antioxidantes (40).</span></p>     
<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">CONCLUSI&Oacute;N</span></strong></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">De forma general, se puede  concluir que la aspersi&oacute;n foliar con Biobras-16 estimula el crecimiento de las  plantas de arroz sometidas a estr&eacute;s salino lo que puede estar asociada a un  incremento de las actividades de las enzimas antioxidantes catalasa y  peroxidasa al finalizar el per&iacute;odo de estr&eacute;s, igualmente pudiera asociarse al  aumento en la concentraci&oacute;n de clorofilas, fundamentalmente de la clorofila <em>a.</em></span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></em></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">NOTAS AL PIE</span></strong></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><sup><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "><a href="#nA1">A</a><a name="nA" id="nA"></a></span></sup><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Orellana,  R.; Febles, J. y Ortega, F. <em>GEO Cuba. Evaluaci&oacute;n del medio ambiente cubano</em>.  Ed. Centenario SA, 2009, Santo Domingo, Rep&uacute;blica Dominicana, 293 p.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><em><sup><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "><a href="#nB1">B</a><a name="nB" id="nB"></a></span></sup></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Alfonso,  R. <em>Determinaci&oacute;n de par&aacute;metros gen&eacute;tico-fisiol&oacute;gicos indicadores del estr&eacute;s  h&iacute;drico para su empleo en el mejoramiento gen&eacute;tico del arroz (Oryza sativa L.)  y la estabilidad varietal</em>. Tesis de Doctorado, I.I.A., 1998.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><sup><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "><a href="#nC1">C</a><a name="nC" id="nC"></a></span></sup><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Yoshida,  S. <em>Fundamentals of rice crop science</em>. Ed. International Rice Research Institute, 1981, Los  Ba&ntilde;os, Philippines.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><strong><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:13.0pt; ">BIBLIOGRAF&Iacute;A</span></strong></p>     <!-- ref --><p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">1. FAO. <em>FAO Land and Plant Nutrition Management  Service</em> [en l&iacute;nea]. </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">2013, [Consultado:&nbsp;7 de mayo de 2013],  Disponible&nbsp;en: &lt;<a href="http://www.fao.org/ag/agl/agll/spush" target="_blank">http://www.fao.org/ag/agl/agll/spush</a>&gt;    <!-- ref -->.<br />   <br />   </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">2. Yang, C.-J.; Zhang, C.; Lu,  Y.-N.; Jin, J.-Q. y Wang, X.-L. &ldquo;The Mechanisms of Brassinosteroids Action:  From Signal Transduction to Plant Development&rdquo;. </span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Molecular  Plant</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">, vol. 4, no. 4, 2011, pp. 588-600, ISSN 1674-2052, DOI  10.1093/mp/ssr020.<br />   <br />     3. N&uacute;&ntilde;ez, M. <em>Brasinoesteroides y la respuesta de las plantas al estr&eacute;s  ambiental</em>. </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Ed. Ediciones  INCA, 2012, Mayabeque, Cuba, 80 p., ISBN 978-959-7023-57-9.