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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A novel immunization schedule was tested to increase antibodies to Haemophilus influenzae type B in which a 0.5 % formaldehyde-inactivated cellular antigen and a partially purified lipopolysacharid antigen obtained from a selective precipitation with organic solvents were combined as immunogens. High specificity and biological activity antibodies with titers up to 1:256 were obtained by counterinmunoelectrophoresis; they were purified through a selective precipitation with ammonium sulphate and an ion-exchange chromatography using a DEAE-Sapharose column. The method proposed in this paper facilitates the production of purified antibodies useful for the improvement of serological diagnosis and H. influenzae b strain serotyping techniques.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <H3>Comunicaci&oacute;n breve</H3>     <P>Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;" </P> <H2>Novedoso esquema de inmunizaci&oacute;n para la obtenci&oacute;n de anticuerpos anti-LPS de Haemophilus influenzae tipo B</H2>     <P><A HREF="#cargo"><I>Lic. Rosabel Falc&oacute;n M&aacute;rquez,<span class="superscript">1 </span>Lic. Gilda Tora&ntilde;o Peraza,<span class="superscript">2</span> Lic. Berta Victoria Mart&iacute;nez<span class="superscript">3</span> y Lic. Isis Tamargo Mart&iacute;nez<span class="superscript">4 </span></I></A><span class="superscript"><A NAME="autor"></A></span></P> <H4>RESUMEN</H4>     <P>Se ensay&oacute; un novedoso esquema de inmunizaci&oacute;n dirigido a la elevaci&oacute;n de anticuerpos para Haemophilus influenzae tipo b, en el que se combinaron como inmun&oacute;genos un ant&iacute;geno celular inactivado con formaldeh&iacute;do 0,5 %, y un ant&iacute;geno lipopolisacar&iacute;dico parcialmente purificado mediante un m&eacute;todo de precipitaci&oacute;n selectiva con solventes org&aacute;nicos. Se obtuvieron anticuerpos de elevada especificidad y actividad biol&oacute;gica con t&iacute;tulos de hasta 1:256 por contrainmunoelectroforesis, que fueron purificados mediante precipitaci&oacute;n selectiva con sulfato de amonio y cromatograf&iacute;a de intercambio i&oacute;nico con la utilizaci&oacute;n de una columna de DEAE-Sepharose. La metodolog&iacute;a propuesta en este trabajo permite la producci&oacute;n de anticuerpos purificados, &uacute;tiles en la optimizaci&oacute;n de t&eacute;cnicas de diagn&oacute;stico serol&oacute;gicas y de serotipaje de cepas de H. influenzae b. </P>     <P>DeCs: HAEMOPHILUS INFLUENZAE TIPO B; ESQUEMA DE INMUNIZACI&Oacute;N; CONTRAINMUNOELECTROFORESIS//m&eacute;todos; LIPOPOLISAC&Aacute;RIDOS. </P>     <P>&nbsp;</P>     <P>Haemophilus influenzae tipo b (Hib) es el agente causal de 99 % de las infecciones invasivas causadas por su especie.<span class="superscript">1 </span>Dentro de estas, las meningitis constituyen el mayor problema de salud al ocasionar altas tasas de morbilidad y mortalidad en ni&ntilde;os menores de 5 a&ntilde;os.<span class="superscript">2</span> Diversos componentes celulares, as&iacute; como sustancias extracelulares, desempe&ntilde;an un papel importante en la patogenia de Hib. Dentro de estos, el lipopolisac&aacute;rido (LPS), componente de la membrana externa de las bacterias gramnegativas, es un potente factor de virulencia, cuyo efecto ciliost&aacute;tico favorece la colonizaci&oacute;n y diseminaci&oacute;n de este microorganismo en el tracto respiratorio. El LPS constituye un ant&iacute;geno timoindependiente pobremente inmunog&eacute;nico, que contiene en su estructura varios determinantes antig&eacute;nicos capaces de estimular la producci&oacute;n de anticuerpos bactericidas.