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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Potencialidad antimicrobiana y caracterización de propóleos de Melipona beecheii provenientes de dos fincas agroenergéticas]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The study was conducted in two agroenergetic farms of Matanzas province (La Primavera and Indio Hatuey), in order to determine the in vitro antimicrobial activity of the methanolic and ethanolic extracts of propolis collected in these farms, and characterize them through infrared spectroscopy. The minimum inhibitory concentration (MIC) of such extracts was determined before studying the antimicrobial activity (by the method of agar perforations). Both biological essays were evaluated against Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Pseudomona aeruginosa and Candida albicans. As the variance homogeneity and normality assumptions were not fulfilled, the non-parametric Kruskal Wallis test was used, to determine the existence of differences among the treatments depending on the inhibition halo. The propolis extracts from the two farms showed low MIC values for the evaluated microorganisms (between 0,07 and 0,15 mg/mL), with the exception of P. aeruginosa which was the most susceptible one (0,04 mg/mL). From the three tested dilutions: 100, 75 and 25 %, the first (belonging to the methanolic propolis extract from La Primavera farm) reached the highest inhibitory effect. The highest difference in the infrared spectra was found in the region interval from 2 000 a 500 cm-1 of the propolis belonging to the Indio Hatuey farm. It is concluded that the propolis extractions with methanol and ethanol allow to obtain natural products with high antimicrobial activity against the four evaluated microorganisms.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ART&Iacute;CULO DE INVESTIGACI&Oacute;N</strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Potencialidad antimicrobiana y caracterizaci&oacute;n de prop&oacute;leos </font>   <font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">de <I>Melipona beecheii</I> provenientes de dos fincas agroenerg&eacute;ticas </font></strong> </p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <P><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Antimicrobial potential and characterization of <em>Melipona beecheii</em> propolis from two agroenergetic farms</strong></font>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <P>  <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Leydi Fonte-Carballo<SUP>1</SUP>, Yanio E. Mili&aacute;n-Rodr&iacute;guez<SUP>1</SUP> y Maykelis D&iacute;az-Solares<SUP>1</SUP> </strong></font>     <P> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><SUP>1</SUP><I>Estaci&oacute;n Experimental de Pastos y Forrajes Indio Hatuey, Universidad de Matanzas, Ministerio de Educaci&oacute;n Superior    <br> </I></font><font size="2"><i><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Central Espa&ntilde;a Republicana, CP 44280, Matanzas, Cuba    <br> </font></i></font><font size="2"><i><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:leydis.fonte@ihatuey.cu">leydis.fonte@ihatuey.cu</a></font></i></font>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <P><strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">RESUMEN</font> </strong>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"></B>La investigaci&oacute;n se realiz&oacute; en dos fincas agroenerg&eacute;ticas de la provincia de Matanzas (La Primavera  e Indio Hatuey), con el objetivo de determinar la actividad antimicrobiana <I>in vitro</I> de los extractos metan&oacute;lico y etan&oacute;lico de prop&oacute;leos recolectados en estas fincas, y caracterizarlos mediante espectroscop&iacute;a  infrarroja. Se determin&oacute; la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria (CMI) de dichos extractos antes de estudiar la  actividad antimicrobiana (por el m&eacute;todo de perforaciones en agar). Ambos ensayos biol&oacute;gicos se evaluaron  frente a <I>Staphylococcus aureus</I>, <I>Escherichia coli, Pseudomona aeruginosa  </I>y <I>Candida albicans. </I>Al no cumplirse los supuestos de homogeneidad de varianza y normalidad  se utiliz&oacute; la prueba no param&eacute;trica de  