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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Normalización de la dosis letal 50 % de cepas de Leptospira interrogans utilizadas en el control de la vacuna antileptospirósica cubana para uso humano]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Parasitologists from different medical institutions in Havana City carried out he external validation of ENZYMEBA, a diagnostic procedure of intestinal amebiasis developed at the «Pedro Kourí» Institute of Tropical Medicine. To this end, serial faeces specimens from 212 individuals were collected and observed on the microscope (reference test). The ENZYMEBA immunoassay (validation test) was also made. On comparing ENZYMEBA with the microscopic examination, satisfactory indexes of sensitivity and specificity were found. No cross-reactions were detected in faeces specimens, where found other parasites were present, too. Taking into account that only one faeces specimen per patient is enough for the diagnosis of intestinal amebiasis with ENZYMEBA, this procedure may be useful in studies of therapeutical efficacy and prevalence.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <P>Instituto "Finlay" </P> <H2>Normalizaci&oacute;n de la dosis letal 50 % de cepas de <I>Leptospira interrogans</I> utilizadas en el control de la vacuna antileptospir&oacute;sica cubana para uso humano</H2>     <P><A HREF="#autores"><I>Lic. Esther Mar&iacute;a Fajardo,<SUP>1</SUP> Lic. Bernardo Ortiz,<SUP>2</SUP> Dra. Adelina Ch&aacute;vez,<SUP>3</SUP> Dra. Noem&iacute; Ga&iacute;nza,<SUP>4</SUP> Lic. Luis Izquierdo,<SUP>5</SUP> T&eacute;c. Yaumara Hern&aacute;ndez,<SUP>6</SUP> T&eacute;c. Iyalili Labrador<SUP>6</SUP> y T&eacute;c. Eduardo &Aacute;lvarez<SUP>7</sup></I></A> </P> <H4>RESUMEN</H4>     <P>Se normaliz&oacute; la DL<SUB>50</SUB> de las cepas de <I>Leptospira interrogans</I> utilizadas en el ensayo de potencia de la vacuna antileptospir&oacute;sica trivalente cubana para uso humano. Se introdujo en la metodolog&iacute;a el control del contenido de leptospiras de los cultivos mediante diluci&oacute;n de ajuste (10 a 12 leptospiras por campo). &Eacute;sta fue la clave de la normalizaci&oacute;n del ensayo, por garantizar la reproducibilidad del valor estimado de DL<SUB>50</SUB> de cada serogrupo: 10<SUP>5,98</SUP> para<I> canicola</I>, 10<SUP>5,60</SUP> para <I>icterohaemorrhagiae</I> y 10<SUP>6,49</SUP> para <I>pomona,</I> con l&iacute;mites de 1 log<SUB>10</SUB> de 10<SUP>4,98</SUP> - 10<SUP>6,9</SUP>; 10<SUP>4,60</SUP>- 10<SUP>6,60</SUP> y 10<SUP>5,49</SUP> -10<SUP>7,49</SUP> respectivamente, y para un intervalo de confianza de 95 % (<FONT FACE="Symbol,Times">±</FONT>2 DE) fueron 10<SUP>5,54</SUP> - 10<SUP>6,19</SUP>; 10<SUP>5,33</SUP> - 10<SUP>5,75</SUP> y 10<SUP>6,35</SUP> - 10<SUP>6,60</SUP> respectivamente, que son inferiores a los anteriores, lo que implica a&uacute;n mayor reproducibilidad. La metodolog&iacute;a descrita fue satisfactoria en la normalizaci&oacute;n de la DL<SUB>50</SUB> de las cepas de reto y podr&iacute;a ser utilizada tambi&eacute;n en la evaluaci&oacute;n de la virulencia de otras cepas de <I>L.interrogans</I>, incluidas las de producci&oacute;n de la vacuna. </P>     <P>Descriptores DeCs: DOSIFICACION LETAL MEDIANA; LEPTOSPIRA INTERROGANS/inmunolog&iacute;a; LEPTOSPIRA INTERROGANS/aislamiento &amp; purificaci&oacute;n; VACUNAS BACTERIANAS; CUBA. </P>     <P>La leptospirosis es una enfermedad de amplia difusi&oacute;n en todo el mundo. Su agente causal es <I>Leptospira interrogans</I>, se reportan m&aacute;s de 50 especies animales que sirven de reservorio a este microorganismo (roedores, insect&iacute;voros, carn&iacute;voros, primates, ranas, serpientes, lagartos, peces, etcet&eacute;ra), por lo que se encuentra en constante circulaci&oacute;n en el entorno natural e infectan a los animales dom&eacute;sticos y al hombre. Desde el punto de vista epidemiol&oacute;gico la leptospirosis se considera una zoonosis. El agua contaminada es uno de los factores que m&aacute;s contribuyen a su diseminaci&oacute;n.