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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Pseudomonas aeruginosa is an extracellular pathogen which elicits a specific antibody response useful for diagnosis and vaccines. The aim of the present study was to evaluate in human serum the levels of antibodies against relevant antigens of P. aeruginosa. Determination of IgG antibodies against three exoenzymes, considered as virulence factors of great importance in infections, was carried out. Then, evaluation of IgG and IgA recognition towards antigens of the outer membrane was performed by ELISA of whole cells. All the evaluated sera showed IgG and IgA titers higher than those of the healthy individuals, with exception of two patients' samples that did not show high titers. This assay allowed the analysis of the recognition level towards the most exposed antigens of the bacterium mainly including LPS and outer membrane proteins. . Differences were found among optical density values at 450 nm of healthy and sick individuals. The method used allowed to select two patients' serum of different types of infections which were compared by Western blot. It was observed that although the sera reacted against different serotypes of P. aeruginosa, the recognition intensity varied according to the type of infection]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Pseudomonas aeruginosa]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <div class=Section1>        <p align=center style='text-align:center'><font size="2" face="Tahoma"><b><span style='font-size:16.0pt'>Evaluación      de la respuesta de anticuerpos hacia antígenos de  <i>Pseudomonas</i> <i> aeruginosa</i></span></b></font></p>       <p align=center style='text-align:center'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>Aniel Moya<sup>1</sup>, Adriana Callicó<sup>1</sup>, Bárbara       Cedré<sup>1</sup>, Frank Camacho<sup>1</sup>, Alexei Simón<sup>1</sup>, Juan      Almenares<sup>2</sup>, Tania Valmaseda<sup>1</sup>, Alina Ocanto<sup>1</sup>,      Armando Cádiz<sup>3</sup>, Sara C. Esnard<sup>1</sup>.</span></font></p>       <p align=center style='text-align:center'><font size="2" face="Tahoma"><sup><span style='font-size:9.0pt'>1</span></sup><span style='font-size:9.0pt'> Instituto      Finlay. Centro de Investigación-Producción de Vacunas.</span><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt;'> Ave. 27 No.19805. <st1:PersonName ProductID="La Lisa. A.P." w:st="on">La      Lisa. A.P. 1601  C.P. 11600,    Ciudad de <st1:PersonName ProductID="La Habana" w:st="on">La Habana, Cuba. </span><span lang=ES-TRAD style='font-size:9.0pt'> </span><span style='font-size:9.0pt'>E-mail: <a href="mailto:amoya@finlay.edu.cu">amoya@finlay.edu.cu</a></span></font></p>       <p align=center style='text-align:center'><font size="2" face="Tahoma"><sup><span style='font-size:9.0pt'>2</span></sup><span style='font-size:9.0pt'> Centro de      Estudios de Biotecnología Industrial. Facultad de Ciencias Naturales. Universidad      de Oriente. Santiago de Cuba.</span></font></p>       <p align=center style='text-align:center'><font size="2" face="Tahoma"><sup><span style='font-size:9.0pt'>3</span></sup><span style='font-size:9.0pt'> Planta de      Hemoderivados. Ciudad de <st1:PersonName ProductID="La Habana" w:st="on">La      Habana, Cuba.</span></font></p>       <p style='text-align:justify'><font size="2" face="Tahoma"><i><span style='font-size:9.0pt'>Pseudomonas      aeruginosa </span></i><span style='font-size:9.0pt'>es un patógeno extracelular      que genera una respuesta de anticuerpos específicos con utilidad para el diagnóstico      y vacunas. En el presente estudio nos propusimos evaluar en suero humano los      niveles de anticuerpos contra antígenos relevantes de <i>P. aeruginosa</i>.      Realizamos la determinación de anticuerpos IgG contra tres exoenzimas, consideradas      como factores de virulencia de mayor importancia en infecciones. Este resultado      dio paso a la evaluación del reconocimiento de IgG e IgA hacia antígenos de      la envoltura celular bacteriana por ELISA de células enteras. Todos los sueros      evaluados mostraron títulos de IgG e IgA superiores a los individuos sanos,      con excepción de dos muestras de pacientes que no mostraron alto título. Este      ensayo permitió analizar el nivel de reconocimiento hacia los antígenos más      expuestos de la bacteria que incluyen principalmente LPS y proteínas de membrana      externa. Se encontró diferencias entre los valores de densidad óptica a 450      nm de individuos sanos y enfermos. El método usado permitió seleccionar dos      sueros de pacientes de diferentes tipos de infecciones que fueron comparados      por Western blot. Se observó que aunque los sueros tenían reacción hacia distintos      serotipos de <i>P. aeruginosa</i>, la intensidad del reconocimiento variaba      según el tipo de infección.</span></font></p>       <p style='text-align:justify'><font size="2" face="Tahoma"><b><span style='font-size:9.0pt'>Palabras      clave:</span></b><span style='font-size:9.0pt'> <i>Pseudomonas aeruginosa</i>,      inmunoglobulinas, fibrosis quística, diagnóstico de infecciones.</span></font></p> </div> <font size="2" face="Tahoma"><br clear=all style='page-break-before:auto;'> </font>      <div class=Section2>        <p style='text-align:justify'><font size="2" face="Tahoma"><b><span style='font-size:11.0pt'>Introducción</span></b></font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p style='text-align:justify;text-autospace:none'><font size="2" face="Tahoma"><i><span style='font-size:9.0pt'>Pseudomonas aeruginosa </span></i><span style='font-size:9.0pt'>es un importante patógeno en el humano que predominantemente      afecta las vías respiratorias y que solamente produce infección en pacientes      con problemas en los mecanismos normales de defensa inmune</span><span style='font-size:9.0pt;'>      <span lang=ES-CO>(<span style=' REF _Ref153345497 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>1      </span>)</span></span><span style='font-size:9.0pt'>.  </span></font></p>       <p style='text-align:justify;text-autospace:none'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>Múltiples      son los reportes cada año sobre sus infecciones en pacientes inmunodeprimidos      y pacientes con fibrosis quística, donde llega a constituir la principal causa      de muerte por infecciones bacterianas (<span style=' REF _Ref153417221 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>2      </span>). Esta bacteria durante su colonización expresa gran variedad de toxinas      que por su efecto en el hospedero son consideradas como factores de virulencia      (<span style=' REF _Ref153345520 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>3 </span>).      </span></font></p>       <p style='text-align:justify;text-autospace:none'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>Estudios      recientes dirigen la atención hacia la excreción de enzimas extracelulares      capaces de interactuar con las células epiteliales        a través de mecanismos      tan eficientes como el sistema de secreción tipo III (<span style=' REF _Ref153345659 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>4      </span>) y la liberación de vesículas que contienen enzimas proteolíticas      (<span style=' REF _Ref153345520 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>3 </span>).      