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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Desarrollo y evaluación de un método de obtención de larvas estériles de Lucilia eximia para su uso en terapia larval]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective: develop a method to treat eggs of Lucilia eximia to obtain sterile larvae and evaluate the survival capacity of those larvae under refrigeration at 4°C. Methods: a rearing system was set up for L. eximia. The eggs were collected from the oviposition substrate, washed with sterile saline solution (0.85%), treated with sodium hypochlorite (0.5%), and sterilized with formalin. Three concentrations were evaluated: 2.5%; 5.0% and 10.0%. Egg sterility was verified by bacteriological culture. Eclosion of sterilized eggs was expressed by estimation of an eclosion rate (ER). An evaluation was conducted of the survival of larvae from the second and third early stages (L2 and L3, respectively) under refrigeration during the first 4 hours and then at 24 and 48 hours. Results: all the formalin concentrations evaluated were capable of sterilizing the eggs. No correlation was found between the ER and the formalin concentrations used (Spearman's Rho = -0.030, p = 0.848). During the first 4 hours at 4°C, 100% L2 and L3 survived. However, both larval stages showed a marked decrease in survival at 24 and 48 hours, L2 being the most sensitive to refrigeration. Conclusions: results show that obtaining sterile L. eximia larvae by this method is a simple process. However, larval survival under refrigeration is limited.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <html> <head> <title>Desarrollo y evaluaci&oacute;n de un m&eacute;todo de obtenci&oacute;n de larvas est&eacute;riles de Lucilia eximia para su uso en terapia larval </title> <meta http-equiv="Content-Type" content="text/html; charset=iso-8859-1"> </head>     <p align="right"><font size="2" face="Verdana"><b>ART&#205;CULO ORIGINAL</b></font></p>     <p align="right">  <font size="2" face="Verdana"></font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> <b><font size="4">Desarrollo  y evaluaci&#243;n de un m&#233;todo de obtenci&#243;n de larvas est&#233;riles  de <i>Lucilia eximia </i>para su uso en terapia larval </font></b></font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p>  <font size="3" face="Verdana"><b>Development and evaluation of a method to obtain  sterile <i>Lucilia eximia</i> larvae for use in larval therapy </b></font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;  </p>    <p><font size="2" face="Verdana"> <b>Lissette Retana Moreira, Kattia Belfort  Arguedas, Olger Calder&#243;n Arguedas, Adriana Troyo Rodr&#237;guez, Mar&#237;a  del Mar Gamboa Coronado </b></font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> Centro  de Investigaci&#243;n en Enfermedades Tropicales (CIET). Universidad de Costa  Rica.</font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">    <br> </font></p>    <p>&nbsp;</p><hr size="1" noshade>      <p> <font size="2" face="Verdana"><b>RESUMEN</b></font></p>    <p> <font size="2" face="Verdana"><b>Objetivo:</b>  desarrollar un m&#233;todo de tratamiento de huevos de <i>Lucilia eximia</i> para  la obtenci&#243;n de larvas est&#233;riles y evaluar la capacidad de supervivencia  de dichas larvas en condiciones de refrigeraci&#243;n a 4&#176;C.    <br> <b>M&#233;todos:</b>  se estableci&#243; un sistema de crianza para <i>L. eximia. </i>Los huevos fueron  colectados en el sustrato de oviposici&#243;n, se lavaron con soluci&#243;n salina  est&#233;ril (0,85%), se trataron con hipoclorito de sodio (0,5%) y finalmente  se esterilizaron con formalina, evaluando tres diferentes concentraciones (2,5%;  5,0% y 10,0%). Se verific&#243; la esterilidad de los huevos empleando medios  de cultivo bacteriol&#243;gicos y la eclosi&#243;n de los huevos esterilizados  fue expresada mediante el c&#225;lculo de un &#237;ndice de eclosi&#243;n (IE).  