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</front><body><![CDATA[ <p>Facultad de Biolog&iacute;a, Universidad de La Habana </p><h2> Utilizaci&oacute;n  de la l&iacute;nea celular CHO en los ensayos de genotoxicidad</h2>    <p><i>Lic.  &Aacute;ngel S&aacute;nchez-Lamar</i> Descriptores DeCS: CELULAS CHO; TESTS DE  MUTAGENICIDAD. </p>    <p>Los ensayos con c&eacute;lulas de mam&iacute;feros han desempe&ntilde;ado  un importante papel en la determinaci&oacute;n de la mutagenicidad potencial de  los agentes qu&iacute;micos y f&iacute;sicos que rodean al hombre. Los m&eacute;todos  que emplean l&iacute;neas permanentes son los m&aacute;s generalizados en la actualidad  para la rutina de las evaluaciones genot&oacute;xicas. Entre ellos la l&iacute;nea  obtenida a partir de ovario de h&aacute;mster chino (CHO), en 1973, por Puck y  colaboradores,<sup>1</sup> ha sido la de mayor difusi&oacute;n en el estudio de  da&ntilde;o gen&eacute;tico al nivel cromos&oacute;mico. </p>    <p>En el presente  trabajo se exponen las propiedades de estas c&eacute;lulas que le confieren la  condici&oacute;n de material biol&oacute;gico id&oacute;neo en la investigaci&oacute;n  genot&oacute;xica. Adem&aacute;s se hace referencia a aspectos relacionados con  los protocolos experimentales que se desarrollan con esta l&iacute;nea celular.      <p>Diferentes formas de da&ntilde;o gen&eacute;tico (mutaciones g&eacute;nicas,  aberraciones cromos&oacute;micas, alteraciones en la estructura primaria, etc.)  est&aacute;n asociadas con una alta incidencia de c&aacute;ncer.<sup>1-3</sup>  Por otra parte, las afectaciones al DNA en s&iacute; mismas, constituyen causas  de malformaciones cong&eacute;nitas en las poblaciones humanas.<sup>4</sup>     <p>Los  estudios encaminados a evaluar la posible acci&oacute;n genot&oacute;xica de los  compuestos ambientales, ocupan un lugar fundamental en la prevenci&oacute;n de  la mutagenicidad y carcinogenicidad en el hombre.<sup>5</sup>     <p>Los m&eacute;todos  empleados con dicho fin, requieren ser altamente sensibles para detectar el da&ntilde;o  gen&eacute;tico, capaces de medir diferentes tipos de eventos gen&eacute;ticos  y ofrecer una respuesta r&aacute;pida. La l&iacute;nea celular de cultivo permanente  CHO cumple todos esos requisitos, por lo que constituye uno de los materiales  biol&oacute;gicos de experimentaci&oacute;n genot&oacute;xica m&aacute;s preciados.<sup>3</sup>  <h4> Caracter&iacute;sticas de CHO y ensayos que se realizan con ella</h4>De la  l&iacute;nea celular CHO, obtenida a partir de un explante de tejido de ovario  de h&aacute;mster chino (<i>Cricetulus griseus</i>), existen m&uacute;ltiples  variantes mutacionales, lo cual ampl&iacute;a las posibilidades de su uso en el  estudio de la gen&eacute;tica de eucariontes.<sup>1</sup>     <p>La l&iacute;nea original  se caracteriza por ser aneuploides con un n&uacute;mero modal cromos&oacute;mico  de 20-21, posee 10-13 marcadores cromos&oacute;micos bien definidos, su cariotipo  no s&oacute;lo tiene un n&uacute;mero cromos&oacute;mico moderado, sino que tambi&eacute;n  es heterom&oacute;rfico, por lo que se hace f&aacute;cil la individualizaci&oacute;n  de los tipos cromos&oacute;micos que lo integran. Como material de laboratorio  es de f&aacute;cil manejo, puede ser cultivada de diferentes formas y su mantenimiento  es relativamente econ&oacute;mico.<sup>6</sup>     <p>Las caracter&iacute;sticas anteriormente  mencionadas hacen posible la utilizaci&oacute;n de CHO en ensayos tales como:  <ol>     <li> Mutaci&oacute;n puntual en los loci TK y HGPRT.<sup>7</sup></li>    ]]></body>