Ambos mecanismos junto al sistema sensor del quórum (<span style=' REF _Ref153419171 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>5      </span>) y las biopelículas (<span style=' REF _Ref153418771 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>6      </span>) hacen que una vez establecida la infección la erradicación sea prácticamente      imposible, lo que influye en los altos índices de morbilidad y mortalidad      (<span style=' REF _Ref153794300 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>7 </span>).</span></font></p>       <p style='text-align:justify;text-autospace:none'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>En      la etapa de invasión a los tejidos <i>P. aeruginosa</i> produce y excreta      toxinas que le permiten implantarse; entre ellas las más estudiadas son: la      elastasa, la proteasa alcalina y la exotoxina A (<span style=' REF _Ref153795020 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>8 </span>).</span></font></p>       <p class=MsoBodyText style='line-height:normal'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>La elastasa      es una metaloproteasa que degrada la elastina, el colágeno, <st1:PersonName ProductID="la IgA" w:st="on">la IgA, <st1:PersonName ProductID="la IgG" w:st="on">la IgG y la fibronectina, para exponer receptores      al ataque bacteriano en la mucosa de los pulmones donde interfiere en la función      ciliar en infecciones crónicas (<span style=' REF _Ref153350084 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>9 </span>). Asociada      a la alta densidad de crecimiento bacteriano se ha demostrado que también      degrada la transferrina y libera hierro al medio el cual puede generar radicales      hidróxilos en el sitio de la infección y contribuir al daño tisular (<span style=' REF _Ref153350111 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>10      </span>). Junto con la elastasa, la proteasa alcalina destruye estructuras      compuestas por fibrinas y elastina; se reporta que inactiva el interferón      </span><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt; font-family:Symbol;Times New Roman&quot;;Times New Roman&quot;;'>g</span><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Times New Roman&quot;'> (IFN      </span><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:Symbol;Times New Roman&quot;;Times New Roman&quot;;'>g</span><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family: &quot;Times New Roman&quot;'>) y el factor de necrosis tumoral (TNF) (<span style=' REF _Ref154626999 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>11</span>).</span></font></p>       <p class=MsoBodyText style='line-height:12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Por otro lado      la exotoxina A tiene el mismo mecanismo de acción de la toxina diftérica.      Esta exoenzima tiene actividad necrótica en el sitio de colonización bacteriana      y cuando se purifica tiene alto poder letal en animales de experimentación,      incluyendo primates (<span style=' REF _Ref153542595 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>10</span>).      Esta exotoxina daña severamente los tejidos infectados y produce hemorragias      de órganos internos, especialmente en los pulmones y la córnea.</span></font></p>       <p class=MsoBodyText style='line-height:12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>En infecciones      crónicas estas tres enzimas son excretadas en la colonización y se ha demostrado      que son antigénicamente relevantes. Tal es el caso de la exotoxina A, que      se emplea conjugada con LPS en vacunas, generando anticuerpos protectores      (<span style=' REF _Ref153350132 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>12 </span>).</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt;text-autospace:none'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size: 9.0pt'>En el estudio de la infección resulta interesante el análisis de la elastasa,      la fosfatasa alcalina y la exotoxina A, como marcadores de la infección<b>      </b>(<span style=' REF _Ref153345699 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>13      </span>), sin embargo es variable la respuesta inmune humoral que se dirige      hacia ellos.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt;text-autospace:none'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size: 9.0pt'>En la infección en humanos se producen anticuerpos específicos contra el      patógeno, que tienen valor diagnóstico. Durante infecciones crónicas por <i>Pseudomonas      </i>en pacientes fibroquísticos se han empleado técnicas inmunoenzimáticas      que correlacionan el nivel de anticuerpos IgG específicos con la severidad      de la infección; observándose en pacientes con infección pulmonar, cómo según      la subclase de IgG que se genere es determinante para conducir o no al daño      del epitelio pulmonar (<span style=' REF _Ref153795774 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>14 </span>, <span style=' REF _Ref153795823 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>15      </span>). Toda esta información ha sido la base de la generación de inmunógenos      vacunales; sin embargo a pesar de ello aún no contamos con una vacuna efectiva.      En este trabajo se evalúa la respuesta de anticuerpos en grupos de pacientes      infectados hacia enzimas proteolíticas, que han sido definidas como marcadores      de la severidad de infecciones pulmonares y la respuesta de sueros seleccionados      hacia antígenos de membrana externa de                  <i>P. aeruginosa</i>      empleando ELISA de células enteras y Western blot. </span></font></p>   <h1 style='text-align:justify;line-height:normal'><font size="2" face="Tahoma"><span lang=ES-MX style='font-size:11.0pt'>Materiales y M&eacute;todos</span></font></h1>   <h1 style='text-align:justify;line-height:normal'><font size="2" face="Tahoma"></font></h1>       <p style='text-align:justify'><font size="2" face="Tahoma"><b><span style='font-size:9.0pt'>Tabla      1.</span></b><span style='font-size:9.0pt'> <b>Cepas de <i>Pseudomonas aeruginosa </i>empleadas en      el estudio. </b></span></font></p>   <font size="2" face="Tahoma"><img src="../img/f0102107.jpg" width="363" height="198">    </font><font face="Tahoma">        ]]></body>