Adem&#225;s, se evalu&#243; la supervivencia de las larvas de segundo y tercer  estadio temprano (L2 y L3, respectivamente) en condiciones de refrigeraci&#243;n,  durante las 4 primeras horas y luego a las 24 y 48 horas.    <br> <b>Resultados:</b>  todas las concentraciones de formalina evaluadas fueron capaces de esterilizar  los huevos. No se encontr&#243; una correlaci&#243;n entre el IE y las concentraciones  de formalina utilizadas (R Spearman = -0,030, p = 0,848). Durante las primeras  4 horas a 4&#176;C, un 100% de las L2 y las L3 sobrevivieron. Sin embargo, en  ambos estadios larvales hubo un marcado descenso de la supervivencia a las 24  y 48 horas, siendo las L2 las m&#225;s sensibles a las condiciones de refrigeraci&#243;n.    <br>  </font><font size="2" face="Verdana"><b>Conclusiones:</b> los resultados mostraron  que la obtenci&#243;n de larvas est&#233;riles de <i>L. eximia</i> con el m&#233;todo  utilizado es un proceso sencillo, pero la supervivencia de las larvas en condiciones  de refrigeraci&#243;n es limitada. </font></p>    <p> <font size="2" face="Verdana"><b>Palabras  clave</b>: </font><font size="2" face="Verdana">Terapia larval, &#250;lceras d&#233;rmicas,  <i>Lucilia eximia</i>, larvas est&#233;riles, supervivencia.</font> <hr size="1" noshade>      <p><font size="2" face="Verdana"><b>ABSTRACT</b> </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p> <font size="2" face="Verdana"><b>  Objective: </b>develop a method to treat eggs of Lucilia eximia to obtain sterile  larvae and evaluate the survival capacity of those larvae under refrigeration  at 4&#176;C.    <br> <b> Methods: </b>a rearing system was set up for L. eximia. The  eggs were collected from the oviposition substrate, washed with sterile saline  solution (0.85%), treated with sodium hypochlorite (0.5%), and sterilized with  formalin. Three concentrations were evaluated: 2.5%; 5.0% and 10.0%. Egg sterility  was verified by bacteriological culture. Eclosion of sterilized eggs was expressed  by estimation of an eclosion rate (ER). An evaluation was conducted of the survival  of larvae from the second and third early stages (L2 and L3, respectively) under  refrigeration during the first 4 hours and then at 24 and 48 hours.    <br> <b> Results:</b>  all the formalin concentrations evaluated were capable of sterilizing the eggs.  No correlation was found between the ER and the formalin concentrations used (Spearman's  Rho = -0.030, p = 0.848). During the first 4 hours at 4&#176;C, 100% L2 and L3  survived. However, both larval stages showed a marked decrease in survival at  24 and 48 hours, L2 being the most sensitive to refrigeration.    <br> <b> Conclusions:  </b>results show that obtaining sterile L. eximia larvae by this method is a simple  process. However, larval survival under refrigeration is limited. </font></p>    <p>  <font size="2" face="Verdana"><b>Key words: </b>larval therapy, skin ulcers, Lucilia  eximia, sterile larvae, survival.</font> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <p>  <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></b></font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  La terapia larval es un procedimiento biol&#243;gico que se aplica al tratamiento  de &#250;lceras d&#233;rmicas.<sup>1</sup> Diferentes tipos de &#250;lcera han  sido eficientemente tratados con estos procedimientos, dentro de &#233;stas se  pueden citar las &#250;lceras en los pies, las &#250;lceras de presi&#243;n, las  heridas quir&#250;rgicas, las heridas traum&#225;ticas, por quemaduras y las &#250;lceras  arteriovenosas.<sup>1</sup> Para la ejecuci&#243;n de dicha terapia, se emplean  larvas de mosca de car&#225;cter necrobiont&#243;fago, las cuales, como su denominativo  lo indica, se alimentan de tejido necr&#243;tico pero respetan el tejido sano.  