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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[BIOLOGÍA DE RAOIELLA INDICA HIRST (Acari: Tenuipalpidae) SOBRE ARECA CATECHU L.]]></article-title>
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<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S1010-27522010000100004&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S1010-27522010000100004&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S1010-27522010000100004&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Se estudió la duración del desarrollo y la reproducción de Raoiella indica sobre Areca catechu en condiciones de laboratorio a 25,42±1,21°C de temperatura y 57,54±6,54% de humedad relativa. Se utilizaron secciones de hojas de A. catechu y placas Petri de 10,5 cm de diámetro con algodón humedecido como unidad experimental. Se extrajeron hembras de R. indica de la cría establecida en el laboratorio y se colocaron en una unidad experimental. Se dejaron ovipositar por espacio de cinco horas y seguidamente se retiraron. A partir de ese momento se observaron diariamente y se registraron los cambios de fase y la duración de las mismas. Cuando comenzaron a emerger las larvas, estas se individualizaron hasta la aparición de los adultos, los cuales se observaron hasta su muerte. Se encontró una duración media del desarrollo de 31 días. La mayor duración la presentó la fase de huevo, mientras que la de protoninfa fue la menor. El período de preoviposición tuvo una duración media de 4 días, mientras que el período de oviposición puede durar hasta 17 días, con un valor medio de 11 días, y una longevidad de las hembras de hasta 30 días. El cociente sexual es de 0,56 favorable a las hembras. Se encontró una mortalidad de las fases inmaduras de un 14,6 % para las larvas; 7,3% para las protoninfas y 17,1% para las deutoninfas, lo que representa un 39% de mortalidad del total.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The development and reproduction of Raoiella indica on Areca catechu were studied under laboratory conditions at 25,42±1,21°C and 57,54±6,54% HR. The experimental units were leaf discs of A. catechu in Petri dishes (10,5 cm diameter) with water-saturated cotton. Gravid females were transferred to experimental unit and allowed to lay eggs for five hours. The duration of each life cycle stages were registered. The larvae that emerged were transferred to individual arenas and observed until adult appearance. The average duration of the life cycle was 31 days. The egg stage was the longest, while that of protonymphs was the shortest. The preoviposition period averaged 4 days, while the oviposition period can last 17 days, with an average of 11 days and a female longevity of 30 days. Sex ratio was 56% females. The mortality of immature stages was: 14,6% for larvae; 7,3% for protonymphs, and 17,1% for deutonymphs, with 39% total mortality.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <div align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ACTUALIZACION    </b></font> </div> <H1>&nbsp; </H1> <H1>&nbsp;</H1> <H1><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="4">BIOLOG&Iacute;A    DE RAOIELLA INDICA HIRST (Acari: Tenuipalpidae) SOBRE ARECA CATECHU L.</font></B>    </font></H1> <H1>&nbsp;</H1>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">BIOLOGY    OF RAOIELLA INDICA HIRST (Acari: Tenuipalpidae) ON ARECA CATECHU L.</font></b></font> <H1>&nbsp;</H1>     <P>&nbsp;      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>G. Flores-Galano*,    A. Montoya*, H. Rodr&iacute;guez** </B></font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><I>*</I></b></font>    <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I>Facultad Agroforestal    de Monta&ntilde;a (FAM). Centro Universitario de Guant&aacute;namo (CUG). El    Salvador, Guant&aacute;namo, Cuba. correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:geiser@fam.cug.co.cu">geiser@fam.cug.co.cu</a>;    **Grupo Plagas Agr&iacute;colas, Direcci&oacute;n de Protecci&oacute;n de Plantas.    Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria (CENSA), Apartado 10, San Jos&eacute;    de las Lajas, La Habana, Cuba. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:morell_66@censa.edu.cu">morell_66@censa.edu.cu</a>    </I></font>      <P>&nbsp;     <P>&nbsp; <hr size="1">     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>RESUMEN</B></font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> Se estudi&oacute;    la duraci&oacute;n del desarrollo y la reproducci&oacute;n de <I>Raoiella indica    </I>sobre <I>Areca catechu </I>en condiciones de laboratorio a 25,42&#177;1,21&#176;C    de temperatura y 57,54&#177;6,54% de humedad relativa. Se utilizaron secciones    de hojas de <I>A. catechu</I> y placas Petri de 10,5 cm de di&aacute;metro con    algod&oacute;n humedecido como unidad experimental. Se extrajeron hembras de    <I>R. indica</I> de la cr&iacute;a establecida en el laboratorio y se colocaron    en una unidad experimental. Se dejaron ovipositar por espacio de cinco horas    y seguidamente se retiraron. A partir de ese momento se observaron diariamente    y se registraron los cambios de fase y la duraci&oacute;n de las mismas. Cuando    comenzaron a emerger las larvas, estas se individualizaron hasta la aparici&oacute;n    de los adultos, los cuales se observaron hasta su muerte. Se encontr&oacute;    una duraci&oacute;n media del desarrollo de 31 d&iacute;as. La mayor duraci&oacute;n    la present&oacute; la fase de huevo, mientras que la de protoninfa fue la menor.    El per&iacute;odo de preoviposici&oacute;n tuvo una duraci&oacute;n media de    4 d&iacute;as, mientras que el per&iacute;odo de oviposici&oacute;n puede durar    hasta 17 d&iacute;as, con un valor medio de 11 d&iacute;as, y una longevidad    de las hembras de hasta 30 d&iacute;as. El cociente sexual es de 0,56 favorable    a las hembras. Se encontr&oacute; una mortalidad de las fases inmaduras de un    14,6 % para las larvas; 7,3% para las protoninfas y 17,1% para las deutoninfas,    lo que representa un 39% de mortalidad del total. </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Palabras clave:</b>    Raoiella indica; Areca catechu; &aacute;caro rojo de las palmera; duraci&oacute;n    del desarrollo</font> <hr noshade size="1">     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ABSTRACT</b></font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> The development    and reproduction of <I>Raoiella indica </I>on <I>Areca catechu </I>were studied    under laboratory conditions at 25,42&#177;1,21&#176;C and 57,54&#177;6,54% HR.    The experimental units were leaf discs of <I>A. catechu</I> in Petri dishes    (10,5 cm diameter) with water-saturated cotton. Gravid females were transferred    to experimental unit and allowed to lay eggs for five hours. The duration of    each life cycle stages were registered. The larvae that emerged were transferred    to individual arenas and observed until adult appearance. The average duration    of the life cycle was 31 days. The egg stage was the longest, while that of    protonymphs was the shortest. The preoviposition period averaged 4 days, while    the oviposition period can last 17 days, with an average of 11 days and a female    longevity of 30 days. Sex ratio was 56% females. The mortality of immature stages    was: 14,6% for larvae; 7,3% for protonymphs, and 17,1% for deutonymphs, with    39% total mortality.</font>  <B></B>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Key words:</b>    Raoiella indica; Areca catechu; red palm mite; development duration</font> <hr noshade size="1">     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">    <BR>   </font>     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></B>    </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El &aacute;caro    rojo de las palmeras, <I>Raoiella indica</I> Hirst (Acari: Tenuipalpidae) se    detect&oacute; por primera vez en el Caribe en el a&ntilde;o 2004 (1). A partir    de ese momento ha tenido una r&aacute;pida distribuci&oacute;n por la mayor&iacute;a    de las islas de la regi&oacute;n (2,3). En el a&ntilde;o 2008 invadi&oacute;    Venezuela (4) y la Florida (5); y en el 2009 se registr&oacute; en M&eacute;xico    (6). </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Ante esta amenaza,    en la &uacute;ltima actualizaci&oacute;n de la lista de Organismos Cuarentenadas    