<br />   <br />       4. Yusuf, M.; Fariduddin, Q. y Ahmad, A. &ldquo;24-Epibrassinolide modulates growth,  nodulation, antioxidant system, and osmolyte in tolerant and sensitive  varieties of <em>Vigna radiata</em> under different levels of nickel: A shotgun  approach&rdquo;. <em>Plant Physiology and Biochemistry</em>, vol. 57, 2012, pp.  143-153, ISSN 0981-9428, DOI 10.1016/j.plaphy.2012.05.004.<br />   <br />   </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">5.  N&uacute;&ntilde;ez, V. M.; Reyes, G. Y.; Rosabal, A. L. y Mart&iacute;nez, G. L. &ldquo;An&aacute;logos  espirost&aacute;nicos de brasinoesteroides y sus potencialidades de uso en la  agricultura&rdquo;. </span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Cultivos  Tropicales</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">, vol. 35, no. 2,  2014, pp. 34-42, ISSN 0258-5936.<br />   <br />     6. Fariduddin, Q.; Yusuf, M.; Ahmad, I. y Ahmad, A. &ldquo;Brassinosteroids and their  role in response of plants to abiotic stresses&rdquo;. </span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Biologia  Plantarum</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">, vol. 58, no. 1, 2014, pp. 9-17, ISSN 0006-3134,  1573-8264, DOI 10.1007/s10535-013-0374-5.<br />   <br />       7. N&uacute;&ntilde;ez, V. M. de la C. <em>An&aacute;logos de brasinoesteroides, <span style="letter-spacing:.35pt; ">nuevos productos para la agricultura</span></em> [en l&iacute;nea]. Ed. Editorial Acad&eacute;mica  Espa&ntilde;ola, 2013, Saarbr&uuml;cken, 64 p., ISBN 978-3-659-08256-6,  [Consultado:&nbsp;18 de noviembre de 2016], Disponible&nbsp;en:  &lt;http://nbn-resolving.de/urn:nbn:de:101:1-201312147447&gt;.<br />   <br />       8. Hern&aacute;ndez, J. A.; P&eacute;rez, J. J. M.; Bosch, I. D. y Castro, <span style="letter-spacing:.45pt; ">S. N. <em>Clasificaci&oacute;n de los suelos de Cuba 2015</em>. </span>Ed. Ediciones INCA, 2015, Mayabeque,  Cuba, 93 p., ISBN  978-959-7023-77-7.<br />   <br />       9. Paneque, P. V. M.; Cala&ntilde;a, N. J. M.; Calder&oacute;n, V. M.; Borges, B. Y.;  Hern&aacute;ndez, G. T. C. y Caruncho, C. M. <em>Manual de t&eacute;cnicas anal&iacute;ticas para  an&aacute;lisis de suelo, foliar, abonos org&aacute;nicos y fertilizantes qu&iacute;micos</em> [en  l&iacute;nea]. Ed. Ediciones INCA, 2010, La Habana, Cuba, 157 p., ISBN  978-959-7023-51-7, [Consultado:&nbsp;27 de enero de 2016], Disponible&nbsp;en:  &lt;<a href="http://mst.ama.cu/578/" target="_blank">http://mst.ama.cu/578/</a>&gt;.<br />   <br />   </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">10. Bates, L. S.; Waldren, R.  P. y Teare, I. D. &ldquo;Rapid determination of free proline for water-stress  studies&rdquo;. <em><span style="letter-spacing:.25pt; ">Plant and Soil</span></em>, vol. 39, no. 1, 1973, pp. 205-207, ISSN  0032-079X, 1573-5036, DOI 10.1007/BF00018060.<br />   <br />     11. Hodges, D. M.; DeLong, J. M.; Forney, C.  F. y Prange, R. K. &ldquo;Improving the thiobarbituric acid-reactive-substances  assay for estimating lipid peroxidation in plant tissues containing anthocyanin  and other interfering compounds&rdquo;. <em>Planta</em>, vol. 207, no. 4, 1999, pp.  604-611, ISSN 0032-0935, 1432-2048, DOI 10.1007/s004250050524.<br />   <br />     12. Arnon, D. I. &ldquo;Copper enzymes in isolated chloroplasts. polyphenoloxidase in <em>Beta vulgaris</em>&rdquo;. </span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Plant Physiology</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">,  vol. 24, no. 1, 1949, pp. 1-15, ISSN 0032-0889.