Los procesos de desbridaci&#243;n ocurren gracias a la acci&#243;n mec&#225;nica  de las piezas bucales de las larvas y la secreci&#243;n de enzimas tipo tripsina,  quimiotripsina, metaloproteasas y colagenasas.<sup>2</sup> Por otro lado, se ha  podido demostrar que los productos de excreci&#243;n/secreci&#243;n de las larvas  tienen actividad antimicrobiana<sup>3</sup> y actividad promotora de la multiplicaci&#243;n  celular, lo cual favorece los procesos de cicatrizaci&#243;n d&#233;rmica.<sup>1,4</sup>  <i>Lucilia sericata </i>(Diptera: Calliphoridae) es una especie que ha sido empleada  de forma eficiente en este tipo de procedimientos en diversos pa&#237;ses de Europa,  Norteam&#233;rica y Suram&#233;rica.<sup>2,5</sup> En Costa Rica<i>, Lucilia eximia</i>,  especie relacionada taxon&#243;micamente, constituye una especie muy com&#250;n  en todo el territorio nacional.<sup>6 </sup>Recientemente, <i>L. eximia </i>ha  sido propuesta como una especie de utilidad en el tratamiento de &#250;lceras  d&#233;rmicas y ha mostrado una eficacia mayor que <i>L. sericata </i>en los procesos  de soluci&#243;n de diversos tipos de heridas d&#233;rmicas.<sup>7</sup> La terapia  con larvas de esta especie ha sido ensayada en Colombia con el prop&#243;sito  principal del desbridamiento y en algunos casos para disminuir el mal olor resultante  de la descomposici&#243;n bacteriana en &#250;lceras de gran tama&#241;o. </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  La aplicaci&#243;n de la terapia larval requiere el uso de larvas est&#233;riles.  Aun cuando se pueda dar un eficiente tratamiento microbicida a las larvas, la  desinfecci&#243;n se realizar&#237;a solamente en la superficie, sin poder esterilizarse  el tracto intestinal.<sup>8</sup> Es por esta raz&#243;n que se prefiere utilizar  procedimientos para la esterilizaci&#243;n de huevos. </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">  Los primeros procedimientos de este tipo inclu&#237;an un pretratamiento con soluci&#243;n  de Dakin (hipoclorito de sodio diluido o cloro) seguido de una inmersi&#243;n  en cloruro de mercurio o formalina.<sup>1</sup> Otros agentes desinfectantes y  esterilizantes que han sido utilizados incluyen el &#225;cido hidroclorh&#237;drico  y el Lysol comercial,<sup>9</sup> adem&#225;s de sulfito de sodio al 1 % en soluci&#243;n  salina y formaldeh&#237;do al 2,5 %. <sup>4</sup> Tambi&#233;n, ha sido reportado  el empleo de alcohol y bicloruro de mercurio.<sup>8</sup> </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  En el presente trabajo se pretendi&#243; desarrollar un procedimiento pr&#225;ctico  y econ&#243;mico para poder ser implementado en laboratorios de instituciones  nosocomiales, y as&#237; garantizar la obtenci&#243;n de larvas est&#233;riles  de <i>L. eximia </i>para su eventual uso en terapia larval. Asimismo, se evalu&#243;  su supervivencia en condiciones de refrigeraci&#243;n para conocer el tiempo que  estas larvas podr&#237;an almacenarse bajo esas condiciones. Estos aspectos constituyen  un paso previo a su uso en terapia larval. </font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">M&#201;TODOS</font></b>  </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> <i>Colecta, identificaci&#243;n y  establecimiento de las colonias de</i> <i>L. eximia </i> </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  Para iniciar una colonia de <i>L. eximia</i>, se realiz&#243; una colecta de moscas  calif&#243;ridas en la Reserva Leonel Oviedo, ubicada en la Ciudad Universitaria  "Rodrigo Facio" de la Universidad de Costa Rica en San Pedro de Montes de Oca  (9&#176;56'07 N y 84&#176;03'04 O).