<body><![CDATA[<p style='text-align:justify'><font size="2"><b><span lang=EN-GB style='font-size:8.0pt; '>ATCC:</span></b></font></p>       <p style='text-align:justify;text-autospace:none'><font size="2"><b><span lang=EN-GB style='font-size:8.0pt;'>IATS:</span></b><span lang=EN-US style='font-size:8.0pt;'> International Antigenic Typing Scheme</span></font></p>       <p class=MsoBodyText style='line-height:normal'><font size="2"><b><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>2. </span></b><b><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Obtención de      sueros</span></b></font></p>       <p class=MsoBodyText style='line-height:normal'><font size="2"><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Los sueros utilizados      en este trabajo fueron colectados en hospitales de Ciudad de <st1:PersonName ProductID="La Habana" w:st="on">La Habana, Cuba. Todos fueron seleccionados de      individuos con infección por <i>P. aeruginosa</i>, confirmada por diagnóstico      microbiológico. Se colectaron 11 sueros de pacientes con sepsis nosocomial,      5 de pacientes con fibrosis quística y 2 con infección respiratoria. Todas      las muestras de sueros fueron consideradas como sueros con títulos IgG anti-<i>Pseudomonas      aeruginosa</i>.</span></font></p>   <font size="2"><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Los sueros de    individuos presumiblemente sanos fueron obtenidos del Laboratorio (SUMA) del    Banco de Sangre de Marianao (Ciudad Habana, Cuba). Todas las muestras fueron    certificadas como sueros libres de enfermedades transmisibles (VIH, hepatitis    B, hepatitis C y Treponema pallidum) y estos se seleccionaron siguiendo las    medidas de bioseguridad para el empleo de este tipo de muestras. </span></font>        <p></p>       <p class=MsoBodyText style='line-height:normal'><font size="2"><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Los sueros empleados      en el estudio fueron almacenados a <st1:metricconverter ProductID="-20 &#65456;C" w:st="on">-20 °C hasta su uso.</span></font></p>   <h2 style='text-align:justify'><font size="2"><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>3. Obtenci&oacute;n      de suero negativo a Pseudomonas aeruginosa</span></font></h2>       <p class=MsoBodyText style='line-height:normal'><font size="2"><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Para los ensayos      inmunoenzimáticos fue necesario crear un suero control negativo a antígenos      de membrana externa de <i>P. aeruginosa</i>, el cual se obtuvo por adsorción      con el empleo de una mezcla de sueros de donantes sanos según el siguiente      protocolo: Se sembraron cepas de 13 serotipos distintos de la bacteria (Tabla<span style='text-transform:uppercase'>      1</span>), en placas de agar sólido suplementado con Caldo Cerebro Corazón      (BHI), a <st1:metricconverter ProductID="37 &#65456;C" w:st="on">37 °C durante      24 h. La biomasa obtenida fue resuspendida en  solución salina estéril y se      inactivó durante 1 h a <st1:metricconverter ProductID="56 &#65456;C" w:st="on">56      °C, con agitación constante. Luego se centrifugó la suspensión a <st1:metricconverter ProductID="5 000 g" w:st="on">5 000 g durante 30 min y las células inactivadas      se resuspendieron en igual volumen de suero e incubaron 1 h a <st1:metricconverter ProductID="37 &#65456;C" w:st="on">37      °C para eliminar títulos presentes hacia células enteras. Se centrifugó nuevamente      por 30 min a <st1:metricconverter ProductID="5 000 g" w:st="on">5 000 g para      separar las células del suero y al suero obtenido libre de células bacterianas      se le añadió por segunda vez células de <i>P. aeruginosa</i> inactivadas.      Este procedimiento se repitió tres veces al mismo suero para eliminar los      anticuerpos específicos a antígenos de superficie. Por último, el suero recuperado      se filtró estéril con un filtro Sartorius 0,2 µm y se conservó a <st1:metricconverter ProductID="-20 &#65456;C" w:st="on">-20 °C hasta su empleo.</span></font></p>       <p class=MsoBodyText style='line-height:normal'><font size="2"><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>4. Electroforesis      y Western Blot para LPS y c&eacute;lulas completas</span></font></p>   <span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>        <p class=MsoBodyText style='line-height:normal'><font size="2"><i><u><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Preparación      de LPS</span></u></i></font></p>       <p class=MsoBodyText style='line-height:normal'><font size="2"><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Para la evaluación      del lipopolisacárido (LPS) por electroforesis en gel de poliacrilamida con      SDS se realizó la preparación de la muestra, según el método de digestión      con proteinasa K (<span style=' REF _Ref153349865 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>16      </span>). La tinción se realizó con una solución de plata específica para      LPS (<span style=' REF _Ref153354624 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>17      </span>).</span><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt; font-family:&quot;Times New Roman&quot;;'> </span></font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p class=MsoBodyText style='line-height:normal'><font size="2"><i><u><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt; font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Preparación de células entera</span></u></i></font></p>       <p class=MsoBodyText style='line-height:normal'><font size="2"><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Se tomó 1 mL      de cada suspensión celular de <i>P. aeruginosa</i>, crecida en medio BHI hasta      un valor de densidad óptica (D.O) a 600 nm<sub><span style='color:red'> </span></sub>de      0,9 y se centrifugó a <st1:metricconverter ProductID="5000 g" w:st="on">5000 g durante 1 min. Al precipitado obtenido, se      le añadió 100 </span><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:Symbol;Times New Roman&quot;; Times New Roman&quot;;'>m</span><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>L de solución      de </span><span style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Times New Roman&quot;; '>lísis</span><span style='font-size:9.0pt;font-family: &quot;Tahoma&quot;'> <span lang=ES-CO><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>(1M Tris-HCL      pH 6.8, 2% SDS, 10% glicerol, 4% </span></span><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:Symbol; Times New Roman&quot;;Times New Roman&quot;; '>b</span><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma;'>-mercaptoetanol) y se calentó      a <st1:metricconverter ProductID="100 &#65456;C" w:st="on">100 °C durante      5 min. <span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>La muestra fue      centrifugada a <st1:metricconverter ProductID="5000 g" w:st="on">5000 g durante 5 min para separar las células del      sobrenadante y se aplicaron en cada pocillo 20 µL de muestra. Se realizó electroforesis      desnaturalizante en gel de poliacrilamida al 12,5 % con SDS, (<span style=' REF _Ref153503229 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>18      </span>). La tinción se realizó con azul Coomassie para observar el patrón      de bandas correspondientes a las células enteras.