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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Sensibilidad de aislamientos clínicos de Candida albicans frente a la 5-fluorocitosina]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Medicina Tropical Pedro Kourí  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[5-fluorocytosine has been one of the most used antimycotics in the therapeutics of mycosis, however the appareance of resistant strains may be an important limitant for its use. That?s why it is necessary to know the sensitivity to this drug. To this end, it was determined the minimum inhibitory concentration (MIC) of 5-fluorocytosine against 50 clinical isolates of Candida albicans by a micromethod of dilution in RPMI 1640 media , comparing 2 reading methods. The values of the geometrical mean obtained were 0.95 mg/mL for the visual reading and 0.75 mg/mL for the automated reading. There were no significant differences between them (p<0.05). Pearson?s lineal correlation coefficent was r=0.81. It indicates that although there was a good correlation, there was also discrepancy between both readings. The IMC50 was of 0,5 &micro;g/mL and the IMC90 of 4 mg/mL. 90 and 92% of sensitive strains , between 6 and 8% of resistant strains and 2% of strains with intermediate sensitivity were found depending on the reading method used. These values show a low resistance against this drug, which may have a direct repercussion on the therapeutic behaviour to be followed in candidiasis.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[FLUCITOSINA]]></kwd>
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<kwd lng="en"><![CDATA[MICROBIAL SENSITIVITY TESTS]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <P>&nbsp;</P>     <P>Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;" </P> <H2>Sensibilidad de aislamientos cl&iacute;nicos de <I>Candida albicans</I> frente a la 5-fluorocitosina</H2>     <P><A HREF="#x"><I>Lic. Carlos M. Fern&aacute;ndez Andreu,<SUP>1</SUP> Lic. Dihadenys Lemus Molina<SUP>2</SUP> y Dr. Gerardo Mart&iacute;nez Mach&iacute;n<SUP>3</sup></I></A> </P> <H4>RESUMEN</H4>     <P>Uno de los antimic&oacute;ticos m&aacute;s utilizados en la terap&eacute;utica de las micosis ha sido la 5-fluorocitosina, sin embargo la aparici&oacute;n de cepas resistentes pudiera ser una limitante importante para su uso, de ah&iacute; que resulte necesario conocer la sensibilidad frente a esta droga. Con este objetivo se determin&oacute; el valor de la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria (CMI) de 5-fluorocitosina frente a 50 aislamientos cl&iacute;nicos de <I>Candida albicans</I>, mediante un microm&eacute;todo de diluci&oacute;n en medio RPMI 1640 comparando 2 m&eacute;todos de lectura. Los valores de media geom&eacute;trica obtenidos fueron de 0,95 &amp;micro;g/mL para la lectura visual y 0,75 &amp;micro;g/mL para la lectura automatizada, sin diferencias estad&iacute;sticamente significativas entre ambas (p &lt; 0,05). El coeficiente de correlaci&oacute;n lineal de Pearson fue r = 0,81, esto indica que aunque hubo buena correlaci&oacute;n, tambi&eacute;n existi&oacute; discrepancia entre ambas lecturas. La CMI<SUB>50</SUB> fue de 0,5 &amp;micro;g/mL y la CMI<SUB>90</SUB> de 4 mg/mL. En dependencia del m&eacute;todo de lectura empleado, se encontraron 90 y 92 % de cepas sensibles, entre 6 y 8 % de cepas resistentes y 2 % de cepas con sensibilidad intermedia. Estos valores indican una baja resistencia frente a esta droga, lo que pudiera tener repercusi&oacute;n directa en la conducta terap&eacute;utica a seguir en las candidiasis. </P>     <P><B>Descriptores DeCS: </b>FLUCITOSINA/uso terap&eacute;utico; CANDIDA ALBICANS; TESTS DE SENSIBILIDAD MICROBIANA//m&eacute;todos. </P>     <P>La frecuencia de las infecciones f&uacute;ngicas ha aumentado considerablemente en las 2 &uacute;ltimas d&eacute;cadas. Las principales causas de este incremento han sido la inmunodepresi&oacute;n producida en los pacientes sometidos a trasplantes de &oacute;rganos y tratamientos citot&oacute;xicos e inmunosupresores, el uso de nuevos antibacterianos de amplio espectro, as&iacute; como el desarrollo de nuevas maniobras diagn&oacute;sticas y terap&eacute;uticas invasoras y muy especialmente la aparici&oacute;n del s&iacute;ndrome de inmunodeficiencia adquirida (SIDA).