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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Comparación de la antigenicidad de dos construcciones peptídicas de mimotopos del virus de la hepatitis A mediante suero de ratones inmunizados]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Antigenicity of peptides may vary depending on the format in which the peptide sequence is synthesized. In this study we compared the antigenicity of two mimotopes of hepatitis A in two different formats: linear peptides and multiple antigen peptides. Sera from mice were immunized with a tetrameric multiple antigen peptide containing the two mimotope peptide sequences. Mimotopes 46 and 56 were useful to evaluate the time course of the antibody response either as linear peptides or in the multiple antigen peptide formats. The Multiple antigen peptide formats allowed greater sensitivity in the detection of antibodies induced by the immunogen. These results are important for further application of the evaluated antigens in an ELISA for immunogenicity studies.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</b></font></p>    <p align="right">&nbsp;</p>    <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="4"><b>Comparaci&oacute;n  de la antigenicidad de dos construcciones pept&iacute;dicas de mimotopos del virus  de la hepatitis A mediante suero de ratones inmunizados</b></font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">  </font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>Antigenicity  comparison of two peptidic constructions of mimotopes from Hepatitis A virus using  immunized mice serum </b></font></p>    <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp; </p>    <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>Alicia  Aguilar,<sup>1*</sup> Frank Camacho,<sup>1</sup> Nevis Amin,<sup>1</sup> Jorge  Luis Prieto,<sup>1</sup> Hilda Garay,<sup>2</sup> Osvaldo Reyes,<sup>2</sup> Armando  Acosta<sup>1</sup> </strong> </font></p>    <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><sup>1.</sup>  Instituto Finlay, Centro de Investigaci&oacute;n-Producci&oacute;n de Vacunas.  Ave. 27, No. 19805, La Lisa, A.P. 16017 Cod. 11600. La Habana, Cuba.    <br> <sup>2.</sup>  Centro de Ingenier&iacute;a Gen&eacute;tica y Biotecnolog&iacute;a. P.O. Box 6162.  La Habana 10600, Cuba. </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">e.mail:<b>  </b><a href="mailto:aaguilar@finlay.edu.cu">aaguilar@finlay.edu.cu</a>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> * Licenciada  en Microbiolog&iacute;a, M&aacute;ster en Microbiolog&iacute;a e Investigador  agregado. </font>     <p>&nbsp;     <p>&nbsp; <hr align="JUSTIFY" />     <p><font face="Verdana"><strong><font size="2">RESUMEN</font></strong></font>      <p  align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La  antigenicidad de los p&eacute;ptidos puede variar en dependencia del formato en  que sean sintetizados. En el presente trabajo se compar&oacute; la antigenicidad  de dos mimotopos del virus de la hepatitis A en dos formatos diferentes: como  p&eacute;ptidos lineales y como sistemas de p&eacute;ptidos de m&uacute;ltiples  ant&iacute;genos. Se emplearon sueros de ratones que fueron inmunizados con un  sistema de p&eacute;ptidos de m&uacute;ltiples ant&iacute;genos (tetram&eacute;rico)  que conten&iacute;an las secuencias pept&iacute;dicas correspondientes a los dos  mimotopos. Los mimotopos 46 y 56, tanto como p&eacute;ptidos lineales o en forma  de sistema de p&eacute;ptidos de m&uacute;ltiples ant&iacute;genos, fueron &uacute;tiles  para evaluar la respuesta de anticuerpos en el tiempo. El formato de sistema de  p&eacute;ptidos de m&uacute;ltiples ant&iacute;genos permiti&oacute; una mayor  sensibilidad en la detecci&oacute;n de los anticuerpos inducidos por el inmun&oacute;geno.  