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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The diagnosis of ovine fascioliasis hepatica is presented by a sandwich ELISA with the use of monoclonal antibody ES78 previously reported for the diagnosis of bovine fascioliasis. The assay was applied to faeces of 40 sheeps infected with Fasciola hepatica, 88 sheeps with other parasitary infections tested by coproparasitology and 100 caprologically negative animals. Antigens of excretion-secretion of Fasciola hepatica were detected in 38 of the 40 sheeps with fascioliasis and in none of the negative animals or with other parasitosis. The results show that ES78 sandwich ELISA, as in bovines, is fast, simple and useful for the diagnosis of the active infection caused by Fasciola hepatica among ovines.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <H3>Comunicaci&oacute;n Breve</H3>     <P>Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;" </P> <H2>Detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de coproant&iacute;genos de Fasciola hepatica en ganado ovino</H2>     <P><A HREF="#autores"><I>Dra. Blanca E. Dum&eacute;nigo Ripoll<SUP>1&nbsp;</SUP> y Dr. Carlos M. Finlay Villalvilla<SUP>2</sup></I></A> </P> <H4>RESUMEN</H4>     <P>Se presenta el diagn&oacute;stico de fascioliasis hep&aacute;tica ovina mediante un ensayo inmunoenzim&aacute;tico tipo sandwich con el uso del anticuerpo monoclonal ES78 (sandwich ELISA) previamente reportado para el diagn&oacute;stico de fascioliasis bovina. El ensayo fue aplicado a las heces de 40 ovinos infectados con <I>Fasciola hepatica,</I> 88 ovinos con otras infecciones parasitarias probadas por coproparasitolog&iacute;a y 100 animales negativos coprol&oacute;gicamente. Fueron detectados ant&iacute;genos de excreci&oacute;n-secreci&oacute;n de <I>Fasciola hepatica</I> en 38 de los 40 ovinos con fascioliasis y en ninguno de los animales negativos o con otras parasitosis. Los resultados indican que el ES78-sandwich ELISA, al igual que en bovinos, es r&aacute;pido, simple y &uacute;til para el diagn&oacute;stico de la infecci&oacute;n activa por <I>Fasciola hepatica</I> en el ganado ovino. </P>     <P>Descriptores DeCS: FASCIOLIASIS/diagn&oacute;stico; FASCIOLIASIS/veterinaria; FASCIOLA HEPATICA/inmunolog&iacute;a; ANTIGENOS HELMINTICOS/an&aacute;lisis; OVINOS/parasitolog&iacute;a; ANTICUERPOS MONOCLONALES; HECES/parasitolog&iacute;a; TEST DE ELISA/m&eacute;todos. </P>     <P>En Cuba, la fascioliasis hep&aacute;tica es enzo&oacute;tica en los ganados bovino y ovino, por tanto, causa grandes p&eacute;rdidas econ&oacute;micas en la industria pecuaria. Aunque la cr&iacute;a de ovino no est&aacute; tan extendida en nuestro pa&iacute;s como en otros, est&aacute; demostrado que el ovino es m&aacute;s susceptible a la infecci&oacute;n por <I>Fasciola hepatica</I> que otras especies animales.<SUP>1</SUP> Estos antecedentes, unidos a la baja sensibilidad mostrada por los m&eacute;todos coproparasitol&oacute;gicos en el diagn&oacute;stico de esta parasitosis, y a los exitosos resultados obtenidos por nosotros en el diagn&oacute;stico de la fascioliasis bovina mediante un ensayo inmunoenzim&aacute;tico de captura tipo sandwich (sandwich ELISA) con el uso del anticuerpo monoclonal ES78 (AcMES78),<SUP>2,3</SUP> hacen que el objetivo del presente trabajo sea la aplicaci&oacute;n de &eacute;ste en la detecci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n de coproant&iacute;genos para el diagn&oacute;stico de fascioliasis hep&aacute;tica en ganado ovino. En este estudio se describe un procedimiento similar, con peque&ntilde;as modificaciones, al utilizado para la detecci&oacute;n de ant&iacute;genos de excreci&oacute;n-secreci&oacute;n (ES) en heces de ganado bovino.