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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Preparación de un conjugado peroxidasa-anti IgG humana (cadena ) en conejo]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Preparation of a peroxidase-anti human IgG conjugate (chain g) in rabbit]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A peroxidase conjugate was prepared starting from the specific antibodies isolated from an anti-chain rabbit serum and from human IgG. The specific antibodies were isolated by affinity chromatography and the conjugate was prepared by the method of oxidation with periodate. The conjugate obtained presented a molar IgG/peroxidase relation of 1.07, a RZ value of 0.33 and it was satisfactorily evaluated as regards its specificity and reactivity in the immunoenzimatic assays carried out]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <h3>Producción </h3>    <p>Instituto de Hematología e Inmunología </p><h2>Preparación  de un conjugado peroxidasa-anti IgG humana (cadena ) en conejo </h2>    <p><a href="#cargo"><i>Lic.  Julio C. Merlín Linares</i></a><i>,<a name="autor"></a> Lic. Rinaldo Villaescusa  Blanco, Lic, Ana M. Guerreiro Hernández, Dr. Juan M. González González y Lic.  Ada A. Arce Hernández </i> </p><h4>Resumen </h4>    <p>Se preparó un conjugado con  peroxidasa a partir de los anticuerpos específicos aislados de un suero de conejo  anti cadenas g de la IgG humana. Los anticuerpos específicos se aislaron por cromatografía  de afinidad, y el conjugado se preparó por el método de oxidación con peryodato.  El conjugado obtenido presentó una relación molar IgG/peroxidasa de 1,07, un valor  de RZ de 0,33 y resultó evaluado satisfactoriamente en cuanto a su especificidad  y reactividad en los ensayos inmunoenzimáticos realizados. </p>    <p>DeCS: ANTICUERPOS;  CROMATOGRAFIA DE AFINIDAD; PEROXIDASAS; IGG; CONEJOS. </p>    <p>Los anticuerpos específicos  aislados por cromotografía de afinidad a partir de los antisueros policlonales  permiten elevar considerablemente la especificidad y la sensibilidad de los métodos  en los que se utilizan. Los resultados obtenidos con estos anticuerpos específicos  son extraordinariamente superiores a los que se obtienen con el antisuero sin  fraccionar, y generalmente muy superiores a los que se obtienen con la fracción  gamma (obtenida por precipitación salina), y con la fracción IgG (obtenida por  cromotografía de intercambio iónico) del antisuero original. </p>    <p>La utilización  de anticuerpos aislados por cromatografía de afinidad para la preparación de conjugados  con peroxidasa se ha generalizado rápidamente entre los diferentes productores  comerciales, pues este procedimiento posibilita la obtención de conjugados que  poseen un nivel de calidad muy alto. Sin embargo, se ha demostrado que estos conjugados  pueden ser preparados por el método de oxidación con peryodato en los laboratorios  donde van a ser empleados,<span class="superscript">1</span> y nuestra experiencia  anterior nos ha permitido comprobar que por este procedimiento es posible la obtención  de conjugados que poseen un nivel de calidad comparable con el de sus similares  comerciales.<span class="superscript">2 </span></p>    <p>Este trabajo se realizó  con el objetivo de preparar un conjugado anti IgG humana (específico para las  cadenas <font face="Symbol">g</font>) en conejo, con el fin de utilizarlo en métodos  indirectos para la detección de anticuerpos. </p><h4>Métodos </h4>    <p>Aislamiento  y purificación de IgG. La IgG humana se purificó por cromatografía de intercambio  iónico en resina de DEAE Sephacel, y por cromatografía de filtración en gel de  Sephadex G-150.