<br />   <br />       13. Bergmeyer, H. U. &ldquo;Peroxidase&rdquo; [en l&iacute;nea]. En: eds. </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Bergmeyer H. U. y Gawehn K., <em>Methods of enzymatic  analysis. </em></span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Volume 4 Volume 4</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">,  Ed. Verlag Chemie, Weinheim, 1974, pp. 685-690, ISBN 978-0-323-16132-9,  [Consultado:&nbsp;18 de noviembre de 2016], Disponible&nbsp;en:  &lt;<a href="http://public.eblib.com/choice/publicfullrecord.aspx?p=1178409" target="_blank">http://public.eblib.com/choice/publicfullrecord.aspx?p=1178409</a>&gt;.<br />   <br />         14. Aebi, H. &ldquo;Catalase <em>in vitro</em>&rdquo;. </span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Methods in Enzymology</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">,</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> <span style="letter-spacing:.65pt; ">vol. 105, 1984,  pp. 121-126, ISSN 0076-6879, </span>DOI 10.1016/S0076-6879(84)05016-3.<br />   <br />           15. Bradford, M. 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Profesional), versi&oacute;n 5.1, [Windows], 2000, Disponible&nbsp;en:  &lt;<a href="http://www.statgraphics.com/statgraphics/statgraphics.nsf/pd/pdpricing" target="_blank">http://www.statgraphics.com/statgraphics/statgraphics.nsf/pd/pdpricing</a>&gt;    .<br />       <br />       </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">18. Rahdari, P. y Hoseini, S.  M. &ldquo;Salinity stress: a review&rdquo;. <em>Technical Journal of Engineering and Applied  Sciences</em>, vol. 1, no. 3, 2011, pp. 63&ndash;66, ISSN 2051-0853.<br />       <br />       </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">19.  Morales, D.; Bolar&iacute;n, M. del C. y Cayuela, E. &ldquo;Respuesta de plantas de arroz (<em>Oryza  sativa</em> L.) a la aplicaci&oacute;n de diferentes niveles de NaCl. I. Crecimiento y  relaciones h&iacute;dricas&rdquo;. </span><em><span style="line-height:107%; letter-spacing:.25pt; font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Cultivos Tropicales</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">, vol. 27, no. 4, 2006,</span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; "> pp. 27&ndash;33, ISSN 1819-4087.<br />       <br />         20. Negr&atilde;o, S.; Courtois, B.; Ahmadi, N.; Abreu, I.; Saibo, N. y Oliveira, M.  M. &ldquo;Recent Updates on Salinity Stress in Rice: From Physiological to Molecular  Responses&rdquo;. <em>Critical Reviews in Plant Sciences</em>, vol. 30, no. 4, <span style="letter-spacing:1.15pt; ">2011, pp. 329-377, ISSN 0735-2689, 1549-7836</span>,  DOI 10.1080/07352689.2011.587725.<br />       <br />       </span><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">21.  N&uacute;&ntilde;ez, V. M.; Reyes, G. Y.; Rosabal, A. L.; Mart&iacute;nez, L. y Gonz&aacute;lez, C. M. C.  &ldquo;Brasinoesteroides y sus an&aacute;logos estimulan el crecimiento de pl&aacute;ntulas de dos  genotipos de arroz (<em>Oryza sativa</em> L.) en medio salino&rdquo;. </span><em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Cultivos Tropicales</span></em><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">, vol. 34, no. 1, 2013, pp. 74-80, ISSN 0258-5936.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[    22. Rady, M. M. &ldquo;Effect of 24-epibrassinolide on growth, yield, antioxidant  system and cadmium content of bean (<em>Phaseolus vulgaris</em> L.) plants under  salinity and cadmium stress&rdquo;. <em>Scientia  Horticulturae</em>, vol. 129, no. 2,  2011, pp. 232-237, ISSN 0304-4238, DOI 10.1016/j.scienta.2011.03.035.