</span></span></span></font></p>   <span style='font-size:9.0pt;font-family: &quot;Tahoma&quot;'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma;'>        <p class=MsoBodyText style='line-height:normal'><font size="2"><i><u><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt; font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Western blot</span></u></i></font></p>       <p class=MsoBodyText style='line-height:12.0pt'><font size="2"><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Después de la      electroforesis, las proteínas de un segundo gel (réplica sin teñir), se transfirieron      a un papel de nitrocelulosa Hybond-C Extra (Amersham Biosciences), se bloqueó      con la solución de bloqueo (Solución Tampón Fosfato-Salina (STFS) pH 7.2 /Tween      20 (0,05%)/Leche descremada (3%) durante 1 h a <st1:metricconverter ProductID="37 &#65456;C" w:st="on">37      °C y posteriormente se lavó tres veces con solución de lavado (STFS/Tween      20(0,05%)). Al papel de nitrocelulosa se le añadió la muestra de suero a evaluar      diluido 1/200 con STFS /Tween 20 (0,05%)/leche (1%) y se incubó a <st1:metricconverter ProductID="37 &#65456;C" w:st="on">37 °C durante 2 h. Se realizaron tres lavados      con la solución de lavado y posteriormente se incubó    1 h con el anticuerpo      anti IgG humana obtenido en carnero conjugado con peroxidasa de rábano picante      (A6029, SIGMA-</span><span style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Times New Roman&quot;;color:black;'>      Aldrich</span>), diluido 1/10000 en STFS /Tween 20 (0,05%)/leche (1%). <span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>A continuación      se realizaron dos lavados con la solución de lavado y un tercero sólo con      STFS. Finalmente se añadió la solución sustrato (STFS/Diaminobencidina 25      µg/H<sub>2</sub>O<sub>2</sub> 25 µL) (<span style=' REF _Ref153503229 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>18      </span>) y se reveló hasta observar las bandas de reconocimiento correspondientes.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2"><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>5. Determinaci&oacute;n      de enzimas proteol&iacute;ticas</span></font></p>   <span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>        <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt;text-autospace:none'><font size="2"><span style='font-size: 9.0pt'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Se determinó      el título de anticuerpos específicos a exotoxina A, elastasa y proteasa alcalina      según Tramper-Stranders, et al (<span style=' REF _Ref153345699 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>13      </span>).</span></span></font></p>   <span style='font-size: 9.0pt'>        <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2"><span style='font-size:9.0pt'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Esta determinación      se realizó utilizando el estuche de ELISA comercial (Mediagnost lot 090204,      Reutlingen, Germany). Este ELISA semicuantitativo determina los niveles de      IgG contra tres antígenos de <i>P. aeruginosa</i>: elastasa, exotoxina A y      proteasa alcalina. Las muestras de suero fueron diluidas por un factor de      dilución de 1/1000 con STFS. En cada uno de los pocillos de una microplaca      de ELISA de 96 pocillos se aplicó 100 µL de la muestra diluida e incubada      a <st1:metricconverter ProductID="37 &#65456;C" w:st="on">37 °C durante 2 h. Luego se aspiró y se lavó      tres veces intensivamente con STFS/Tween-20, y se le aplicó posteriormente      la solución del conjugado (anti IgG humana-peroxidasa) a cada pocillo. Se      incubó la placa por 2 h a <st1:metricconverter ProductID="37 &#65456;C" w:st="on">37 °C y después de tres lavados con STFS/Tween-20,      se añadió a los pocillos 100 µL de solución sustrato (tetrametil bencidina,      lot. P330303) y se incubó a temperatura ambiente en la oscuridad. Después      de media hora la reacción se detuvo con 50 </span><span style='font-size:9.0pt;font-family:Symbol;Times New Roman&quot;; Times New Roman&quot;;'>m</span><span style='font-size:9.0pt'>L de H<sub>2</sub>SO<sub>4 </sub>(1%). <span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>La lectura se      realizó en un lector de placas (Labsystems Multiskan Multisoft, Finlandia)      a 450 nm. El título fue extrapolado de los valores de densidad óptica de dos      sueros controles negativos y dos positivos de acuerdo al manual del fabricante.</span></span></span></font></p>   <span style='font-size:9.0pt'><span style='font-size:9.0pt'>    <h2 style='text-align:justify'><font size="2"><span lang=PT-BR style='font-size:9.0pt;font-family: &quot;Times New Roman&quot;;font-style:normal;'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>6. ELISA de      células completas</span></span></font></h2>   <span lang=PT-BR style='font-size:9.0pt;font-family: &quot;Times New Roman&quot;;font-style:normal;'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'> </span></span></span></span></span></span></span></span></span></font><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'><span style='font-size:9.0pt;font-family: &quot;Tahoma&quot;'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma;'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'><span style='font-size: 9.0pt'><span style='font-size:9.0pt'><span style='font-size:9.0pt'><span lang=PT-BR style='font-size:9.0pt;font-family: &quot;Times New Roman&quot;;font-style:normal;'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>        <p style='text-align:justify;text-autospace:none'><font size="2" face="Tahoma">Las      células empleadas en el ELISA se inactivaron por calor a partir de un cultivo      celular de P. aeruginosa crecido toda la noche en medio BHI. Se tomaron 100      mL de cultivo y se centrifugó durante 30 min a 5 000 g. El botón celular obtenido      se resuspendió en igual volumen de STFS estéril y se inactivó a 56 °C, durante      1 h con agitación suave en un baño (HAAKE, Alemania). Luego al comprobar la      viabilidad de las células en medio rico BHI, no se observó crecimiento bacteriano.      Se recubrió una placa PolySorpTM (Nunc, Dinamarca) de 96 pocillos con 100      µL/pocillos de una suspensión celular P. aeruginosa serotipo O11 inactivadas,      ajustada con STFS pH 7.2 a una DO600nm de 1,0, lo que equivalió a una concentración      aproximada de 8 x 108 células por mL. Cada placa se incubó durante toda la      noche a 37 °C sin agitación hasta que se evaporó el solvente</font></p>       <p style='text-align:justify;text-autospace:none'><font size="2"><span style='font-size:9.0pt;'><font face="Tahoma">Al día siguiente, después de tres      lavados con la solución de lavado (STFS pH 7.2/Tween 20 (0,05%), la placa      se bloqueó con la solución de bloqueo (STFS pH 7.2/Tween 20 (0,05%)/Leche      descremada (3%)), durante 1 h y luego se añadió el suero diluido con STFS:      1/200 para determinar IgA y 1/500 para la determinación de IgG. Se incubó      1 h a 37 °C. A continuación se realizaron tres lavados con solución de lavado      y se añadió el anticuerpo conjugado con la peroxidasa de rábano picante diluido      1/10000. Se incubó durante 1 h a 37 °C. Después de seis lavados con solución      de lavado se añadió a cada pocillo 100 µL de la solución sustrato (12,5 mL      de Tampón Fosfato-Citrato pH 4.6, 5 mg de 1,2 orto-fenilendiamina (OPD) y      5µL de H2O2 (Merck)). Se dejó reaccionar durante 15 min a temperatura ambiente      y se detuvo la reacción con 50 µL de H2SO4 (1%). La lectura se realizó a una      D.O. de 492 nm. El ELISA de células completas fue utilizado para determinar      IgA e IgG. Para IgG se empleó un conjugado anti- IgG humano obtenido en carnero      acoplado a peroxidasa de rábano picante (SIGMA-Aldrich #A6029) y para IgA      se empleó un conjugado anti-IgA humano obtenido en carnero, acoplado a peroxidasa      de rábano picante (SIGMA-Aldrich #A7032). Como suero control positivo se empleó      una mezcla de sueros positivos obtenidos en nuestro laboratorio [19]. El suero      negativo empleado para determinar IgA e IgG fue descrito anteriormente en      este artículo. El valor de corte se determinó como la media de los valores      de D.O. a 492 nm de los sueros controles negativos + 2 desviaciones est&aacute;ndar.</font></span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2"><b><span style='font-size:11.0pt'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Resultados y      Discusión</span></span></b></font></p>   <span style='font-size:11.0pt'>        ]]></body>