<span class="superscript">3,4 </span></P>     <P>Con el objetivo de contribuir a la optimizaci&oacute;n de sistemas &uacute;tiles en el inmunodiagn&oacute;stico de Hib, el laboratorio de Infecciones Respiratorias Agudas Bactericidas (IRAB) del Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;" (IPK) se propuso obtener inmunoglobulinas purificadas a partir de anticuerpos espec&iacute;ficos contra el LPS de Hib, mediante un esquema de inmunizaci&oacute;n totalmente novedoso. </P>     <P>Se utilizaron como inmun&oacute;genos un ant&iacute;geno celular (Agc) y un ant&iacute;geno lipopolisacar&iacute;dico (Ag-LPS), producidos a partir de la cepa Hib ATCC 10211. Para la preparaci&oacute;n del Agc, la cepa fue cultivada en placas de agar chocolate por 24 h a 37 °C en atm&oacute;sfera de CO<span class="subscript">2</span> 5 %, la biomasa obtenida fue resuspendida en soluci&oacute;n salina est&eacute;ril e inactivada con formaldeh&iacute;do 0,5 %, y la concentraci&oacute;n celular se ajust&oacute; a 1,5 × 10<span class="superscript">9</span> c&eacute;lulas/mL. Para la preparaci&oacute;n del Ag-LPS la cepa fue cultivada en caldo cerebro-coraz&oacute;n suplementado con 0,2 mg/mL de hemina, NAD y 0,04 g/mL de glucosa. El Ag-LPS fue parcialmente purificado por medio del m&eacute;todo fenol-H<span class="subscript">2</span>O descrito por Westphal y Jann<span class="superscript">5</span> y el rendimiento estimado fue de 1,56 mg/mL de polisac&aacute;rido, con la utilizaci&oacute;n del m&eacute;todo fenol-sulf&uacute;rico.<span class="superscript">6</span> La concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas determinada por el m&eacute;todo de Lowry fue de 0,12 mg/mL<span class="superscript">7</span> y el contenido de &aacute;cidos nucleicos, calculado seg&uacute;n Maniati, fue de 87,9 mg/mL.<span class="superscript">8 </span></P>     <P>Para la obtenci&oacute;n de anticuerpos espec&iacute;ficos anti-LPS, se ensay&oacute; un esquema de inmunizaci&oacute;n en conejos albinos de 2,5 kg de peso y 3 meses de edad que const&oacute; de 2 etapas. Durante la primera, al tomar como referencia otros esquemas de inmunizaci&oacute;n desarrollados en el laboratorio IRAB del IPK en la producci&oacute;n de anticuerpos espec&iacute;ficos para Hib (Tamargo I, observaciones in&eacute;ditas), se utiliz&oacute; como inmun&oacute;geno el Agc. Este fue administrado por v&iacute;a endovenosa y en dosis de 0,5; 1; 1,5 y 2 mL, con intervalos entre dosis de 3 d, hasta obtener sueros con t&iacute;tulos mayores o iguales a 1:16 por contrainmunoelectroforesis (CIE). En una segunda etapa del esquema se procedi&oacute; a la inoculaci&oacute;n del Ag-LPS 2 veces por semana, en dosis ascendentes desde 0,1 hasta 1 mL. </P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Al finalizar la primera etapa del esquema se obtuvo un t&iacute;tulo de anticuerpos de hasta 1:32 frente al Agc, y en la segunda fase los t&iacute;tulos ascendieron hasta la diluci&oacute;n 1:256 frente al Ag-LPS parcialmente purificado, en la misma medida fue disminuyendo la respuesta de anticuerpos frente al Agc y lleg&oacute; a desaparecer al concluir las inmunizaciones. </P>     <P>Iniciar el esquema de inmunizaci&oacute;n con el empleo del Agc garantiza una potente proliferaci&oacute;n linfocitaria, y la posterior inoculaci&oacute;n del ant&iacute;geno parcialmente purificado estimula una respuesta inmunol&oacute;gica m&aacute;s espec&iacute;fica.<span class="superscript">9,10</span> Con esta com-binaci&oacute;n se logra superar la baja inmunogenicidad que presenta el Ag-LPS.<span class="superscript">3,4</span> No se tiene referencia de la utilizaci&oacute;n de un m&eacute;todo de inmunizaci&oacute;n similar al propuesto por los autores de este estudio. </P>     <P>Las inmunoglobulinas G (IgG) anti-LPS de Hib fueron purificadas con la utilizaci&oacute;n de los m&eacute;todos de precipitaci&oacute;n selectiva con sulfato de amo-nio 50 % y tecnolog&iacute;a FPLC mediante una cromatograf&iacute;a de intercambio ani&oacute;nico en DEAE-Sepharose. La electroforesis en geles de polia-crilamida en presencia de dodecil sulfato de sodio (SDS-PAGE) en condiciones de reducci&oacute;n,<span class="superscript">11</span> realizada como criterio de pureza, revel&oacute; solo las 2 bandas (25 y 50 kDa) correspondientes a la IgG tratada con b-mercaptoetanol (fig.). Como resultado de la purificaci&oacute;n se increment&oacute; en 2 veces el grado de pureza del antisuero anti-LPS, sin grandes p&eacute;rdidas de la actividad biol&oacute;gica (t&iacute;tulo 1:64, determinado por CIE). </P>     <P>&nbsp;</P>     <P ALIGN="CENTER"><A HREF="/img/revistas/mtr/v53n1/f0113101.jpg"><IMG SRC="/img/revistas/mtr/v53n1/f0113101.jpg" BORDER=0></A></P>     