<sup>10</sup> Se utilizaron trampas verticales  construidas de acuerdo a la metodolog&#237;a establecida por Meegan y otros<sup>11</sup>  en las cuales se emple&#243; pescado crudo como cebo. Tambi&#233;n, se realiz&#243;  una colecta directa con red entomol&#243;gica. Las moscas obtenidas fueron trasladas  al laboratorio, donde se inactivaron parcialmente con acetona para su identificaci&#243;n  taxon&#243;mica, la cual se bas&#243; en las caracter&#237;sticas propuestas por  <i>Aubertin,</i><sup>12</sup> <i>Barros de Carvalho</i> y <i>Antunes de Mello-Patiu</i><sup>13  </sup>y <i>Amat</i> y colaboradores.<sup>14</sup> Con el fin de establecer las  colonias, las moscas que correspondieron a <i>L. eximia </i>fueron transferidas  a cajas pl&#225;sticas cuyas medidas fueron 45 x 30 x 30 cm, a las que se les  coloc&#243; una mezcla 1:1 de az&#250;car y leche en polvo como substrato alimenticio  y un recipiente con agua libre de cloro, invertido sobre una placa de Petri con  un papel absorbente. </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> Como medio de  oviposici&#243;n se utiliz&#243; un trozo de h&#237;gado fresco colocado en un  tubo c&#243;nico recubierto de pl&#225;stico negro. Los huevos obtenidos a partir  de cada oviposici&#243;n fueron contados y posteriomente se utilizaron en la implementaci&#243;n  de la t&#233;cnica de obtenci&#243;n de formas larvales est&#233;riles. Una fracci&#243;n  se utiliz&#243; para la generaci&#243;n de nuevas moscas con el fin de repoblar  la colonia. Para este efecto, los huevos fueron colocados en trozos de h&#237;gado  en un recipiente cuyas medidas fueron 40 x 18 x 15 cm. Estos recipientes se colocaron  en una caja pl&#225;stica con una cama de arena como ambiente de pupaci&#243;n.  Las pupas generadas fueron transferidas de nuevo a las cajas de mantenimiento  de adultos para su eclosi&#243;n. </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  <i>Esterilizaci&#243;n de los huevos de L. eximia y c&#225;lculo de los &#237;ndices  de eclosi&#243;n</i> </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> Los huevos destinados  a la generaci&#243;n de larvas est&#233;riles fueron manejados utilizando como  base la metodolog&#237;a descrita por <i>Figueroa</i> y otros para la esterilizaci&#243;n  de huevos de <i>Lucilia sericata.</i><sup>2,5</sup> Para la ejecuci&#243;n de  dicha t&#233;cnica se colectaron los huevos a partir del sustrato de oviposici&#243;n  y se emulsificaron en soluci&#243;n salina est&#233;ril al 0,85 % en una placa  de Petri. </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> Posteriormente, fueron  transferidos a un tubo de ensayo de 10,0 x 1,5 cm con hipoclorito de sodio al  0,5 % el cual constituy&#243; el tratamiento previo a la esterilizaci&#243;n.  El hipoclorito fue decantado y se agreg&#243; formalina en tres concentraciones  de prueba (2,5 %, 5,0 % y 10,0 %), como esterilizante definitivo en procedimientos  separados para cada una de las concentraciones. El tiempo de tratamiento fue de  5 min para las tres concentraciones utilizadas, luego de las cuales se llevaron  a cabo tres lavados con soluci&#243;n salina est&#233;ril al 0,85 %. Los huevos  fueron secados sobre un papel de filtro est&#233;ril y posteriormente se colocaron  en placas de agar sangre bacteriol&#243;gico. El agar sangre constituy&#243; el  medio para la eclosi&#243;n y a la vez sirvi&#243; como fuente de nutrientes para  el crecimiento larval. Como control de viabilidad se reprodujo el mismo procedimiento  sustituyendo el tratamiento con formalina por soluci&#243;n salina al 0,85 %.  </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"> Una muestra de los huevos procesados  en cada ensayo se coloc&#243; en caldo tripticasa soya y caldo tioglicolato para  la evaluaci&#243;n microbiol&#243;gica de la esterilidad. </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  Para evaluar el &#233;xito en el proceso de eclosi&#243;n se calcul&#243; un &#237;ndice  de eclosi&#243;n </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> (IE) el cual se  defini&#243; como sigue: </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> IE = % de  huevos eclosionados bajo tratamiento/% de huevos eclosionados en el control </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  <i>Capacidad de supervivencia de las larvas de </i>L. eximia<i> a temperaturas  de refrigeraci&#243;n</i> </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> Para evidenciar  la capacidad de supervivencia en las condiciones de refrigeraci&#243;n usuales  (4 &#176;C&#177;1), se utilizaron larvas de segundo estadio (L2) y de tercer estadio  tempranas (L3), las cuales fueron obtenidas mediante los procedimientos descritos  anteriormente y suprimidas de alimento en el momento de la evaluaci&#243;n. </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  Los huevos esterilizados se colocaron en agar sangre para la eclosi&#243;n de  las larvas, las cuales fueron mantenidas en dicho medio hasta alcanzar los estadios  por evaluar. Dichas larvas fueron colocadas en placas de Petri de 5 cm de di&#225;metro  con un trozo de papel filtro humedecido con soluci&#243;n salina est&#233;ril,  a raz&#243;n de 5 larvas por placa. </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana">  La capacidad de supervivencia fue comprobada al observarse caracter&#237;sticas  de motilidad evidentes en las larvas, una hora despu&#233;s de extra&#237;das  de las condiciones de refrigeraci&#243;n y colocadas a temperatura ambiente. La  observaci&#243;n de las larvas se realiz&#243; en intervalos de 1 h hasta las  4 h y posteriormente se extrajeron grupos de larvas a las 24 h y a las 48 h de  permanecer en refrigeraci&#243;n. Se realizaron al menos siete r&#233;plicas en  el caso de las larvas mantenidas a 4 &#176;C y 3 r&#233;plicas en el caso de las  larvas mantenidas a temperatura ambiente, las cuales se utilizaron como control.  </font></p>    <p>    <br> <font size="2" face="Verdana"><b>An&#225;lisis estad&#237;stico  de los datos</b> </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"> Se calcul&#243;  el promedio de huevos por oviposici&#243;n a partir del total obtenido en quince  oviposiciones, as&#237; como el intervalo de confianza al 95 %. Se implement&#243;  el c&#225;lculo del coeficiente de correlaci&#243;n de Spearman para evaluar si  existe correlaci&#243;n entre las tres diferentes concentraciones de formalina  empleadas y los &#237;ndices del porcentaje de eclosi&#243;n obtenidos, utilizando  <font color="#000000">un &#945; = </font></font><font size="2" face="Verdana" color="#000000">0,05</font><font size="2" face="Verdana">.  </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> Para evaluar si existen diferencias  estad&#237;sticamente significativas con respecto a la supervivencia de las larvas  a temperaturas de refrigeraci&#243;n se utilizaron las pruebas de Kruskal-Wallis  y T de Tukey, considerando un p &#8804; 0,05 como significativo. Todas las pruebas  estad&#237;sticas se efectuaron utilizando los programas SPSS 17.0 (IBM) y XLStat  versi&#243;n 2012.6.01 (Addinsoft). </font><font size="2" face="Verdana">Los gr&#225;ficos  se realizaron utilizando el programa GraphPad Prism (GraphPad Software)<b>.</b>  </font></p>    <p>&nbsp; </p>    <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">RESULTADOS</font></b>  </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> Las oviposiciones de <i>L. eximia  </i>observadas mostraron gran variabilidad en cuanto al n&#250;mero de huevos  que las conformaron. Los resultados obtenidos permitieron el c&#225;lculo de un  promedio de 334 huevos cuyo intervalo de confianza al 95 % fue de 220 a 448 huevos.  </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> El efecto de los tratamientos con  formalina, independiente de las concentraciones, permiti&#243; una eficiente esterilizaci&#243;n  de los huevos, seg&#250;n las pruebas en caldo tioglicolato y caldo tripticasa  soya. No obstante, hubo porcentajes de eclosi&#243;n muy variables entre los sistemas  (<A HREF="/img/revistas/ibi/v33n1/t0105114.gif">tabla</A>). Cuando se utiliz&#243; la concentraci&#243;n  de 2,5 % se pudo observar porcentajes de eclosi&#243;n que fluctuaron entre el  0 y el 93,3 %. Los &#237;ndices de eclosi&#243;n (IE) para este sistema tuvieron  valores entre 0,00 y 0,93. Cuando se aplic&#243; una concentraci&#243;n del 5,0  % los porcentajes de eclosi&#243;n tuvieron valores entre el 0 y el 20 %, con  IE entre 0,00 y 1,19. El tratamiento con formalina al 10,0 % permiti&#243; obtener  porcentajes de eclosi&#243;n que estuvieron entre el 0 y el 26 %, con IE entre  0,00 y 0,93 (<a HREF="/img/revistas/ibi/v33n1/t0105114.gif">tabla</a>). El an&#225;lisis de correlaci&#243;n  de Spearman no permiti&#243; observar correlaciones significativas entre las concentraciones  de formalina utilizadas y los &#237;ndices del porcentaje de eclosi&#243;n (R  Spearman = -0,030, p = 0,848). </font></p>    <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Con  respecto a la supervivencia en condiciones de refrigeraci&#243;n, tanto para las  L2 como para las L3 se pudo determinar un 100 % de viabilidad en las larvas refrigeradas  as&#237; como en los controles a temperatura ambiente durante las primeras 4 horas.  Con respecto a las L2, a las 24 h se pudo determinar que solo un 42,0 % de las  larvas en refrigeraci&#243;n sobrevivieron, en comparaci&#243;n con un 93,3 %  del control a temperatura ambiente. Estas diferencias porcentuales fueron estad&#237;sticamente  significativas (p = 0,044). A las 48 h, tanto las larvas refrigeradas como sus  controles a temperatura ambiente mostraron un decrecimiento en la supervivencia,  alcanz&#225;ndose un 2 % para las larvas mantenidas a 4 &#176;C y un 13,3 % para  las mantenidas a temperatura ambiente (Fig. 1a). Estas diferencias no fueron estad&#237;sticamente  significativas (p = 0,705). Con respecto a las L3, la supervivencia a 4 &#176;C  a las 24 horas fue del 83,1 % mientras que un 100 % de las larvas utilizadas como  control a temperatura ambiente sobrevivi&#243;. Sin embargo, estas diferencias  no fueron estad&#237;sticamente significativas (p = 0,395). A las 48 h, 46,6 %  de las larvas en refrigeraci&#243;n sobrevivi&#243;, en comparaci&#243;n con el  100 % a temperatura ambiente (<a href="#fig1">Fig. 1b</a>). A pesar de la tendencia  en t&#233;rminos de diferencia porcentual, &#233;sta tampoco fue estad&#237;sticamente  significativa (p =0,082). Para las L2 se pudo advertir una disminuci&#243;n significativa  en la supervivencia entre las 24 y las 48 horas a temperaturas de refrigeraci&#243;n  (p = </font><font size="2" face="Verdana">0,002), disminuci&#243;n que no fue  evidenciada con las L3 (p = 0,058). </font></p>    <p align="center"><img SRC="/img/revistas/ibi/v33n1/f0105114.jpg" width="554" height="312">  <a name="fig1"></a></p>    <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">DISCUSI&#211;N</font></b>  </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> El establecimiento de las colonias  de <i>L. eximia </i>fue realizado con &#233;xito lo que supone que esta es una  especie que puede ser manejada eficientemente con un insectario de tama&#241;o  regular y con una inversi&#243;n econ&#243;mica relativamente baja. El comportamiento  de oviposici&#243;n, si bien es cierto result&#243; variable, permiti&#243; obtener  un n&#250;mero razonable de huevos por oviposici&#243;n (220 a 448 huevos/oviposici&#243;n).  