Kruskal Wallis, para determinar la existencia de diferencias entre los tratamientos en funci&oacute;n del halo de  inhibici&oacute;n. Los extractos de prop&oacute;leos procedentes de las dos fincas mostraron bajos valores de CMI para  los microorganismos evaluados (entre 0,07 y 0,15 mg/mL), con excepci&oacute;n  de<I> P. aeruginosa </I>que fue el m&aacute;s susceptible  (0,04 mg/mL). De las tres diluciones probadas: 100, 75 y 25 %, la primera (perteneciente  al extracto metan&oacute;lico de prop&oacute;leo de la finca la Primavera) alcanz&oacute; el mayor efecto inhibitorio. La  mayor diferencia en los espectros infrarrojos se encontr&oacute; en el intervalo de la regi&oacute;n de 2 000 a 500  cm<SUP>-1</SUP> del prop&oacute;leo perteneciente a la finca Indio Hatuey. Se concluye que las extracciones de prop&oacute;leo con  metanol y etanol permiten obtener productos naturales con elevada actividad antimicrobiana frente a los  cuatro microorganismos evaluados. </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras clave</strong>: Espectroscop&iacute;a infrarroja, microorganismos, miel.</font> <hr>     <P><font size="2"><strong><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">ABSTRACT</font></strong> </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">The study was conducted in two agroenergetic farms of Matanzas province (La Primavera and Indio  Hatuey), in order to determine the <I>in vitro</I> antimicrobial activity of the methanolic and ethanolic extracts of  propolis collected in these farms, and characterize them through infrared spectroscopy. The minimum  inhibitory concentration (MIC) of such extracts was determined before studying the antimicrobial activity (by the  method of agar perforations). Both biological essays were evaluated against  <I>Staphylococcus aureus</I>, <I>Escherichia  coli</I>, <I>Pseudomona aeruginosa</I> and <I>Candida  albicans</I>. As the variance homogeneity and normality  assumptions were not fulfilled, the non-parametric Kruskal Wallis test was used, to determine the existence of  differences among the treatments depending on the inhibition halo. The propolis extracts from the two farms showed  low MIC values for the evaluated microorganisms (between 0,07 and 0,15 mg/mL), with the exception of  <I>P. aeruginosa</I> which was the most susceptible one (0,04 mg/mL). From the three tested dilutions: 100, 75  and 25 %, the first (belonging to the methanolic propolis extract from La Primavera farm) reached the  highest inhibitory effect. The highest difference in the infrared spectra was found in the region interval from 2 000  a 500 cm<SUP>-1</SUP> of the propolis belonging to the Indio Hatuey farm. It is concluded that the propolis extractions  with methanol and ethanol allow to obtain natural products with high antimicrobial activity against the four  evaluated microorganisms. </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Keywords</strong>: Infrared spectroscopy, microorganisms, honey. </font> <hr> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"></font>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <P><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>INTRODUCCI&Oacute;N</B> </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La integraci&oacute;n de la crianza de las abejas de la tierra (meliponicultura) en la agroforester&iacute;a se considera  como una opci&oacute;n econ&oacute;mica. La meliponicultura en Centroam&eacute;rica y M&eacute;xico es una actividad muy com&uacute;n, pero se lleva  a cabo a peque&ntilde;a escala y en forma tradicional, sin una tecnolog&iacute;a avanzada; este procedimiento no constituye  una barrera, y es una pr&aacute;ctica conveniente a nivel de grupos con pocos recursos econ&oacute;micos. Adem&aacute;s, sus mieles  son preferidas a nivel local porque poseen propiedades medicinales, sustentadas por sus bajos recuentos  microbiol&oacute;gicos y alta capacidad antimicrobiana, en especial la de <I>Melipona beecheii</I> (Landaverde<I> et al.</I>, 2006). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El inter&eacute;s de introducir las abejas de la tierra en los sistemas agroforestales y fincas agroenerg&eacute;ticas radica  en los beneficios que inducen como polinizadoras. Ellas colectan el n&eacute;ctar y el polen de las flores como fuente  de  energ&iacute;a y prote&iacute;na. Cerca de la mitad de las 1 000 especies de plantas que son cultivadas en los tr&oacute;picos para  la alimentaci&oacute;n y la producci&oacute;n de especias y medicinas son polinizadas por las abejas. Entre estas se encuentran  la macadamia, el chayote, el coco, el achiote, la cebolla, la guayaba, el pejibaye, el tamarindo, el aguacate y los  c&iacute;tricos (Heard, 1999). </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En su acci&oacute;n polinizadora las abejas acopian otros productos de las plantas que son usados como materia  prima para elaborar el prop&oacute;leo, que es un material resinoso y arom&aacute;tico que ellas elaboran a partir de exudados  de diversas plantas. Su coloraci&oacute;n var&iacute;a en dependencia de su origen y edad  (Wilson<I> et al.</I>, 2015). Este subproducto de la colmena, adem&aacute;s de constituir un material de construcci&oacute;n, es un &#171;arma qu&iacute;mica&#187; que las abejas utilizan  contra los microorganismos pat&oacute;genos, ya que al cubrir las paredes de la colmena favorecen la desinfecci&oacute;n  (Bankova, 2005a). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Basado en el uso pr&aacute;ctico que las abejas le dan a este producto, se ha utilizado extensivamente por muchos  a&ntilde;os en la medicina tradicional. Se estima que 150 compuestos, muchos de ellos flavonoides, se han identificado  en prop&oacute;leos europeos (Yang<I> et al.</I>, 2014;  Figueiredo<I> et al.</I>, 2015). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Seg&uacute;n Bracho (2000), se emplean varios m&eacute;todos para la caracterizaci&oacute;n del prop&oacute;leo. Entre ellos se  encuentra la cromatograf&iacute;a de capa delgada  (Tang<I> et al.</I>, 2014) y la espectroscop&iacute;a infrarroja  (Adib<I> et al.</I>, 2014;  Gonz&aacute;lez-Mart&iacute;n<I> et al.</I>, 2015). Esta &uacute;ltima es una t&eacute;cnica muy empleada para discriminar entre los extractos de  prop&oacute;leos puros y los adulterados (Wu<I> et  al.</I>, 2008), y tambi&eacute;n se ha usado para medir la calidad y la estabilidad de  los productos basados en prop&oacute;leos que se incorporan en la preservaci&oacute;n de los alimentos  (Cattaneo<I> et al.</I>, 2014). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Entre los principales componentes de los prop&oacute;leos se han identificado diversos metabolitos secundarios,  como flavonoides, &eacute;steres del &aacute;cido cafeico, diterpenos, benzofenonas y constituyentes vol&aacute;tiles, como los  sesquiterpenos; adem&aacute;s de sustancias de naturaleza proteica, &aacute;cidos grasos no saturados y &eacute;steres de &aacute;cidos arom&aacute;ticos  (Barbari&aelig;<I> et al.</I>, 2011; Socha<I> et  al.</I>, 2014; Cottica<I> et al.</I>, 2015).  </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se ha informado que los prop&oacute;leos poseen propiedades farmacol&oacute;gicas, bactericidas, antivirales,  hepatoprotectoras, antinflamatorias, inmunomoduladoras, antioxidativas y analg&eacute;sicas (Bankova, 2005b;  Shi<I> et al.</I>, 2012; Chan<I> et al.</I>, 2013;  Shpychak<I> et al.</I>, 2015). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Sin embargo, hasta el momento se desconoce la actividad antimicrobiana que pueden presentar los  prop&oacute;leos obtenidos de las colmenas de <I>M. beecheii,  </I>como valor agregado de las producciones de las fincas  agroenerg&eacute;ticas; por lo que el objetivo de esta investigaci&oacute;n fue determinar, mediante estudios <I>in vitro,</I> la actividad antimicrobiana de los extractos metan&oacute;lico y etan&oacute;lico de prop&oacute;leos recolectados en dos fincas agroenerg&eacute;ticas de la  provincia de Matanzas y conocer sus especificidades qu&iacute;micas mediante espectroscop&iacute;a infrarroja. </font>     <p>&nbsp;</p>     <P><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </B>   </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para evaluar la actividad antimicrobiana de los extractos de prop&oacute;leo en cada una de las fincas, se utiliz&oacute;  un dise&ntilde;o de clasificaci&oacute;n simple. Se emplearon diferentes microorganismos pat&oacute;genos para evaluar la efectividad  de los