<P ALIGN="CENTER">(- ) Pico proteico con actividad biol&oacute;gica de 256 por CIE. Lateral derecho: Perfil electrofor&eacute;tico de los anticuerpos espec&iacute;ficos contra Hib obtenidos en SDS-PAGE.     <BR> Fig. Perfil de elusi&oacute;n de la IgG anti-LPS de Haemophilus influenzae tipo b en cromatograf&iacute;a de intercambio ani&oacute;nico DEAE-Sepharose.</P>     <P>Con este trabajo se logr&oacute; obtener por primera vez en Cuba, a trav&eacute;s de un novedoso esquema de inmunizaci&oacute;n y un proceso de purificaci&oacute;n con la utilizaci&oacute;n de la tecnolog&iacute;a FPLC, IgG anti-LPS de Hib, &uacute;til como herramienta en la optimizaci&oacute;n de m&eacute;todos serol&oacute;gicos para el diagn&oacute;stico de Hib, estudios epidemiol&oacute;gicos y de caracterizaci&oacute;n de cepas.<span class="superscript">12 </span></P> <H4>SUMMARY</H4>     <P>A novel immunization schedule was tested to increase antibodies to Haemophilus influenzae type B in which a 0.5 % formaldehyde-inactivated cellular antigen and a partially purified lipopolysacharid antigen obtained from a selective precipitation with organic solvents were combined as immunogens. High specificity and biological activity antibodies with titers up to 1:256 were obtained by counterinmunoelectrophoresis; they were purified through a selective precipitation with ammonium sulphate and an ion-exchange chromatography using a DEAE-Sapharose column. The method proposed in this paper facilitates the production of purified antibodies useful for the improvement of serological diagnosis and H. influenzae b strain serotyping techniques. </P>     <P>Subject headings: HAEMOPHILUS INFLUENZAE TYPE B; IMMUNIZATION SCHEDULE; COUNTERIMMUNO-ELECTROPHORESIS/methods; LIPOPOLYSACCHA-RIDES.X </P> <H4>    ]]></body>
<body><![CDATA[<BR> REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS</H4> <OL>      <!-- ref --><LI>World Health Organization. Control of epidemic meningococcal disease. Who practical guideliness. Geneva: Fundation Marcel M&eacute;rieux, 1995. </LI>    <!-- ref --><LI>Tamargo I, Tora&ntilde;o G, Rodr&iacute;guez O, P&eacute;rez M, Llop A. Characterization of Haemophilus influenzae obtained from invasive disease in cuban children under five years old of age. Mem Inst Oswaldo Cruz 1999;94(4):477-8. </LI>    <!-- ref --><LI>Sosa E. Superficies microbianas de Haemophilus influenzae en relaci&oacute;n con la patogenicidad. Infectolog&iacute;a 1987;7(9):435-44. </LI>    <!-- ref --><LI>Sosa E. Superficies microbianas de Haemophilus influenzae en relaci&oacute;n con la patogenicidad. Infectolog&iacute;a 1987;7(10):481-9. </LI>    <!-- ref --><LI>Westphal O, Jann K. Bacterial lipopolysaccharides: extraction with phenol-water and fither applications of the procedure. Methods Carbohyd Chem 1965;2:83-91. </LI>    <!-- ref --><LI>Dubois M, Halminton K, Rebers P, Smith C. Colorimetric methods for determination of sugar and related substances. Anal Chem 1956;167:350-6. </LI>    <!-- ref --><LI>Lowry O, Rosenbrough N, Farr A, Randall R. Protein measurement with phenol reagent. J Biol Chem 1951;193:265-75. </LI>    <!-- ref --><LI>Maniati T, Fritsh E, Sambrook J. Molecular cloning. A laboratory manual. Quantitation of DNA. New York: Cold Spring Hanbook Laboratory, 1982:468-9. </LI>    <!-- ref --><LI>Janeway C, Tavers P. Immunobiology. The immune system in health and disease. New York: Garland Publishing, 1994:43-6. </LI>    <!-- ref --><LI>Roitt I, Brostoff J, Male D. Immunology. Barcelona: Grafos, 1998:813-6. </LI>    <!-- ref --><LI>Laemmli U. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature 1970;227:680-5. </LI>    <!-- ref --><LI>Van Alphen L. The molecular epidemiology of Haemophilus influenzae. Rev Med Microbiol 1993;4:159-66. </LI>    </OL>      <P>Recibido: 2 de septiembre de 1999. Aprobado: 2 de octubre del 2000.     <BR> Lic. Rosabel Falc&oacute;n M&aacute;rquez. Instituto de Medicina Tropical "Pedro Kour&iacute;". Apartado 601, Marianao 13, Ciudad de La Habana, Cuba. Correo electr&oacute;nico: ciipk@ipk.sld.cu </P>     <P>&nbsp;</P> <OL>      <LI><A HREF="#autor">M&aacute;ster en Microbiolog&iacute;a. Licenciada en Bioqu&iacute;mica. Investigadora Agregada. </A></LI>     <LI><A HREF="#autor">M&aacute;ster en Bacteriolog&iacute;a-Micolog&iacute;a. Licenciada en Microbiolog&iacute;a. Investigadora Agregada. </A></LI>     <LI><A HREF="#autor">Licenciada en Bioqu&iacute;mica. Aspirante a Investigadora. </A></LI>     ]]></body>
<body><![CDATA[<LI><A HREF="#autor">Licenciada en Microbiolog&iacute;a. Investigadora Auxilia</A>r<A NAME="cargo"></A>.</LI>    </OL>      ]]></body><back>
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