<SUP>1,2</SUP> </P>     <P>Las medidas de prevenci&oacute;n son m&uacute;ltiples y entre ellas se destacan el control de roedores, la higiene del medio ambiente, y la vacunaci&oacute;n de animales y personas con alto riesgo de padecer la leptospirosis.<SUP>2-5</SUP> </P>     <P>Las vacunas utilizadas para estos fines se controlan en el laboratorio durante su proceso de producci&oacute;n mediante diferentes ensayos. Uno de ellos es el de potencia, el cual mide la protecci&oacute;n que confiere el producto a animales inmunizados que reciben una dosis conocida de leptosopiras virulentas, la cual se expresa cuantitativamente y su unidad de medida es la dosis letal 50 % (DL<SUB>50</SUB>). Este t&eacute;rmino es muy utilizado para expresar la magnitud de la virulencia de microorganismos (virus, bacterias) y la toxicidad de sustancias sintetizadas por &eacute;stos. Se define en general como la menor cantidad de g&eacute;rmenes virulento o de toxina que al administrarse por la v&iacute;a apropiada a un n&uacute;mero de animales susceptibles, provoca la muerte de la mitad de &eacute;stos (50 %) al t&eacute;rmino de un per&iacute;odo dado. </P>     <P>En la producci&oacute;n de vacunas, las dosis de reto o de confrontaci&oacute;n de los animales inmunizados correspondientes al ensayo de potencia se refieren siempre en t&eacute;rminos de DL<SUB>50</SUB>.<SUP>6-10</SUP> &Eacute;sta a su vez se puede expresar de diferentes maneras: como g&eacute;rmenes por dosis, t&iacute;tulos, diluci&oacute;n, unidades arbitrarias, unidades de masa o volumen (en el caso de toxinas), etc&eacute;tera. </P>     <P>En relaci&oacute;n con la vacuna antileptospir&oacute;sica, las cepas usadas en la producci&oacute;n deben mantener altos niveles de virulencia para lograr un preparado de calidad; este par&aacute;metro se controla mediante la evaluaci&oacute;n de la DL<SUB>50</SUB> , al igual que en las cepas destinadas al ensayo de potencia, donde se necesita adem&aacute;s que el valor estimado sea reproducible para garantizar dosis de confrontaci&oacute;n que contengan de 10 a 10 000 DL<SUB>50</SUB>, como se especifica en algunos documentos regulatorios.<SUP>9,10</SUP> </P>     <P>La Dl<SUB>50</SUB> de <I>L. interrogans</I>, al igual que para otras bacterias y virus, se determina mediante un ensayo biol&oacute;gico consistente en inocular diluciones seriadas (generalmente con factor igual a 10)preparadas a partir de una suspensi&oacute;n virulenta del microorganismo, las cuales se inoculan en h&aacute;msters u otros animales de laboratorio que sean susceptibles. Este ensayo es muy espec&iacute;fico, pero est&aacute; sometido a grandes variaciones debidas sobre todo a la naturaleza biol&oacute;gica de sus componentes fundamentales: animales y microorganismos. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Por estas 2 razones es muy importante, cuando se define la DL<SUB>50</SUB> de un germen determinado, fijar todos los par&aacute;metros posibles bajo los cuales se desarrolla satisfactoriamente el ensayo, para que los valores calculados sean reproducibles y, por tanto, &uacute;tiles para los fines a los que est&aacute;n destinados. El primer par&aacute;metro que se debe controlar es la conservaci&oacute;n de la virulencia de las cepas. La liofilizaci&oacute;n es una forma muy usada para estos fines, sobre todo si se trata de microorganismos que intervienen en la producci&oacute;n y el control de vacunas por sus m&uacute;ltiples ventajas, entre ellas, la facilidad de almacenamiento a largo plazo en condiciones normales de refrigeraci&oacute;n (2 a 8EC) y la garant&iacute;a de la integridad de las cepas al utilizar el sistema de lotes semilla recomendado por la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud (OMS),<SUP>11</SUP> que implica reproducibilidad en los procesos y ensayos donde sean utilizadas las cepas. </P>     <P><I>L. interrogans</i> pierde con facilidad su virulencia cuando se somete a pases repetidos por medios de cultivo; la liofilizaci&oacute;n no ha sido la forma m&aacute;s exitosa para su conservaci&oacute;n,<SUP>12</SUP> lo cual limita la posibilidad de aplicar correctamente el sistema de lotes semilla. El mantenimiento en nitr&oacute;geno l&iacute;quido ha mostrado ser apropiado,<SUP>13</SUP> pero resulta costoso y limitado. El uso de medios semis&oacute;lidos es frecuente, aunque tiene el inconveniente de que no conserva la virulencia por largo tiempo; algunas publicaciones refieren que <I>L. interrogans</I> se mantiene virulenta mediante pases por animales susceptibles,<SUP>3,14</SUP> y en el caso espec&iacute;fico de las cepas de confrontaci&oacute;n, el d&iacute;a del ensayo se recuperan los g&eacute;rmenes de macerados de h&iacute;gado de animales moribundos con los que se preparan las suspensiones para retar a los animales inmunizados.<SUP>14</SUP> Este m&eacute;todo es muy laborioso y no permite un buen control del in&oacute;culo. Otras referencias no especifican c&oacute;mo se deben conservar las cepas de reto virulentas.<SUP>9,10,15</SUP> </P>     <P>El segundo par&aacute;metro en importancia se relaciona con el cultivo: medio, edad y condiciones en que debe mantenerse hasta el momento de ser utilizado. El tercero se refiere al ajuste de la suspensi&oacute;n a partir de la cual se preparan las diluciones seriadas que reciben los animales. Se reporta el uso de la c&aacute;mara de Petroff-Hausser para realizar el conteo del n&uacute;mero de leptospiras presentes en el cultivo de partida,<SUP>10</SUP> en ese caso la DL<SUB>50</SUB> se expresa en leptospiras por dosis inoculada, valor que se toma despu&eacute;s para preparar los in&oacute;culos de reto de modo que contengan de 10 a 10 000 DL<SUB>50</SUB>. </P>     <P>El cuarto par&aacute;metro se relaciona con la especie animal que se va a utilizar, la cantidad y el peso; a veces el sexo tambi&eacute;n es importante. El quinto tiene que ver con la dosis y la v&iacute;a de administraci&oacute;n del in&oacute;culo, el sexto con las condiciones en que deben mantenerse los animales y el s&eacute;ptimo con el tiempo de observaci&oacute;n de &eacute;stos. </P>     <P>Si se procura que estas condiciones se repitan para cada ensayo, entonces la variaci&oacute;n en los resultados ser&aacute; menor y mayor la reproducibilidad, por lo que se garantizar&aacute; el &eacute;xito de la prueba. </P>     <P>En el presente trabajo se describe la metodolog&iacute;a utilizada para normalizar la DL<SUB>50</SUB> de las cepas de <I>L. interrogans</I> serogrupos <I>canicola</I>, <I>icterohaemorrhagiae</I> y <I>pomona</I> que intervienen en el ensayo de potencia de la vacuna antileptospir&oacute;sica trivalente cubana (vax-SPIRAL), de acuerdo con los par&aacute;metros se&ntilde;alados. </P> <H4>M&Eacute;TODOS</H4>     <P><I>Cepas de </i>L. interrogans. Se usaron las cepas <I>canicola canicola</I> No. 87, <I>pomona mozdok</I> No. 108 <I>icterohaemorrhagiae copenhageni</I> No. 169 de los laboratorios de producci&oacute;n de la vacuna veterinaria (LABIOFAM), conservadas en medio Fletcher. Estas cepas fueron aisladas en Cuba, en los a&ntilde;os 1988, 1990 y 1993, respectivamente, por el Laboratorio de Diagn&oacute;stico Veterinario de Arroyo Arenas, en La Habana. </P>     <P><I>Medios de cultivo y soluciones</i>. Medio Fletcher<SUP>16</SUP> para conservar las cepas; medio EMJH<SUP>17</SUP> para realizar aislamientos de h&iacute;gado, pases de cepas y diluciones de los cultivos; soluci&oacute;n de formaldeh&iacute;do al 10 % tamponada con fosfatos (FT) para inactivar los microorganismos. </P>     <P><I>Animales</i>. H&aacute;msters (<I>Mesocricetus auratus</I>) de 40 a 60 g, de igual sexo, suministrados por CENPALAB, Cuba. </P>     <P><I>Preparaci&oacute;n del lote semilla de trabajo.</i> Se inocularon animales con los g&eacute;rmenes virulentos, que se recuperaron posteriormente, por siembra en medio EMJH, de muestras de h&iacute;gado de los animales moribundos. Despu&eacute;s de 7d de incubaci&oacute;n a 28 EC se dio pase a tubos que conten&iacute;an medio Fletcher, los cuales conformaron el lote semilla de trabajo y se mantuvieron a 28 EC. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><I>Determinaci&oacute;n de la DL<SUB>50</SUB></i>. Seis d&iacute;as antes del ensayo, se transfirieron 0,5 mL de la conservaci&oacute;n en medio Fletcher a 3 tubos com medio EMJH (a cada uno de ellos) y se incubaron a 28 EC. El d&iacute;a del ensayo se procedi&oacute; a examinar la pureza y viabilidad de los cultivos por observaci&oacute;n microsc&oacute;pica en campo oscuro y se prepararon diluciones 1:5; 1:10; 1:20 y 1:40 de &eacute;stos en medio EMJH, con un volumen m&aacute;ximo de 1 mL, a &eacute;stas se les adicion&oacute; respectivamente 50 FL de FT y se esper&oacute; 10 min para su inactivaci&oacute;n. Usando microscopia de campo oscuro y aumento de 400 veces se procedi&oacute; al conteo de los microorganismos en una muestra de 5 FL de la diluci&oacute;n correspondiente, colocados entre porta y cubreobjetos. Se observaron 20 campos y se cont&oacute; el n&uacute;mero aproximado de leptospiras en cada uno; se calcul&oacute; la media aritm&eacute;tica, la cual se consider&oacute; satisfactoria si daba como resultado 10 a 12 leptospiras por campo; si con ninguna de las diluciones antes mencionadas se obten&iacute;an esos valores, se realizaban los c&aacute;lculos necesarios para determinar de forma te&oacute;rica la diluci&oacute;n correcta, la cual se prepar&oacute; a partir del cultivo puro, se inactiv&oacute; y se sometio al conteo. La diluci&oacute;n que present&oacute; 10 a 12 leptospiras por campo se denomin&oacute; diluci&oacute;n de ajuste y se consider&oacute; apropiada para preparar una diluci&oacute;n equivalente a partir del cultivo puro, de volumen no inferior a 5 mL de la cual se tom&oacute; una muestra de 1 mL, se inactiv&oacute; y verific&oacute; por conteo, como ya se ha descrito, que conten&iacute;a de 10 a 12 leptospiras por campo. A partir de la diluci&oacute;n de ajuste sin inactivar se prepararon diluciones seriadas con factor de 10, desde 10<SUP>-1</SUP> hasta 10<SUP>-8</SUP> y se us&oacute; medio EMJH como diluente; posteriormente se inocularon 6 animales por cada diluci&oacute;n con 0,5 mL v&iacute;a intraperitoneal y se observaron durante 14 d; se anotaron las muertes ocurridas y los animales que presentaron s&iacute;ntomas el &uacute;ltimo d&iacute;a se reportaron