<SUP>1</SUP> La candidiasis es la micosis oportunista m&aacute;s frecuente en estos pacientes y <I>Candida albicans</I> es considerada su principal agente causal.<SUP>2</SUP> </P>     <P>En los &uacute;ltimos a&ntilde;os, se ha estimulado la investigaci&oacute;n en terap&eacute;utica antif&uacute;ngica y las pruebas de sensibilidad <I>in vitro</I> han aparecido como una necesidad, para determinar el antimic&oacute;tico de elecci&oacute;n cuando m&aacute;s de uno es potencialmente activo frente a un mismo hongo.<SUP>3</SUP> Entre los antif&uacute;ngicos recomendados hoy d&iacute;a para el tratamiento de las micosis sist&eacute;micas se destaca la 5-fluorocitosina (5-FC).<SUP>4,5</SUP> </P>     <P>Los estudios de sensibilidad <I>in vitro</I> con agentes antif&uacute;ngicos no se realizan de forma habitual en los laboratorios de micolog&iacute;a m&eacute;dica, sin embargo, cada vez resulta m&aacute;s evidente que es necesario contar con t&eacute;cnicas estandarizadas que permitan orientar el tratamiento adecuado de las micosis, si se tiene en cuenta la creciente frecuencia de aparici&oacute;n de cepas resistentes; por esta raz&oacute;n el prop&oacute;sito en este trabajo fue conocer el comportamiento de los aislamientos cl&iacute;nicos de <I>Candida albicans</I> frente a la 5-FC mediante la determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria (CMI). </P> <H4>M&Eacute;TODOS</H4>     <P>Se estudiaron 50 cepas de <I>Candida albicans</I> aisladas de pacientes hospitalizados en el Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;" (IPK) en el per&iacute;odo comprendido entre septiembre de 1997 a marzo de 1998, a las que se les determin&oacute; la CMI de 5-FC en el medio RPMI 1640 seg&uacute;n el microm&eacute;todo estandarizado por el Comit&eacute; Nacional de Est&aacute;ndares de Laboratorios Cl&iacute;nicos de los EE.UU. (NCCLS) en 1997.<SUP>6</SUP> </P>     <P><I>Preparaci&oacute;n del in&oacute;culo:</i> Las cepas fueron cultivadas en agar Sabouraud e incubadas a 37 &amp;deg;C durante 48 h. De cada cultivo se tomaron 5 colonias de aproximadamente 1 mm de di&aacute;metro y se resuspendieron en tubos con 5 mL de agua destilada est&eacute;ril, hasta alcanzar una turbidez equivalente a la del tubo 0,5 de la escala de McFarland (10<SUP>6</SUP> c&eacute;lulas/mL, en c&aacute;mara de Neubauer). De esta suspensi&oacute;n se tomaron 50 &amp;micro;L y se pasaron a un tubo con 5 mL de RPMI 1640 pH 7, amortiguado con &aacute;cido morfolino propanosulf&oacute;nico (MOPS), y se obtuvo una densidad de 1 x 10<SUP>4</SUP> c&eacute;lulas/mL. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><I>Diluciones del antif&uacute;ngico: </i>Partiendo de una soluci&oacute;n de 5-FC cuya concentraci&oacute;n era de 10 mg/mL se prepar&oacute; una soluci&oacute;n de 1 280 &amp;micro;g/mL; esta fue utilizada para realizar diluciones dobles seriadas en placas de microtitulaci&oacute;n de 96 pocillos desde la columna 2 hasta la 11 y finalmente qued&oacute; el antif&uacute;n-gico en concentraciones de 64 hasta 0,125 &amp;micro;g/mL (20 &amp;micro;L/pocillo). </P>     <P><I>Inoculaci&oacute;n de las placas:</i> Se distribuyeron 180 &amp;micro;L de la suspensi&oacute;n celular a partir de la columna 2 hasta la 12, por duplicado para cada cepa. En los pocillos de la columna 1 se a&ntilde;adieron 180 &amp;micro;L de medio sin in&oacute;culo. La columna 12, al no tener antif&uacute;ngico, sirvi&oacute; como control de crecimiento. Las placas fueron incubadas en c&aacute;mara h&uacute;meda y oscuridad a 35 &amp;deg;C durante 48 h. </P>     <P><I>Determinaci&oacute;n del punto final o CMI:</i> La determinaci&oacute;n del punto final se realiz&oacute; mediante la lectura visual y la lectura automatizada. Para la lectura visual la CMI se defini&oacute; como la menor concentraci&oacute;n de antif&uacute;ngico frente a la cual las levaduras no exhib&iacute;an un crecimiento visible, se consider&oacute; como criterio de crecimiento un solo bot&oacute;n sedimentado o la presencia de una turbidez en el fondo del pocillo, teniendo en cuenta las caracter&iacute;sticas del crecimiento en el pocillo control de la columna 12. Antes de realizar la lectura automatizada las placas fueron agitadas y la CMI se defini&oacute; como la menor concentraci&oacute;n del antif&uacute;ngico capaz de inhibir 80 % del crecimiento en comparaci&oacute;n con el control positivo. La lectura se realiz&oacute; mediante el fotocolor&iacute;metro (Titertek, Multiscan<SUP>7</SUP>) a 405 nm.