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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Diseño de un medio de cultivo a base de peptonas vegetales para el cultivo de Clostridium chauvoei]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Design of a medium based on vegetable peptones for the culture of Clostridium chauvoei]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Empresa de Productos Veterinarios, VECOL S. A.  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective: a culture medium based on vegetable peptones was designed for the production of Clostridium chauvoei biomass.Methods: nine vegetable peptones and two vegetable peptone broths were selected to substitute animal peptone in the modified Clostridium medium. A fermentation process was developed which was related to the production of cell mass, and absorbance and transmittance percentage (%T) were verified. The second stage included pathogenicity assays to determine LD50 titers. Results: vegetable peptones 1-B, 8-M, 10-M, 11-M were selected, for their % T was close to that of the modified Clostridium medium. A lethality test (LD50) was then performed on guinea pigs. Cultures with these vegetable peptones presented LD50 between 10-8 and 10-9 dilutions, in contrast to the 106.5 obtained in cultures with the control medium. Conclusions: vegetable peptones 1-B, 8-M, 10-M and 11-M stimulated the production of Clostridium chauvoei biomass at pH 8.2. The vegetable peptones tested showed greater lethality than the base medium.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana" size="2"> </font>     <P>     <P align="right"><font face="Verdana" size="2"><B>T&Eacute;CNICAS</B></font>      <P align="right">&nbsp;     <P>     <P><b><font face="Verdana" size="4">Dise&ntilde;o de un  medio de cultivo a base de peptonas vegetales para el cultivo de <I>Clostridium  chauvoei</I> </font></b>     <P>&nbsp;     <P>     <P><b><font face="Verdana" size="3">Design of  a medium based on vegetable peptones for the culture of <I>Clostridium chauvoei</I>  </font></b>     <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;     <P>     <P><b><font face="Verdana" size="2">Janeth Arias-Palacios,<SUP>I</SUP>  Astrid Isaza-P&eacute;rez,<SUP>I</SUP> Daniel Mart&iacute;nez-Acosta,<SUP>II     <br>  </SUP></font></b>     <P>&nbsp; <SUP>     <P> </SUP>     <P><font face="Verdana" size="2"><SUP>I</sup>Facultad  de Ciencias. Pontificia Universidad Javeriana. Bogot&aacute;, Colombia.    <br> </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>II</SUP>Empresa  de Productos Veterinarios, VECOL S. A. Bogot&aacute;, Colombia. </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;  <hr size="1" noshade>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2"><B>RESUMEN </B></font>      <P><font face="Verdana" size="2"><B>Objetivo:</b> se dise&ntilde;&oacute; un medio  de cultivo a base de peptonas vegetales para la producci&oacute;n de biomasa de  <I>Clostridium chauvoei<B>.     <br> </B></I></font><font face="Verdana" size="2"><B>M&eacute;todos:<I>  </I></B>se seleccionaron nueve peptonas vegetales y dos caldos con peptona vegetal  para sustituir la peptona de origen animal en el medio <I>Clostridium</I> modificado.  Se desarroll&oacute; una fermentaci&oacute;n relacionada con la producci&oacute;n  de masa celular, verificando la absorbancia y el porcentaje de transmitancia (%T),  la segunda etapa involucr&oacute; los ensayos de patogenicidad, determinando el  titulo de DL<SUB>50</SUB>. <B>    <BR>Resultados:</B> las peptonas vegetales 1-B,  8-M, 10-M, 11-M fueron seleccionadas por presentar un % T cercano al del medio  <I>Clostridium</I> modificado. Luego se realiz&oacute; una prueba de letalidad  (DL<SUB>50</SUB>) en cobayos. Los cultivos con estas peptonas vegetales presentaron  DL<SUB>50 </SUB>entre diluciones 10<SUP>-8 </SUP>y 10<SUP>-9</SUP>, en contraste  con los cultivos realizados con el medio control que fue de 10<SUP>6.5 </SUP></font><font face="Verdana" size="2"><B>    <BR>Conclusiones:</B>  las peptonas vegetales 1-B, 8-M, 10-M y 11-M favorecieron la producci&oacute;n  de biomasa de <I>Clostridium chauvoei </I>a pH 8,2. Las peptonas vegetales probadas  mostraron una letalidad mayor comparada con la del medio base. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><B>Palabras  clave</B>: biomasa, <I>Clostridium chauvoei</I>, medio de cultivo, peptonas vegetales.  </font> <hr size="1" noshade>     <P>     <P> <font face="Verdana" size="2"><B>ABSTRACT  </B></font>     <P><font face="Verdana" size="2"><B>Objective: </b>a culture medium  based on vegetable peptones was designed for the production of <I>Clostridium  chauvoei</I> biomass.    <br> </font><font face="Verdana" size="2"><B>Methods: </b>nine  vegetable peptones and two vegetable peptone broths were selected to substitute  animal peptone in the modified <I>Clostridium</I> medium. A fermentation process  was developed which was related to the production of cell mass, and absorbance  and transmittance percentage (%T) were verified. The second stage included pathogenicity  assays to determine LD<SUB>50</SUB> titers.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </font><font face="Verdana" size="2"><B>Results:  </B>vegetable peptones 1-B, 8-M, 10-M, 11-M were selected, for their % T was close  to that of the modified <I>Clostridium</I> medium. A lethality test (LD<SUB>50</SUB>)  was then performed on guinea pigs. Cultures with these vegetable peptones presented  LD<SUB>50</SUB> between 10<SUP>-8 </SUP>and 10<SUP>-9</SUP> dilutions, in contrast  to the 10<SUP>6.5</SUP> obtained in cultures with the control medium.<SUP>     <br>  </SUP></font><font face="Verdana" size="2"><B>Conclusions: </B>vegetable peptones  1-B, 8-M, 10-M and 11-M stimulated the production of <I>Clostridium chauvoei</I>  biomass at pH 8.2. The vegetable peptones tested showed greater lethality than  the base medium. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><B>Key words:</B> biomass,  <I>Clostridium chauvoei</I>, culture medium, vegetable peptones. </font> <hr size="1" noshade>      <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <P>     <P>     <P>     <P>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P><font face="Verdana" size="3"><B>INTRODUCCI&Oacute;N</B>  </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Clostridium chauvoei </I>es un bacilo  grampositivo anoxig&eacute;nico que forma endosporas y produce 4 toxinas; alfa  (&aacute;), beta (&acirc;), gamma (&atilde;) y delta (&auml;), un factor edema  y una neuraminidasa. Esta especie es el agente causal del carbunco sintom&aacute;tico  o gangrena enfisematosa, la cual consiste en una miositis enfisematosa necrosante,  que afecta por lo general a bovinos y ovinos, y, en ocasiones, a cabras y b&uacute;falos.  Se caracteriza por<I> </I>producir &aacute;cido ac&eacute;tico, but&iacute;rico  y f&oacute;rmico; butanol, CO<SUB>2</SUB> y H<SUB>2</SUB>, y crecer en medios  de cultivo l&iacute;quidos y s&oacute;lidos, que le proveen una fuente de carbono  y de nitr&oacute;geno que satisfacen los requerimientos nutricionales y ambientales  del microorganismo.<SUP>1</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En el  presente trabajo de investigaci&oacute;n se dise&ntilde;o un medio de cultivo  a base de peptonas vegetales para la producci&oacute;n de <I>Clostridium chauvoei,  </I>utilizable en producci&oacute;n de vacunas, con la finalidad de reemplazar  las peptonas de origen animal; dada la incidencia de la part&iacute;cula pri&oacute;nica,  agente causal de la encelopat&iacute;a espongiforme bovina (enfermedad de las  &#171;vacas locas&#187;, en las materias primas derivadas de la carne. Para eliminar  tal riesgo, la Empresa Colombiana de Productos Veterinarios, VECOL S.A. ha investigado  materias primas de origen vegetal para la elaboraci&oacute;n de medios de cultivo  que garanticen la obtenci&oacute;n de productos biol&oacute;gicos de alta calidad,  que no sean considerados un riesgo para la salud humana y animal. </font>     <P>&nbsp;      <P><font face="Verdana" size="2"><B><font size="3">M&Eacute;TODOS</font></B> </font>      <P><font face="Verdana" size="2"><I>Cepa bacteriana</I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Se  emple&oacute; la cepa de <I>Clostridium chauvoei, </I>la cual se obtuvo del cepario  de microorganismos existentes en la Empresa Colombiana de Productos Veterinarios,  VECOL S.A. Las cepas se conservaron en una soluci&oacute;n criopreservante v/v  a 70 &#176;C en medio reforzado modificado, en una soluci&oacute;n de<B> </B>glicerol  (soluci&oacute;n fisiol&oacute;gica est&eacute;ril 50:50, en cantidades de 1 mL  de semilla) 1 mL de soluci&oacute;n criopreservante, en viales. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Elaboraci&oacute;n  del semillero de trabajo </I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Las semillas  matrices de <I>Clostridium chauvoei</I> fueron reactivadas previamente a 37 &#186;C  por 5 minutos. Se prepar&oacute; 1L de medio <I>Clostridium</I> modificado a pH  7,3, (g/L: proteosa peptona, 20; extracto de levadura, 5; sulfato de magnesio  heptahidratado, 1,5; fosfato dipot&aacute;sico, 5; glucosa, 5; l-cistina, 0,75;  pH 7,3), los cuales se dividieron de la manera<I> </I>siguiente: se adicion&oacute;  32 mL de medio a ocho tubos pl&aacute;ntulas est&eacute;riles, 9 mL a tres tubos  tapa rosca est&eacute;riles y 400 mL del mismo medio en fermentador est&eacute;ril.  A cada tubo pl&aacute;ntula se le adicion&oacute; 8 mL de cepa<I> </I>para completar  un volumen final de 40 mL, a cada tubo tapa rosca se le adicion&oacute; 1 mL de  cepa para completar un volumen de 10 mL y al fermentador se le adicionaron 100  mL de cepa para completar un volumen de 500 mL. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Los  cultivos en tubos pl&aacute;ntulas y en el fermentador se trabajaron a una concentraci&oacute;n  del 20% (v/v) de semilla, y los cultivos en tubo se trabajaron a una concentraci&oacute;n  del 10 % (v/v) de semilla. Los cultivos realizados en tubos pl&aacute;ntulas y  tapa rosca se depositaron en campana de anaerobiosis con sistema anaer&oacute;bico;  por el contrario, al fermentador se le realiz&oacute; una inyecci&oacute;n de  gases, que conten&iacute;a 5,0 % (v/v) de CO<SUB>2</SUB>, 10,1 % (v/v), de H<SUB>2</SUB>  y 8,5 %(v/v) de N<SUB>2</SUB><B>,</B> para proporcionar condiciones anaerobias.  Los cultivos se incubaron a 37 &#186;C por 48 h. </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Verificaci&oacute;n  de la pureza de la cepa de Clostridium chauvoei y determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n  de semilla de trabajo</I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Se verific&oacute;  la pureza y las caracter&iacute;sticas fenot&iacute;picas de la cepa de <I>Clostridium  chauvoei</I>, mediante el cultivo en Agar sangre, las cajas se incubaron a 37  <SUP>o</SUP>C durante 48 h, en ambientes de anaerobiosis y aerobiosis. A las colonias  obtenidas en anaerobiosis, se les caracteriz&oacute; macrosc&oacute;picamente  y microsc&oacute;picamente (tinci&oacute;n de Gram y esporos). </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Para  verificar las caracter&iacute;sticas bioqu&iacute;micas de la cepa se emple&oacute;  el API 20A (BioM&eacute;rieux). Finalmente, se realiz&oacute; una prueba de inmunofluorescencia  directa con anticuerpos conjugados con fluoresce&iacute;na (aAntisuero policlonal  anti-<I>Clostridium chauvoei</I> conjugado con isotiocianato de fluoresce&iacute;na  de origen bovino, VMRD, Inc.) a extendidos procedentes del banco de trabajo.<SUP>2</SUP>  </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Selecci&oacute;n de peptonas vegetales  y dise&ntilde;o de medios de cultivo</I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Para  la selecci&oacute;n de las peptonas vegetales se realiz&oacute; una revisi&oacute;n  de literatura,<SUP>3 </SUP>para verificar los requisitos y especificaciones nutricionales.  As&iacute;, nueve peptonas vegetales se seleccionaron y se dise&ntilde;aron los  medios teniendo como base el medio <I>Clostridium</I> modificado (g/L: proteosa  peptona, 20; extracto de levadura, 5; sulfato de magnesio heptahidratado, 1,5;  fosfato dipot&aacute;sico, 5; glucosa, 5; l-cistina, 0,75; pH 7,3) reemplazando  la peptona animal (proteosa peptona) de este medio por las respectivas peptonas  vegetales. Asimismo se ensayaron dos caldos ya formulados, el <I>vegetable peptone  broth</I> (pH 7,1) y el <I>vegetable peptone phosphate broth</I> (pH 7,3), a estos  se les adicion&oacute; 0,75 g/L de L- cistina, para reducir el ox&iacute;geno  presente en el mismo.<SUP>4</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Para  obtener el dato de la cantidad de peptona vegetal (g/L) necesaria para el crecimiento  del microorganismo en los medios de cultivo dise&ntilde;ados, se decidi&oacute;  investigar los siguientes par&aacute;metros; el porcentaje de nitr&oacute;geno  total y pH. Para la peptona animal, proteosa peptona, utilizada en el medio Clostridium  modificado se tuvieron en cuenta estos par&aacute;metros como referencia para  las dem&aacute;s peptonas, conociendo previamente la cantidad en gramos en el  medio base, se denomin&oacute; <I>peptona de referencia</I> (PR) y las peptonas  vegetales, fueron denominadas como <I>peptonas evaluadas</I> (PE). Por lo tanto,  se relacionaron los datos de porcentaje de nitr&oacute;geno total y cantidad en  gramos de la peptona animal con el porcentaje de nitr&oacute;geno total de la  prote&iacute;na vegetal en la ecuaci&oacute;n siguiente: </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">(m.  TN<SUB>2</SUB>%)<SUB> PE</SUB> = (m. TN<SUB>2</SUB>%)</font><font face="Verdana" size="2"><SUB>PR  </SUB></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><SUB> </SUB> <SUB>     <P> </SUB>     <P><font face="Verdana" size="2">donde:  </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>m = </I>masa de la peptona<I> (g);  TN<SUB>2 </SUB>% = </I>porcentaje total de nitr&oacute;geno<I>.</I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Por  otro lado, los valores de pH (6,5-7,2 +/- 2) fueron tenidos en cuenta al momento  de adaptar las peptonas al medio base como par&aacute;metro de referencia para  la estabilidad de estas en soluci&oacute;n, as&iacute; como par&aacute;metro importante  en la selecci&oacute;n del valor de pH final de los medios dise&ntilde;ado. De  acuerdo con este valor de pH, al valor de pH &oacute;ptimo de crecimiento de los  clostridios y al valor de pH del medio modificado con peptona animal, se eligieron  tres datos de pH: pH 7,0, pH 7,3 y pH 8,2. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Las  cantidades de los dem&aacute;s componentes del medio base (carbohidratos, sales  minerales y agente reductor) no fueron modificadas. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Preparaci&oacute;n  de medios de cultivo</I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Para la preparaci&oacute;n  de los nueve medios de cultivo, inicialmente se dispuso de 100 mL de cada uno  de los medios para realizar los cultivos en tubos tapa rosca y finalmente se prepararon  200 mL de cada medio para realizar los cultivos en fermentador. Los componentes  se disolvieron en agua milliQ (0,182 MWcm) con agitaci&oacute;n constante excepto  la l-cistina, la cual se disolvi&oacute; en NaOH (1 N). Se ajust&oacute; el pH  de los medios (7,3, 7,0 y 8,2) y se esterilizaron mediante filtraci&oacute;n (0,22  mm). Se realiz&oacute; control de esterilidad dejando los medios de cultivo a  37 &#186;C por 24 h. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Se prepararon adem&aacute;s,  los caldos ya formulados con peptona vegetal <I>vegetable peptone broth </I>y<I>  vegetable peptone phosphate broth</I> para ser probados con <I>Clostridium chauvoei</I>,  a estos se les adicion&oacute; l-cistina a la misma cantidad y se le realiz&oacute;  el ajuste a los valores de pH correspondientes. Se esterilizaron mediante calor  h&uacute;medo (autoclave). </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Prueba  de estabilidad y determinaci&oacute;n del pH de trabajo</I> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Los  medios dise&ntilde;ados con las nueve peptonas vegetales, as&iacute; como los  caldos formulados se sometieron a una temperatura de 37 &#176;C por 5 d&iacute;as,  con el objeto de determinar la estabilidad de las materias primas, mediante observaci&oacute;n,  verificando la integridad del aspecto del medio. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Los  medios que no evidenciaron ning&uacute;n cambio o irregularidad en la estabilidad  de sus materias primas, fueron inoculados con <I>Clostridium chauvoei</I> y de  acuerdo con la mayor cantidad de biomasa generada, se seleccion&oacute; el mejor  valor de pH para los subsecuentes cultivos. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Selecci&oacute;n  de medios de cultivo y determinaci&oacute;n de la producci&oacute;n de biomasa</I>  </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Para determinar el mejor medio de cultivo  a base de peptonas vegetales; se realiz&oacute; la siembra de <I>Clostridium chauvoei</I>  en cada uno de los medios con las nueve peptonas vegetales, en los caldos a base  de peptonas y en el medio <I>Clostridium</I> modificado (medio base). </font>      <P><font face="Verdana" size="2">Se trabaj&oacute; un volumen de 50 mL por cada  medio suplementado con la adici&oacute;n de las peptonas, los cultivos fueron  incubados en anaerobiosis a 37 &#186;C por 48 h. Se trabaj&oacute; un volumen  de 200 mL en fermentador de los medios que produjeron la mayor cantidad de biomasa;  a estos se les adicion&oacute; la mezcla de gases para dar condiciones de anaerobiosis  y se incubaron a 37 &#186;C por 48 h. Las siembras se realizaron por triplicado.  Todos los cultivos se manejaron a una concentraci&oacute;n de semilla de trabajo  del 10% (v/v) y sin agitaci&oacute;n. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Cumplido  el per&iacute;odo de incubaci&oacute;n, se tom&oacute; una muestra de 10 mL de  cada cultivo para realizar las pruebas de esterilidad y determinar la producci&oacute;n  de biomasa. La producci&oacute;n de biomasa se evalu&oacute; mediante densidad  &oacute;ptica, estableci&eacute;ndose el valor de absorbancia y el porcentaje  de transmitancia, de los diferentes medios de cultivos optimizados a una longitud  de onda de 540 nm (UNICAM UV/VIS 8625 Spectrometer USA).<SUP>5</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Prueba  de letalidad en cobayos</I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Para verificar  la capacidad patog&eacute;nica de los cultivos seleccionados en este estudio,  se realiz&oacute; la prueba en cobayos exocriados, de 350 450 g de peso (grupos  de cuatro cobayos por diluci&oacute;n), a los cuales se les inocul&oacute; 0,5  mL por v&iacute;a intramuscular de cada una de las diluciones en base 10 (10<SUP>-3</SUP>  a 10<SUP>-9</SUP>) preparadas a partir de 1 mL del cultivo de <I>Clostridium chauvoei</I><B>  </B>en los medios optimizados y 9 mL de CaCl<SUB>2</SUB> 5% est&eacute;ril a 4  &#186;C. La prueba se realiz&oacute; por triplicado. Los cobayos se observaron  durante 72 h y se registr&oacute; a diario la mortalidad o supervivencia para  determinar la DL<SUB>50</SUB>. Los c&aacute;lculos se realizaron por el m&eacute;todo  estad&iacute;stico Reed-Muench. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>An&aacute;lisis  estad&iacute;stico</I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El an&aacute;lisis  estad&iacute;stico de los datos de tres r&eacute;plicas de ensayos independientes,  se realiz&oacute; mediante un an&aacute;lisis de varianza (ANOVA) y el <I>test</I>  de Tukey con ayuda del programa estadistico SAS Versi&oacute;n 6,02. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;      <P>     <P><font face="Verdana" size="3"><B>RESULTADOS </B></font><font face="Verdana" size="2">  </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Identificaci&oacute;n de Clostridium  chauvoei<B> </B>y determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de semilla de  trabajo</I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Las cepas de<B> </B><I>Clostridium  chauvoei</I><B> </B>se observaron bacilos grampositivos pleom&oacute;rficos, algunos  esporulados, las c&eacute;lulas son completamente variables en apariencia, algunas  de ellas son definidamente hinchadas, muchas de ellas muestran desigual coloraci&oacute;n.  Sus colonias en agar sangre se observaron peque&ntilde;as, planas y transparentes  u opacas, de bordes irregulares con actividad b hemol&iacute;tica. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">En  las pruebas bioqu&iacute;micas se revel&oacute; principalmente la hidr&oacute;lisis  de la gelatina, fermentaci&oacute;n de la glucosa, maltosa, lactosa y sacarosa.  Lo anterior permiti&oacute; confirmar que estos microorganismos pertenecen al  g&eacute;nero <I>Clostridium </I>especie <I>chauvoei</I>. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Con  respecto a la determinaci&oacute;n de la cantidad semilla, la cantidad de biomasa  determinada por el porcentaje de transmitancia, que fue de 1,4 % y 1,6 %, no fue  significativo entre los cultivos, en ambos el microorganismo dispuso de los nutrientes  adecuados para su crecimiento y metabolismo, sin embargo al 10% (v/v) de semilla  se reduc&iacute;a la cantidad de medio y de la misma; por lo tanto los cultivos  siguientes se trabajaron a esta concentraci&oacute;n de semilla. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Dise&ntilde;o  de medios de cultivo</I> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Las nueve peptonas  vegetales (PE) seleccionadas, y sus concentraciones de nitr&oacute;geno total  fueron relacionados con el valor en % (P/V) de nitr&oacute;geno total y gramos  de la peptona animal (PR) para establecer las cantidades en gramos de las peptonas  evaluadas, de acuerdo con la ecuaci&oacute;n (1), los resultados son observables  en la <a href="/img/revistas/ibi/v32n4/t0107413.gif">tabla</a>. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Prueba  de estabilidad y determinaci&oacute;n del pH de trabajo</I> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">En  la prueba de estabilidad a 37&#186; C todos los medios de cultivo a pH 7,3+/-0,2,  presentaron un precipitado a las 48 h. Por lo tanto, se escogieron otras opciones  de pH, que para el caso fue 7,0 y 8,2. Se redise&ntilde;aron los medios retirando  la sal mineral de menor cantidad: sulfato de magnesio heptahidratado. Los medios  dise&ntilde;ados, a estos pH se sometieron nuevamente a 37 &#186;C, donde la mayor&iacute;a  present&oacute; un color caf&eacute; tenue, libre de precipitados que impidieran  o limitaran el crecimiento y proliferaci&oacute;n del microorganismo.<SUP>6</SUP>  </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La precipitaci&oacute;n presentada, se  atribuye a que ciertos medios poseen sales insolubles de calcio y magnesio que  podr&iacute;an precipitarse en presencia de peptonas y de extractos de carne<SUP>1</SUP>,  por lo tanto todo material insoluble presente en el medio de cultivo va tener  una determinada capacidad de uni&oacute;n a elementos met&aacute;licos disminuyendo  su concentraci&oacute;n efectiva.<SUP>7</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La  temperatura trabajada (37 &#186;C), fue seleccionada de acuerdo con la temperatura  &oacute;ptima de crecimiento de los clostridios (30 &#186;C y 37 &#186;C)<SUP>8</SUP>  y a la temperatura de solubilidad de las prote&iacute;nas (10 &#186;C a 45 &#186;C,  alcanzando un nivel m&aacute;ximo alrededor de los 35 &#186;C), por tanto cuando  se exceden estos l&iacute;mites los pol&iacute;meros tienden a la desnaturalizaci&oacute;n  y en ocasiones, a la precipitaci&oacute;n.