como muertos. Con los datos obtenidos se calcul&oacute; la DL<SUB>50</SUB> por el m&eacute;todo de Reed-Muench,<SUP>18</SUP> y se expres&oacute; en t&eacute;rminos del inverso del valor de la diluci&oacute;n donde ocurri&oacute; la muerte del 50 % de los animales inoculados, referido a la diluci&oacute;n de ajuste. </P> <H4>RESULTADOS</H4>     <P>Se realizaron 14 determinaciones de la DL<SUB>50</SUB> de cada una de las cepas de reto, mediante igual metodolog&iacute;a. El valor estimado de DL<SUP>50</SUP> para cada serogrupo se calcul&oacute; sobre la base de la media geom&eacute;trica de los valores individuales obtenidos respectivamente. En el serogrupo <I>icterohaemorrhagiae</I> se observ&oacute; que cuando las conservaciones en medio Fletcher ten&iacute;an m&aacute;s de 100 d de edad, el valor de la DL<SUB>50</SUB> se afectaba de forma apreciable; esto ocurri&oacute; en los 2 &uacute;ltimos ensayos, los cuales fueron excluidos de los c&aacute;lculos. Este comportamiento no sucedi&oacute; con <I>pomona</I>, que se mantuvo muy estable. La conservaci&oacute;n de <I>canicola</I> ten&iacute;a s&oacute;lo 57 d de edad cuando concluy&oacute; el estudio y su comportamiento era adecuado. </P>     <P>En los 3 casos los animales inoculados con la diluci&oacute;n de ajuste murieron el quinto d&iacute;a posterior a la inoculaci&oacute;n en todos los ensayos realizados. </P>     <P>La tabla presenta el resumen de los resultados de la determinaci&oacute;n de la DL<SUB>50</SUB> para cada serogrupo. Los valores estimados de la DL<SUB>50</SUB> que aparecen en &eacute;sta se calcularon a partir de los 12 primeros ensayos realizados. </P>     <P>Tabla. Resumen de los resultados de los ensayos para normalizar la DL<SUB>50</SUB> de los serogrupos de <I>Leptospira interrogans</I> </P>     <P ALIGN="CENTER">    <CENTER><TABLE CELLSPACING=1 BORDER=0 CELLPADDING=4> <TR><TD VALIGN="BOTTOM" HEIGHT=122>     <P>Serogrupo</TD> <TD VALIGN="BOTTOM" HEIGHT=122>     <P ALIGN="CENTER">Diluci&oacute;n de ajuste</P>     <P ALIGN="CENTER">Media geom&eacute;trica</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="CENTER">(DL<SUB>50</SUB>/dosis)</TD> <TD WIDTH=99 VALIGN="BOTTOM" HEIGHT=122>     <P ALIGN="CENTER">Varianza</P>     <P ALIGN="CENTER">(S<SUP>2</SUP>)</TD> <TD WIDTH=99 VALIGN="BOTTOM" HEIGHT=122>     <P ALIGN="CENTER">L&iacute;mites 95 % de confianza</TD> <TD VALIGN="BOTTOM" HEIGHT=122>     <P ALIGN="CENTER">L&iacute;mites 1 log<SUB>10</SUB></TD> </TR> <TR><TD WIDTH=137 VALIGN="TOP"> <I>    <P>canicola</I></TD> <TD WIDTH=101 VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">10<SUP>5,98</SUP></TD> <TD WIDTH=99 VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1,15</TD> <TD WIDTH=99 VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">10<SUP>5,54</SUP> y 10<SUP>6,19</SUP></TD> <TD WIDTH=187 VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">10<SUP>4,98</SUP> y 10<SUP>6,98</SUP></TD> </TR> <TR><TD WIDTH=137 VALIGN="TOP"> <I>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P>icterohaemorrhagiae</I></TD> <TD WIDTH=101 VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">10<SUP>5,60</SUP></TD> <TD WIDTH=99 VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">9,78</TD> <TD WIDTH=99 VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">10<SUP>5,33</SUP> y 10<SUP>5,75</SUP></TD> <TD WIDTH=187 VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">10<SUP>4,60</SUP> y 10<SUP>6,60</SUP></TD> </TR> <TR><TD WIDTH=137 VALIGN="TOP"> <I>    <P>pomona</I></TD> <TD WIDTH=101 VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">10<SUP>6,49</SUP></TD> <TD WIDTH=99 VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">2,43</TD> <TD WIDTH=99 VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">10<SUP>6,35</SUP> y 10<SUP>6,60</SUP></TD> <TD WIDTH=187 VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">10<SUP>5,49</SUP> y 10<SUP>7,49</SUP></TD> </TR> </TABLE> </CENTER>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p></P>      <P ALIGN="CENTER">Los valores de la media geom&eacute;trica de las DL<SUB>50</SUB> dosis referidos a la diluci&oacute;n de ajuste fueron 10<SUP>5,98</SUP> para <I>canicola</I>, 10<SUP>5,60</SUP> para <I>icterohaemorrhagiae</I> y 10<SUP>6,49</SUP> para <I>pomona</I>; por lo que la virulencia de las cepas en orden decreciente fue <I>pomona</I> mayor que <I>canicola</I> y &eacute;sta a su vez mayor que <I>icterohemorrhagiae</I>. </P>     <P>Los l&iacute;mites m&aacute;ximos del intervalo de la media reportados para este tipo de ensayo<SUP>6</SUP> son de 1 log<SUB>10</SUB> cuando se parte siempre del mismo cultivo semilla de trabajo, por lo que para <I>canicola </I>resultaron ser 10<SUP>4,98</SUP> y 10<SUP>6,98</SUP>, para <I>icterohaemorrhagiae</I> 10<SUP>4,60</SUP> y 10<SUP>6,60</SUP> y para <I>pomona</I> 10<SUP>5,49</SUP> y 10<SUP>7,49</SUP>. Sin embargo, los l&iacute;mites calculados para un intervalo de confianza de 95 % (<FONT FACE="Symbol,Times">±</FONT> 2DE) fueron para <I>canicola</I> 10<SUP>5,54</SUP> y 10<SUP>6,19</SUP>, <I>icterohaemorrhagiae</I> 10<SUP>5,33</SUP> y 10<SUP>5,75</SUP> y para <I>pomona</I> 10<SUP>6,35</SUP> y 10<SUP>6,60</SUP>, que son inferiores, por lo que se garantiza mayor reproducibilidad en los resultados. </P>     <P>Tomando como referencia la varianza (S<SUP>2</SUP>), el serogrupo que present&oacute; mayor variaci&oacute;n fue <I>icterohaemorrhagiae</I> (S<SUP>2</SUP> = 9,78) y el menos variable fue <I>canicola</I> (S<SUP>2</SUP> = 1,15). Esto concuerda con las variaciones en el crecimiento del serogrupo <I>icterohaemorrhagiae</I> en medio EMJH observadas en los diferentes ensayos, que parecen influir directamente en su virulencia. No ocurri&oacute; as&iacute; con los serogrupos <I>canicola</I> y <I>pomona</I>, que presentaron patrones de crecimiento m&aacute;s estables. </P> <H4>DISCUSI&Oacute;N</H4>     <P>El n&uacute;mero de pruebas realizadas siguiendo siempre la misma metodolog&iacute;a garantiz&oacute; que los par&aacute;metros que influ&iacute;an de forma directa en los resultados estuvieran siempre bajo control y permiti&oacute; normalizar el ensayo de determinaci&oacute;n de la DL<SUB>50</SUB> de las cepas de reto utilizadas en el control de la potencia de la vacuna antileptospir&oacute;sica trivalente cubana para uso humano (vax-SPIRAL), ya que se demostr&oacute; que los l&iacute;mites de los valores estimados de las respectivas DL<SUB>50</SUB> para un intervalo de confianza de 95 % (<FONT FACE="Symbol,Times">±</FONT> 2DE), se encontraban ampliamente dentro de los reportados para 1 log<SUB>10</SUB>. </P>     <P>El par&aacute;metro cr&iacute;tico fue el ajuste del cultivo, que se resolvi&oacute; con la introducci&oacute;n de la diluci&oacute;n de ajuste, la cual constituy&oacute; el elemento clave en la normalizaci&oacute;n del ensayo, pues result&oacute; ser la base de la reproducibilidad del estimado del valor de DL<SUB>50</SUB> determinado para los serogrupos estudiados, ya que aparte del crecimiento obtenido en el cultivo puro, cada serogrupo se ajust&oacute; para cada ensayo de acuerdo con el mismo criterio, de modo que tuviera de 10 a 12 leptospiras/campo y de esta manera el in&oacute;culo de partida fue semejante cada vez que se efectu&oacute; un nuevo ensayo. Esto hizo que la metodolog&iacute;a descrita se diferenciara de las reportadas, donde no se especifica la manera de ajustar el cultivo<SUP>9,14,15</SUP> o se realiza por conteo de leptospiras en la c&aacute;mara de Petroff-Hausser.