<SUP>5,7</SUP> Para la determinaci&oacute;n del 80 % de inhibici&oacute;n del crecimiento se emple&oacute; la f&oacute;rmula siguiente:<SUP>8</SUP> </P>     <P>A &amp;pound; _A<SUB>b </SUB>+ [0,2 x (A<SUB>k</SUB> - A<SUB>b</SUB>)]     <BR> Donde:     <BR> A: Absorbancia.     <BR> A<SUB>b</SUB>: Absorbancia del blanco (control sin in&oacute;culo y sin droga).     <BR> A<SUB>k</SUB>: Absorbancia del control de crecimiento.     <BR> Si A<SUB>b</SUB> = 0, entonces A &amp;pound; 0,2 x A<SUB>k</SUB> </P>     <P>Cuando se observ&oacute; en la columna 2 un crecimiento igual al de la columna 12 se consider&oacute; que el valor de CMI para esa cepa era 128 &amp;micro;g/mL. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><I>Interpretaci&oacute;n de los resultados:</i> Se asumieron los criterios de resistencia y sensibilidad aprobados por el NCCLS en 1997 para <I>Candida</I> en medio RPMI 1640, seg&uacute;n los cuales una cepa se considera <I>sensible</I> cuando el valor de CMI es menor o igual a 4 &amp;micro;g/mL, de <I>sensibilidad intermedia</I> cuando el valor est&aacute; entre 8 y 16 &amp;micro;g/mL y <I>resistente</I> cuando es superior o igual a 32 mg/mL.<SUP>6</SUP> </P>     <P><I>An&aacute;lisis estad&iacute;stico de los resultados:</i> Para cada una de las lecturas realizadas (visual y automatizada), se determinaron las medias geom&eacute;tricas de los valores de CMI obtenidos y se compararon seg&uacute;n la prueba t de Student para muestras independientes; tambi&eacute;n se determinaron el rango, los porcentajes acumulativos, las concentraciones de la droga capaces de inhibir 50 y 90 % de las cepas (CMI<SUB>50</SUB> y CMI<SUB>90</SUB> respectivamente) y el coeficiente de correlaci&oacute;n lineal de Pearson. </P> <H4>RESULTADOS</H4>     <P>En la tabla se presentan los resultados de las 2 lecturas de CMI realizadas y se muestran la cantidad de cepas inhibidas para cada una de las concentraciones de 5-FC utilizadas, as&iacute; como los porcentajes que representan. </P>     <P><B>TABLA.</b> <I>N&uacute;mero y porcentaje de cepas de Candida albicans inhibidas frente a las distintas concentraciones de 5-FC</I> </P>     <P ALIGN="CENTER">    <CENTER><TABLE CELLSPACING=0 BORDER=0 CELLPADDING=4 WIDTH=624> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>Concentraci&oacute;n (&amp;micro;g/mL)</TD> <TD WIDTH="40%" VALIGN="TOP" COLSPAN=2>     <P ALIGN="CENTER">Lectura visual</P>     <P ALIGN="CENTER">No. de cepas %</TD> <TD WIDTH="40%" VALIGN="TOP" COLSPAN=2>     <P ALIGN="CENTER">Lectura automatizada No. de cepas %</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>0,125</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">8</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">16</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">13</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">26</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>0,25</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">7</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">14</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">7</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">14</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>0,5</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">11</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">22</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">5</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">10</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>1</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">7</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">14</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">10</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">20</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>2</