<br />       <br />         23. Jiang, Y. P.; Cheng, F.; Zhou, Y. H.; Xia, X. J.; Mao, W. H.; Shi, K.;  Chen, Z. X. y Yu, J. Q. &ldquo;Brassinosteroid-induced CO<sub>2</sub> assimilation is  associated with increased stability of redox-sensitive photosynthetic enzymes  in the chloroplasts in cucumber plants&rdquo;. <em>Biochemical and Biophysical  Research Communications</em>, vol. 426, no. 3, 2012, pp. 390-394, ISSN  0006-291X, DOI 10.1016/j.bbrc.2012.08.100.<br />       <br />         24. Talaat, N. B. y Shawky, B. T. &ldquo;24-Epibrassinolide alleviates salt-induced  inhibition of productivity by increasing nutrients and compatible solutes  accumulation and enhancing antioxidant system in wheat (<em>Triticum aestivum</em> L.)&rdquo;. <em>Acta Physiologiae Plantarum</em>, vol. 35, no. 3, 2013, pp. 729-740, ISSN 0137-5881, 1861-1664, DOI  10.1007/s11738-012-1113-9.<br />       <br />         25. &Ouml;zdemir, F.; Bor, M.; Demiral, T. y T&uuml;rkan, &#304;. &ldquo;Effects of  24-epibrassinolide on seed germination, seedling growth, lipid peroxidation,  proline content and antioxidative system of rice (<em>Oryza sativa</em> L.) under  salinity stress&rdquo;. <em>Plant Growth Regulation</em>, vol. 42, no. 3, 2004, pp. 203-211, ISSN  0167-6903, DOI 10.1023/B:GROW.0000026509.25995.13.<br />       <br />         26. Ali, A. A. y Abdel-Fattah, R. I.  &ldquo;Osmolytes-antioxidant behaviour in <em>Phaseolus vulgaris</em> and <em>Hordeum  vulgare</em> with brassinosteroid under salt stress&rdquo;. <em>Journal of Agronomy</em>,  vol. 5, no. 1, 2006, pp. 167&ndash;174, ISSN 1812-5379.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[    27. Siringam, K.; Juntawong, N.;  Cha-um, S. y Kirdmanee, C. &ldquo;Salt stress induced ion accumulation, ion  homeostasis, membrane injury and sugar contents in salt-sensitive rice (<em>Oryza  sativa</em> L. spp. indica) roots under isoosmotic conditions&rdquo;. <em>African Journal of Biotechnology</em>, vol. 10, no.  8, 2011, pp. 1340-1346, ISSN 1684-5315.<br />       <br />         28. Ekinci, M.; Yildirim, E. y Dursun, A. &ldquo;Mitigation of Salt Stress in Lettuce  (<em>Lactuca sativa</em> L. var. Crispa) by Seed and Foliar 24-epibrassinolide  Treatments&rdquo;. <em>HortScience</em>, vol. 47, no. 5, 2012, pp. 631-636, ISSN  0018-5345, 2327-9834.<br />       <br />         29. Abd El-Samad, H. M.; Shaddad, M. A. K. y  Barakat, N. &ldquo;The role of amino acids in improvement in salt tolerance of crop  plants&rdquo;. <em>Journal of Stress Physiology &amp; Biochemistry</em>, vol. 6, no. 3,  2010, pp. 25-37, ISSN 1997-0838.<br />       <br />       <span style="letter-spacing:-.25pt; ">30. Amini, F. y Ehsanpour, A. A.  &ldquo;Soluble proteins, proline, carbohydrates and Na<sup>+</sup>/K<sup>+</sup> changes in two tomato (<em>Lycopersicon esculentum</em> Mill.) cultivars under <em>in  vitro</em> salt stress&rdquo;. <em>American Journal of Biochemistry and Biotechnology</em>,  vol. 1, no. 4, 2005, pp. 212-216, ISSN 1553-3468.<br />       <br />       </span>31. Ben Rejeb, K.; Abdelly, C. y Savour&eacute;, A. &ldquo;How reactive oxygen  species and proline face stress together&rdquo;. <em>Plant Physiology and Biochemistry</em>,  vol. 80, 2014, pp. 278-284, ISSN 0981-9428, DOI 10.1016/j.plaphy.2014.04.007.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[    32. Hamilton, E. W. y Heckathorn, S. A. &ldquo;Mitochondrial Adaptations to NaCl.  Complex I Is Protected by Anti-Oxidants and Small Heat Shock Proteins, Whereas  Complex II Is Protected by Proline and Betaine&rdquo;. <em>Plant Physiology</em>, vol. 126, no. 3, 2001, pp. 1266-1274, ISSN 1532-2548, DOI  10.1104/pp.126.3.1266.