para Cuba en el 2007 fue incluida <I>R. indica</I> dentro del grupo A1 por el    comportamiento de plaga invasora en nuestra regi&oacute;n. En correspondencia    con esta decisi&oacute;n, el Centro Nacional de Sanidad Vegetal (CNSV) elabor&oacute;    una encuesta a inicios del 2007 con el objetivo de lograr la detecci&oacute;n    temprana del &aacute;caro rojo de las palmeras principalmente en plantas de    inter&eacute;s de las familias <I>Musaceae </I>y <I>Arecaceae</I>. Como resultado    de dicha encuesta, se detect&oacute; la presencia de <I>R. indica</I> en varios    municipios de las provincias Guant&aacute;namo y Santiago de Cuba (7). </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Esta especie invasora    causa severas afectaciones en cultivos de inter&eacute;s econ&oacute;mico como    el cocotero y el pl&aacute;tano, as&iacute; como en diversas plantas ornamentales    (3,5). Por ser un fit&oacute;fago de reciente introducci&oacute;n es importante    conocer su comportamiento biol&oacute;gico en las &aacute;reas invadidas. Considerando    esta necesidad y los pocos estudios realizado con esta especie en palmeras ornamentales    (8), el presente trabajo tiene como objetivo determinar los par&aacute;metros    biol&oacute;gico fundamentales de <I>R. indica</I> sobre <I>Areca catechu</I>    L.. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">MATERIALES    Y M&Eacute;TODOS</font></B> </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">A partir de poblaciones    salvajes procedentes de los muestreos realizados en las &aacute;reas verdes    de la Facultad Agroforestal de Monta&ntilde;a (FAM) se estableci&oacute; un    cultivo puro de <I>Raoiella indica</I> por el m&eacute;todo de sobrevivencia    de hojas de <I>A. catechu</I>, en placas Petri de 10,5 cm de di&aacute;metro.    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para iniciar el    experimento se extrajeron hembras de la cr&iacute;a establecida y se colocaron    en una unidad experimental similar a la descrita anteriormente. Se dejaron ovipositar    por espacio de cinco horas y seguidamente se retiraron las hembras. Los huevos    obtenidos se observaron cada 24 horas y cuando eclosionaron, las larvas se individualizaron    con la ayuda de un pincel 00. Se registraron los cambios de fase y la duraci&oacute;n    de las mismas hasta la emergencia de los adultos. Con estos datos se calcul&oacute;    la duraci&oacute;n media del desarrollo, la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar    y los valores m&aacute;ximos y m&iacute;nimos absolutos, por fase y de huevo    a adulto, en d&iacute;as, para ambos sexos y total. Se estim&oacute; la relaci&oacute;n    sexual a trav&eacute;s de la expresi&oacute;n: hembra/hembra+macho y se determin&oacute;    el n&uacute;mero de individuos muertos naturalmente para cada fase y total.    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las hembras obtenidas    del estudio del desarrollo se mantuvieron individualizadas en las unidades experimentales    y se les coloc&oacute; un macho de la cr&iacute;a durante 24 horas para garantizar    la primera c&oacute;pula. Una vez que se confirm&oacute; el apareamiento, se    observaron diariamente hasta la muerte de las hembras, registr&aacute;ndose    el n&uacute;mero de huevos puestos. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Con los datos obtenidos    se determin&oacute; la duraci&oacute;n promedio, la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar    y los valores m&aacute;ximos y m&iacute;nimos absolutos de los periodos de preoviposici&oacute;n,    oviposici&oacute;n, postoviposici&oacute;n y la longevidad de las hembras. Adem&aacute;s    se determin&oacute; la curva de sobrevivencia (% de hembras vivas/d&iacute;a),    la fecundidad media y la tasa de oviposici&oacute;n diaria (huevos/hembra/d&iacute;a).    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">A partir de una    cohorte de 55 huevos, se determin&oacute; el porcentaje de eclosi&oacute;n.    