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<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Hematología, Inmunología y Hemoterapia]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Aplicación de la citometría de flujo en el diagnóstico inmunológico de los linfomas cutáneos T]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Application of flow cytometry in the immunological diagnosis of cutaneous T-cell lymphomas]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Hematología e Inmunología  ]]></institution>
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<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0864-02892007000200007&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0864-02892007000200007&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0864-02892007000200007&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Se comunican las características inmunofenotípicas de 7 pacientes (5 del sexo masculino y 2 del femenino) con el diagnóstico clínico-morfológico de linfomas cutáneos de células T, atendidos en la consulta de Hematología del Instituto de Hematología e Inmunología. La edad de los pacientes osciló entre 17 y 88 años. El inmunodiagnóstico se realizó por inmunofluorescencia directa, con un panel de anticuerpos monoclonales que incluyó marcadores linfoides B y T: CD2, CD3, CD4, CD5, CD7, CD8, CD19, CD22 y CD25. La lectura se realizó en un clitómetro de flujo FaCScan (Becton-Dickinson). Cada marcador se consideró positivo si un porcentaje mayor al 20 % de los linfocitos expresaba el antígeno. Nuestros resultados mostraron que en la mayoría de los pacientes predominó el patrón general de los linfocitos T con función auxiliadora (CD3+, CD4+, CD8-). Se corrobora que la citometría de flujo es un procedimiento más rápido y menos laborioso que otros métodos de inmunofenotipaje celular, que nos permite un diagnóstico de certeza y la aplicación de una terapia efectiva.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The immunophenotypic characteristics of 7 patients (5 males and 2 females) with the clinical-morphological diagnosis of cutaneous T-cell lymphoma that received attention at the Hematology service of the Institute of Hematology and Immunology were reported. The patients were between 17 and 88 years old. The immunodiagnosis was made by direct immunofluorescence with a panel of monoclonal antibodies that included B and T lymphoid markers: CD2, CD3, CD4; CD5, CCD7, CD8, CD19, CD22 and CD25. The reading was obtained in a FaCScan (Becton-Dickinson) flow cytometer. Every marker was considered positive if a percentage over 20 % expressed the antigen. Our results showed the prevalence of the general pattern of T lymphocytes with auxiliary function (CD3+, CD4+, CD8-). It was proved that flow cytometry is a faster and less laborious than other methods of cellular phenotyping, allowing an accurate diagnosis and the application of an effective therapy.]]></p></abstract>
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<kwd lng="en"><![CDATA[flow cytometry]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p>Instituto de Hematolog&iacute;a e Inmunolog&iacute;a </p> <h2>Aplicaci&oacute;n de la citometr&iacute;a de flujo en el  diagn&oacute;stico inmunol&oacute;gico de los linfomas&nbsp;  cut&aacute;neos T </h2>     <p><strong>Application of flow cytometry in the immunological diagnosis of cutaneous  T-cell lymphomas </strong></p>     <p align="justify">Lic. Berta  Beatriz Socarr&aacute;s Ferrer,<span class="superscript">1</span> Lic. L&aacute;zaro O. del Valle P&eacute;rez,<span class="superscript">1</span> Dra. Vianed Mars&aacute;n S&uacute;arez,<span class="superscript">1</span> Dra. Miriam  S&aacute;nchez Segura,<span class="superscript">1</span> Lic. Ruby Alonso Ram&iacute;rez<span class="superscript">2</span> y DraC.  Consuelo Mac&iacute;as Abraham <span class="superscript">2</span></p>     <p align="justify"><span class="superscript">1</span>Instituto de  Hematolog&iacute;a e Inmunolog&iacute;a. La Habana, Cuba <br />   <span class="superscript">2</span>Centro de  Inmunolog&iacute;a Molecular. La Habana, Cuba</p> <hr> <h4>Resumen </h4>     <p align="justify">Se comunican  las caracter&iacute;sticas inmunofenot&iacute;picas de 7 pacientes (5 del sexo masculino y 2  del femenino) con el diagn&oacute;stico cl&iacute;nico-morfol&oacute;gico de linfomas cut&aacute;neos de  c&eacute;lulas T, atendidos en la consulta de Hematolog&iacute;a del Instituto de Hematolog&iacute;a  e Inmunolog&iacute;a. La edad de los pacientes oscil&oacute; entre 17 y 88 a&ntilde;os. El  inmunodiagn&oacute;stico se realiz&oacute; por inmunofluorescencia directa, con un panel de  anticuerpos monoclonales que incluy&oacute; marcadores linfoides B y T: CD2, CD3, CD4,  CD5, CD7, CD8, CD19, CD22 y CD25. La lectura se realiz&oacute; en un clit&oacute;metro de  flujo FaCScan (Becton-Dickinson). Cada marcador se consider&oacute; positivo si un  porcentaje mayor al 20 % de los linfocitos expresaba el ant&iacute;geno. Nuestros  resultados mostraron que en la mayor&iacute;a de los pacientes predomin&oacute; el patr&oacute;n  general de los linfocitos T con funci&oacute;n auxiliadora (CD3+, CD4+, CD8-). Se&nbsp; corrobora que la citometr&iacute;a de flujo es un  procedimiento m&aacute;s r&aacute;pido y menos laborioso que otros m&eacute;todos de  inmunofenotipaje celular, que nos permite un diagn&oacute;stico de certeza y la  aplicaci&oacute;n de una terapia efectiva.