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">9</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">18</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">7</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">14</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>4</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">3</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">6</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">4</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">8</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>8</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">0</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">0</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">2</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>16</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">2</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">0</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">0</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>32</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">2</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">0</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">0</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P>64</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">0</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">0</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">2</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">4</TD> </TR> <TR><TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>128</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">3</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">6</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">1</TD> <TD WIDTH="20%" VALIGN="TOP">     <P ALIGN="CENTER">2</TD> </TR> </TABLE> </CENTER>    <p></P>      <P ALIGN="CENTER">En la figura se muestran los porcentajes acumulativos calculados para cada tipo de lectura; los valores de CMI que inhiben 50 y 90 % de las cepas fueron 0,5 y &amp;micro;g/mL respectivamente, tanto para la lectura visual como para la automatizada. </P>     <P ALIGN="CENTER"><A HREF="/img/revistas/mtr/v52n3/f107300.gif"><IMG SRC="/img/revistas/mtr/v52n3/f107300.gif" BORDER=0></A></P>     
<P ALIGN="CENTER">Fig. Porcentajes acumulativos calculados para cada una de las concentraciones de 5-FC utilizadas frente a Candida albicans. </P>     <P>El rango de valores de CMI obtenido para las 2 lecturas fue de 0,125-128 &amp;micro;g/mL. Para la lectura visual la media geom&eacute;trica fue de 0,95 &amp;micro;g/mL y para la lectura automatizada fue de 0,75 &amp;micro;g/mL. Al comparar las 2 medias geom&eacute;tricas obtenidas, se comprob&oacute; que no exist&iacute;an diferencias significativas entre ellas (p 0,05). El coeficiente de correlaci&oacute;n lineal de Pearson (r) entre las 2 lecturas fue 0,81. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Teniendo en cuenta los criterios de sensibilidad y resistencia del NCCLS,<SUP>8</SUP> con la lectura visual se encontraron 45 cepas sensibles (90 %), una cepa con sensibilidad intermedia (2 %) y 4 cepas resistentes (8 %); mientras que con la lectura fotocolorim&eacute;trica fueron detectadas 46 cepas sensibles (92 %), una cepa con sensibilidad intermedia (2 %) y 3 cepas resistentes (6 %). </P>     <P>De las 4 cepas resistentes mediante la lectura visual, 2 lo fueron tambi&eacute;n en la fotocolorim&eacute;trica; sin embargo, en las otras 2 cepas, las lecturas discreparon de manera apreciable (visual: 128 &amp;micro;g/mL; automatizada: 4 &amp;micro;g/mL). Mediante la lectura fotoco-lorim&eacute;trica, una tercera cepa resistente (64 &amp;micro;g/mL) se comport&oacute; como sensibilidad intermedia en la visual (16 &amp;micro;g/mL). Otra cepa clasificada como sensible mediante la lectura visual (4 &amp;micro;g/mL), se comport&oacute; como de sensibilidad intermedia en la lectura automatizada (8 g/mL). </P> <H4>DISCUSI&Oacute;N</H4>     <P>Una de las drogas de elecci&oacute;n para el tratamiento de las candidiasis sist&eacute;micas ha sido la 5-FC, pues aunque su espectro de acci&oacute;n es estrecho, su toxicidad para el hombre es relativamente baja. La aparici&oacute;n de cepas resistentes y la utilizaci&oacute;n de los azoles hizo que comenzara un per&iacute;odo de declinaci&oacute;n en el uso de esta droga. Ya en la d&eacute;cada actual, despu&eacute;s de evaluaciones multic&eacute;ntricas y de ensayos cl&iacute;nicos mejor dise&ntilde;ados, se ha reconsiderado la utilidad de la 5-FC en terapias combinadas con polienos y azoles.