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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The use of systems to detect the presence of 24kd protein as well as the levels of antibodies to it, is very useful in the follow-up of HIV-1 infected individuals. To develop these systems it is necessary to have this protein purified. The present paper describes the purification of p24 starting from the semipurified viral flattening on saccaharose gradient, using immunoaffinity chromatography with monoclonal antibodies coupled to Sepharosa 4B activaded with cyanogen bromide. For the characterization of the purified product it was used polyacrylamide gel electrophoresis with silver staining and immunoelectrotransference. As a result, it was obtained p24 which can be used for the development of diagnostic tools and monoclonal antibodies.]]></p></abstract>
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RENE GRANA SANCHEZ, Dr. ELADIO SILVA, Lic. NANCY RUIZ y Lic. MARIA TERESA    PEREZ<SUP>1</SUP> </p> <h4><B>RESUMEN</B></h4> En el seguimiento de las personas infectadas con el VIH-1 resulta de gran utilidad    el empleo de sistemas para detectar la presencia de prote&iacute;na de 24 KD    y los niveles de anticuerpos a &eacute;sta; para el desarrollo de estos sistemas    es necesario contar con esta prote&iacute;na purificada. El presente trabajo    describe la purificaci&oacute;n de p24 a partir de lisado viral semipurificado    sobre gradiente de sacarosa, empleando cromatograf&iacute;a de inmunoafinidad    con anticuerpos monoclonales acoplados a Sefarosa 4B activada con bromuro de    cian&oacute;geno. Para la caracterizaci&oacute;n del producto purificado se    utiliz&oacute; electroforesis en gel de poliacrilamida con tinci&oacute;n de    plata e inmunoelectrotransferencia. Como resultado de este trabajo se obtuvo    p24 &uacute;til para ser empleada en el desarrollo de medios diagn&oacute;sticos    y anticuerpos monoclonales.        <P>Palabras clave: PROTEINA P24 DEL NUCLEO DEL VIH/aislamiento &amp; purificaci&oacute;n;      HIV-1/aislamiento &amp; purificaci&oacute;n; CROMATOGRAFIA DE AFINIDAD; ELECTROFORESIS      EN GEL DE POLIACRILAMIDA; ESTUDIOS DE SEGUIMIENTO.   <h4> <B>INTRODUCCION</B></h4>   La p24, principal prote&iacute;na de la nucleoc&aacute;pside del virus   de la inmunodeficiencia humana tipo 1 (VIH-1),<SUP>2</SUP> compone la membrana   externa del n&uacute;cleo del virus y est&aacute; involucrada en la formaci&oacute;n   de las estructuras capsulares y el empaquetamiento del ARN del genoma viral.<SUP>2</SUP>          <P>Los individuos infectados con el VIH-1, desarrollan una respuesta inmune   contra todas las prote&iacute;nas del virus, incluidos los productos de   los genes regulatorios y estructurales. Esta respuesta se caracteriza por   el desarrollo de diferentes patrones serol&oacute;gicos, relacionados con   la progresi&oacute;n de la infecci&oacute;n. La presencia de anticuerpos   contra las prote&iacute;nas de la envoltura gp41 y gp120 se mantiene a   lo largo de toda la infecci&oacute;n, mientras que hay una disminuci&oacute;n   de anticuerpos anti-p24, con antigenemia detectable,<SUP>3-5</SUP> debido   a que, al incrementarse la producci&oacute;n viral, la p24 en aumento se   acompleja con la anti-p24.<SUP>5,6</SUP> Este fen&oacute;meno ha sido utilizado   como marcador de la progresi&oacute;n del VIH-1.<SUP>4</SUP> Por otra parte,   la posibilidad de detectar p24 en los primeros estadios de la infecci&oacute;n   y durante la enfermedad, es usado como m&eacute;todo de rutina para monitorear   la respuesta a la quimioterapia antiviral.<SUP>7,8</SUP>          <P>En el presente estudio nos propusimos purificar p24 con el objetivo   de desarrollar medios diagn&oacute;sticos (ELISA de captura de ant&iacute;geno   p24 y anticuerpos p24),<SUP>7,8</SUP> &uacute;tiles para el seguimiento   cl&iacute;nico y de la terapia antiviral en personas infectadas por el   VIH.   <H3>   <B>MATERIAL Y METODO</B></H3>   <I>Purificaci&oacute;n de anticuerpos monoclonales anti-p24</I>. Se emplearon   anticuerpos monoclonales de la subclase IgG<SUB>2</SUB>b que reaccionan   contra la p24 del VIH-1 y que fueron suministrados por el laboratorio de   anticuerpos monoclonales del LI-SIDA. Estos anticuerpos se purificaron   a partir de l&iacute;quido asc&iacute;tico, por cromatograf&iacute;a de   afinidad en prote&iacute;na A Sefarosa CL-4B. A la columna estabilizada   con soluci&oacute;n tamp&oacute;n PBS pH 7,2-7,4; le fue aplicado el l&iacute;quido   asc&iacute;tico diluido 1:2 en la misma soluci&oacute;n, con un volumen   final igual al de la resina. La elusi&oacute;n se realiz&oacute; con soluci&oacute;n   tamp&oacute;n 0,1 M &aacute;cido c&iacute;trico pH 4,0. Las fracciones   fueron colectadas y dializadas contra soluci&oacute;n tamp&oacute;n 0,1   M NaHCO<SUB>3</SUB>, 0,5 M NaCl pH 8,3.