<body><![CDATA[<p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2"><span style='font-size:9.0pt'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>La generación      de vacunas efectivas y de anticuerpos específicos para uso terapéutico en      infecciones por <i>P. aeruginosa</i> es difícil por la variedad de estructuras      antigénicas que se presentan durante sus infecciones. Esta característica      no es única de este microorganismo, todas las bacterias patógenas en cierto      grado contienen estructuras que activan el sistema inmune generando respuestas      ante el estímulo antigénico, lo que ha permitido el desarrollo de vacunas      que controlan infecciones bacterianas. En el caso de <i>P. aeruginosa</i>,      aunque se conocen los principales factores de virulencia, las vacunas que      se han desarrollado hasta la fecha no son capaces de controlar los estados      infectivos que ella produce. El reto principal es encontrar el antígeno adecuado,      pues <i>P. aeruginosa</i> es una bacteria oportunista que durante sus infecciones      su efecto es más pronunciado en la medida que aumenta el deterioro del sistema      inmune del hospedero.</span></span></font></p>   <span style='font-size:9.0pt'>        <p style='text-align:justify'><font size="2"><span style='font-size:9.0pt'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Cuando evaluamos      la respuesta de anticuerpos hacia antígenos de <i>P. aeruginosa</i> observamos      que es mayor el nivel de reconocimiento hacia enzimas proteolíticas en pacientes      infectados. En <st1:PersonName ProductID="la Figura" w:st="on">la Figura<span style='text-transform:uppercase'> 1</span> mostramos el reconocimiento hacia tres      factores de virulencia que produce <i>P. aeruginosa</i> en sus infecciones      (<span style=' REF _Ref153345699 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>13 </span>).</span></span></font></p>   <span style='font-size:9.0pt'>        <p style='text-align:justify'><font size="2"><span style='font-size:9.0pt'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Una vez que      se establece la infección en el tejido, <i>P. aeruginosa</i> produce enzimas      con alto efecto virulento que genera una marcada respuesta de anticuerpos      útiles para su empleo como marcador del grado de infección (<span style=' REF _Ref155061132 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>20      </span>). Esto no ocurre en pacientes sanos donde    <i>P. aeruginosa</i>      no llega a una producción prolongada de exoenzimas, pues la infección oportunista      no ha ocurrido como es el caso del suero normal y mezcla de sueros en la (Figura      1). Sin embargo siempre se detectan anticuerpos hacia casi todos los antígenos      de esta bacteria por el grado de exposición a esta especie bacteriana y su      interacción con el ser humano de manera frecuente sin causar infección. Al      parecer hay anticuerpos que imposibilitan el inicio de la infección en individuos      inmunocompetentes que a esos niveles son suficientes.</span></span></font></p>   <span style='font-size:9.0pt'>        <p style='text-align:justify'><font size="2"><span style='font-size:9.0pt'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>La presencia      en individuos enfermos de elevados niveles de anticuerpos contra antígenos      bacterianos son indicios de infecciones recientes o de eventos que están aconteciendo      en el momento de la toma de muestra (Figura 1). Sin la necesidad de acudir      a técnicas microbiológicas de aislamiento bacteriano se puede estudiar la      producción de anticuerpos específicos y por técnicas avanzadas, conocer hacia      qué epítopos se dirigen los anticuerpos de mayor afinidad (<span style=' REF _Ref153503484 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>21      </span>).</span></span></font></p>   <span style='font-size:9.0pt'>        <p style='text-align:justify'><font size="2"><span style='font-size:9.0pt'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Al evaluar el      reconocimiento de inmunoglobulinas empleando un ELISA de células completas      para <i>P. aeruginosa</i> serotipo O11, observamos que los antígenos de la      envoltura celular permiten ver el grado de respuesta hacia estos antígenos.      El primer paso acometido en nuestro experimento fue la obtención de sueros      negativos a antígenos de membrana externa, pues incluso individuos sanos mostraron      reacción hacia este tipo de antígenos. Esta bacteria presente en múltiples      ambientes es capaz de generar anticuerpos en el humano al estar en contacto      de forma frecuente. El suero negativo fue útil para establecer el valor de      corte de este ELISA cualitativo empleado. Se seleccionó el serotipo O11, entre      los 20 reportados, por los resultados obtenidos en estudios de clasificación      de cepas circulantes en nuestro país, donde se ha observado un marcado reconocimiento      de anticuerpos en sueros evaluados hacia este serotipo en particular (<span style=' REF _Ref153503562 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>22      </span>).</span></span></font></p>   <span style='font-size:9.0pt'>        <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2"><span style='font-size:9.0pt'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Son los antígenos      de membrana externa los más estudiados en la búsqueda de candidatos vacunales      efectivos, pues son los más expuestos de la bacteria y en contacto con los      mediadores de la respuesta inmune en las etapas iniciales de la infección.      En este trabajo dirigimos nuestra determinación a los niveles de IgG en pacientes      infectados y añadimos la evaluación de <st1:PersonName ProductID="la IgA" w:st="on">la      IgA, como otra de las inmunoglobulinas más importantes en el control de bacterias      que interactúan durante una infección en tejidos mucosales, como es el caso      de individuos con infección pulmonar.</span></span></font></p>   <span style='font-size:9.0pt'>        <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2"><span style='font-size:9.0pt'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'>Los anticuerpos      IgA específicos a <i>P. aeruginosa</i> pueden ser también considerados como      marcadores tempranos de la colonización bacteriana en infecciones pulmonares      de pacientes fibroquísticos, donde la inmunidad a nivel de mucosa desempeña      un importante papel durante la infección (<span style=' REF _Ref153504296 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>23 </span>). Estos      niveles de IgA sérica pudieran ser un indicador de <st1:PersonName ProductID="la IgA" w:st="on">la      IgA secretora.</span></span></font></p>   <span style='font-size:9.0pt'>        <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'> <font size="2" face="Tahoma"> <span style='font-size:9.0pt'>En <st1:PersonName ProductID="la Figura" w:st="on">la Figura <span style='text-transform:uppercase'>2</span> se muestra el reconocimiento a antígenos      de <i>P. aeruginosa</i>, se evalúan los niveles de IgG e IgA específicos.      