<SUP>9,10</SUP> </P>     <P>El medio RPMI 1640 permite un adecuado crecimiento de las levaduras; para la mayor&iacute;a de las cepas, el crecimiento se present&oacute; como una turbidez en el fondo del pocillo y solo en muy pocos casos se pudo observar un bot&oacute;n bien definido. Este crecimiento se hac&iacute;a visible a las 48 h de incubaci&oacute;n. <I>Espinel-Ingroff</I> y otros, han reportado un crecimiento visible a las 24 h de incubaci&oacute;n y por lo tanto, consideran que es posible realizar la determinaci&oacute;n del punto final en ese momento.<SUP>11</SUP> Sin embargo, en este trabajo se pudo confirmar lo planteado por el NCCLS con respecto al tiempo de incubaci&oacute;n (48 h) para las especies de <I>Candida.</I> </P>     <P>El rango de valores de CMI obtenido de 0,125-128 &amp;micro;g/mL es igual al obtenido por <I>Barchiesi</I> y otros, mientras que <I>Odds</I> y otros reportan un rango de 0,05-100 &amp;micro;g/mL.<SUP>7,12</SUP> </P>     <P>En un estudio realizado con el medio YNB (<I>yeast nitrogen base</I>), <I>Calhoun</I> y <I>Galgiani</I><SUP>13</SUP> obtuvieron una media geom&eacute;trica de 0,033 &amp;micro;g/mL y con el medio SAAMF (<I>synthetic aminoacid fungal medium</I>) de 2,6 &amp;micro;g/mL.<SUP>13</SUP> En el presente trabajo los valores de media geom&eacute;trica obtenidos fueron de 0,95 y 0,75 &amp;micro;g/mL para las lecturas visual y automatizada respectivamente, los cuales al ser comparados seg&uacute;n la prueba t de Student (p 0,05), no mostraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas. </P>     <P><I>Rodr&iacute;guez-Tudela</i> y <I>Mart&iacute;nez-Su&aacute;rez,</I> realizando la lectura visual y automatizada encontraron que entre estas exist&iacute;a una buena correlaci&oacute;n.<SUP>12</SUP> <I>Rodero</I> y otros reportaron entre estos 2 tipos de lecturas un coeficiente de 0,97, lo que indica muy buena correlaci&oacute;n.<SUP>5</SUP> En el presente trabajo se obtuvo un valor de r de 0,81, esto permite sugerir que aunque es confiable la lectura visual, en casos dudosos es necesario realizar la lectura automatizada. </P>     <P><I>Barchiesi</i> y otros reportaron un valor de CMI<SUB>50</SUB> de 0,25 mg/mL y de CMI<SUB>90</SUB> de 8 &amp;micro;g/mL,<SUP>12</SUP> mientras que en el presente estudio las concentraciones de 5-FC capaces de inhibir a 50 y 90 % de las cepas fueron 0,5 y 4 &amp;micro;g/mL respectivamente, o sea, en cada caso, solo difieren en una diluci&oacute;n. Para inhibir 100 % de las cepas, fueron necesarias concentra-ciones superiores a 64 &amp;micro;g/mL. </P>     <P>En este trabajo se encontraron discrepancias marcadas solo entre 2 cepas: seg&uacute;n la lectura visual se clasificaron como resistentes (128 &amp;micro;g/mL), pero resultaron ser sensibles (4 &amp;micro;g/mL) al ser le&iacute;das en el fotocolor&iacute;metro. En ambos casos la lectura visual result&oacute; muy dif&iacute;cil, pues se apreci&oacute; un bot&oacute;n no bien delimitado rodeado de una turbidez que hizo clasificarlas como resistentes. Evidentemente el factor subjetivo de apreciaci&oacute;n influy&oacute; mucho, pues en ambos casos la lectura automatizada fue de 4 &amp;micro;g/mL. </P>     <P>Hasta hace pocos a&ntilde;os no exist&iacute;a unanimidad en cuanto a los criterios de sensibilidad y resistencia en los estudios con agentes antif&uacute;ngicos, aunque la mayor&iacute;a de los autores consultados coinciden en que una cepa con CMI_? 25 &amp;micro;g/mL debe considerarse resistente a la 5-FC.<SUP>3,9,14</SUP> En el presente estudio, asumiendo los criterios del NCCLS (M27-A), se encontr&oacute;, para las lecturas visual y automatizada, 90 y 92 % de cepas sensibles respectivamente; similares resultados obtuvieron <I>Dei-Cas</I> y otros en un <I>estudio</I> realizado con el medio <I>Shadomy</I>, donde 94,4 % de las cepas fueron sensibles.