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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Identificación de fracciones electroforéticas de unión a IgE en extractos de Ascaris sp.]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Identification of electrophoretic fractions of the IgE-binding in Ascaris sp. extracts]]></article-title>
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<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0864-03002013000200006&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0864-03002013000200006&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0864-03002013000200006&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Introducción: Ascaris lumbricoides infecta a una cuarta parte de la población mundial, constituyéndose en un problema de salud pública. La ascariosis humana está asociada con morbilidad crónica y aguda, especialmente en niños. Recientemente se ha planteado la existencia de anticuerpos IgE en el suero sanguíneo de pacientes alérgicos, que tienen reacción cruzada con alérgenos de artrópodos domésticos y antígenos de Ascaris sp., esto podría aumentar el número de muestras seropositivas a Ascaris sp, en poblaciones sensibilizadas a los ácaros del polvo intradomiciliario. Objetivo: Producir extractos de cuerpo entero de A. lumbricoides y A. suum, evaluar sus propiedades antigénicas y capacidad de unión a la IgE de pacientes alérgicos al ácaro Dermatophagoides pteronyssinus. Métodos: Los extractos fueron obtenidos por homogenización y lisis osmótica de las células en presencia de Tween-20 e inhibidores de proteasas. El perfil de proteínas de cada extracto fue identificado por electroforesis en geles de poliacrilamida con dodecilsulfato sódico (SDS-PAGE). La reactividad antigénica se determinó por Western blotting usando once sueros de pacientes alérgicos con diagnóstico de asma. Resultados: SDS-PAGE reveló 20 fracciones electroforéticas mayoritarias (20-200 kDa). Western Blotting reveló diferencias en el perfil de proteínas de unión a la inmunoglobulina IgE de los extractos. Conclusiones: Proteínas del cuerpo entero de A. lumbricoides y A. suum mostraron un perfil de unión a IgE diferente en el Western blotting, con sueros de pacientes alérgicos al ácaro D. pteronyssinus, sugiriendo la presencia de marcadores especie específicos entre los dos parásitos, los cuales podrían usarse en futuras investigaciones biomédicas.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Background: Ascaris lumbricoides infects a quarter of the world's population, thus becoming a public health problem. Human ascariasis is associated with chronic and acute morbidity, especially in children. Recently, it has been stated that the existence of IgE antibodies in the blood serum of allergic patients that have cross reactivity with domestic arthropods and antigens of Ascaris sp. could increase the number of samples seropositive for Ascaris sp. in populations who are sensitized to house dust mites. Objective: To produce whole body extracts of both A. lumbricoides and A. suum, and to evaluate their antigenic properties and the IgE-binding capacity in patients allergic to the house dust mite (Dermatophagoides pteronyssinus). Methods: The extracts were obtained by homogenization and osmotic lysis in the presence of Tween-20 and protease inhibitors. The protein profile of each extract was identified by sodium dodecyl sulphate-polyacrylamide gel elctrophoresis (SDS-PAGE). Antigen reactivity was determined by Western blotting, using eleven sera from allergic patients with the diagnosis of asthma. Results: SDS-PAGE revealed 20 major electrophoretic fractions (20-200 kDa). Western Blotting revealed differences in the protein profile of the immunologlobulin IgE-binding of the extracts. Conclusions: Whole body proteins of both A. lumbricoides and A. suum showed a different IgE-binding profile in the Western blotting, with sera from patients allergic to the D. pteronyssinus mite, suggesting the presence of species-specific markers between the two parasites, which could be used in further biomedical research.