Para algunas moscas calif&#243;ridas la tasa de oviposici&#243;n promedio es de  aproximadamente 280 huevos,<sup>15</sup> por lo que se puede suponer un comportamiento  de <i>L. eximia </i>en condiciones de laboratorio similar al que se ha reportado  para otras especies. </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"> La utilizaci&#243;n  de formalina permiti&#243; una esterilizaci&#243;n adecuada de los huevos, la  cual fue efectiva contra microorganismos aerobios y anaerobios. A partir de este  procedimiento se gener&#243; la progenie larval est&#233;ril. La formalina ha  sido empleada como agente esterilizante en otros sistemas que han abordado especies  como <i>L. sericata </i>para su empleo en terapia larval,<sup>5</sup> lo que parece  indicar que la manipulaci&#243;n y comportamiento de estas dos especies en condiciones  de laboratorio es similar. El an&#225;lisis de correlaci&#243;n no permiti&#243;  identificar ning&#250;n efecto asociado con la concentraci&#243;n de formalina  que incidiera sobre la eclosi&#243;n. En primera instancia, este hallazgo corrobora  el hecho de que el corion de los huevos de insecto representa una barrera altamente  eficiente contra agentes qu&#237;micos que garantiza la viabilidad del embri&#243;n.<sup>16</sup>  Por esta raz&#243;n, la utilizaci&#243;n de concentraciones en el &#225;mbito  empleado no compromete el rendimiento en t&#233;rmino de formas larvales por obtener.  Este hallazgo representa una ventaja en el sentido de que la formalina es un reactivo  que se encuentra muy frecuentemente en la mayor&#237;a de laboratorios hospitalarios.  </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> En este estudio, llama la atenci&#243;n  la variabilidad observada en la eclosi&#243;n, evidenci&#225;ndose porcentajes  e &#237;ndices de eclosi&#243;n muy diferentes en cada experimento. En este sentido,  la manipulaci&#243;n mec&#225;nica de los huevos podr&#237;a haber incidido en  la disrupci&#243;n de la integridad de los huevos provocando la muerte del embri&#243;n.  </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> El an&#225;lisis de la supervivencia  de las larvas a temperatura de refrigeraci&#243;n demostr&#243; que las L2 est&#233;riles  son menos resistentes a 4 &#176;C que las L3, de las cuales se pudo observar una  importante proporci&#243;n viable a&#250;n a las 48 horas. Estos resultados indican  que en un programa sostenido de terapia larval, el proceso de esterilizaci&#243;n  de huevos para obtener larvas est&#233;riles podr&#237;a efectuarse cada dos a  tres d&#237;as, representando una peque&#241;a inversi&#243;n de tiempo laboral  de personal especializado destinada al proceso. Algunos autores como <i>Chan</i>  y otros<sup>17</sup> han sugerido el mantenimiento de las larvas a temperaturas  superiores a los 8 &#176;C. En este sentido, dichos autores reportaron el mantenimiento  id&#243;neo de las larvas reci&#233;n eclosionadas de <i>Lucilia sericata </i>a  temperaturas de 8 a 10 &#176;C, lo que podr&#237;a aumentar la vida &#250;til  de dichas larvas. </font></p>    <p>&nbsp; </p>    <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">Agradecimientos</font></b>  </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana"> Los autores desean externar su agradecimiento  a Iv&#225;n Coronado del Departamento de Parasitolog&#237;a de la Facultad de  Microbiolog&#237;a de la Universidad de Costa Rica (UCR) por su apoyo a la labor  operativa y a la Vicerrector&#237;a de Investigaci&#243;n (UCR) por su soporte  financiero a los proyectos 803 A8 2008 y 803 B1 067. </font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p> <font size="2" face="Verdana"><b><font size="3">REFERENCIAS  BIBLIOGR&#193;FICAS</font></b> </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 1.  Sherman RA, Hall MJR, Thomas S. Medical Maggots: An ancient remedy for some contemporary  afflictions. Annu Rev Entomol. 2000;45:55-81.     </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  2. Figueroa L, Uherek F, Yusef P, L&#243;pez L, Flores J. Experiencia de terapia  larval en pacientes con &#250;lceras cr&#243;nicas. Parasitol Latinoam. 2006;61:160-4.      </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 3. Bexfield A, Bond AE, Roberts EC,  Dudley E, Nigam Y, Thomas S, et al. The antibacterial activity against MRSA strains  and other bacteria of a &lt; 500Da fraction from maggot excretions/secretions  of <i>Lucilia sericata </i>(Diptera: Calliphoridae). Microbes Infect. 2008;10:325-33.      </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 4. Mumcuoglu KY, Ingber A, Gilead  L, Stessman J, Friedman R, Schulman H, et al. Therapy for the treatment of intractable  wounds. Int J Dermatol. 1999;38:623-7.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  5. Figueroa L, Flores J, Rodr&#237;guez S. M&#233;todo de cultivo de larvas de  moscas <i>Lucilia sericata </i>para terapia larval. Parasitol Latinoam. 2007;62:79-82.      </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 6. Jir&#243;n LF. Sobre moscas calif&#243;ridas  de Costa Rica (Diptera: Cyclorrhapha). Brenesia. 1979;16:221-3.     </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  7. Wolff-Echeverri MI, Rivera-&#193;lvarez C, Herrera-Higuita SE, Wolff-Id&#225;rraga  JC, Escobar-Franco MM. <i>Lucilia eximia </i>(Diptera: Calliphoridae) una alternativa  para la terapia larval y reporte de casos en Colombia. Iatreia. 2010;2:107-16.      </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 8. Namias N, Varela JE, Varas RP,  Quintana O, Ward CG. Biodebridement: a case report of maggot therapy for limb  salvage after fourth-degree burns. J Burn Care Rehabil. 2000;21:254-7.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  9. Sherman RA, Wyle FA. Low-cost, low-maintenance rearing of maggots in hospitals,  clinics and schools. Am J Trop Med Hyg. 1996;54:38-41.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  10. Di Stefano JF, Nielsen V, Hoomans J, Fournier LA. Regeneraci&#243;n de la  vegetaci&#243;n arb&#243;rea en una peque&#241;a reserva forestal urbana del nivel  premontano h&#250;medo, Costa Rica. Rev Biol Trop. 1996;44:275-80.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  11. Meegan M, Morley D, Chavasse D. Fly traps. Lancet. 1997;349:886.     </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  12. Aubertin D.<b> </b>Revision of the Genus <i>Lucilia </i>(Diptera, Calliphoridae)  Linn. Soc J. 1933;XXXVIII;28-536.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  13. Barros de Cavalho CJ, Antunes de Mello-Patiu C. Key to the adults of the most  common forensic species of Diptera in South America. Rev Bras Entomol. 2007;3:390-406.      </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 14. Amat E, V&#233;lez MC, Wolf M.  Clave ilustrada para la identificaci&#243;n de los g&#233;neros y las especies  de calif&#243;ridos (Diptera: Calliphoridae) de Colombia. Caldasia. 2008;30:231-44.      </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 15. Thomas DB. Fecundity and oviposition  in laboratory colonies of the screwworm fly (Diptera: Calliphoridae). J Econ Entomol.  1993; 86:1464-72.     </font></p>    <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 16. Gordon RM,  Lavoipierre MM. Entomology for students of medicine. Oxford: Blackwell Scientic  Publications; 1962. Chapter 9, 52-70.     </font></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">  17. Chan DCW, Fong DHF, Leung JYY, Patin NG, Leung GKK. Maggot debridement therapy  in chronic wound care. Hong Kong Med J. 2007;13:382-6.     </font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <p><font size="2" face="Verdana">  Recibido: 9 de octubre de 2013.    <br> </font><font size="2" face="Verdana">Aprobado:  25 de octubre de 2013.</font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <p><font size="2" face="Verdana">  MSc. <i>Lissette Retana Moreira</i>. Universidad de Costa Rica, Sede Rodrigo Facio.  San Pedro de Montes de Oca. Correo electr&#243;nico: <a href="mailto:lissette.retanamoreira@ucr.ac.cr">lissette.retanamoreira@ucr.ac.cr</a>  (506)2511-8631</font></p>     </body> </html>     ]]></body>
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