<SUP>9</SUP>          <P><I>Acoplamiento de los anticuerpos monoclonales purificados</I>. Los   anticuerpos monoclonales anti-p24 fueron acoplados a Sefarosa 4B activada   con bromuro de cian&oacute;geno (Pharmacia-LKB) seg&uacute;n metodolog&iacute;a   descrita por el fabricante.<SUP>10</SUP>          <P><I>Obtenci&oacute;n del preparado viral</I>. El ant&iacute;geno se obtiene   a partir de sobrenadante del d&iacute;a de m&aacute;xima producci&oacute;n   de cultivos de c&eacute;lulas CCRF-CEM infectadas con la cepa LAV-1 Bru   y purificado por gradiente de sacarosa.          <P><I>Purificaci&oacute;n de la p24</I>. El preparado viral fue pasado   por la columna de anti-p24 acoplado a Sefarosa 4B activada con bromuro   de cian&oacute;ge-no, se eluy&oacute; con soluci&oacute;n tamp&oacute;n   0,1 M glicina pH 2,8; se detect&oacute; la absorbancia a 256 nm y las fracciones   fueron dializadas contra soluci&oacute;n tamp&oacute;n 0,1 M NaHCO<SUB>3</SUB>   pH 9,6.          <P><I>Determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas</I>.   Para determinar la concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas se emple&oacute;   el m&eacute;todo de Lowry.<SUP>11</SUP>          ]]></body>
<body><![CDATA[<P><I>Criterio de pureza y determinaci&oacute;n del peso molecular</I>.   Se realiz&oacute; electroforesis en gel de poliacrilamida al 10 % utilizando   prote&iacute;nas patrones de bajo peso molecular (Biorad) y se ti&ntilde;eron   con nitrato de plata.<SUP>12</SUP> Con el objetivo de determinar el peso   molecular de la p24 purificada se midieron las Rf de las prote&iacute;nas   patrones y de la p24 y se graficaron al log de su peso molecular.<SUP>13</SUP>          <P><I>Caracterizaci&oacute;n inmunol&oacute;gica</I>. La p24 purificada   se enfrent&oacute; a un panel de sueros positivos y negativos a VIH-1,   as&iacute; como a un anticuerpo monoclonal anti-p24, mediante la t&eacute;cnica   de inmunoelectrotransferencia, con el objetivo de comprobar la permanencia   de su actividad biol&oacute;gica a lo largo del proceso de purificaci&oacute;n.<SUP>12</SUP>   <H3>   <B>RESULTADOS</B></H3>   En la figura 1 correspondiente a la tinci&oacute;n con nitrato de plata,   se puede apreciar una banda de prote&iacute;nas de aproximadamente 24 KD   si se compara con prote&iacute;nas patrones de bajo peso molecular. En   los datos de la figura 2, donde se grafican las Rf medidas seg&uacute;n   la migraci&oacute;n de las prote&iacute;nas patrones frente al log de sus   pesos moleculares, se define que el peso molecular de la prote&iacute;na   purificada est&aacute; por los 24 KD. La figura 3 responde a la inmunoelectrotransferencia   de la prote&iacute;na purificada frente a sueros positivos y negativos   al VIH-1, y a anticuerpos monoclonales anti-p24, el ant&iacute;geno de   VIH-1 s&oacute;lo se enfrent&oacute; a suero control positivo.   <H3>   <B>DISCUSION</B></H3>   Al no apreciarse en la figura 1 ninguna banda contaminante, se puede concluir   que la p24 tiene un alto grado de pureza. Se constat&oacute;, en la inmunoelectrotransferencia,   la presencia de una banda proteica al mismo nivel de la p24 del ant&iacute;geno   de VIH-1, este hecho confirma que la prote&iacute;na que aparece en la   tinci&oacute;n con nitrato de plata (figura 1), no es otra que la p24 natural.   Otra conclusi&oacute;n a la que podemos llegar es que, durante la purificaci&oacute;n,   la p24 natural no pierde su inmunogenicidad pues reaccion&oacute; de manera   satisfactoria frente a sueros positivos y al anticuerpo monoclonal. Por   otra parte, al analizar un panel de sueros negativos, &eacute;stos resultaron   no reactivos, de lo que se infiere que la p24 purificada es muy espec&iacute;fica   y pudiera ser utilizada en el desarrollo de medios diagn&oacute;sticos.