<span class="superscript">3 </span>Las cadenas g se prepararon  por reducción de la IgG purificada con <font face="Symbol">b</font>-mercapto etanol,  y se separaron de las cadenas ligeras por cromatografía de filtración en gel de  Sephadex G-100. La IgG de conejo se purificó por cromatografía de intercambio  iónico empleando resina tipo DE-52, y por cromatografía de filtración en gel de  Sephadex G-150. Producción de antisueros: El suero anti IgG (cadena g) humana  se obtuvo por inmunización intramuscular de las cadenas g purificada sen conejos,  y el suero anti IgG humana (molécula completa) se obtuvo por inmunización intramuscular  en carnero. El suero anti IgG de conejo se obtuvo por inmunización intramuscular  en carnero. El suero anti proteínas séricas totales humanas se obtuvo por inmunización  del suero normal diluido en conejos, y el suero anti proteínas séricas totales  de conejo se obtuvo por inmunización del suero normal diluido en carnero. En todos  los casos, se emplearon esquemas de inmunización diseñados por nuestro grupo de  trabajo. </p>    <p>Purificación de los antisueros específicos. El suero de conejo  anti IgG (cadena <font face="Symbol">g</font>) humana se precipitó con sulfato  de amonio al 50 % de saturación. El precipitado se resuspendió, se dializó exhaustivamente,  y se aplicó en una columna cromatográfica que contenía gel de Sepharosa CL-4B  acoplada con IgG humana pura, en una concentración de 2 mg/mL de gel. </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Preparación  del conjugado. La conjugación de la peroxidasa (E.C.1.1.1.1.7; tipo VI, SIGMA)  con los antisueros específicos anti IgG (cadena <font face="Symbol">g</font>)  humana se llevó a cabo por el método de oxidación con peryodato,1 para lo cual  se empleó una proporción de 0,5 mg de peroxidasa por cada mg de anticuerpo. El  conjugado se dializó contra solución amortiguadora de fosfatos 0,01M de pH 7,2,  que contenía NaCl 0,15 M (PBS), se purificó por cromatografía en Sepharosa CL-6B  y al producto obtenido se le determinó la relación molar IgG/peroxidasa y el valor  de RZ (D.O. a 403 nm/D.O. a 280 nm). Se le añadió albúmina de suero bovino al  1 % y timerosal al 0,01 % para su conservación en alícuotas a –30 °C. </p>    <p>Evaluación  de los productos obtenidos. La pureza de la IgG humana, de las cadenas g, de la  IgG de conejo y de los anticuerpos específicos, así como la reactividad y especificidad  de estos últimos, se comprobaron por inmunoelectroforesis y por doble inmunodifusión  en gel de agar.<span class="superscript">4,5</span> El conjugado se evaluó mediante  ensayos inmunoenzimáticos heterogéneos tipo ELISA. </p>    <p>El primer ensayo inmunoenzimático  se realizó por el método directo en placas recubiertas con diferentes concentraciones  de IgG humana, saturadas con albúmina de suero bovino e incubadas con el conjugado.  Posteriormente se incubó con la mezcla sustrato-cromógeno (H2O2-OPD), se detuvo  la reacción con ácido sulfúrico 2M y se leyó a 492 nm. </p>    <p>El segundo ensayo  inmunoenzimático se realizó por un método indirecto, en placas recubiertas con  diluciones de suero anti IgG humana, saturadas con albúmina de suero bovino, e  incubadas con IgG humana, con el conjugado y con la mezcla de sustrato-cromógeno.  </p>    <p>En el tercer ensayo inmunoenzimático se utilizaron placas preparadas de  igual forma que en el primero (recubiertas con 0,2 y 5 µg de IgG humana, respectivamente),  que se incubaron con diferentes diluciones del conjugado.</p><h4> Resultados </h4>    <p>La  cromatografía de filtración en gel de Sephadex G-100 permitió separar adecuadamente  las cadenas pesadas (<font face="Symbol">g</font>) de las ligeras (fig.1). La  inmunoelectroforesis en gel de agar y la doble inmunodifusión permitieron comprobar  la pureza de la IgG humana, de las cadenas <font face="Symbol">g</font>, de la  IgG de conejo, y de los anticuerpos específicos anti IgG (cadena<font face="Symbol">  g</font>) humana. En todos los casos se obtuvo una sola línea de precipitación  debida a la IgG de la especie en cuestión, frente al suero anti IgG y frente al  suero anti proteínas séricas totales. </p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/hih/v17n2/f0108201.jpg"><img src="/img/revistas/hih/v17n2/f0108201.jpg" width="175" height="193" border="0"></a></p>    