Para ello, los huevos se observaron diariamente, consider&aacute;ndose no viables    aquellos que no eclosionaron en un t&eacute;rmino de 15 d&iacute;as. </font>     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">RESULTADOS    Y DISCUSI&Oacute;N</font></B> </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El &aacute;caro    rojo de las palmeras tiene cuatro fases de desarrollo: el huevo, la larva con    tres pares de patas, y dos estados ninfales, la protoninfa y la deutoninfa,    cuatro pares de patas. A partir del huevo el cambio de fase est&aacute; determinado    por la presencia de la exuvia. Las caracter&iacute;sticas de cada una de estas    fases se relacionan a continuaci&oacute;n: </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Huevo:</B> Los    huevos de <I>R. indica</I> se pueden encontrar de forma aislada o en grupos    y presentan una coloraci&oacute;n anaranjada (Fig. 1), los mismos reci&eacute;n    puestos se adhieren a la superficie de la hoja. Pr&oacute;ximos a la eclosi&oacute;n,    los huevos adquieren una coloraci&oacute;n blanco opaca. Seg&uacute;n Hoy <I>et    al.</I> (9) presenta en el extremo un filamento que se enrolla y puede tener    una gota de agua adherida. Nageshachandra y Channabasavanna (10) describen dicha    estructura como un filamento fino, de forma espiralada y con un &aacute;pice    clavado, con una longitud de 170 a 210 &#181;m. </font>     <P><img src="/img/revistas/rpv/v25n1/f0104110.jpg" width="510" height="297">      
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> </font>      <P>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Larva:</B> El    cuerpo de la larva es ovalado y de color rojizo, con movimientos iniciales lentos.    Se alimentan generalmente por un per&iacute;odo de 3-12 d&iacute;as, antes de    comenzar el estado quiescente, que se puede prolongar entre 1-3 d&iacute;as.    Nageshachandra y Channabasavanna (10), se&ntilde;alan que el cuerpo puede medir    de 120 a 160 &#181;m de largo y de 100 a 120 &#181;m de ancho (Fig. 2). </font>     <P><img src="/img/revistas/rpv/v25n1/f0204110.jpg" width="469" height="317">      
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> </font>      <P>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Protoninfa:</B>    Inmediatamente despu&eacute;s de la muda, el cuerpo de la protoninfa emerge    con cuatro pares de patas. Es de color rojizo, se alimenta por un per&iacute;odo    de 2-5 d&iacute;as antes de comenzar el per&iacute;odo quiescente, el cual puede    demorar de 1-4 d&iacute;as. Son de tama&ntilde;o mayor que las larvas. Hoy <I>et    al</I>. (9) se&ntilde;alan que pueden alcanzar un tama&ntilde;o de 180 a 200    &#181;m de largo y 130 a 140 &#181;m de ancho. La deutoninfa es similar a la    fase precedente, pero presenta un tama&ntilde;o mayor. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Adultos:</B>    La etapa quiescente precedente a la fase de adulto es de corta duraci&oacute;n.    El viejo exoesqueleto se rompe en forma transversal por varios movimientos del    cuerpo y el &aacute;caro comienza a quedar libre de la exuvia por s&iacute;    mismo. El proceso de muda es similar para las diferentes fases de desarrollo.    </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las hembras de    <I>R. indica</I> tienen el cuerpo de forma oval, de color rojizo, con manchas    oscuras sobre la parte dorsal del cuerpo producto a la alimentaci&oacute;n.    Tienen la regi&oacute;n del opistosoma de forma casi cuadrada y hundida en la    cara dorsal, posteriormente, su cuerpo se ensancha mucho m&aacute;s que el del    macho (Fig. 3). Seg&uacute;n Hoy <I>et al</I>. (9) la superficie dorsal es lisa,    excepto por la presencia de unas depresiones puntuales. El cuerpo mide de 250    a 320 &#181;m de largo por 190 a 290 &#181;m de ancho (10). </font>     <P><img src="/img/revistas/rpv/v25n1/f0304110.jpg" width="474" height="318">      
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los machos son    de menor tama&ntilde;o que las hembras y con el opistosoma de forma m&aacute;s    aguzada (Fig. 4). Estas caracter&iacute;sticas coinciden con la descripci&oacute;n    dada por Welbourn (11), quien plantea que los machos tienen la parte posterior    del cuerpo m&aacute;s aguzada y son m&aacute;s activos que las hembras. Mendonga    <I>et </I></font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I>al</I>.    (12) destacan que presentan un aedeagus largo y afilado. </font>     <P><img src="/img/revistas/rpv/v25n1/f0404110.jpg" width="492" height="300">      