Como era de esperar, ambos valores detectados en suero hacia células completas      inactivadas fueron más elevados en pacientes enfermos que en los individuos      sanos. Los niveles de inmunoglobulinas específicas varían incluso de un paciente      a otro, aunque presenten la misma enfermedad. Activaciones diferentes en la      producción de anticuerpos hacia patógenos extracelulares como <i>P. aeruginosa</i>      son el resultado de la exposición antigénica en pacientes con infecciones      severas, los cuales correlacionan con el pronóstico de la infección (<span style=' REF _Ref153345720 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>13      </span>). En esta experiencia, en el caso del suero fq 4 los valores de IgG      son bajos, tanto contra exoenzimas (Figura 1) como para antígenos de la membrana      externa (Figura 2). Este hecho puede estar justificado por el grado de inmunosupresión      en el paciente; pues se conoce que la severidad de las infecciones pulmonares      en pacientes con fibrosis quística trae como consecuencia final un deterioro      de la capacidad para generar anticuerpos contra el patógeno.</span></font></p>   </span></span></span></span></span></span></span></span></span></span></span></span></span></span></span></span></span></div> <span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'><span style='font-size:9.0pt;font-family: &quot;Tahoma&quot;'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma;'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'><span style='font-size: 9.0pt'><span style='font-size:9.0pt'><span style='font-size:9.0pt'><span lang=PT-BR style='font-size:9.0pt;font-family: &quot;Times New Roman&quot;;font-style:normal;'><span lang=ES-CO style='font-size:9.0pt;font-family:&quot;Tahoma&quot;'><span style='font-size:11.0pt'><span style='font-size:9.0pt'><span style='font-size:9.0pt'><span style='font-size:9.0pt'><span style='font-size:9.0pt'><span style='font-size:9.0pt'><span style='font-size:9.0pt'><span style='font-size:9.0pt'>  <font size="2" face="Tahoma"><br clear=all style='page-break-before:auto;'> </font>      <div class=Section3>        <p style='text-align:justify'> <font size="2" face="Tahoma"><img src="/img/revistas/vac/v16n1/f0202107.jpg" width="701" height="333"><span style='font-size:9.0pt'>&nbsp;</span></font></p> </div>     
]]></body>
<body><![CDATA[<div class=Section4>        <p style='text-align:justify'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>Los sueros fq3, fq2 y suero 10 tienen títulos de IgG por      encima de <st1:metricconverter ProductID="1,0 a" w:st="on">1,0 a DO<sub>492nm</sub>.      La dilución de trabajo de los sueros para determinar IgG fue de 1/500, para      buscar mayor especificidad hacia antígenos de membrana externa de esta bacteria.      Consideramos que la existencia de estructuras antigénicas muy similares entre      <i>E. coli</i> y <i>P. aeruginosa</i> (<span style=' REF _Ref154113224 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>24 </span>) son responsables      de las reacciones cruzadas de los anticuerpos hacia células completas de ambas      bacterias, que dan lugar a una sobrestimación de la presencia de anticuerpos      cuando no se tiene en cuenta este problema. Antígenos similares pueden falsear      los datos que se analizan; por esta razón se buscó la dilución más idónea      para evaluar anticuerpos hacia antígenos de membrana externa de <i>P. aeruginosa</i>      (<span style=' REF _Ref153503484 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>21 </span>). Ambas      bacterias presentan una alta homología en el genoma en comparación con los      demás genomas bacterianos hasta la fecha secuenciados y similitudes en los      componentes proteicos de la envoltura celular (<span style=' REF _Ref153350004 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>25      </span>). </span></font></p>       <p style='text-align:justify'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>Los valores del título de IgA de sueros de pacientes fueron      relativamente superiores a las muestras de suero de individuos sanos.  Por      otra parte los sueros sp35, sp2 y 10 tienen títulos de IgA por encima de <st1:metricconverter ProductID="1 a" w:st="on">1 a DO<sub>492nm</sub>, mostrándonos que se generan      también ante la infección por esta bacteria anticuerpos IgA. En el caso de      <st1:PersonName ProductID="la IgA" w:st="on">la IgA se trabajó con la dilución      1/200 de los sueros atendiendo a que las concentraciones en suero de IgA son      menores que las de IgG (<span style=' REF _Ref153350016 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>26 </span>). La respuesta      humoral contra  <i>P. aeruginosa</i>, cuando coloniza el tracto mucosal de      las vías respiratorias es la que más prevalece en el control de las infecciones      por parte del hospedero. La eliminación de <i>P. aeruginosa</i> en infecciones      sistémicas está mediada principalmente por anticuerpos IgG1 y la opsonización      dependiente del complemento (<span style=' REF _Ref153345720 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>13      </span>) y <st1:PersonName ProductID="la IgA" w:st="on">la IgA secretora es      probablemente la primera línea de defensa en la prevención de la adherencia      y la subsiguiente infección de tejidos mucosales como son los pulmones, tracto      urogenital, o sinus paranasal. Por la importancia de ambas inmunoglobulinas      en la infección por <i>P. aeruginosa</i> es que las vacunas contra este patógeno      deben inducir anticuerpos protectivos del tipo IgA e IgG (<span style=' REF _Ref153350016 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>26      </span>, <span style=' REF _Ref161208585 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>27      </span>).</span></font></p>       <p style='text-align:justify'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>La diferencia que se observa en los valores de D.O.<sub>492nm</sub>      observados entre los enfermos e individuos sanos, es una expresión de los      anticuerpos generados en los pacientes enfermos. Esto apoya la idea de que      durante la infección por <i>Pseudomonas</i> las inmunoglobulinas participan      en la defensa del organismo contra el patógeno (<span style=' REF _Ref153350051 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>28 </span>). Solo      en tres muestras de pacientes los niveles de IgG fueron inferiores al resto      de las muestras evaluadas como ocurre con el suero fq1, fq4 y el jq. Sin embargo      al evaluar los títulos de IgG hacia enzimas proteolíticas el fq1 mostró alto      título hacia la proteasa alcalina. No podemos por esta razón decir que estos      pacientes no producen anticuerpos contra la bacteria durante la infección;      pero esto podría ser una señal del momento en que se encuentra la infección,      señal que puede ser detectable a partir de muestras de sueros. Sería interesante      correlacionar el estado del paciente en el momento de la toma de muestra de      suero y su estado clínico, pues es probable que exista alguna correlación      entre estos valores que nos permitan llegar a mejores diagnósticos. </span></font></p>       <p style='text-align:justify'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>Al establecer una comparación de un suero con bajo nivel      de IgA (suero sp36) con uno de mayor lectura de D.O. a 492 nm (suero 10),      observamos que su respuesta hacia exotoxinas presenta otro patrón de reconocimiento      (Figuras 1 y 2).