</p>     <p><em>Palabras clave</em>: linfomas cut&aacute;neos T, citometr&iacute;a de  flujo.</p> <hr> <h4 align="justify">Summary</h4>     <p>The  immunophenotypic characteristics of 7 patients (5 males and 2 females) with the  clinical-morphological diagnosis of cutaneous T-cell lymphoma that received  attention at the Hematology service of the Institute of Hematology and Immunology  were reported. The patients were between  17 and 88 years old. The immunodiagnosis was made by direct  immunofluorescence with a panel of monoclonal antibodies that included B and T lymphoid  markers: CD2, CD3, CD4; CD5, CCD7, CD8, CD19, CD22 and CD25.&nbsp; &nbsp;The  reading was obtained in a  FaCScan (Becton-Dickinson) flow cytometer<strong>. </strong>Every marker was considered positive  if a percentage over 20 % expressed the antigen. Our results showed the  prevalence of the general pattern of T lymphocytes with auxiliary function (CD3+, CD4+, CD8-). It was proved that flow cytometry  is a faster and less laborious than other methods of cellular phenotyping,  allowing an accurate diagnosis and the application of an effective therapy. </p>     <p>  <em>Key words:</em> Cutaneous T-cell lymphomas, flow cytometry.</p> <hr>     <p align="justify">Los linfomas  cut&aacute;neos (LC) son procesos linfoproliferativos malignos cuyo &oacute;rgano diana es la  piel. Seg&uacute;n su origen, se clasifican en T o B.<span class="superscript">1-3</span> La incidencia  global de los linfomas cut&aacute;neos de c&eacute;lulas T (LCCT) es de alrededor de 0,36  casos por 100 000 habitantes al a&ntilde;o, lo que constituye una proporci&oacute;n peque&ntilde;a  dentro de los linfomas no hodgkinianos.<span class="superscript">4,5 </span>Estas neoplasias  aparecen fundamentalmente entre los 45 y los 65 a&ntilde;os y son 2,2 veces m&aacute;s  frecuentes en el sexo masculino que en el femenino. Las presentaciones cl&iacute;nicas  m&aacute;s reportadas son la micosis fungoides (MF) y el s&iacute;ndrome de S&eacute;zary (SS).<span class="superscript">5-9</span></p>     <p align="justify">&nbsp;La MF es la forma m&aacute;s com&uacute;n de LCCT y, a la  vez, es la que presenta mayores dificultades diagn&oacute;sticas, particularmente en  la fase inicial de su desarrollo. Su incidencia es de 0,29 casos por 100 000  habitantes al a&ntilde;o y su etiopatogenia se desconoce.<span class="superscript">10,11  </span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Por otro lado,  el s&iacute;ndrome de S&eacute;zary, es considerado como la expresi&oacute;n leucemizada de la MF;  se caracteriza por eritrodermia, poliadenopat&iacute;as y elevado n&uacute;mero de linfocitos  at&iacute;picos en sangre perif&eacute;rica (c&eacute;lulas de S&eacute;zary). Otras manifestaciones  cl&iacute;nicas que se pueden presentar son: hiperpigmentaci&oacute;n progresiva,  hiperqueratosis palmoplantar y la p&eacute;rdida&nbsp;  de pelos y u&ntilde;as.<span class="superscript">3,12</span></p>     <p align="justify">Tradicionalmente,  el diagn&oacute;stico de cualquier lesi&oacute;n cut&aacute;nea est&aacute; basado en criterios cl&iacute;nicos e  histopatol&oacute;gicos. Ninguno de estos criterios es absoluto, de ah&iacute; que se  destaque la trascendencia de los estudios citogen&eacute;ticos, inmunol&oacute;gicos y  moleculares para un diagn&oacute;stico de certeza y pron&oacute;stico de la enfermedad, por  lo que nos propusimos aplicar la citometr&iacute;a de flujo para el  inmunodiagn&oacute;stico de 7 pacientes con  LCCT atendidos en la consulta de Hematolog&iacute;a del Instituto de Hematolog&iacute;a e  Inmunolog&iacute;a.</p> <h4>M&eacute;todos </h4>     <p align="justify">Se estudiaron  7 pacientes (5 del sexo masculino y 2 del femenino), con un rango de edad que  oscil&oacute; entre 17 y 88 a&ntilde;os, con diagn&oacute;stico cl&iacute;nico-morfol&oacute;gico de LCCT. Las  muestras se obtuvieron de sangre perif&eacute;rica y se depositaron en tubos con EDTA  al 10 %.