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se observ&oacute;    durante el estudio que los machos localizan las deutoninfas de las cuales emerger&aacute;    una hembra y permanecen junto a ellas hasta que la misma emerge para efectuar    la c&oacute;pula. Al respecto Pe&ntilde;a <I>et al</I>. (13), se&ntilde;alan    que los machos y las hembras est&aacute;n sexualmente maduros cuando emergen    y los machos buscan activamente a las hembras, lo cual sugiere la existencia    de una feromona sexual. Tambi&eacute;n refieren que cuando los machos localizan    a una deutoninfa hembra en fase quiescente, suelen quedarse cerca de la misma    y esperar hasta dos d&iacute;as a que se produzca la muda y copular a la hembra.    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La <a href="/img/revistas/rpv/v25n1/f0504110.jpg">Tabla    1</a> muestra la duraci&oacute;n por fase y total del ciclo de desarrollo para    ambos sexos. <I>R. indica </I>necesit&oacute; un tiempo relativamente largo    para alcanzar la fase de adulto, aproximadamente 31 d&iacute;as. Para ambos    sexos la fase de huevo tuvo la mayor duraci&oacute;n, representando el 31 %    de la duraci&oacute;n total; mientras que la de protoninfa fue la menor. De    los dos estados ninfales, la deutoninfa demora m&aacute;s, esto es l&oacute;gico    si se considera que en esta fase se producen los cambios morfofisiol&oacute;gicos    que dar&aacute;n lugar al adulto. El coeficiente sexual fue de 56% favorable    a las hembras. Esta duraci&oacute;n del desarrollo es superior a la informada    sobre cocotero, donde se se&ntilde;ala que el ciclo de las hembras oscila entre    23-28 d&iacute;as y el de los machos de 20-22 d&iacute;as (9). </font>      
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Con relaci&oacute;n    a la mortalidad de las fases inmaduras se encontr&oacute; un 14,6 % para las    larvas; 7,3% para las protoninfas y un 17,1% para las deutoninfas, lo que representa    un 39% de mortalidad total, lo cual evidencia una baja posibilidad de sobrevivencia    de los estados inmaduros de <I>R. indica </I>sobre este hospedante<I>. </I>    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La duraci&oacute;n    en d&iacute;as, de los per&iacute;odos de preoviposici&oacute;n, oviposici&oacute;n    y postoviposici&oacute;n de <I>R. indica</I> se muestran en la <a href="/img/revistas/rpv/v25n1/f0604110.jpg">Tabla    2</a>. El per&iacute;odo de preoviposici&oacute;n tuvo una duraci&oacute;n media    de 4 d&iacute;as, mientras que el per&iacute;odo de oviposici&oacute;n llega    a durar en las condiciones evaluadas hasta 17 d&iacute;as, con un valor medio    aproximado de 11 d&iacute;as, as&iacute; como una longevidad de las hembras    de hasta 30 d&iacute;as. Estos valores son tambi&eacute;n inferiores a los informados    por Hoy <I>et al.</I> (9), quienes plantean un per&iacute;odo de oviposici&oacute;n    de 40 d&iacute;as y una longevidad de 48 d&iacute;as, lo cual pudiera estar    dado por la influencia de la planta hospedante. </font>      
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La oviposici&oacute;n    comienza, aproximadamente a partir del cuarto d&iacute;a siguiente de la emergencia    de las hembras. El n&uacute;mero de huevos puestos se incrementa desde el inicio    de la oviposici&oacute;n y se mantiene elevado durante los 12 primeros d&iacute;as,    momento a partir del cual decrece gradualmente y la hembra deja de ovipositar    a los 21 d&iacute;as despu&eacute;s del inicio de la puesta. El pico m&aacute;ximo    de puesta se produce entre los 5 y 12 d&iacute;as. Los huevos alcanzaron un    91,11% de eclosi&oacute;n. La forma de la curva de sobrevivencia se correspondi&oacute;    con que una proporci&oacute;n importante de hembras viven durante el per&iacute;odo    de m&aacute;xima oviposici&oacute;n y luego mueren poco a poco (<a href="/img/revistas/rpv/v25n1/f0704110.jpg">Fig.    5</a>). Esto se corresponde con una curva intermedia entre el tipo I y II, seg&uacute;n    se&ntilde;ala Vera (14). La mortalidad se increment&oacute; despu&eacute;s que    las hembras sobrepasaron la fase de m&aacute;xima oviposici&oacute;n. </font>      