<br />       <br />         33. Nounjan, N. y Theerakulpisut, P. &ldquo;Effects of exogenous proline and  trehalose on physiological responses in rice seedlings during salt-stress and  after recovery&rdquo;. <em>Plant Soil Environ</em>, vol. 58, no. 7, 2012, pp. 309&ndash;315, ISSN  1805-9368.<br />       <br />         34. Hossain, M. A. y Fujita, M. &ldquo;Evidence for a role of exogenous  glycinebetaine and proline in antioxidant defense and methylglyoxal  detoxification systems in mung bean seedlings under salt stress&rdquo;. <em>Physiology <span style="letter-spacing:-.45pt; ">and </span>Molecular Biology of Plants</em>,  vol. 16, no. 1, 2010, pp. 19-29, ISSN  0971-5894, 0974-0430, DOI 10.1007/s12298-010-0003-0.<br />       <br />         35. Ben Ahmed, C.; Ben Rouina, B.; Sensoy, S.; Boukhriss, M. y Ben  Abdullah, F. &ldquo;Exogenous Proline Effects on Photosynthetic Performance and  Antioxidant Defense System of Young Olive Tree&rdquo;. <em>Journal of Agricultural and  Food Chemistry</em>, vol. 58, no. 7, 2010, pp. 4216-4222, ISSN 0021-8561, DOI  10.1021/jf9041479.<br />       <br />         36. Zheng, C.; Jiang, D.; Liu, F.; Dai, T.; Jing, Q. y Cao, W. &ldquo;Effects of salt  and waterlogging stresses and their combination on leaf photosynthesis,  chloroplast ATP synthesis, and antioxidant capacity in wheat&rdquo;. <em>Plant Science</em>,  vol. 176, no. 4, 2009, pp. 575-582, ISSN  0168-9452, DOI 10.1016/j.plantsci.2009.01.015.<br />       <br />     ]]></body>
<body><![CDATA[    37. Shahid, M. A.; Pervez, M. A.; Balal, R. M.; Ayyub, C. M.; Ghazanfar, U.;  Abbas, T.; Rashid, A.; Garcia-Sanchez, F.; Mattson, N. S. y Akram, A. &ldquo;Effect  of salt stress on growth, gas exchange attributes and chlorophyll contents of  pea (<em>Pisum sativum</em>)&rdquo;. <em>African Journal of Agricultural <span style="letter-spacing:.55pt; ">Research</span></em>, vol. 6, no. 27, 2011, pp. 5808&ndash;5816, ISSN 1991-637X, DOI  10.5897/AJAR11.1087.<br />       <br />         38. Serna, M.; Coll, Y.; Zapata, P. J.;  Botella, M. &Aacute;.; Pretel, M. T. y Amor&oacute;s, A. &ldquo;A brassinosteroid analogue  prevented the effect of salt stress on ethylene synthesis and polyamines in  lettuce plants&rdquo;. <em>Scientia </em><em>Horticulturae</em>, vol. 185, 2015, pp. 105-112, ISSN 0304-4238,  DOI 10.1016/j.scienta.2015.01.005.<br />       <br />         39. Shahid, M. A.; Pervez, M. A.; Balal, R.  M.; Mattson, N. S.; Rashid, A.; Ahmad, R.; Ayyub, C. M. y Abbas, T.  &ldquo;Brassinosteroid (24-epibrassinolide) enhances growth and alleviates the  deleterious effects induced by salt stress in pea (<em>Pisum sativum</em> L.)&rdquo;. <em>Australian  Journal of Crop Science</em>, vol. 5, no. 5, 2011, pp. 500-510, ISSN  1835-2707.<br />       <br />         40. Sharma, P.; Kumar, A. y Bhardwaj, R. &ldquo;Plant steroidal hormone  epibrassinolide regulate &ndash; Heavy metal stress tolerance in <em>Oryza sativa</em> L. by modulating antioxidant defense expression&rdquo;. <em>Environmental and  Experimental Botany</em>, vol. 122, 2016, pp. 1-9, ISSN 0098-8472,  DOI 10.1016/j.envexpbot.2015.08.005.</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">&nbsp;</span></p>     <p class="MsoNormal" style="text-align:justify;"><span style="font-family:'Verdana','sans-serif'; font-size:10.0pt; ">Recibido: 09/12/2015<br />   Aceptado: 29/04/2016</span></p>     ]]></body>
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