<SUP>24</SUP>   <H3>   <B>SUMMARY</B></H3>   <B>The use of systems to detect the presence of 24kd protein as well as   the levels of antibodies to it, is very useful in the follow-up of HIV-1   infected individuals. To develop these systems it is necessary to have   this protein purified. The present paper describes the purification of   p24 starting from the semipurified viral flattening on saccaharose gradient,   using immunoaffinity chromatography with monoclonal antibodies coupled   to Sepharosa 4B activaded with cyanogen bromide. For the characterization   of the purified product it was used polyacrylamide gel electrophoresis   with silver staining and immunoelectrotransference. As a result, it was   obtained p24 which can be used for the development of diagnostic tools   and monoclonal antibodies.</B>          <P><B>Key words: HIV CORE PROTEIN P24/isolation &amp; purification; HIV-1/isolation   &amp; purification; CHROMATOGRAPHY, AFFINITY; ELECTROPHORESIS: POLYACRYLAMIDE   GEL; FOLLOW-UP STUDIES.</B>   <H3>   <B>REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS</B></H3>      <OL>       <LI>   <FONT SIZE=-1>Lindhardt BO, Pedersen C, Ulirich K, Kusk P. A comparison   of three methods for detection of antibodies against the major core protein   p24 of human immunodeficiency virus. J Virol Methods 1988;22(2-3):119-24.</FONT></LI>          <LI>   <FONT SIZE=-1>Arnold E, Gail FA. Human immunodeficiency virus structure:   implications for antiviral desing. Adv Virus Research 1991;39(1):1-87.</FONT></LI>          <LI>   <FONT SIZE=-1>Gaines H. Respuesta de anticuerpos en la infecci&oacute;n   primaria por el virus de la inmunodeficiencia humana. Lancet 1987;11(4):290-4.</FONT></LI>          <LI>   <FONT SIZE=-1>Kaleebu P, Cheingsong-Popov R, Callow D, Katabira E, Mobiru   F, Biryahwaho B, et al. Comparative humoral responses to HIV-1 sp24 (sup   gag) and gp120 (sup env) in subjects from East Africa and the U.K. J AIDS   1991;5: 1015-9.</FONT></LI>          <LI>   <FONT SIZE=-1>Weber JN, Weiss RA, Roberts C, Weller I, Teddet RS, Clapham   PR, et al. Human immunodeficiency virus infection in two cohorts of homosexual   men: neutralising sera and association of anti-GAG antibody with prognosis.   Lancet 1987;1:119-21.</FONT></LI>          <LI>   <FONT SIZE=-1>Eyster ME, Ballard JO, Gail MH, Drummond JE, Goedert JUJ.   Immunodeficiency syndrome (AIDS) in hemophiliacs: persistence of p24 antigen   and low T4 cell count. Ann Intern Med 1989;110(12):963-9.</FONT></LI>          <LI>   <FONT SIZE=-1>Kenny C, Parkin J, Underhill G, Shah N, Burnell B, Osborne   E. HIV antigen testing. Lancet 1987;(8532):565-6.</FONT></LI>          ]]></body>
<body><![CDATA[<LI>   <FONT SIZE=-1>Ben&iacute;tez JV, Rivero J, Cazalvilla R, Serrano M. Follow-up   of HIV-infected individuals by semiquantitative detection of antibodies   to p24 in ELISA. Serodiagn Immunother Infect Dis 1994;6:113-6.</FONT></LI>          <LI>   <FONT SIZE=-1>Kusk P, Ulirich K, Zeuthem J, Pallesen G. Immunological characterization   and detection of the major core protein p24 of the human immunodeficiency   virus (HIV) using monoclonal antibodies. AIDS 1988;1:326-32.</FONT></LI>          <LI>   <FONT SIZE=-1>Affinity Chromatography. Principles &amp; methods. Pharmacia   LKB Biotechnology, S-751 Uppsala, Sweden, 1988.</FONT></LI>          <LI>   <FONT SIZE=-1>Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Rondall RJ. Protein measurement   whith the folin phenol reagent. J Biological Chemistry 1951;193:265-75.</FONT></LI>          <LI>   <FONT SIZE=-1>Tsang VCW, Hancock K, Wilson M, Palmer DF, Whaley S, Mc Dougal   JS, et al. Enzyme-linked immunoelectrotransfer blot technique (EITB) (Western   blot) for HTLV-III/LAV antibodies. Atlanta: CDC, 1985.</FONT></LI>          <LI>   <FONT SIZE=-1>SDS-PAGE. Molecular weigth standards, high, low and broad   range. Cat&aacute;logo 161-0303. Biorad Laboratories, 2000 Alfred Nobel   Dr., Hercules, CA 94547.</FONT></LI>          <LI>   <FONT SIZE=-1>Scott WB, Billman JR, Alber TR. Rapid and efficient purification   of mouse monoclonal antibodies from ascites fluid using high perfomance   liquid chromatography. J Immunological Methods 1984;69:33-42.</FONT></LI>       </OL>   Recibido: 7 de julio de 1995. Aprobado: 23 de diciembre de 1995.          <P>Lic. <I>Ren&eacute; Grana S&aacute;nchez</I>. Centro de Investigaciones Cient&iacute;ficas    de la Defensa Civil. Apartado 23031, Habana 14, San Jos&eacute; de Las Lajas,    La Habana, Cuba.     <DIV ALIGN=right> <H5>&nbsp;</H5> </DIV>          ]]></body>
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