extractos. </font>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Obtenci&oacute;n de los extractos de prop&oacute;leos metan&oacute;lico y etan&oacute;lico</B>   </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los prop&oacute;leos se colectaron en las colmenas ubicadas en dos fincas agroenerg&eacute;ticas de la provincia de  Matanzas (La Primavera- finca P e Indio Hatuey-finca IH), pertenecientes al proyecto BIOMAS-CUBA. </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los extractos etan&oacute;lico y metan&oacute;lico de los  prop&oacute;leos se obtuvieron resuspendiendo 20 g de cada prop&oacute;leo en 30  mL de etanol y metanol (96 % (v/v)). La suspensi&oacute;n se decant&oacute; despu&eacute;s de 48 h a  temperatura ambiente. Los extractos se conservaron a 4 <SUP>o</SUP>C hasta su utilizaci&oacute;n. </font>     <p>&nbsp;</p>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Ensayo de microdiluci&oacute;n </strong></font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Preparaci&oacute;n de los extractos y    controles</strong></B><I>. </I>Los extractos se prepararon utilizando etanol y metanol a    una concentraci&oacute;n de 4 mg/mL en medio de cultivo Mueller    Hinton<B>, </B>con diluciones seriadas para ambos    solventes desde 1 000 a 0,95 mg/mL. Para el bioensayo antibacterial se utilizaron como controles (50    mg/mL): ciprofloxacino, kanamicina, nistatina, clotrimazol, amoxicillina y cefalexina, adicionando 5    mL de cada uno. Adem&aacute;s, se utilizaron controles de crecimiento de los microorganismos, con los solventes siguientes:    control negativo 1 (CN1, referente al metanol), control negativo 2 (CN 2, referente al etanol) y un control de    esterilidad del medio de cultivo Mueller Hinton para    bacterias. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Preparaci&oacute;n de los    in&oacute;culos</B><I>. </I>Para la preparaci&oacute;n de los in&oacute;culos se obtuvieron cultivos j&oacute;venes de las    cepas de bacterias <I>Staphylococcus aureus</I>,    <I>Escherichia coli, Pseudomona aeruginosa </I>y la levadura    <I>Candida albicans</I> en el medio s&oacute;lido de Mueller Hinton. Las bacterias se incubaron en placas durante 24 h a 37 <SUP>o</SUP>C y la levadura durante 48 h a 28    <SUP>o</SUP>C. Para las bacterias se prepar&oacute; una suspensi&oacute;n con las cepas al 0,5 en la escala de McFarland y    una diluci&oacute;n de 1:50 con medio Mueller Hinton para obtener una suspensi&oacute;n de trabajo. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>M&eacute;todo de perforaciones en agar</B>. Despu&eacute;s de la solidificaci&oacute;n del medio, se hicieron seis perforaciones    de 0,8 cm de di&aacute;metro, donde se colocaron 100 &#181;L del extracto a evaluar y de los controles negativo y positivo, con    10 r&eacute;plicas por tratamiento para cada microorganismo, y los extractos se probaron usando tres diluciones (100, 75 y    25 %). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Incubaci&oacute;n, crecimiento microbiano y efecto    inhibitorio</B><I>. </I>Las placas se incubaron a 37    <SUP>o</SUP>C durante 24 h en el caso de las bacterias y a 28    <SUP>o</SUP>C durante 48 h en el caso de la levadura, y despu&eacute;s se evaluaron los resultados mediante    la lectura (en mil&iacute;metros) del di&aacute;metro del halo de inhibici&oacute;n del crecimiento de los microorganismos. El c&aacute;lculo    del porcentaje del efecto inhibitorio relativo respecto al control positivo se realiz&oacute; de la manera <a href="#FOR1">siguiente</a>: </font>     <P align="left"><img src="/img/revistas/pyf/v39n2/for0110216.gif" width="216" height="76"><a name="FOR1"></a>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Donde:   </font>     <blockquote>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><I>EI</I> (%): efecto inhibitorio del extracto con respecto al control positivo.     </font>   </p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">MDHIE: media del di&aacute;metro del halo de inhibici&oacute;n del extracto. </font>   </p>       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">MDHICP: media del di&aacute;metro del halo de inhibici&oacute;n del control positivo. </font>   </p> </blockquote>     <p>&nbsp;</p>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Caracterizaci&oacute;n por    espectroscop</B><I>&iacute;</I><B>a infrarroja</B>   </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las muestras se trituraron y se obtuvieron los espectros infrarrojos en el intervalo de 4 000 a 500  cm<SUP>-1</SUP>, con el empleo de pastillas de bromuro de potasio, en un espectr&oacute;metro infrarrojo con transformaci&oacute;n de Fourier  Bruker-TENSOR 27. </font>     <p>&nbsp;</p>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Procesamiento estad&iacute;stico</B>   </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La variable di&aacute;metro del halo de inhibici&oacute;n no cumpli&oacute; los supuestos de homogeneidad de varianza y  normalidad, por lo que para determinar la existencia de diferencia entre los tratamientos se realiz&oacute; la prueba no param&eacute;trica  de Kruskal Wallis y se  utiliz&oacute;  InfoStat (Di  Rienzo<I> et al.</I>, 2014).  </font>     <p>&nbsp;</p>     <P><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N </B>   </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria (CMI) es definida como la  concentraci&oacute;n m&aacute;s baja de extracto que  es capaz de inhibir el crecimiento celular. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los extractos de prop&oacute;leos metan&oacute;lico y etan&oacute;lico de <I>M. beecheii</I> mostraron bajos valores de CMI para  los diferentes microorganismos (<a href="/img/revistas/pyf/v39n2/t0110216.gif">tabla 1</a>). En el caso de      <I>P. aeruginosa, </I>la bacteria m&aacute;s susceptible dentro del grupo  de las Gram negativas, estos valores llegaron hasta 0,04 mg/mL en el extracto etan&oacute;lico de la finca Indio Hatuey. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los resultados de la actividad antimicrobiana de los extractos vegetales dependen de las caracter&iacute;sticas  espec&iacute;ficas de los principios activos presentes en ellos y de su solubilidad en los solventes empleados para la extracci&oacute;n.  Esto explica el hallazgo de extractos activos solamente frente a hongos o solo frente a bacterias, ya sean Gram  positivas o Gram negativas; o frente a ambos grupos de bacterias, cuando el extracto fue capaz de extraer una mezcla  de componentes activos presentes en la planta (Rojas y Rodr&iacute;guez, 2008). </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De forma general, el extracto metan&oacute;lico de prop&oacute;leo de la finca Primavera en la diluci&oacute;n del 100 % fue el  mejor tratamiento frente a los cuatros microorganismos evaluados (<a href="/img/revistas/pyf/v39n2/t0210216.gif">tablas 2</a> y <a href="/img/revistas/pyf/v39n2/t0310216.gif">3</a>), al presentar los mayores valores en  los halos de inhibici&oacute;n. Adem&aacute;s, <I>S.  aureus</I> fue la bacteria Gram positiva m&aacute;s susceptible a este extracto, al mostrar  los mayores halos de inhibici&oacute;n. Estos resultados coinciden con lo planteado por  Krolicka<I> et al.</I> (2008) y Chouna<I> et  al.</I> (2009), acerca de que las bacterias Gram positivas son m&aacute;s susceptibles que las Gram negativas, ya que la  pared celular de las primeras es menos compleja y carece de una filtraci&oacute;n efectiva para grandes mol&eacute;culas, debido  al tama&ntilde;o de los poros en su envoltura celular, por lo que son menos selectivas. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se obtuvieron los espectros infrarrojos de cada prop&oacute;leo, se compararon entre s&iacute; y se demostraron las  diferencias que exist&iacute;an en su  composici&oacute;n qu&iacute;mica (<a href="/img/revistas/pyf/v39n2/f0110216.gif">fig. 1</a>). No se obtuvieron espectros con bandas muy intensas o bien  definidas,  como se esperaba en compuestos purificados o con alguna clase de tratamiento previo, debido a que la muestra  es una matriz compleja formada por un gran n&uacute;mero de compuestos de diferente composici&oacute;n qu&iacute;mica; sin embargo,  se notaron marcadas diferencias entre las muestras de cada finca, lo que demostr&oacute; que exist&iacute;a variaci&oacute;n en su  composici&oacute;n qu&iacute;mica. Adem&aacute;s, aparecieron algunas bandas que brindan informaci&oacute;n de las especies qu&iacute;micas que  conforman estos prop&oacute;leos. </font>     <P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las mayores diferencias en los espectros se encontraron en el intervalo de la regi&oacute;n de 2 500 a 500  cm<SUP>-1</SUP>, principalmente las bandas que aparecen a 2 510,26; 1 034,77; 874,68 y 668,31  cm<SUP>-1</SUP>, en el prop&oacute;leo proveniente  de la finca Indio Hatuey </font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">(<a href="#t4">tabla 4</a>), correspondientes a vibraciones de valencia entre los enlaces simples y dobles, muy fuertemente  acopladas, como son &iacute;<SUB>C-O </SUB>o  &iacute;<SUB>C-F</SUB>; adem&aacute;s de vibraciones de  doblajes fuera del plano y vibraciones de valencia de baja energ&iacute;a,  como son &#179; <SUB>CH</SUB> de olefinas y arom&aacute;ticos,  &#179; <SUB>OH </SUB> presentes en alcoholes y &aacute;cidos asociados o  &#179; <SUB>NH</SUB> presentes en aminas y amidas  asociadas, lo cual indica que este prop&oacute;leo presenta mayor contenido de este tipo de compuesto que el de la finca  La Primavera. </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/pyf/v39n2/t0410216.gif"><a name="t4"></a>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En 1 450 cm<SUP>-1</SUP> se observ&oacute; una banda de intensidad media asignada a la vibraci&oacute;n de valencia del enlace C &asymp; C (&nu;C &asymp; C) de anillos arom&aacute;ticos, adem&aacute;s de una banda en 1 034  cm<SUP>-1</SUP> asignada a &#189;<SUB>C-O</SUB>; todos estos grupos est&aacute;n  presentes en algunos de los compuestos responsables de la actividad biol&oacute;gica de los prop&oacute;leos, como  son los flavonoides y antraquinonas (Mo&thorn;<I> et  al.</I>, 2011; Figueiredo<I> et al.</I>, 2015). Adem&aacute;s, se observ&oacute; otra banda a 1 709  cm<SUP>-1</SUP>, propia de la banda de estiramiento del enlace C = O (&nu;C = O) correspondiente a grupos de cetonas o aldeh&iacute;dos, posibles  sustituyentes de los terpenos, compuestos a los que se atribuyen tambi&eacute;n propiedades antimicrobianas (Silva  Frozza<I> et al.</I>, 2013); lo que explicar&iacute;a los resultados referentes al di&aacute;metro de los halos de inhibici&oacute;n que mostraron los extractos  metan&oacute;licos y etan&oacute;licos provenientes de las dos fincas (<a href="/img/revistas/pyf/v39n2/t0210216.gif">tablas 2</a> y <a href="/img/revistas/pyf/v39n2/t0310216.gif">3</a>), y sobre todo el resultado del primer extracto  perteneciente a la finca La Primavera. </font>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">CONCLUSIONES</font></strong> </p>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las extracciones de los prop&oacute;leos con metanol y etanol permitieron obtener productos naturales con  elevada actividad antimicrobiana frente a los cuatro microorganismos evaluados. </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El extracto con metanol del prop&oacute;leo de la finca La Primavera present&oacute; un mayor efecto inhibitorio,  y <I>Staphylococcus aureus </I>fue la bacteria m&aacute;s susceptible a este tratamiento. </font>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los espectros infrarrojos de los prop&oacute;leos permitieron identificar grupos funcionales presentes en algunos de  los compuestos qu&iacute;micos, como flavonoides, antraquinonas y terpenos, responsables de la actividad antimicrobiana  de este subproducto de la colmena de <I>M.  beecheii</I>. </font>     <p>&nbsp;</p>     <P><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">REFERENCIAS BIBLIOGR&Aacute;FICAS </font></strong>     <!-- ref --><P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. Adib, A. M.; Jamaludin, F.; Kiong, L. S.; Hashim, N. &amp; Abdullah, Z. Two-dimensional correlation infrared  spectroscopy applied to analyzing and identifying the extracts of <I>Baeckea frutescens </I>medicinal materials. <I>J. Pharmaceut.  Biomed</I>. 96:104-110, 2014.     </font>     ]]></body>
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<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <P><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido el 5 de marzo de 2015 </font>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br> Aceptado el 14 de marzo de 2016</font> <I></I>      ]]></body><back>
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