<SUP>9</SUP> </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Por  otro lado, los resultados de la determinaci&oacute;n del pH de trabajo mediante  la cantidad de biomasa generada, muestran diferencias estad&iacute;sticamente  significativas entre los </font><font face="Verdana" size="2">porcentajes de transmitancia  de los medios dise&ntilde;ados con peptonas vegetales (p&lt;0,05) a pH 7,0 y pH  8,2 para <I>Clostridium chauvoei</I>. Los medios de cultivo <I>vegetable peptone  broth</I> y <I>vegetable peptone phosphate broth</I> produjeron altos porcentajes  de transmitancia a ambos pH <a href="#fig1">(Fig. 1)</a>; sin embargo los cultivos  a pH 8,2 mostraron entre s&iacute; menor variabilidad y mayor producci&oacute;n  de biomasa que en los resultados obtenidos a pH 7,0 <a href="#fig2">(Fig. 2)</a>,  a excepci&oacute;n del medio <I>vegetable peptone phosphate broth</I>. </font>      <P align="center"><a name="fig1"></a><img src="/img/revistas/ibi/v32n4/f0107413.jpg" width="522" height="479">      <P align="center"><a name="fig2"></a><img src="/img/revistas/ibi/v32n4/f0207413.jpg" width="522" height="387">      <P><font face="Verdana" size="2">Choman,<SUP>10</SUP> determin&oacute;, que las  especies de <I>Clostridium </I>spp.<I> </I>son capaces de reproducirse bajo condiciones  alcalinas, disminuyendo el pH entre 5,1-6,1, lo que indica un activo crecimiento.  Por otro lado <I>Qari</I> <I>et al.</I><SUP>4</SUP><I> </I> al desarrollar un  medio anaerobio modificado a un pH de 8,4 informaron la reducci&oacute;n del pH  de 1,48 y un % T de 2,20 en un tiempo de cultivo de 48 h, respectivamente. </font>      <P><font face="Verdana" size="2">Estos datos comparados con otros reportes de  medios para <I>Clostridium </I>spp., permiten inferir que bajo estas condiciones  se asegura un profuso crecimiento del microorganismo. Sin embargo, para un microorganismo  dado, el pH &oacute;ptimo de crecimiento var&iacute;a de sustrato a sustrato;  por ejemplo <I>Clostridium aceticum </I>solo crece autotr&oacute;ficamente entre  pH 8,1 y 8,5, mientras crece con carbohidratos requeridos a pH alrededor de 7,0.<SUP>11</SUP>  </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Los medios de cultivo <I>vegetable peptone  broth</I> y <I>vegetable peptone phosphate broth</I>, no favorecieron una buena  producci&oacute;n de biomasa, debido posiblemente a la formulaci&oacute;n de los  medios, los cuales no suministraron los componentes necesarios o las cantidades  adecuadas de los mismos para promover una buena producci&oacute;n de biomasa de  <I>Clostridium chauvoei</I>. </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Selecci&oacute;n  de medios de cultivo y determinaci&oacute;n de la producci&oacute;n de biomasa</I>  </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Se realizaron tres r&eacute;plicas de  los ensayos en tubos tapa rosca a un volumen final de 50 mL, para evaluar la producci&oacute;n  de biomasa en los 11 medios de cultivo con peptona vegetal, lo cual se determin&oacute;  a trav&eacute;s del % T, de cada ensayo comparando los datos entre si para definir  los mejores cultivos a base de peptonas vegetales. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Con  respecto a los resultados en la <a href="#fig3">figura 3 </a> existen diferencias  estad&iacute;sticamente significativas entre los porcentajes de transmitancia  de los medios dise&ntilde;ados con peptonas vegetales (p &lt;0,05) para la cepa  de <I>Clostridium chauvoei</I>; sin embargo, los cultivos con peptona veg. 1-B,  peptona veg. 11-M favorecieron una producci&oacute;n de biomasa muy cercana a  la del medio base (proteosa peptona, medio <I>Clostridium</I> modificado, pH 7,3);  seguido por los cultivos con peptona veg. 8-M, peptona veg. 10-M. En los cultivos  restantes se observ&oacute; una producci&oacute;n de biomasa en % T entre 3,2-  10,8%. </font>     <P align="center"><a name="fig3"></a><img src="/img/revistas/ibi/v32n4/f0307413.jpg" width="522" height="500">      <P><font face="Verdana" size="2">De acuerdo con estos resultados, los cultivos  con las peptonas vegetales 1-b, 8-m, 10-m y 11-m fueron seleccionados y se llev&oacute;  a cabo el experimento a mayor escala en fermentador con (200 mL); con el objetivo  de evaluar la producci&oacute;n de biomasa a un volumen mayor y en un mejor sistema  de cultivo, para poder definir los mejores cultivos con alguna de estas peptonas  vegetales. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Es por esto que en los resultados  observados en la <a href="#fig4">figura 4</a>, no existen diferencias estad&iacute;sticamente  significativas entre los porcentajes de transmitancia de los cuatro cultivos a  base de peptona vegetal (p&gt;0,05) y en el medio <I>Clostridium</I> modificado  para la cepa de <I>Clostridium chauvoei</I> a pH 8,2. De acuerdo con el test de  Tukey, estos &uacute;ltimos cultivos con peptona vegetal presentan un % T muy  cercano, por lo cual se estima que estas peptonas pueden ser aptas para reemplazar  a la peptona animal en el medio <I>Clostridium</I> modificado. </font>     <P align="center"><a name="fig4"></a><img src="/img/revistas/ibi/v32n4/f0407413.jpg" width="580" height="546">      <P><font face="Verdana" size="2">Por otro