<SUP>10</SUP> Este tipo de ajuste fue llevado a cabo al principio en nuestro laboratorio, pero en experiencias previas de validaci&oacute;n demostr&oacute; mayor variaci&oacute;n y dependencia del analista que el conteo por campos (no se presentan los datos), por lo que nos decidimos por este &uacute;ltimo. Los resultados obtenidos fueron adecuados, por lo que el conteo por campos se consider&oacute; satisfactorio para estos fines. </P>     <P>La muerte de los animales inoculados con la diluci&oacute;n de ajuste al quinto d&iacute;a se tom&oacute; como criterio de calidad del lote semilla de trabajo. Esta caracter&iacute;stica se logr&oacute; mediante pases repetidos por animales. </P>     <P>Se debe seguir esta metodolog&iacute;a para lograr resultados satisfactorios en los ensayos de potencia de la vacuna antileptospir&oacute;sica cubana para uso humano (vax-SPIRAL); adem&aacute;s, podr&iacute;a ser utilizada tambi&eacute;n en la evaluaci&oacute;n de la virulencia de otras cepas de <I>L. interrogans</I> incluidas las de producci&oacute;n de la vacuna. </P> <H4>SUMMARY</H4>     <P ALIGN="JUSTIFY">Parasitologists from different medical institutions in Havana City carried out he external validation of ENZYMEBA, a diagnostic procedure of intestinal amebiasis developed at the «Pedro Kour&iacute;» Institute of Tropical Medicine. To this end, serial faeces specimens from 212 individuals were collected and observed on the microscope (reference test). The ENZYMEBA immunoassay (validation test) was also made. On comparing ENZYMEBA with the microscopic examination, satisfactory indexes of sensitivity and specificity were found. No cross-reactions were detected in faeces specimens, where found other parasites were present, too. Taking into account that only one faeces specimen per patient is enough for the diagnosis of intestinal amebiasis with ENZYMEBA, this procedure may be useful in studies of therapeutical efficacy and prevalence.</P>     <P>Subject headings: IMMUNOENZYME TECHNIQUES; ENTAMOEBA HISTOLYTICA/ enzymology; FECES/parasitology; EFFICACY; PREDICTIVE VALUE OF TESTS; PEPTIDE HYDROLASAS/analysis; CUBA.</P> <H4>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</H4> <OL>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><LI>Ting-zuo Ch. Development and present status of leptospiral vaccine and technology of production of the vaccine in China. Ann Immunol Hung 1986;26:125-51.</LI>    <!-- ref --><LI>Andre-Fontaine G, Ganiere JP. New topics on leptospirosis. Comp Immun Microbiol Infect Dis 1990;13(3):163-8.</LI>    <!-- ref --><LI>Faine S ed. Guidelines for the control of leptospirosis. Geneva: World Health Organization, 1982;83 (WHO offset publication no. 67).</LI>    <!-- ref --><LI>Reports of discussions of the WHO working group on leptospirosis vaccine development and vaccinology. Ngoya, Japan, 1993; WHO VPH/93. 122.</LI>    <!-- ref --><LI>Comisi&oacute;n Cient&iacute;fica Permanente sobre Laptospirosis. Manual de Leptospirosis. Buenos Aires; Asociaci&oacute;n Argentina de Veterinarios de Laboratorios de Diagn&oacute;stico; 1994:37.</LI>    <!-- ref --><LI>Wilbur LA, Aubert MFA. The NIH test for potency. En: Meslin FX, Kaplan MM, Koprowski H, eds. Laboratory techniques in rabies, 4 ed. Geneva: WHO, 1996:360-8.</LI>    <!-- ref --><LI>Habel K. Habel test for potency. En: Meslin FX, Kaplan MM, Koprowski H, eds. Laboratory techniques in rabies, 4 ed. Geneva: WHO, 1996:369-71.