</p> <h6>Marcadores  inmunol&oacute;gicos</h6>     <p align="justify">El estudio  inmunofenot&iacute;pico se realiz&oacute; por un m&eacute;todo de inmunofluorescencia directa con un  panel de anticuerpos monoclonales (AcMo) que detectan ant&iacute;genos en linfocitos B  y T. El an&aacute;lisis se realiz&oacute; por citometr&iacute;a de flujo en un FaC Scan  (Becton-Dickinson, EE.UU.) mediante el examen de la reacci&oacute;n con los AcMo en la  ventana de la poblaci&oacute;n linfoide.<span class="superscript">13</span> El panel utilizado incluy&oacute;:  CD2, CD3,&nbsp; CD4, CD5, CD7, CD8, CD19, CD22  y CD25. Algunos AcMo estaban conjugados con ficoeritrina (RPE) y otros con  isotiocianato de fluoresce&iacute;na (FITC) (tabla 1). Todas las muestras fueron  fijadas con una soluci&oacute;n de paraformaldeh&iacute;do al 1 %. La lectura se realiz&oacute;  mediante la adquisici&oacute;n de 10 000 c&eacute;lulas en cada tubo. Cada marcador se  consider&oacute; positivo si un porcentaje superior al 20 % de los linfocitos expresaban  el ant&iacute;geno.  </p>     <p align="center">Tabla  1. Panel de anticuerpos monoclonales (AcMo)   utilizados  en la citometr&iacute;a de flujo  &nbsp; </p> <table border="1" align="center" cellpadding="0" cellspacing="3">   <tr>     <td width="149" valign="top">    <div align="center">Ant&iacute;geno</div></td>     <td width="211" valign="top">    <div align="center">Clon</div></td>     <td width="192" valign="top">    <div align="center">Productor</div></td>   </tr>   <tr>     <td width="149" valign="top">    <p align="center">CD2 RPE</p></td>     <td width="211" valign="top">    <p align="center">T11</p></td>     <td width="192" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">Coulter</p></td>   </tr>   <tr>     <td width="149" valign="top">    <p align="center">CD3    FITC</p></td>     <td width="211" valign="top">    <p align="center">UCHT1</p></td>     <td width="192" valign="top">    <p align="center">Dako</p></td>   </tr>   <tr>     <td width="149" valign="top">    <p align="center">CD4    FITC</p></td>     <td width="211" valign="top">    <p align="center">Leu-3A</p></td>     <td width="192" valign="top">    <p align="center">Becton-Dickinson</p></td>   </tr>   <tr>     <td width="149" valign="top">    <p align="center">CD5    RPE</p></td>     <td width="211" valign="top">    <p align="center">DK    23</p></td>     <td width="192" valign="top">    <p align="center">Dako</p></td>   </tr>   <tr>     <td width="149" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">CD7    RPE</p></td>     <td width="211" valign="top">    <p align="center">3    A1</p></td>     <td width="192" valign="top">    <p align="center">Coulter</p></td>   </tr>   <tr>     <td width="149" valign="top">    <p align="center">CD8    RPE</p></td>     <td width="211" valign="top">    <p align="center">DK25</p></td>     <td width="192" valign="top">    <p align="center">Dako</p></td>   </tr>   <tr>     <td width="149" valign="top">    <p align="center">CD19    RPE</p></td>     <td width="211" valign="top">    <p align="center">Leu-12</p></td>     <td width="192" valign="top">    <p align="center">Becton-Dickinson</p></td>   </tr>   <tr>     <td width="149" valign="top">    <p align="center">CD22    RPE</p></td>     <td width="211" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">4KB    128</p></td>     <td width="192" valign="top">    <p align="center">Dako</p></td>   </tr>   <tr>     <td width="149" valign="top">    <p align="center">CD25    RPE</p></td>     <td width="211" valign="top">    <p align="center">IL-2R</p></td>     <td width="192" valign="top">    <p align="center">Becton-Dickinson</p></td>   </tr> </table> <h4>Resultados </h4>     <p align="justify">La  distribuci&oacute;n de los casos diagnosticados con LCCT se describe en la tabla 2. En  la mayor&iacute;a de los pacientes predomina el patr&oacute;n general de los linfocitos T con  funci&oacute;n auxiliadora CD3+, CD4+, CD8-&nbsp; (71,40 %). En la minor&iacute;a (1 paciente)  se expresan los marcadores con funci&oacute;n citot&oacute;xica CD3+,&nbsp; CD4-, CD8+ &nbsp;(14,3 %). Un caso diagnosticado con SS mostr&oacute;  predominio de linfocitos T CD4+ (14,3 %).&nbsp;&nbsp; </p>     <p align="justify">Hay otros  marcadores con fines diagn&oacute;sticos de c&eacute;lulas T como CD5 y CD7, que  fueron variablemente positivos. Los marcadores B (CD19, CD22) y el de  activaci&oacute;n CD25 resultaron negativos en la poblaci&oacute;n celular T.  </p>     <p align="center">Tabla 2. Inmunofenotipaje  celular en los linfomas cut&aacute;neos T</p> <table border="1" align="center" cellpadding="0" cellspacing="3">   <tr>     <td width="143" rowspan="2" valign="top">    <p align="center">Formas cl&iacute;nicas</p>    </td>     <td colspan="10" valign="top">    <p align="center">Marcadores    de membrana (distribuci&oacute;n por paciente)</p>    </td>   </tr>   <tr>     <td width="41" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">CD2</p></td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">CD3</p></td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">CD4</p></td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">CD5</p></td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">CD7</p></td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">CD8</p></td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">CD19</p></td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">CD22</p></td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">CD25</p></td>     <td width="56" valign="top">    <p align="center">%</p></td>   </tr>   <tr>     <td width="143" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left">MF (predominio    C50D4+)</p></td>     <td width="41" valign="top">    <p align="center">7/5</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/5</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/5</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/3</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/1</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/0</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/0</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/0</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/0</p>    </td>     <td width="56" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">71,4</p>    </td>   </tr>   <tr>     <td width="143" valign="top">    <p align="left">MF    (predominio CD8+</p></td>     <td width="41" valign="top">    <p align="center">7/1</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/1</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/0</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/0</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/1</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/1</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/0</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/0</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">7/0</p>    </td>     <td width="56" valign="top">    <p align="center">14,3</p>    </td>   </tr>   <tr>     <td width="143" valign="top">    <p align="left">SS<br />       Predominio    CD4+ &gt;90 %</p></td>     <td width="41" valign="top">    <p align="center">7/1</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/1</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/1</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/1</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/0</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/0</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/0</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">7/0</p>    </td>     <td width="61" valign="top">    <p align="center">7/0</p>    </td>     <td width="56" valign="top">    <p align="center">14,3</p>    </td>   </tr> </table>     <p align="center">MF: micosis fungoides; SS: s&iacute;ndrome de S&eacute;zary.</p> <h4>Discusi&oacute;n </h4>     <p align="justify">Los LCCT  constituyen un grupo de enfermedades neopl&aacute;sicas caracterizados por infiltrados  de c&eacute;lulas T malignas. Dentro de estos se encuentran la MF y el SS, que son  entidades que aunque difieren en sus manifestaciones cl&iacute;nicas, se cree que son  variantes de un mismo trastorno linfoproliferativo del linfocito T CD4. </p>     <p align="justify">El estudio  inmunofenot&iacute;pico en sangre perif&eacute;rica mostr&oacute; la presencia de linfocitos T con  predominio de T cooperadores CD3+, CD4+, CD8, &nbsp;y en el caso del paciente con SS se  apreciaron cifras de CD4 superiores al 90 % y disminuci&oacute;n de las c&eacute;lulas CD3. Estos  resultados corroboraron lo planteado por otros investigadores.<span class="superscript">4,5,14  </span></p>     <p align="justify">Un adecuado  tratamiento depende de un diagn&oacute;stico de certeza morfol&oacute;gico, citogen&eacute;tico,  inmunol&oacute;gico y molecular. En la actualidad se utiliza la aplicaci&oacute;n intravenosa  de anticuerpos monoclonales contra ant&iacute;genos de diferenciaci&oacute;n de c&eacute;lulas T y  se trabaja en proposiciones experimentales para el tratamiento de los linfomas  cut&aacute;neos que incluyen vacunaci&oacute;n, terapia g&eacute;nica y trasplante ant&oacute;logo de  c&eacute;lulas madre,<span class="superscript">15,16</span> lo que permitir&iacute;a una r&aacute;pida curaci&oacute;n, una  mayor sobrevida y la incorporaci&oacute;n de estos individuos a la vida &uacute;til de la  sociedad.</p> <h4>Referencias  bibliogr&aacute;ficas</h4>     <div align="justify">       <!-- ref --><p>1. Jahn S, Asadullah K, Walden P, Steny W. Cutaneous malignant lymphomas.      Immunol Today 1998;19:70-3.<!-- ref --><p>2. Landis S, Murray T. Bolden Statistics 1998. Cancer J Clin 1998;48:6-29.<!-- ref --><p>3. Faxas ME. Actualidad cl&iacute;nica biol&oacute;gica de los linfomas T      cut&aacute;neos. 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