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">  <B>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</B></font></p>    <p>&nbsp;</p><B>     <P>     <P>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="4">Identificaci&oacute;n  de fracciones electrofor&eacute;ticas de uni&oacute;n a IgE en extractos de <I>Ascaris  </I>sp.</font> </B>     <p>&nbsp;</p>    <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>  Identification of electrophoretic fractions of the IgE-binding in <i>Ascaris </i>sp.  extracts</b></font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font color="#000000"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">MSc.  Dary Luz Mendoza Meza,<SUP>I</SUP> DrC. Gloria Garavito Lancheros,<SUP>II</SUP>  MSc. Sonja Lozano Socarr&aacute;s,<SUP>II </SUP> Jainy Navarro Meza,<SUP>II</SUP>  MSc.Eduardo Egea Bermejo<SUP>II</SUP></font></b> </font>     <P>     <P>     <P>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><SUP>I</SUP>Universidad  del Atl&aacute;ntico. Barranquilla, Colombia.    <br> </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><SUP>II</SUP>Universidad  del Norte. Barranquilla, Colombia.</font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <p><hr size="1" noshade>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>RESUMEN</b></font>  <B></B> </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Introducci&oacute;n:</b>  <I>Ascaris lumbricoides</I> infecta a una cuarta parte de la poblaci&oacute;n  mundial, constituy&eacute;ndose en un problema de salud p&uacute;blica. La ascariosis  humana est&aacute; asociada con morbilidad cr&oacute;nica y aguda, especialmente  en ni&ntilde;os. Recientemente se ha planteado la existencia de anticuerpos IgE  en el suero sangu&iacute;neo de pacientes al&eacute;rgicos, que tienen reacci&oacute;n  cruzada con al&eacute;rgenos de artr&oacute;podos dom&eacute;sticos y ant&iacute;genos  de <I>Ascaris </I>sp<I>.,</I> esto podr&iacute;a aumentar el n&uacute;mero de  muestras seropositivas a <I>Ascaris sp</I>, en poblaciones sensibilizadas a los  &aacute;caros del polvo intradomiciliario. <B>    <br> Objetivo:</B> Producir extractos  de cuerpo entero de <I>A. lumbricoides</I> y <I>A. suum</I>, evaluar sus propiedades  antig&eacute;nicas y capacidad de uni&oacute;n a la IgE de pacientes al&eacute;rgicos  al &aacute;caro <I>Dermatophagoides pteronyssinus</I>. <B>    <br> M&eacute;todos:</B>  Los extractos fueron obtenidos por homogenizaci&oacute;n y lisis osm&oacute;tica  de las c&eacute;lulas en presencia de Tween-20 e inhibidores de proteasas. El  perfil de prote&iacute;nas de cada extracto fue identificado por electroforesis  en geles de poliacrilamida con dodecilsulfato s&oacute;dico (SDS-PAGE). La reactividad  antig&eacute;nica se determin&oacute; por Western blotting usando once sueros  de pacientes al&eacute;rgicos con diagn&oacute;stico de asma. <B>    <br> Resultados:</B>  SDS-PAGE revel&oacute; 20 fracciones electrofor&eacute;ticas mayoritarias (20-200  kDa). Western Blotting revel&oacute; diferencias en el perfil de prote&iacute;nas  de uni&oacute;n a la inmunoglobulina IgE de los extractos. <B>    <br> Conclusiones:</B>  Prote&iacute;nas del cuerpo entero de <I>A. lumbricoides</I> y <I>A. suum</I>  mostraron un perfil de uni&oacute;n a IgE diferente en el Western blotting, con  sueros de pacientes al&eacute;rgicos al &aacute;caro <I>D. pteronyssinu</I>s,  sugiriendo la presencia de marcadores especie espec&iacute;ficos entre los dos  par&aacute;sitos, los cuales podr&iacute;an usarse en futuras investigaciones  biom&eacute;dicas. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Palabras  clave:</B> Helmintos, <I>Ascaris lumbricoides, Ascaris suum</I>, IgE. <hr size="1" noshade></font>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>    <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Background:</b>  <i>Ascaris lumbricoides</i> infects a quarter of the world's population, thus  becoming a public health problem. Human ascariasis is associated with chronic  and acute morbidity, especially in children. Recently, it has been stated that  the existence of IgE antibodies in the blood serum of allergic patients that have  cross reactivity with domestic arthropods and antigens of <i>Ascaris </i>sp<i>.</i>  could increase the number of samples seropositive for <i>Ascaris </i>sp. in populations  who are sensitized to house dust mites.     <br> <b>Objective:</b> To produce whole  body extracts of both <i>A. lumbricoides</i> and <i>A. suum,</i> and to evaluate  their antigenic properties and the IgE-binding capacity in patients allergic to  the house dust mite (<i>Dermatophagoides pteronyssinus</i>).     <br> <b>Methods:</b>  The extracts were obtained by homogenization and osmotic lysis in the presence  of Tween-20 and protease inhibitors. The protein profile of each extract was identified  by sodium dodecyl sulphate-polyacrylamide gel elctrophoresis (SDS-PAGE). Antigen  reactivity was determined by Western blotting, using eleven sera from allergic  patients with the diagnosis of asthma.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <b>Results:</b> SDS-PAGE revealed  20 major electrophoretic fractions (20-200 kDa). Western Blotting revealed differences  in the protein profile of the immunologlobulin IgE-binding of the extracts.     <br>  <b>Conclusions:</b> Whole body proteins of both <i>A. lumbricoides</i> and <i>A.  suum</i> showed a different IgE-binding profile in the Western blotting, with  sera from patients allergic to the <i>D. pteronyssinus</i> mite, suggesting the  presence of species-specific markers between the two parasites, which could be  used in further biomedical research.</font>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Key  words:</b> Helminths, <i>Ascaris lumbricoides,</i> <i>Ascaris suum</i>, IgE.</font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2" color="#FF0000">  </font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2" color="#FF0000">  <hr size="1" noshade> </font>     <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></B>  </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La infecci&oacute;n  por geohelmintos y en especial el g&eacute;nero Ascaris, constituye un problema  mundial en medicina cl&iacute;nica.<SUP>1</SUP><SUP> </SUP> Se estima que <I>Ascaris  lumbricoides</I> infecta a una cuarta parte de la poblaci&oacute;n mundial, aproximadamente  1,2 billones de personas.<SUP>2</SUP> Esta situaci&oacute;n es relevante en regiones  de clima tropical y subtropical, constituy&eacute;ndose en un problema de salud  p&uacute;blica.<SUP>3</SUP> En la actualidad existe un inter&eacute;s creciente  por identificar ant&iacute;genos especie espec&iacute;ficos de <I>Ascaris </I>sp.,  con propiedades inmunomoduladoras<SUP>4</SUP> y que pudieran usarse en el serodiagn&oacute;stico  de ascariosis.<SUP>5</SUP> Los ant&iacute;genos de <I>Ascaris </I>sp. que han  sido aislados y purificados, como el ABA-1, muestran reactividad cruzada con ant&iacute;genos  de otros nematodos, lo cual limita su uso en pruebas serol&oacute;gicas diagn&oacute;sticas.<SUP>6</SUP>  Adicionalmente se postula que pacientes al&eacute;rgicos, sensibilizados a los  ant&iacute;genos de <I>Ascaris </I>sp. podr&iacute;an presentar resultados falsos  positivos en las pruebas serol&oacute;gicas, atribuido a la reactividad cruzada  entre prote&iacute;nas del <I>Ascaris </I>sp. y ep&iacute;topes de al&eacute;rgenos  presentes en &aacute;caros del polvo dom&eacute;stico.<SUP>7</SUP> Por lo anterior,  es importante identificar otros ant&iacute;genos que sean especie espec&iacute;ficos.  </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El prop&oacute;sito  del presente estudio fue producir y caracterizar extractos de cuerpo entero de  <I>A. lumbricoides </I>y <I>A. suum</I>, para identificar y analizar patrones  de uni&oacute;n a inmunoglobulina (IgE) especifica anti-<I>Ascaris sp</I>, presentes  en sueros de pacientes al&eacute;rgicos sufriendo de asma bronquial, sensibilizados  al &aacute;caro dom&eacute;stico <I>Dermatophagoides pteronyssinus</I>, residentes  en una zona end&eacute;mica para las infecciones por helmintos en el Caribe Colombiano.  </font>     <P>&nbsp;     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">M&Eacute;TODOS</font></B>  </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los <I>A.  lumbricoides</I> adultos se obtuvieron de personas infectadas, los <I>A. suum  </I>se obtuvieron a partir de necropsias de cerdos parasitados. Cinco gramos de  los Ascaris se lavaron con agua MQ est&eacute;ril, se homogenizaron sobre hielo  con 10 mL de tamp&oacute;n de lisis (NaCl 40 mM, Tris 20 mM, EDTA 4 mM, Brij 96  al 1,5 % v/v, pH 6.8) y 250 &#181;L de una mezcla de inhibidores de proteasas  (aprotinina 80 &#181;M, bestatina 5 mM, E-64 1.5 mM, leupeptina 2 mM, pestatina  1 mM, AEBSF 100 mM). El homogenizado se centrifug&oacute; a 10.000 rpm durante  15 min a 4 &#186;C, el sobrenadante se dializ&oacute; en membranas con tama&ntilde;o  de exclusi&oacute;n de 3500 Da. Los extractos dializados se liofilizaron y la  concentraci&oacute;n total de prote&iacute;nas se determin&oacute; por el microensayo  de Bradford<SUP>8</SUP>. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El  perfil de prote&iacute;nas se evalu&oacute; por electroforesis en gel de poliacrilamida  con dodecil-sulfato de sodio (SDS-PAGE). Los geles fueron te&ntilde;idos con azul  de Coomassie R-250 y fotografiados en un equipo <i>Universal Hood II</i> (Bio-Rad).  El tama&ntilde;o de las bandas fue calculado con el <i>Software Quantity</i> One  (Bio-Rad).</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El  <i>Western blot</i> se realiz&oacute; con 11 sueros obtenidos de sendos individuos  con diagn&oacute;stico de asma bronquial al&eacute;rgica leve epis&oacute;dica,  todos con niveles de IgE total &gt; 150 UI/mL e identificaci&oacute;n y semicuantificacion  de IgE anti-<I>D. pteronyssinus. </I>Los<I> </I>controles negativos fueron 10  muestras de sueros de individuos cl&iacute;nicamente sanos, no asm&aacute;ticos,  no at&oacute;picos, sin infecci&oacute;n activa por par&aacute;sitos helmintos  y con IgE total &lt; 150 UI/mL e IgE anti-<I>D. pteronyssinus</I> negativa. Solo  se incluyeron en el estudio las personas que firmaron consentimiento informado,  previa explicaci&oacute;n de los objetivos de la investigaci&oacute;n, sus ventajas  y exposici&oacute;n con riesgo m&iacute;nimo, seg&uacute;n lo establecido en la  resoluci&oacute;n 8430 de 1993 del Ministerio de la Protecci&oacute;n Social de  Colombia. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para  el <i>Western blot</i>, las prote&iacute;nas de los extractos de Ascaris fueron  transferidas a membranas nitrocelulosa, las cuales se bloquearon en tamp&oacute;n  TBS-BSA (TBS 50 mM, BSA 3 % p/v, Tween 20 al 0,1 % v/v). Luego se incubaron con  una diluci&oacute;n 1/5 de los sueros en tamp&oacute;n TBS-BSA. El exceso de suero  se lav&oacute; con TBST (TBS 50 mM, Tween 20 al 0,1 % v/v) y las membranas se  incubaron 1 h con una diluci&oacute;n 1/1 000 del conjugado (IgG anti-IgE humana  unida a la fosfatasa alcalina), en TBS-BSA. El conjugado no unido se lav&oacute;  con TBST y la membrana se revel&oacute; con NBT (Bitro Blue Tretrazolium) y BCIP  (5-Bromo, 4-Cloro, 3-Indolfosfato) disuelto en tamp&oacute;n de la fosfatasa alcalina  pH 9,5.</font>     <P>&nbsp;     <P>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">RESULTADOS</font></b></font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se obtuvieron extractos  de cuerpo entero de <I>A. lumbricoides</I> y <I>A. suum</I>, cuya concentraci&oacute;n  de prote&iacute;na total fue de 1,4 y 2,2 mg/mL, respectivamente. SDS-PAGE mostr&oacute;  un perfil electrofor&eacute;tico complejo en ambos extractos, se detectaron 20  fracciones mayoritarias y 12 bandas comunes de 34, 39, 42, 54, 65, 74, 85, 105,  127, 142 y 197 kDa. La <a href="#FIG1_06">figura 1</a> muestra la tinci&oacute;n  con azul de Coomassie. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En  la <a href="#fig2_06">figura 2</a> se observan los resultados del <i>Western blot</i>.  Anticuerpos IgE presentes en nueve de 11 sueros se unieron a prote&iacute;nas  en el extracto de <i>A. suum</i>, reconociendo bandas de alto peso molecular;  5 de 11 sueros reaccionaron con prote&iacute;nas en el extracto de <i>A. lumbricoides,  y </i>reconocieron<i> </i> 6 bandas con tama&ntilde;os de 26, 31, 36, 42, 55 y  97 kDa.</font>     <P align="center"><a name="FIG1_06"></a><img src="/img/revistas/ibi/v32n2/f0106213.jpg" width="322" height="344">      <P align="center"><a name="fig2_06"></a><img src="/img/revistas/ibi/v32n2/f0206213.jpg" width="402" height="515">      <P align="left">&nbsp;     <P align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font>  <B></B>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La eficiencia  de la extracci&oacute;n de prote&iacute;nas totales de <I>A. suum</I> fue 2,31  mg % y de <I>A. lumbricoides</I> 1,63 mg %. Similitudes en el patr&oacute;n de  bandas electrofor&eacute;ticas de extractos de <I>Ascaris </I>sp. se hab&iacute;an  informado previamente.<SUP>9</SUP></font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El  Western blotting revel&oacute; diferencias en el perfil de prote&iacute;nas de  uni&oacute;n a IgE presente en ambos extractos. Los sueros ensayados reconocieron  bandas de uni&oacute;n a IgE de alto peso molecular en el extracto de <I>A. suum</I>;  se ha propuesto que la actividad inmunosupresora de <I>A. suum </I>podr&iacute;a  atribuirse a prote&iacute;nas de alto peso molecular.<SUP>10 </SUP>En el extracto  de <I>A. lumbricoides </I>los sueros reconocieron 6 bandas,<b><font color="#FF0000">  </font></b> por su intensidad se destacaron las bandas de 36 y 42 kDa, las cuales  podr&iacute;an ser isoformas de la tropomiosina de <I>A. lumbricoides</I>. En  la literatura se han informado resultados similares con extractos alerg&eacute;nicos  de la cucaracha <I>Blatella germanica.</I><SUP>11</SUP> Estudios recientes han  demostrado la presencia de ep&iacute;topes de uni&oacute;n a la IgE en la tropomiosina  de <I>Ascaris </I>sp. lo cual indica que esta es capaz de inducir la respuesta  del sistema inmune mediada por IgE en individuos infectados con <I>A. lumbricoides</I>.<SUP>12,13</SUP>  Tambi&eacute;n se ha descrito la uni&oacute;n de IgE humana a tropomiosinas de  artr&oacute;podos<SUP>,7,14</SUP> lo que descartar&iacute;a su uso como marcador  antig&eacute;nico para el serodiagn&oacute;stico de la ascariosis humana en poblaciones  sensibilizadas a los &aacute;caros. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Estos  resultados contribuyen a la identificaci&oacute;n de fracciones proteicas especificas  de <I>Ascaris </I>sp. Las fracciones de uni&oacute;n a IgE identificadas en el  extracto de <I>A. lumbricoides</I> requieren una mayor caracterizaci&oacute;n.  El uso de extractos totales en el serodiagn&oacute;stico de ascariosis podr&iacute;a  sobreestimar la exposici&oacute;n al <I>A. lumbricoides</I>, por efecto de la  reactividad cruzada. Los resultados de nuestro trabajo fundamentan la necesidad  de identificar y caracterizar las fracciones de prote&iacute;nas principales de  <I>Ascaris </I>sp<I>.</I> que pudieran ser aplicadas en medicina cl&iacute;nica.</font>      <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">REFERENCIAS  BIBLIOGR&Aacute;FICAS</font></b></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1.  Scott E<I>. Ascaris lumbricoides</I>: a review of its epidemiology and relationship  to other infections. Ann Nestl&eacute;. 2008;66:722.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2.  Dold C, Holland CV. Ascaris and ascariasis. Microbes Infect. 2011;13(7):632-7.      </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">3. Brooker  S. Estimating the global distribution and disease burden of intestinal nematode  infections: adding up the numbers-a review. Int J Parasitol. 2010;40(10):1137-44.      </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">4. Pritchard  DI, Blount DG, Schmid-Grendelmeier P, Till SJ. Parasitic worm therapy for allergy:  is this incongruous or avant-garde medicine? Clin Exp Allergy. 2012;42(4):505-12.      </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">5. Bhattacharyya  T, Santra A, Guhamajumder DN, Chatterjee BP. Possible Approach for Serodiagnosis  of Ascariasis by Evaluation of Immunoglobulin G4 Response Using<I> Ascaris lumbricoides</I>  Somatic Antigen. Journal of Clinical Microbiology. 2001;39(8):2991-4.     </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">6. Kennedy MW,  Qureshi F, Haswell-Elkins M, Elkins DB. Homology and heterology between the secreted  antigens of the parasitic larval stages of <I>Ascaris lumbricoides</I> and <I>Ascaris  suum</I>. Clin Exp Immunol. 1987;67(1):20-30.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">7.  Acevedo N, S&aacute;nchez J, Erler A, Mercado D, Briza P, Kennedy M et al. IgE  cross-reactivity between Ascaris and domestic mite allergens: the role of tropomyosin  and the nematode polyprotein ABA-1. Allergy. 2009;64(11):1635-43.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">8.  Bradford M. A Rapid and Sensitive Method for the Quantitation of Microgram Quantities  of Protein Utilizing the Principle of Protein-Dye Binding. Analytical Biochemistry.  1972;72:248-54.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">9.  Alba JE, Comia MN, Oyong G, Claveria F. <I>Ascaris lumbricoides</I> and <I>Ascaris  suum</I>: A comparison of electrophoretic banding patterns of protein extracts  from the reproductive organs and body wall. Vet. Arhiv. 2009;79:281-91.    </font>      <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">10. Faquim-Mauro  E, Macedo M. The immunesuppressive activity of <I>Ascaris suum</I> is due to high  molecular weight components. Clin Exp Immunol. 1998;114:245-51.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">11.  Asturias JA, Gomez-Bayon N, Arilla MC, Mart&iacute;nez A, Palacios R, Sanchez-Gascon  F. Molecular Characterization of American Cockroach Tropomyosin (<I>Periplaneta  americana</I> Allergen 7), a Cross-Reactive Allergen. J Immunol. 1999;162(7):4342-8.      </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">12. Acevedo  N, Caraballo L. IgE cross-reactivity between <I>Ascaris lumbricoides</I> and mite  allergens: possible influences on allergic sensitization and asthma. Parasite  Immunol. 2011;33(6):309-21.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">13.  Valmonte GR, Cauyan GA, Ramos JD. IgE cross-reactivity between house dust mite  allergens and <I>Ascaris lumbricoides</I> antigens. Asia Pac Allergy. 2012;2(1):35-44.      </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">14. Santos  AB, Rocha GM, Oliver C, Ferriani VP, Lima RC, Palma MS, et al. Cross-reactive  IgE antibody responses to tropomyosins from <I>Ascaris lumbricoides</I> and cockroach.  J Allergy Clin Immunol. 2008;121(4):1040-6.     </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Recibido:  14 de octubre de 2012.    <br> Aprobado: 25 de abril de 2013.</font>     <p>&nbsp;     <p>&nbsp;     <p>&nbsp;     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><i>Dary  Luz Mendoza Meza</i>. Universidad del Atl&aacute;ntico. Programa de Qu&iacute;mica,  Km 7 v&iacute;a Puerto Colombia, Barranquilla.Colombia. <font color="#000000">Correo  electr&oacute;nico:<font color="#FFFFFF"> </font></font><font color="#FF0000"><font color="#000000"><a href="mailto:darymendoza@mail.uniatlantico.com">darymendoza@mail.uniatlantico.com</a>  <a href="mailto:dary_mendoza@yahoo.com">dary_mendoza@yahoo.com</a></font> </font></font>      <p>&nbsp;       ]]></body><back>
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