<SUP>3</SUP> </P>     <P>Para el an&aacute;lisis de las heces se procedi&oacute; a suspender 1 g de heces frescas en 7 mL de agua y homogenizarlo mediante un depresor lingual de madera. Una vez homogenizado, se centrifug&oacute; a 900 rpm durante 3 min. El sobrenadante se colect&oacute; y guard&oacute; a -20 <SUP>o</SUP>C hasta su uso. Se sensibilizaron placas de microtitulaci&oacute;n de poliestireno (Maxisorp, NUNC) con el AcMES78 a una concentraci&oacute;n de 5 <FONT FACE="WP MathA">F</FONT>g por mL diluido en una soluci&oacute;n tamp&oacute;n de carbonato- -bicarbonato 0,1M; pH 9,6 e incubados durante 16 h a 4 <SUP>o</SUP>C. Una vez finalizada la incubaci&oacute;n, las placas fueron lavadas 3 veces con soluci&oacute;n salina tamponada con fosfato que conten&iacute;a 0,05 % de Tween 20 (SSTF-T) y se bloquearon los sitios libres de ant&iacute;geno con leche descremada (Oxoid) al 2,5 % diluida en SSTF-T durante 1 h a 37 <SUP>o</SUP>C. Una vez secadas las placas por succi&oacute;n, se a&ntilde;adieron 100 <FONT FACE="Symbol,Times">m</FONT>l de cada suspensi&oacute;n fecal y se incubaron 2 h a temperatura ambiente (TA). Posteriormente, las placas fueron lavadas 6 veces son SSTF-T y se les a&ntilde;adi&oacute; el conjugado (IgG antiant&iacute;genos de ES de <I>F. hepatica</I> conjugado con peroxidasa de r&aacute;bano) a una diluci&oacute;n de 1:500 en SSTF-T que conten&iacute;a 10 % de suero de ternera y se incubaron por 1h a TA. Las placas fueron lavadas posteriormente como se describe en el paso anterior y se les a&ntilde;adi&oacute; la soluci&oacute;n de sustrato (20 <FONT FACE="Symbol,Times">m</FONT>L de H<SUB>2</SUB>O<SUB>2</SUB> al 30 % + 20 mg de O-fenilendiamina hidrocl&oacute;rica + 50 mL de tamp&oacute;n citrato-fosfato 0,1 M; pH 5,0) e incubadas 30 min a TA en oscuridad. La reacci&oacute;n fue detenida con 50 <FONT FACE="Symbol,Times">m</FONT>L de &aacute;cido sulf&uacute;rico al 12,5 % y los resultados obtenidos fueron le&iacute;dos en un lector de microELISA (Organon Technika) a 492 nm. Las concentraciones de ant&iacute;genos (ng/mL de suspensi&oacute;n fecal) fueron estimadas al comparar los valores de densidad &oacute;ptica (DO) obtenidos, con una curva est&aacute;ndar generada por la diluci&oacute;n seriada de concentraciones previamente conocidas (desde 5 a 500 ng/mL) de ant&iacute;genos de ES.<SUP>4</SUP> Los resultados fueron analizados estad&iacute;sticamente mediante la distribuci&oacute;n t de Student de comparaci&oacute;n de medias. </P>     <P>Para la detecci&oacute;n de coproant&iacute;genos por sandwich ELISA se colect&oacute; una muestra fecal por separado a 40 ovinos de la raza Pelibuey naturalmente infectados, pertenecientes al Plan Gen&eacute;tico "Ni&ntilde;a Bonita" y a 100 ovinos de igual raza con repetidos an&aacute;lisis parasitol&oacute;gicos negativos, utilizados como controles, procedentes de los bioterios de diferentes centros de investigaci&oacute;n. El ensayo tambi&eacute;n fue aplicado, para conocer la existencia de reacciones cruzadas, a 88 muestras fecales de ovinos infectados con otras parasitosis: <I>Haemonchus contortus,</I> 33; Tricostrogil&iacute;deos, 20; <I>Eimeria sp.,</I> 18; <I>Trichuris ovis,</I> 14 y <I>Dicrocoelium dentriticum,</I> 3. El n&uacute;mero de huevos por gramo de heces estuvo en el rango de 1 a 198 determinado por la t&eacute;cnica de sedimentaci&oacute;n y cuantificaci&oacute;n descrita por Dennis y otros.