<p align="center">Fig.  1. Separación de las cadenas pesadas (<font face="Symbol">g</font>) y ligeras  de la IgG humana por cromatografía de filtración en gel de Sephadex C-100. </p>    <p>Al  emplear la doble inmunodifusión y la inmunoelectroforesis para evaluar la reactividad  y la especificidad de los anticuerpos específicos anti IgG (cadena <font face="Symbol">g</font>)  humana aislados, se observó que estos producían una sola línea de precipitación  con las cadenas <font face="Symbol">g</font>, con la IgG humana pura y con el  suero normal humano. No se observaron líneas de precipitación con las restantes  proteínas del suero humano. A partir de los anticuerpos aislados por cromotografía  de afinidad, se preparó el conjugado con peroxidasa. Se empleó una relación molar  de peroxidasa/IgG de 2. El conjugado, después de la purificación con Sepharosa  CL-6B, presentó una relación preoxidas/IgG de 0,93 y un valor de 0,33 para el  índice RZ. El producto presentó el aspecto de un líquido transparente de color  amarillo claro, sin contaminación con la peroxidasa ni la IgG sin conjugar, las  que habían sido separadas por la cromatografía en Sepharosa CL-6B. </p>    <p>En el  primer ensayo inmunoenzimático se observó que el conjugado se fijaba a la placa  en cantidades directamente proporcionales a la concentración de IgG humana empleada  en el recubrimiento (fig.2). Cuando la placa recubierta con IgG humana se incubó  con un antisuero de carnero sin conjugar antes de añadir el conjugado (controles  negativos), el conjugado prácticamente no se fijó a la placa. </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a href="/img/revistas/hih/v17n2/f0208201.jpg"><img src="/img/revistas/hih/v17n2/f0208201.jpg" width="194" height="186" border="0"></a></p>    
<p align="center">Fig.  2. Ensayo inmunoenzimático en una placa recubierta con IgG humana. Influencia  de la concentración de la IgG humana.</p>    <p>En el segundo ensayo inmunoenzimático  se observó que el conjugado se fijaba a la placa en cantidades proporcionales  a las concentraciones del suero de carnero anti IgG humana (molécula completa),  utilizado como anticuerpo para el recubrimiento (fig.3). En los controles negativos,  en los que su sustituyó el anticuerpo de recubrimiento por un suero normal (no  inmune) de carnero en iguales diluciones, no se produjo una fijación apreciable  del conjugado.</p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/hih/v17n2/f0308201.jpg"><img src="/img/revistas/hih/v17n2/f0308201.jpg" width="168" height="178" border="0"></a></p>    
<p align="center">Fig.  3. Ensayo inmunoenzimático en una placa recubierta con anti IgG humana. Influencia  de la concentración del anticuerpo de recubrimiento. </p>    <p>En el tercer ensayo  inmunoenzimático se observó un aumento proporcional de las lecturas al aumentar  la concentración del conjugado. Se obtuvo una D.O. de 0,98 en una placa recubierta  con 5 µg/mL de IgG humana e incubada con una dilución 1:2000 del conjugado, y  una D.O. de 0,69 para una placa recubierta con 200 ng/mL de IgG humana e incubada  con una dilución de 1:500 del conjugado (fig.4). </p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/hih/v17n2/f0408201.jpg"><img src="/img/revistas/hih/v17n2/f0408201.jpg" width="173" height="180" border="0"></a></p>    
<p align="center">Fig.  4. Ensayo inmunoenzimático en una placa recubierta con IgG humana. Influencia  de la concentración del conjugado. </p><h4>Discusión </h4>    <p>En este trabajo se  purificó la llamada cadena pesada (<font face="Symbol">g</font>) de la IgG humana  para emplearla en la producción de un antisuero en conejo, a partir del cual se  aislaron los anticuerpos específicos anti IgG (cadena <font face="Symbol">g</font>)  humana por cromatografía de afinidad, para garantizar la preparación de un conjugado  que tuviera un alto grado de especificidad. </p>    <p>Para la preparación del conjugado  se mantuvo la relación molar peroxidasa/anticuerpo de 2, aunque las concentraciones  fueron inferiores a las recomendadas en la técnica original,<span class="superscript">1</span>  para evitar la precipitación de los anticuerpos de conejo específicos para la  IgG humana. La relación molar peroxidasa/IgG del conjugado obtenido indica la  proporción de moléculas de anticuerpo marcadas con la enzima (aproximadamente  el 90 % como promedio), la cual resultó comparable con las obtenidas por otros  autores y con las de los productos comerciales.