lado, en el medio <I>Clostridium</I>  modificado a pH 7,3 (medio base) se evidenci&oacute; una mayor producci&oacute;n  de biomasa (%T: 2,0) comparado con los medios <I>Clostridium </I>modificado sin  sulfato de magnesio a pH 8,2 y a pH 7,3, los cuales obtuvieron una biomasa de  <I>Clostridium chauvoei</I> con % T entre 2,6 y 2,5, respectivamente. </font>      <P><font face="Verdana" size="2">Los medios dise&ntilde;ados con las cuatro peptonas  vegetales presentaron un % T muy cercano al medio base, pero con mayor variabilidad  en los resultados. As&iacute;mismo, las modificaciones del medio base (6: pH 8,2  sin sulfato de magnesio y 7: pH 7,3 sin sulfato de magnesio) presentaron %T cercano  al medio <I>Clostridium</I> modificado con mayor variabilidad de los resultados.  Los medios PYG (peptona-extracto de levadura-glucosa) son recomendados para cultivar  especies de <I>Clostridium</I>;<SUP>12</SUP> por lo tanto el medio <I>Clostridium</I>  modificado, que es un medio complejo, permite la propagaci&oacute;n de <I>Clostridium  chauvoei</I>, debido a que posee proteosa peptona, extracto de levadura, glucosa,  sulfato de magnesio y fosfato dipot&aacute;sico que influyen positivamente en  la producci&oacute;n de biomasa y esporulaci&oacute;n de los microorganismos,  en comparaci&oacute;n con los componentes de otros medios. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">El  reemplazo de la peptona animal por las peptonas vegetales a la cantidad propuesta  en el medio base, se destac&oacute; por estimular el crecimiento abundante de  <I>Clostridium chauvoei</I>, gracias a que estas posiblemente aportaron carbono,  nitr&oacute;geno (proteosas), sales inorg&aacute;nicas como los fosfatos y algunos  micronutrientes como Ca, Zn, Fe y Cu, componentes esenciales requeridos en un  medio microbiol&oacute;gico para el crecimiento de los microorganismos,<SUP>8,13</SUP>  afirman que las sales, elementos trazas y soluci&oacute;n de vitaminas deben ser  empleados para preparar medios complejos, pero los requerimientos de bases purinas  y pirimidinas, y amino&aacute;cidos pueden variar, de manera significativa; esto  es totalmente importante, ya que son precursores para prote&iacute;nas o como  sustratos productores de energ&iacute;a. Por lo tanto, las peptonas vegetales  como las peptonas animales son fuentes de nitr&oacute;geno org&aacute;nico fundamentales  que poseen la capacidad de promover un profuso crecimiento en medios de cultivo  complejos para microorganismos con alta demanda en requerimientos nutricionales  como los <I>Clostridium </I>spp; sin embargo, la producci&oacute;n de biomasa  para algunos cultivos fue m&aacute;s baja con respecto al medio base, que pudo  deberse a aspectos como el n&uacute;mero de pasaje de la semilla, el cual origina  disminuci&oacute;n de la capacidad de multiplicaci&oacute;n; condiciones del medio,  en los cuales la cantidad empleada de peptona vegetal o el pH seleccionado pudo  favorecer o no la producci&oacute;n de biomasa. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La  eliminaci&oacute;n del sulfato de magnesio en los medios dise&ntilde;ados con  las peptonas vegetales y en el medio base a pH 7,3 y 8,2 no tuvo un efecto negativo  en la producci&oacute;n de biomasa. De acuerdo con lo descrito<SUP>2</SUP> una  f&oacute;rmula puede no tener metales y minerales espec&iacute;ficos. En tales  casos se asume que los factores requeridos est&aacute;n presentes en los hidrolizados,  en el tamp&oacute;n o en el agar. Al final de la producci&oacute;n de biomasa  en los cultivos con peptona veg. 1-B, peptona veg 8-M, peptona veg. 10-M y peptona  11-M se les verific&oacute; la actividad letal en cobayos, encontrando t&iacute;tulos  de 10<SUP>-8.3</SUP>, 10<SUP>-7.7</SUP> y 10<SUP>-8.7</SUP> respectivamente. </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">De igual forma se ratific&oacute; que los componentes  del medio de cultivo empleado y que la soluci&oacute;n salina est&eacute;ril no  fueron la causa de la muerte de los cobayos. Entre las diluciones 10<SUP>-8</SUP>  y 10<SUP>-9 </SUP>se localiza la DL<SUB>50</SUB> de los cultivos con<B> </B>las  siguientes peptonas vegetales; peptona veg. 1-B, peptona veg. 10-M y peptona 11-M,  entre las diluciones 10<SUP>-7</SUP> y 10<SUP>-8 </SUP>se localiza la DL<SUB>50</SUB>  del cultivo con la peptona veg. 8-M y finalmente, entre la diluci&oacute;n 10<SUP>-6</SUP>  y 10<SUP>-7</SUP> se localiza la DL<SUB>50 </SUB>del medio <I>Clostridium</I>  modificado, respectivamente. </font>     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana" size="2"><B><font size="3">CONCLUSIONES</font></B>  </font>     <P><font face="Verdana" size="2">A partir de los resultados obtenidos,  se logr&oacute; el dise&ntilde;o de medios de cultivo con peptonas vegetales a  pH 8,2 para la producci&oacute;n de biomasa de <I>Clostridium chauvoei</I>. Se  definieron cuatro medios de cultivo a base de las peptonas vegetales; 1-B, 8-M,  10-M y 11-M, las cuales favorecieron la producci&oacute;n de biomasa de <I>C.  chauvoei</I>. Los porcentajes de transmitancia de estas peptonas no evidenciaron  diferencias estad&iacute;sticamente significativas entre s&iacute;, ni con el  medio de control (ver figura 3). El t&iacute;tulo del medio control fue el menor  de todos los medios evaluados y se logro obtener t&iacute;tulos mayores al utilizar  peptonas vegetales, lo que favorece las condiciones de obtenci&oacute;n de una  biomasa con mayor evidencia de toxicidad dentro del proceso de producci&oacute;n.  </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Financiaci&oacute;n, agradecimientos  y conflictos de intereses: Agradecimientos a la Empresa Colombiana de Productos  Veterinarios Vecol S.A, por la financiaci&oacute;n de este trabajo y a la Pontificia  Universidad Javeriana. Departamento de Microbiolog&iacute;a, Grupo de Investigaci&oacute;n  de Biotecnolog&iacute;a Ambiental e Industrial. GBAI </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Los  autores manifiestan que no existen conflictos de intereses. </font>     <P>&nbsp;     <P>     <P><font face="Verdana" size="3"><B>REFERENCIAS  BIBLIOGR&Aacute;FICAS</B> </font>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">1. Badui  SD. Qu&iacute;mica de los alimentos. M&eacute;xico D.F: Editorial Alhambra; 1993.  pp. 154-9 </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">2. Becton Dickinson and  Company Peptone Technical Manual. BD Becton Dickinson Producci&oacute;n Biofarmaceutica;2003:15-20.      </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">3. Bergey&#180;s Manual of systematic  bacteriology. <I>Clostridium chauvoei. </I>1984(2):1141-63.     </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">4.  Choman BR. Secuential growth of <I>Clostridium chauvoei, Clostridium septicum,  </I>and <I>Clostridium novyi </I>in the same medium. Am J Veterinary Res. 1969;30(1):133-7.    <I>  </I> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">5. Gaudreau H, Renard N, Champagne  CP, Hrn V. The evaluation of mixtures of yeast and potato extracts in growth media  for biomass production of lactic cultures. Can J. Microbiol. 2002;48(7):626-34.      </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">6. Guzm&aacute;n AM, Micalizzi B.  Diagn&oacute;stico de la mancha por inmunofluorescencia directa en m&eacute;dula  &oacute;sea de bovino<I>.</I> Revista Latinoamericana de Microbiolog&iacute;a.  1992;34:87-9.     </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">7. Kurbanoglu EB, Algur  OF. A new medium ram horn hydrolysate for enumeration aerobic bacteria. Turkish  Journal of Biology. 2004;28: 343-50.     </font>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">8.  Larkin JM. Peptonized milk as an enumeration medium soil bacteria. Applied Microbiology.  1972;23:1031-2.     </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">9. Lee J, Hwang H,  Jung E, Huh S, Hyun J, Park D. Promotion of stem cell proliferation by vegetable  peptone. Cell Proliferation. 2009;48(25):595-601.     </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">10.  Micalizzi B, De Guzman AM. Use of surgar cane molasses for culture of <I>Clostridium  chauvoei. </I>Clinical Infection Diseases. 1995;20(2):382-3.     </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">11.  Qari SH, Agrawal B, Sing SD. Modified anaerobic medium for <I>Clostridium</I>  <I>chauvoei</I> and <I>C. septicum</I>. Indian J Microbiol. 1990;30(4): 459-62.      </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">12. Shone C, Hambleton P. Toxigenic  Clostridia. In: Biotechnology Handbooks. Clostridia. Minton P, Clarke, JD (Ed).  New York, USA: Plenum Press; 1989. p. 27-42. </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">13.  Tanskul S,<U><FONT COLOR="#0000ff"> </FONT></U>Amornthatree K, Jaturonlak N. A  new cellulose-producing bacterium, Rhodococcus SP. MI 2: Screening and optimization  of culture conditions. Carbohydrate polymers. 2013;92(1):421-28.     </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;      <P>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Recibido: 27 de agosto de 2013.     <br>  </font><font face="Verdana" size="2">Aprobado: 12 de septiembre de 2013. </font>      <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Janeth del Carmen Arias Palacios<B>.  </B>Departamento de Microbiolog&iacute;a, Grupo Biotecnolog&iacute;a Ambiental  e Industrial GBAI, Facultad de Ciencias. Pontificia Universidad Javeriana Carrera  7 No. 43-82, Bogot&aacute;. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:jdcarias@javeriana.edu.co">jdcarias@javeriana.edu.co</a></font>      <P>     <P>     <P>     <P>     ]]></body>
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