<SUP>5</SUP> La correlaci&oacute;n entre el n&uacute;mero de huevos y los valores de absorbancia observada con el sandwich ELISA fue estudiada mediante la prueba de correlaci&oacute;n de rangos de Spearman. </P>     <P>Los valores de absorbancia del grupo control negativo (fig.) oscilaron entre 0,08-0,22 para un valor medio de 0,142 (<FONT FACE="Symbol,Times"><FONT FACE="Symbol,Times">±</FONT></FONT> 0,04). El valor de corte estimado para este ensayo fue de 0,24 seg&uacute;n el criterio de 0,142 + 2 (0,04) ( 12 ng mL<SUP>-1</SUP>) por encima del cual se consider&oacute; toda muestra estudiada como positiva. Los valores de DO de las muestras de animales con fascioliasis estuvieron en un rango de 0,28-1,15; con un valor medio de 0,46 (<FONT FACE="Symbol,Times"><FONT FACE="Symbol,Times">±</FONT></FONT>0,22); mientras que los valores de absorbancia de las muestras de animales con otros par&aacute;sitos estuvieron en el rango de 0,07-0,12 (0,07&lt;DO&lt;0,12) (0,02&lt;DE&lt;0,04). Se obtuvieron diferencias altamente significativas entre los niveles de ant&iacute;genos detectados en las heces (p&lt;0,001) de los animales con fascioliasis, con respeto a los diferentes grupos estudiados, no se observaron reacciones cruzadas. Para medir las cantidades aproximadas de ant&iacute;genos de ES en las heces de ovinos con <I>F. hepatica,</I> las densidades &oacute;pticas fueron comparadas con la curva patr&oacute;n. Las muestras fecales de 38 de los 40 animales con fascioliasis tuvieron ant&iacute;genos detectables en heces en concentraciones superiores a 12 ng/mL. La concentraci&oacute;n media de los ant&iacute;genos en heces fue de 22 ng/mL. La correlaci&oacute;n entre el n&uacute;mero de huevos por gramo de heces y coproant&iacute;genos fue significativa (r=0,24; p&lt;0,005). Al no ser posible realizar el estudio en animales de matadero no pudo correlacionarse el n&uacute;mero de par&aacute;sitos adultos en el h&iacute;gado con el n&uacute;mero de huevos por gramo de heces y la concentraci&oacute;n de ant&iacute;genos, y tampoco determinar el n&uacute;mero m&iacute;nimo de par&aacute;sitos que excretan ant&iacute;genos capaces de ser detectados por el ES78-sandwich ELISA. Esto tambi&eacute;n podr&iacute;a explicar el hecho de que aunque la concentraci&oacute;n m&iacute;nima de ant&iacute;genos detectada por nuestro m&eacute;todo es similar a la detectada en las heces de bovinos, 2 de los ovinos resultaron negativos y ninguno tuvo concentraciones mayores de 50 ng mL<SUP>-1</SUP> de ant&iacute;genos, mientras que en los bovinos, el 100 % tuvo ant&iacute;genos detectables en heces, de los cuales el 38 % tuvo concentraciones de ant&iacute;geno 50 ng/mL. Estudios futuros en ovinos que se infecten experimentalmente permitir&aacute;n definir esto y, por tanto, el l&iacute;mite de detecci&oacute;n del ensayo. </P>     <P ALIGN="CENTER"><A HREF="/img/revistas/mtr/v50n1/fig116198.gif"><IMG SRC="/img/revistas/mtr/v50n1/fig116198.gif" BORDER=0 WIDTH=158 HEIGHT=113 ALT="Figura 1"></A></P>     