<span class="superscript">1,6 </span></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>A  partir de los resultados del tercer ensayo inmunoenzimático, se pudo estimar el  título del conjugado en el rango de diluciones entre 1:1000 y 1:2000. Este título  constituye uno de los parámetros que permiten caracterizar el conjugado, junto  con la relación molar IgG/peroxidasa(1,07), el valor del índice RZ (0,33), y las  diluciones de trabajo recomendadas para diferentes tipos de técnicas, especialmente  para los ensayos heterogéneos tipo ELISA (que en este caso fue de 1:2000). </p>    <p>De  acuerdo con los resultados obtenidos, se comprobó que con la utilización de anticuerpos  anti IgG humana purificados por cromatografía de afinidad, se lograba preparar  un conjugado con un alto grado de especificidad y una reactividad elevada. Los  ensayos inmunoenzimáticos permitieron evaluar satisfactoriamente este conjugado,  por lo que se puede considerar como un producto adecuado para su utilización en  técnicas de este tipo o similares, así como en el pesquisaje de anticuerpos monoclonales  humanos. </p><h4>Summary </h4>    <p>A peroxidase conjugate was prepared starting  from the specific antibodies isolated from an anti-chain rabbit serum and from  human IgG. The specific antibodies were isolated by affinity chromatography and  the conjugate was prepared by the method of oxidation with periodate. The conjugate  obtained presented a molar IgG/peroxidase relation of 1.07, a RZ value of 0.33  and it was satisfactorily evaluated as regards its specificity and reactivity  in the immunoenzimatic assays carried out. </p>    <p>Subject headings: ANTIBODIES;  CHROMATOGRAPHY, AFFINITY; PEROXIDASES; IGG; RABBITS. </p><h4>Referencias bibliográficas  </h4>    <P>1. Wilson MB, Nakane PK. Recent developments in the periodate method of  conjugating horseradish peroxidase (HRPO) to antibodies. En: Knapp W, Hollubat  K, Wick G, eds. Immunofluorescence and Related Staining Techniques. New York:  Academic, 1978:215. </P>    <P> 2. Merlín JC, Villaescusa R, Guerreiro AM, González  JM, González R, Arce AA. Preparación de un conjugado anti IgG de ratón-peroxidasa  en cabra. Rev Cubana Hematol Inmunol Hemoter (en prensa). </P>    <P> 3. Fahey JL.  Chromatographic separation of immunoglobulins. En: Chase W, ed. Methods in immunology  and immunochemistry. New York: Academic, 1978;vol 1:321. </P>    <P> 4. Stites DP.  Métodos clínicos de laboratorio para la detección de antígenos y anticuerpos.  En: Stites DP, Stabo JD, Fudenberg HH, Wells JV, eds. Inmunología básica y clínica.  La Habana, 1985:316. (Edición Revolucionaria). </P>    <P> 5. Ouchterlony O, Nilsson  LA. Immunodiffusion and immunoelectrophoresis. En: Weir DM, ed. Handbook of experimental  immunology. Vol 1. Oxford: Blackwell Sci, 1978;vol 1:1-44.</P>    <P> 6. Nakane PK,  Kawaoi A. Peroxidase abeled antibody. A new method of conjugation. J Histochem  Cytochem 1974;22:1084-91. </P>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Recibido: 15 de noviembre de 1999. Aprobado:  21 de noviembre de 1999.     <br> <a href="#autor">Lic. Julio C. Merlín Linares. Instituto  de Hematología e Inmunología. Apartado 8070, CP 10800 Ciudad de La Habana, Cuba.  Teléf: (537)578268. Fax: (537) 338979</a><i><a name="cargo"></a></i>.<a href="mailto:ihidir@hemato.sld.cu%20">  mailto:ihidir@hemato.sld.cu </a></p>      ]]></body>
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