<SUP>15</SUP> <I>Sakellarides </I>obtuvo 4 % de cepas resistentes en un trabajo realizado con el medio <I>myco-plate</I> mediante la t&eacute;cnica de difusi&oacute;n en agar; aunque en este estudio se emplearon otro medio de cultivo y otra t&eacute;cnica de evaluaci&oacute;n <I>in vitro</I>, los resultados son similares a los de este autor, pues se obtuvo 8 y 6 % de cepas resistentes para la lectura visual y automatizada, respectivamente.<SUP>16</SUP> </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Entre las causas de resistencia a la 5-FC en <I>C. albicans</I>, se encuentra en primer lugar la deficiencia en la enzima uridina monofosfato pirofosforilasa, que interviene en la s&iacute;ntesis de 5-fl&uacute;or uridina monofosfato y de las fosforilaciones sucesivas hasta obtener 5-fl&uacute;or uridina trifosfato y en la s&iacute;ntesis de 5 desoxiuridina monofosfato.<SUP>10</SUP> Sin embargo, no se descartan las otras teor&iacute;as propuestas como son la activaci&oacute;n de ciertos mecanismos que permitir&iacute;an la reparaci&oacute;n del ARN alterado y la activaci&oacute;n de la s&iacute;ntesis de pirimidinas que competir&iacute;an con la propia 5-FC.<SUP>17</SUP> </P>     <P>En un trabajo previo realizado en Cuba por <I>Halley</I> y otros con la utilizaci&oacute;n del sistema ATB-Fungus (bioM&eacute;rieux), se encontr&oacute; 39,1 % de cepas resistentes, 8,7 % de cepas con sensibilidad intermedia y 52,2 % de cepas sensibles.<SUP>14</SUP> Aunque estos resultados difieren de los obtenidos en el presente trabajo, confirman la existencia del fen&oacute;meno de resistencia en nuestro medio por lo que se hacen necesarios estudios m&aacute;s amplios y profundos. </P>     <P>La determinaci&oacute;n de la CMI de 5-FC est&aacute; indicada fundamentalmente para aquellos casos de candidiasis sist&eacute;mica con sospechas de fallo terap&eacute;utico, por lo que esta t&eacute;cnica constituye una herramienta de gran valor al nivel de Laboratorios de Referencia o en aquellos hospitales que atiendan a grupos de pacientes con factores predisponentes para esta micosis. </P> <H4>SUMMARY</H4>     <P>5-fluorocytosine has been one of the most used antimycotics in the therapeutics of mycosis, however the appareance of resistant strains may be an important limitant for its use. That?s why it is necessary to know the sensitivity to this drug. To this end, it was determined the minimum inhibitory concentration (MIC) of 5-fluorocytosine against 50 clinical isolates of<I> Candida albicans</I> by a micromethod of dilution in RPMI 1640 media , comparing 2 reading methods. The values of the geometrical mean obtained were 0.95 mg/mL for the visual reading and 0.75 mg/mL for the automated reading. There were no significant differences between them (p&lt;0.05). Pearson?s lineal correlation coefficent was r=0.81. It indicates that although there was a good correlation, there was also discrepancy between both readings. The IMC<SUB>50</SUB> was of 0,5 &amp;micro;g/mL and the IMC<SUB>90</SUB> of 4 mg/mL. 90 and 92% of sensitive strains , between 6 and 8% of resistant strains and 2% of strains with intermediate sensitivity were found depending on the reading method used. These values show a low resistance against this drug, which may have a direct repercussion on the therapeutic behaviour to be followed in candidiasis. </P>     <P><B>Subject headings:</b> FLUCYTOSINE/therapeutic use; CANDIDA ALBICANS, MICROBIAL SENSITIVITY TESTS/methods. </P> <H4>REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</H4> <OL>      <!-- ref --><LI>Dupont B, Graybill JR, Armstrong D, Laroche R, Touz&eacute; JE, Wheat LJ. Fungal infections in AIDS patients. J Med Vet Mycol 1992;30 (Suppl 1):19-28.</LI>    <!-- ref --><LI>Bowden RA. Prevention of candidal infection in immuno-compromised patients: what for whom?. Int J Infect Dis 1997;1(Suppl 1):32-5.</LI>    <!-- ref --><LI>Rodero LL, Davel GO, Vivot W, Canteros CE, Fern&aacute;ndez C. Pruebas de sensibilidad <I>in vitro</I> para levaduras: evaluaci&oacute;n de un microm&eacute;todo. Rev Arg Microb 1995;27:81-89.</LI>    <!-- ref --><LI>Bodey GP. Disseminated candidiasis in neutrophenic patients. 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