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La fecundidad media    de las hembras fue de 7,0&#177;3,46 huevos, con m&iacute;nimo de 2 huevos y    un m&aacute;ximo de 12. La media general de huevos/hembra/d&iacute;a fue 0,29&#177;0,15    huevos. <I>R. indica</I> presenta reproducci&oacute;n sexual y por partenog&eacute;nesis    arrenotokica, donde los &oacute;vulos no fecundados producen solo machos; mientras    que los fecundados producen progenie hembra (10). Una hembra puede poner de    1 a 6 huevos diarios, con un promedio de 2 huevos/hembra/d&iacute;a. La fecundidad    total puede ser de 27 a 162 huevos/hembra (15). Seg&uacute;n Nageshachandra    y Channabasavanna (10) las hembras fecundadas ovipositan una media de 22 huevos;    mientras que las hembras v&iacute;rgenes tienen una media de 18,4 huevos. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los valores de    fecundidad encontrados son inferiores a los indicados por otros autores para    esta especie. Esto se puede deber a que se coloc&oacute; solo un macho, y se    conoce que varios machos por unidad </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">experimental    garantizan la posibilidad de m&uacute;ltiples c&oacute;pulas, lo cual se considera    imprescindible para alcanzar la m&aacute;xima oviposici&oacute;n en muchas especies    de &aacute;caros. Tambi&eacute;n la presencia de varios individuos proporciona    un efecto de grupo que puede favorecer la oviposici&oacute;n. Este aspecto debe    ser considerado en ensayos posteriores, para garantizar que la especie pueda    expresar mejor sus potencialidades reproductivas. Sin embargo, el uso de un    solo individuo es tambi&eacute;n com&uacute;n en estudios biol&oacute;gicos    con &aacute;caros. </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Existen diversos    informes que indican que la <I>A. catechu</I> es una planta hospedante de <I>R.    indica</I>, siendo catalogada en la India como plaga de esta palm&aacute;cea    (16), sin embargo, en las condiciones bajo las cuales se realiz&oacute; este    estudio, <I>R. indica</I> no expres&oacute; todo su potencial reproductivo,    lo cual pudiera estar dado, entre otros factores, por la influencia de la planta    hospedante. Estos resultados refuerzan el criterio de diversos especialistas    que han se&ntilde;alado la necesidad de profundizar en la determinaci&oacute;n    de los verdaderos hospedantes de <I>R. indica</I>, pues muchos de ellos solo    pudieran ser hospedantes alternativos o transitorios. </font>     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">REFERENCIAS</font></B>    </font>      <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1. Fletchmann CHW,    Etienne J. The red palm mite, <I>Raoiella indica </I>Hirst, a threat to palms    in the Americas (Acari: Prostigmata: Tenuipalpidae). Syst Appl Acarol. 2004;9:109-110.    </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2. Kane EC, Ochoa    R, Mathurin G, Erbe EF. <I>Raoiella indica </I>Hirst (Acari: Tenuipalpidae):    An island-shopping mite pest in the Caribbean, 2005. (En l&iacute;nea). (Consultada:    13 jun 2007). 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Florida Entomologist,    2009;92(2):297-291. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">9. Hoy Marjorie    A, Pe&ntilde;a JE, Nguyen Ru, <I>Featured</I>. EENY-397, 2006. (En l&iacute;nea).    (Consultada: 12 jul 2007). Disponible en: <a href="http://www.creatures.ifas.ufl.edu/orn/plams/red_palm_mite.htm">http://www.creatures.ifas.ufl.edu/orn/plams/red_palm_mite.htm</a>.    </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">10.Nageshachandra    BK, Channabasavanna GP. Development and ecology of <I>Raoiella indica</I> Hirst    (Acari: Tenuipalpidae) on coconut. In: Griffiths DA, Bowman CE, Editors. Acarology    VI. Ellis Horwood Publishers, Chicester, UK. 1984;2:785-798. </font>    <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">11.Welbourn C.    Red palm mite <I>Raoiella indica </I>Hirst (Acari: Tenuipalpidae). Pest Alert,    2005. (En l&iacute;nea). (Consultada: 9 jun 2007). 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