</LI>    <!-- ref --><LI>WHO. Requeriments for diphteria, tetanus, pertussis and combined vaccines. Geneva: World Health Organization. 1990:87-179. (Technical Report Series 800).</LI>    <!-- ref --><LI>USA. US Code of Federal Regulations. Animal Plant Health Inspection Service, USDA.113.101. Leptospira pomona bacterin. 113.102. Leptospira Icterohaemorrhagiae Bacterin. 113.103. Leptospira Canicola Bacterin. 9 CFR Ch.I (1-1-91 Edition):513-515. (Documento Regulatorio).</LI>    <!-- ref --><LI>Argentina. Servicio Nacional de Sanidad Animal. Disposici&oacute;n No. 405/88. Control de calidad de bacterinas contra la leptospirosis. Manual de leptospirosis. V. Control de potencia. En; Comisi&oacute;n Cient&iacute;fica Permanente sobre Leptospirosis. Manual de leptospirosis. 1994:51-3. (Documento Regulatorio).</LI>    <!-- ref --><LI>USA. Food and Drug Administration. Preparation of freeze-dried cultures of Bordetella pertussis. Rockville, Center for Biologics Evaluation and Research. Lab of Pertussis 1992. (Documento Regulatorio).</LI>    <!-- ref --><LI>Otsuka S, Manako K. Studies on the preservation of Leptospirae by freeze-drying. Japan J Microbiol 1986;5(2):141-8.</LI>    <!-- ref --><LI>Palit A, Haylock LM, Cox JC. Storage of pathogenic leptospires in liquid nitrogen. J Appl Bacteriol 1986;61:407-11.</LI>    <!-- ref --><LI>Korean Green Cross Corporation. Information on Leptospira Vaccine-KGCC. Seoul:Korean Green Cross Corporation, 1994.</LI>    <!-- ref --><LI>European Pharmacopoeia, 1989. Vaccinum leptospirosis ad usum veterinarium (Leptospira Vaccine for Veterinary Use):447-447-2. (Documento Regulatorio).</LI>    <!-- ref --><LI>Fletcher W. Recent work on leptospirosis, tsutsugamushi disease and tropical typhus in the Federated Malay States. Trans Roy Soc Trop Med Hyg 1928;21:265-87.</LI>    <!-- ref --><LI>Ellinghausen HC, McCullough WG. Nutrition of Leptospira pomona and growth of 13 other serotypes: fractionation of oleic albumin complex and a medium of bovine albumin and polysorbate 80. Am J Vet Res 1965;26:45-51.</LI>    <!-- ref --><LI>Habel K. Habel test for potency. Annex: Calculating 50 % end-point dilutions by the method of Reed and Muench. En: Meslin FX, Kaplan MM, Koprowski H, eds. Laboratory techniques in rabies. 4 ed. Geneva: WHO, 1996:371-2.</LI>    </OL>      <P>Recibido: 25 de enero de 1997. Aprobado: 18 de julio de 1997. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Lic: <I>Esther Mar&iacute;a Fajardo.</I> Instituto "Finlay". Ave. 27 No. 19805. La Lisa, Ciudad de La Habana. Cuba, C&oacute;digo Postal 11600. </P>     <P><SUP>1</sup>&nbsp;<A NAME="autores"></A>Licenciada en Ciencias Biol&oacute;gicas. Investigadora Agregada. Instituto <SUP>"</SUP>Finlay<SUP>"</SUP>.     <BR> <SUP>2</SUP> Licenciado en Microbiolog&iacute;a. Especialista en Control de Medicamentos. Instituto <SUP>"</SUP>Finlay<SUP>"</SUP>.     <BR> <SUP>3</SUP> M&eacute;dico Veterinario. Especialista en Producci&oacute;n de Vacunas Veterinarias. LABIOFAM.     <BR> <SUP>4</SUP> M&eacute;dico Veterinario. Especialista en Control de Medicamentos. Instituto <SUP>"</SUP>Finlay<SUP>"</SUP>.     <BR> <SUP>5</SUP> Licenciado en Matem&aacute;ticas. Investigador Agregado. Instituto <SUP>"</SUP>Finlay<SUP>"</SUP>.     <BR> <SUP>6</SUP> T&eacute;cnico Medio en Procesos Biol&oacute;gicos. Instituto <SUP>"</SUP>Finlay<SUP>"</SUP>.     <BR> <SUP>7</SUP> T&eacute;cnico Medio en Farmacia Industrial. Instituto <SUP>"</SUP>Finlay<SUP>"</SUP>. </P>     ]]></body><back>
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