<body><![CDATA[<li>  Aberraciones cromos&oacute;micas.<sup>8</sup></li>    <li> Micron&uacute;cleos.<sup>9</sup></li>    <li>  Intercambio de crom&aacute;tidas hermanas.<sup>3</sup></li>    <li> An&aacute;lisis  de anafase-telofase.<sup>10</sup></li>    <li> P&eacute;rdida o ganancia de cromosomas  en c&eacute;lulas con citoplasma intacto.<sup>1</sup></li>    <li> Micron&uacute;cleos  con tinci&oacute;n diferencial del cinetocoro.<sup>1</sup></li>    <li> Disturbios  del aparato mit&oacute;tico con tinci&oacute;n diferencial de las fibras del huso  y los cromosomas.<sup>11</sup></li>    </ol>Cada uno de estos ensayos por s&iacute;  solo constituye un m&eacute;todo de tamizaje valioso para clasificar una sustancia  como genot&oacute;xica o no, a la vez, la utilizaci&oacute;n simult&aacute;nea  de ellos permite profundizar en el conocimiento de posibles mecanismos de acci&oacute;n  mutag&eacute;nica.     <p>El desarrollo de protocolos experimentales a corto y largo  plazos de tratamiento, as&iacute; como, el empleo de sistemas de activaci&oacute;n  metab&oacute;lica microsomal, completan las posibilidades de uso de estos ensayos,  al permitir la realizaci&oacute;n de evaluaciones genot&oacute;xicas m&aacute;s  sensibles.<sup>10</sup>     <p>La l&iacute;nea celular CHO constituye un material  biol&oacute;gico de experimentaci&oacute;n de f&aacute;cil manejo, posee propiedades  que la hacen id&oacute;nea para estudios de da&ntilde;o gen&eacute;tico a nivel  cromos&oacute;mico y de gen. Es vers&aacute;til por el n&uacute;mero y tipo de  ensayos diferentes que se pueden realizar con ella para evaluar gentoxicidad de  compuestos ambientales.     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los ensayos con CHO han sido ampliamente validados  tanto por su predictividad con relaci&oacute;n a la carcinogenicidad, como por  su habilidad para detectar da&ntilde;o gen&eacute;tico, en comparaci&oacute;n  con otros tipos de sistemas de ensayo genot&oacute;xico. <h4> Referencias bibliogr&aacute;ficas</h4><ol>      <!-- ref --><li> Kao FT, Puck TT. Genetics of somatic mammalian cells VII. Proc Natl Acad  Sci USA 1968;60:1275-81.</li>    <!-- ref --><li> Ishidate M Jr, Sofuni T, Yoshikawa K, Hayashi  M, Nohmi T, Sawada M, et al. Primary mutagenicity of screening food additives  currently used in Japan. Food Chem Toxicol 1984;22:623-36.</li>    <!-- ref --><li> Hoffmann GR.  Genetic toxicology. En: Toxicology. The basic science of poisons. 5 ed. New York:  Mc Graw-Hill, 1996:113-21.</li>    <!-- ref --><li> Natarajan AT, Obe G. How do <i>in vivo</i>  mammalian assays compare to <i>in vitro</i> assays in their ability to detect  mutagens? Mutat Res 1986;167:189-201.</li>    <!-- ref --><li> Mosesso P, Palitti F. The genetic  toxicology of 6-mercaptopurine. Mutat Res 1993;296:279-94.</li>    <!-- ref --><li> Thompson LH.  Mutant isolation. En: William B,ed. Methods in enzymology, cell culture. New York:  Academic, 1979;vol 58:67.</li>    <!-- ref --><li> Brusick DJ, ed. Principles of genetic toxicology.  2 ed: New York: Plenum, 1987:160-82.</li>    <!-- ref --><li> Ishidate M Jr, ed. Data book of  Chromosome Aberration Test <i>in vitro</i>, Amsterdam: Elsevier, 1988:94-8.</li>    <!-- ref --><li>  Fenech M, Morley AA. Kinetocore detection in micronuclei: an alternative method  for measuring chromosome loss. Mutagenesis 1989;4:98-104.</li>    <!-- ref --><li> Galloway SM,  Deasy DA, Bean CL, Kraynak AR, Armstrong MJ, Bardley, MO. Effects of high osmotic  strengh of chromosome aberrations, sister-chromatid exchanges and DNA strand break,  and the relation to toxicity. Mutat Res 1987;189:15-25.</li>    <!-- ref --><li> Warr TJ, Parry  EM, Parry JM. A comparison of two <i>in vitro</i> mammalian cell cytogenetic assays  for the detection of mitotic aneuploidy using 10 known or suspected aneugens.  Mutat Res 1993;287:29-46.</li>    </ol>Recibido: 26 de diciembre de 1997. Aprobado:  31 de agosto de 1998.     <p>Lic. <i>&Aacute;ngel S&aacute;nchez-Lamar</i>. Facultad  de Biolog&iacute;a, Universidad de La Habana. Calle 25 No. 455 entre J e I, El  Vedado, Ciudad de La Habana. Cuba.            ]]></body><back>
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