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<body><![CDATA[<P><B>Fig.</b> Especificidad del sandwich ELISA mediante el AcM ES78 para la captura de ant&iacute;genos en heces de animales infectados con: <I>Fasciola hepatica</I> (Fh), <I>Haemonchus contortus</I> (Hc), <I>Tricostrongil&iacute;deos</I> (Tric), <I>Eimeria sp.</I> (Eim), <I>Trichuris ovis</I> (To), <I>Dicrocoelium dendriticum</I> (Dd). Controles negativos (CN). </P>     <P>Tambi&eacute;n habr&aacute; que tener en cuenta que, debido a la capacidad de absorci&oacute;n de agua que tienen las heces de ovinos, fue necesario diluir las muestras en 7mL de agua a diferencia de las heces de bovinos que fueron diluidas en 2 mL, lo que podr&iacute;a disminuir la sensibilidad del ensayo y las infecciones ligeras ya no ser detectables por el ES78-sandwich ELISA. Por &uacute;ltimo, los resultados de este trabajo indican que la detecci&oacute;n de coproant&iacute;genos mediante el sandwich ELISA con la utilizaci&oacute;n del AcM ES78, al igual que para el ganado bovino, es un m&eacute;todo r&aacute;pido, simple y &uacute;til para el diagn&oacute;stico de fascioliasis en el ganado ovino. </P> <H4>SUMMARY</H4>     <P>The diagnosis of ovine fascioliasis hepatica is presented by a sandwich ELISA with the use of monoclonal antibody ES78 previously reported for the diagnosis of bovine fascioliasis. The assay was applied to faeces of 40 sheeps infected with <I>Fasciola hepatica</I>, 88 sheeps with other parasitary infections tested by coproparasitology and 100 caprologically negative animals. Antigens of excretion-secretion of <I>Fasciola hepatica</I> were detected in 38 of the 40 sheeps with fascioliasis and in none of the negative animals or with other parasitosis. The results show that ES78 sandwich ELISA, as in bovines, is fast, simple and useful for the diagnosis of the active infection caused by<I> Fasciola hepatica </I>among ovines. </P>     <P>Subject headings: FASCIOLASIS/diagnosis; FASCIOLASIS/veterinary; FASCIOLIASIS HEPATICA/immunology; ANTIGENS, HELMINTH/analysis; SHEEP/parasitology; ANTIBODIES, MONOCLONAL; FAECES/parasitology; ENZYME-LINKED IMMUNOSORBENT ASSAY/methods. </P> <H4>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</H4> <OL>      <!-- ref --><LI>Acha PN, Szyfres B. Zoonoses et maladies transmissibles communes &aacute; l´homme et aux animaux. 12 ed. Office International des epizooties, 1987:735-43.</LI>    <!-- ref --><LI>Castro J, Dum&eacute;nigo BE, Espino AM. Detecci&oacute;n de coproant&iacute;genos para evaluar infecci&oacute;n activa por <I>Fasciola hepatica</I> en ganado bovino. Parasitol D&iacute;a 1994;218:33-8.</LI>    <!-- ref --><LI>Dum&eacute;nigo BE, Espino AM, Finlay CM. Detecti&oacute;n of <I>Fasciola hepatica </I>antigen in cattle faeces by a monoclonal antibody-based sandwich immunoassay. Res Vet Sci 1996;60:278-9.</LI>    <!-- ref --><LI>Espino AM, Marcet R, Finlay CM. Detection of circulating antigen in human fasciolosis by sandwich enzyme-linked immunosorbent assay. J Clin Microbiol 1990;28:2637-40.</LI>    <!-- ref --><LI>Dennis W, Stone W, Swanson J. A new laboratory and field diagnostic test for fluke ova in faeces. J Am Vet Med Assoc 1954;124:47-50.</LI>    </OL>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Recibido: 23 de marzo de 1997. Aprobado: 15 de julio de 1997. </P>     <P>Dra. <I>Blanca E. Dum&eacute;nigo Ripoll.</I> Instituto de Medicina Tropical" Pedro Kour&iacute;". Apartado 601, Marianao 13, Ciudad de La Habana, Cuba. </P>     <P><SUP>&nbsp;1</sup>&nbsp;<A NAME="autores"></A>M&eacute;dica veterinaria. Investigadora Titular.     <BR> <SUP>&nbsp;2</SUP> Doctor en Ciencias Biol&oacute;gicas. Especialista de II Grado en Bioqu&iacute;mica. Investigador Titular. Subdirector de Parasitolog&iacute;a. </P> <H5></H5>     ]]></body><back>
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