</span></font></p>       <p style='text-align:justify'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>Los valores de reconocimiento hacia estas enzimas son      superiores en el suero sp36 que los valores encontrados en el suero 10, donde      se obtuvo mayor lectura de D.O. a 492 nm hacia células enteras (Figura 2).      El suero fq3 con alto título de IgG hacia células completas mostró valores      de IgG anti exotoxina A inferiores al suero sp36, el cual tuvo menos lectura      contra antígenos de células enteras que los sueros 10 y fq3 <i>Pseudomonas      aeruginosa</i> expresa gran cantidad de factores de virulencia que varían      según el curso de la infección y las condiciones de crecimiento en que la      bacteria establece la infección en el hospedero. Según los resultados que      se muestran en <st1:PersonName ProductID="la Figura" w:st="on">la Figura <st1:metricconverter ProductID="2, a" w:st="on">2,      a diferencia de los sueros de individuos sanos (fk, am, aX) en enfermos se      estimula la producción de anticuerpos hacia estructuras de membrana externa.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>En todos los      casos de individuos enfermos los anticuerpos contra exoenzimas evaluados fueron      superiores a individuos sanos y fue hacia la proteasa alcalina la mejor respuesta      según esta técnica de evaluación. Este ELISA comercial permite detectar infección      crónica en pacientes con fibrosis quística, para el que ha sido creado. Sin      embargo existe una gran necesidad de encontrar métodos serológicos que permitan      detectar la colonización temprana (<span style=' REF _Ref153345699 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>13      </span>), pues estos anticuerpos se generan una vez implantado el microorganismo      en la infección y están presentes en infecciones crónicas de una manera más      marcada que en otras infecciones.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>Es de una importancia      relevante detectar <i>P. aeruginosa</i> al inicio de su colonización, pues      con un tratamiento adecuado puede detenerse o prevenirse. La infección por      <i>Pseudomonas</i> en pacientes con fibrosis quística es monitoreada frecuentemente      por cultivos de esputo o lavados orofaríngeos. Los métodos serológicos tales      como la inmunoelectroforesis cruzada, el Western blot y el ELISA para detectar      <i>P. aeruginosa</i> no son usados de rutina en el diagnóstico de infección      en pacientes con esta afección. </span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 13.0pt;text-autospace:none'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size: 9.0pt'>El ELISA de células enteras tiene una alta sensibilidad (96-100%) para      detectar colonización crónica (<span style=' REF _Ref153350166 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>29      </span>), sin embargo cuando se determinan anticuerpos particulares se han      observado resultados muy variables de un paciente a otro. Tramper-Stranders      et al, reportaron en el 2006 que los exámenes serológicos usando antígenos      específicos para diagnosticar colonización crónica en pacientes con fibrosis      quística no tenían un alto valor diagnóstico para detectar infección temprana      en comparación con los métodos de cultivos sucesivos. Pues para etapas iniciales      de la colonización se encontraban valores contradictorios en cuanto a al generación      de anticuerpos específicos en el enfermo. Sin embargo la detección de anticuerpos      específicos sí permite conocer la respuesta inmune humoral en este tipo de      pacientes y correlacionarla con el grado de severidad de la infección (<span style=' REF _Ref153345699 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>13      </span>).</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 12.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>El análisis      por Western blot del reconocimiento de dos sueros hacia células completas      provenientes de dos tipos de infecciones diferentes, el suero SP36 (sepsis      nosocomial) y el FQ3 (fibrosis quística) y hacia LPS, nos permitió conocer      cómo ambos sueros reconocían antígenos de envoltura celular de una forma muy      similar, los resultados se muestran en las Figuras 3 y 4.</span></font></p> </div> <font size="2" face="Tahoma"><br clear=all style='page-break-before:auto;'> </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<div class=Section5> <font size="2" face="Tahoma"><img src="/img/revistas/vac/v16n1/f0302107.jpg" width="650" height="250">    </font><font face="Tahoma">        
<p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2"><b><span style='font-size:8.0pt'>Figura 3.</span></b><span style='font-size:8.0pt'>      Western blot de 10 cepas de <i>Pseudomonas aeruginosa</i> para evaluar el      reconocimiento hacia antígenos de células completas </span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2"><span style='font-size:8.0pt'>de los sueros FQ3 (paciente      con fibrosis quística) y suero SP36 (paciente con sepsis nosocomial), con      alto reconocimiento hacia </span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2"><span style='font-size:8.0pt'>exotoxina A, proteasa alcalina      y elastasa. Se observa una banda común en todas las muestras correspondientes      al Lípido A del LPS.</span></font></p>   </font></div> <font size="2" face="Tahoma"><br clear=all style='page-break-before:auto;'> </font>      <div class=Section6>        <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>Como se observa      en <st1:PersonName ProductID="la Figura" w:st="on">la Figura 3, aunque difiere en intensidad de un      suero a otro dando idea de cierta avidez, al evaluar el reconocimiento es      similar en ambos hacia los mismos antígenos. El reconocimiento hacia antígenos      de células enteras es bastante marcado, pues como se aprecia incluye bandas      presentes a lo largo de todo el papel de nitrocelulosa; la infección genera      anticuerpos específicos. Es interesante cómo el reconocimiento hacia la banda      correspondiente al lípido A del LPS es bastante fuerte y es que este antígeno      genera una fuerte respuesta de anticuerpos. Sin embargo el suero del paciente      FQ (fq3) mostró un mayor reconocimiento. Es un verdadero reto seleccionar      de todos los antígenos que generan la producción de anticuerpos cúal es el      antígeno que produce una respuesta humoral útil para la selección de inmunógenos      vacunales.</span></font></p>       <p style='text-align:justify;line-height: 11.0pt'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>Para evaluar      la respuesta específica hacia LPS de cada una de las cepas analizadas en el      Western blot (Figura 3), se empleó un método que eliminara las proteínas presentes      y solo quedaran al transferirse al papel de nitrocelulosa los LPS presentes      (Figura<span style='text-transform:uppercase'> 4)</span>.  Como se observa el reconocimiento      hacia LPS, aunque sigue siendo fuerte para el suero fq3, este es diferente      de un serotipo a otro. Pues para <i>P. aeruginosa</i> se han reportado hasta      la fecha 20 tipos diferentes de LPS banda B, banda responsable de su diferencia      por serotipificación (<span style=' REF _Ref153350212 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>30      </span>) y es de especial interés para la producción de candidatos vacunales      basados en LPS. Las proteínas de membrana externa en <i>P. aeruginosa</i>      son similares, de ahí el reconocimiento casi idéntico observado en <st1:PersonName ProductID="la Figura" w:st="on">la Figura<span style='text-transform:uppercase'> 3</span>, que es ya      diferente en <st1:PersonName ProductID="la Figura" w:st="on">la Figura<span style='text-transform:uppercase'>      4.</span> Este reconocimiento está en dependencia de los anticuerpos del tipo      IgG que se miden en este ensayo y que son un reflejo del grado de exposición      a esta bacteria.</span></font></p> </div> <font size="2" face="Tahoma"><br clear=all style='page-break-before:auto;'> </font>      <div class=Section7>        <p><font size="2" face="Tahoma"><img src="/img/revistas/vac/v16n1/f0402107.jpg" width="649" height="275">      </font></p>       
<p><font face="Tahoma">Figura 4. Western blot de 10 cepas de <i>Pseudomonas      aeruginosa</i> para evaluar el reconocimiento hacia LPS por parte de los sueros      FQ3 (paciente con fibrosis quística) y suero SP36 (paciente con sepsis nosocomial),      con alto reconocimiento hacia exotoxina A, proteasa alcalina y elastasa. Para      la preparación de los LPS se empleó el método de digestión con proteinasa      K de Hitchcock y Brown, 1983.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p></p>   </div> <font size="2" face="Tahoma"><br clear=all style='page-break-before:auto;'> </font>      <div class=Section8>        <p style='text-align:justify'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>La respuesta de anticuerpos está influenciada por las      condiciones inmunológicas del paciente, el tratamiento de antibióticos y factores      relativos a la bacteria que coloniza, tales como fenotipo y producción de      exoproteínas. Pocos artículos refieren el papel diagnóstico de la respuesta      de anticuerpos en este tipo de infecciones, pero se conoce cómo aumenta la      producción de los mismos en determinados tipos de infección. En pacientes      con fibrosis quística, por ejemplo, una de las formas de medir severidad de      la infección es según los títulos de IgG hacia la exotoxina A, pero estos      títulos no son suficientes para eliminar la infección pues la forma de crecimiento      en biopelícula hace más persistente y difícil de eliminar la bacteria por      el sistema inmune del hospedero (<span style=' REF _Ref153504296 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>23      </span>). Es bien conocido que en individuos con niveles normales de inmunoglobulinas      la infección no progresa pues es neutralizado uno de los eventos principales      de la colonización, que es la adherencia, donde los anticuerpos juegan un      importante papel en el bloqueo de esta etapa.</span></font></p>       <p style='text-align:justify'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>En muchas infecciones en humanos el patógeno y el hospedero      coexisten por años e incluso décadas (ejemplo: VIH, herpes virus, tuberculosis      y malaria). En pacientes con fibrosis quística ocurre lo mismo y aunque la      respuesta inmune humoral en estos pacientes es similar a individuos sanos,      esta no es capaz por sí sola de eliminar el patógeno en infecciones crónicas.      Poco es conocido acerca de la expansión clonal que ocurre en el patógeno durante      infecciones prolongadas que involucran adaptaciones genéticas importantes.      En infecciones de pacientes con fibrosis quística pulmonar se observa que      los factores de virulencia  requeridos para el inicio de la infección aguda      van diferenciándose en el transcurso de infecciones. Este fenómeno se debe      posiblemente a que el fenotipo de las cepas de <i>P. aeruginosa</i> presente      difiere cada vez más del fenotipo salvaje como consecuencia de cambios que      ocurren en la expresión del genoma bacteriano en infecciones prolongadas (<span style=' REF _Ref153350227 \\r \\h  \\* MERGEFORMAT &quot;'>31 </span>). Como      consecuencia la respuesta humoral hacia el patógeno también ha de variar,      pues el microorganismo modifica durante la infección crónica la expresión      de estos factores, a modo de sobrevivir en el ambiente donde desarrolla su      colonización y de esta manera evade la acción protectora del sistema inmune      del hospedero.</span></font></p>       <p style='text-align:justify'><font size="2" face="Tahoma"><span style='font-size:9.0pt'>Las      inmunoglobulinas permiten como herramienta diagnóstica, seguir en qué momento      de la infección bacteriana se encuentra el paciente y su empleo para el diagnóstico      de infecciones en pacientes de riesgo, como a los pacientes con fibrosis quística      pudiera brindarse una mayor calidad en la atención que se le da a este tipo      de pacientes en nuestro país.</span></font></p>       <p style='text-align:justify'><font size="2" face="Tahoma"><b><span style='font-size:11.0pt'>Referencias</span></b></font></p>       <!-- ref --><p style='text-align:justify'>1. Zheng M. et al. CD4+T cell-independent DNA      vaccination against opportunistic infections. The Journal of Clinical Investigation      2005; 115:3536-3544. <!-- ref --><p>2. Corech R, Rao A, Laxova A, Moss J, Rock MJ, Li Z, Kosorok MR, Splaingard      ML, Farrell PM, and Barbieri JT. Early Immune Response to the Components of      the Type III System of Pseudomonas aeruginosa in Children with Cystic Fibrosis.      Journal of Clinical Microbiology 2005; 43(8):3956-3962.<p>3. Bauman SJ, Kuehn MJ. Purification of outer membrane vesicles from Pseudomonas      aeruginosa and their activation of an IL-8 response. Microbes and Infection      2006;(8):2400-2408.</p>       <!-- ref --><p> 4. Li L, Ledizet M, Kar K, Koski RA. and Kazmierczak BI. An indirect enzyme-linked      immunosorbent assay for rapid and quantitative assessment of Type III virulence      phenotypes of Pseudomonas ; aeruginosa isolates. Annals of Clinical Microbiology      and Antimicrobials 2005; 4(22):1-14.<!-- ref --><p>5. Wagner VE, Bushnell D, Passador L, Brooks AI, and Iglewski BH. Microarray      Analysis of Pseudomonas aeruginosa Quorum-Sensing Regulons: Effects of Growth      Phase and Environment. Journal of Bacteriology 2003;185(7):2080-2095 <!-- ref --><p>6. Filloux A, Vallet I. Biofilm: mise en place et organisation d'une communaut&eacute;      bact&eacute;rienne. Medicine/Sciences 2003; 19(1):1-7. <!-- ref --><p>7. West SE, Zeng L, Lee BL, Kosorok MR, Laxova A, Rock MJ, Splaingard MJ,      Farrell PM. Respiratory infections with Pseudomonas aeruginosa in children      with cystic fibrosis: early detection by serology and assessment of risk factors.      JAMA 2002; 287(22):2958-67 <!-- ref --><p>8. Horii T, Muramatsu H, Monji A, Miyagishima D. Release of exotoxin A, peptidoglycan      and endotoxin after exposure of clinical Pseudomonas aeruginosa isolates to      carbapenems in vitro. 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