Estos resultados son de importancia en estudios de inmunogenicidad para una posterior  aplicaci&oacute;n de los ant&iacute;genos evaluados en un ensayo tipo ELISA. </font>      <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Palabras  clave:</b> p&eacute;ptidos sint&eacute;ticos, antigenicidad, hepatitis A. </font>      <p align="JUSTIFY"> <hr align="JUSTIFY" />     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ABSTRACT</b></font>      <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Antigenicity  of peptides may vary depending on the format in which the peptide sequence is  synthesized. In this study we compared the antigenicity of two mimotopes of hepatitis  A in two different formats: linear peptides and multiple antigen peptides. Sera  from mice were immunized with a tetrameric multiple antigen peptide containing  the two mimotope peptide sequences. Mimotopes 46 and 56 were useful to evaluate  the time course of the antibody response either as linear peptides or in the multiple  antigen peptide formats. The Multiple antigen peptide formats allowed greater  sensitivity in the detection of antibodies induced by the immunogen. These results  are important for further application of the evaluated antigens in an ELISA for  immunogenicity studies. </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Key  words</b>: synthetic peptides, antigenicity, hepatitis A. </font> <hr align="JUSTIFY" />      ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <p  align="JUSTIFY"><font face="Verdana"><strong><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></strong></font>  <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los  p&eacute;ptidos sint&eacute;ticos que simulan ep&iacute;topes espec&iacute;ficos  de prote&iacute;nas infecciosas virales se emplean en sistemas diagn&oacute;sticos  para varias enfermedades y en el dise&ntilde;o molecular de vacunas (1-9). </font>      <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Resultados  contradictorios se han obtenido con respecto a la antigenicidad de los p&eacute;ptidos  debido a que los mismos pueden adoptar diferentes conformaciones al emplearlos  en inmunoensayos. Estas diferencias se han reportado al usarlos como p&eacute;ptidos  libres en soluci&oacute;n, conjugados a prote&iacute;nas, sistema de p&eacute;ptidos  de m&uacute;ltiples ant&iacute;genos (MAP, del ingl&eacute;s, Multiple antigen  peptide) (10). </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Por  otra parte, la conformaci&oacute;n pept&iacute;dica particular que preferiblemente  reconocen los anticuerpos no es posible predecirla, por lo que para emplear p&eacute;ptidos  como ant&iacute;genos de recubrimiento en ensayos inmunoenzim&aacute;ticos es  indispensable evaluar su antigenicidad en diferentes formatos (8, 10). </font>      <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los  p&eacute;ptidos de peque&ntilde;o tama&ntilde;o son empleados para la detecci&oacute;n  de anticuerpos (8). Estos p&eacute;ptidos, particularmente aquellos que carecen  de cadenas laterales hidrof&oacute;bicas, por lo general son poco antig&eacute;nicos  en inmunoensayos de fase s&oacute;lida (11). Lo anterior explica por su pobre  capacidad para unirse a estas superficies, as&iacute; como por la p&eacute;rdida  de su anteginicidad, debido a una posible no exposici&oacute;n de las cadenas  laterales antig&eacute;nicas esenciales cuando se unen a la fase s&oacute;lida  (11). La eficiencia con que se une un p&eacute;ptido depende de su tama&ntilde;o  (11) y de la interacci&oacute;n hidrof&oacute;bica entre este y la superficie  del pl&aacute;stico (12). El sistema de MAP es utilizado para mejorar la antigenicidad  de las secuencias pept&iacute;dicas, dada su naturaleza multim&eacute;rica (6,  8, 9). Esta alternativa permite superar la capacidad de uni&oacute;n de los p&eacute;ptidos  a la superficie de la placa de microtitulaci&oacute;n y aumenta la sensibilidad  de la detecci&oacute;n (6, 8, 9). En nuestro laboratorio se identificaron cuatro  mimotopos del virus de la hepatitis A (VHA) a partir de bibliotecas de p&eacute;ptidos  expuestos en la superficie de fagos filamentosos, los cuales pudieran tener aplicaci&oacute;n  en el desarrollo de un candidato vacunal contra este pat&oacute;geno. En el presente  trabajo nos propusimos comparar la antigenicidad de dos construcciones pept&iacute;dicas  de estos mimotopos, empleando sueros de ratones inmunizados. </font>     <p align="JUSTIFY">&nbsp;      <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana"><strong><font size="3">MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</font></strong></font>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>S&iacute;ntesis  de p&eacute;ptidos lineales y MAP </b></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se  sintetizaron comercialmente dos p&eacute;ptidos lineales (Pierce, United Kingdom),  de acuerdo con dos de las secuencias (BA1-46 y BA1-56) identificadas previamente  (13), las cuales se seleccionaron a partir de una biblioteca de p&eacute;ptidos  expuestos en fagos, empleando sueros de pacientes positivos a anticuerpos anti-HAV  (<a href="#f1">Fig 1</a>). Los p&eacute;ptidos tuvieron m&aacute;s del 95% de  pureza. </font>     <p align="center"><img src="/img/revistas/vac/v22n3/f0108313.jpg" width="416" height="559">  <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><a name="f1" id="t"></a></font>      
<p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Tres  MAPs (MAP46-56, MAP46, MAP56) de cuatro ramificaciones se sintetizaron en el Laboratorio  de P&eacute;ptidos Sint&eacute;ticos de la Divisi&oacute;n de Qu&iacute;mica F&iacute;sica  del Centro de Ingenier&iacute;a Gen&eacute;tica (CIGB), de La Habana, Cuba (<a href="#f1">Fig.  1</a>). Se sintetizaron en fase s&oacute;lida usando la estrategia Fmoc/tbu (14).  Los MAPs se purificaron por cromatograf&iacute;a l&iacute;quida en fase reversa  (RP-HPLC); fueron caracterizados por HPLC anal&iacute;tica y espectrometr&iacute;a  de masas y tuvieron m&aacute;s del 95% de pureza. </font>     <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Inmunizaci&oacute;n  de ratones </font></b>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Ratones  BALB/c machos (cinco por grupo) se inmunizaron intraperitonealmente (i.p) con  100 &#181;g del MAP46-56, emulsificado 1:1 en adyuvante completo de Freund (ACF)  y se reinmunizaron con 100 &#181;g de ant&iacute;geno emulsificados 1:1 en adyuvante  incompleto de Freund (AIF) a los 14, 28 y 42 d&iacute;as. Un grupo control se  inmuniz&oacute; con soluci&oacute;n salina tamponada (SST) incorporado en ACF/AIF.  Las muestras de sueros se colectaron antes de la primera inmunizaci&oacute;n (suero  preinmune) y 14 d&iacute;as despu&eacute;s de cada inmunizaci&oacute;n se almacenaron  a -20 &#176;C hasta su utilizaci&oacute;n. Los experimentos en animales se llevaron  a cabo de acuerdo con los requerimientos legales de las autoridades nacionales.  </font>     <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Ensayo  de ELISA</font></b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">  </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Placas  de 96 pozos (Nunc Maxisorp F8, Life Technologies Limited, Paisley) se recubrieron  con los p&eacute;ptidos lineales y los MAP46-56, MAP46 y MAP56 a una concentraci&oacute;n  de 10 &#181;g/mL y se incubaron durante toda la noche a 4 &#186;C. Se lavaron  tres veces con SST/0,05% Tween 20 (SST-T) y se bloquearon con SST-T/3% leche descremada  durante 1 h a 37 &#186;C. Las muestras de sueros (diluidas 1/50) se adicionaron  (100 L/pozo) por duplicado y se incubaron 2 h a 37 &#186;C. Las placas se lavaron  tres veces con SST-T y se incubaron 1 h a 37 &#186;C con 100 &#181;L/pozo de anti  IgG de rat&oacute;n conjugada con peroxidasa de r&aacute;bano picante (HRP) (Sigma-Aldrich,  Reino Unido, diluido 1:5000). Despu&eacute;s de lavadas las placas la reacci&oacute;n  se desarroll&oacute; durante 15 min con sustrato o-fenilendiamina dihidroclorada  (OPD) y se detuvo con H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> 0,1M; la absorbancia a 492 nm  se registr&oacute; mediante un lector de ELISA autom&aacute;tico (Dinex Technologies,  Reino Unido). Las densidades &oacute;pticas (DO) 492 nm se analizaron para evaluar  cada ant&iacute;geno en cuanto a su capacidad de ser reconocidos por los anticuerpos  inducidos en los diferentes tiempos estudiados. La raz&oacute;n de las DO 492  nm del suero immune/ DO 492 nm suero preinmune se emple&oacute; para comparar  los diferentes ant&iacute;genos en cuanto a su capacidad para ser reconocidos  por anticuerpos antip&eacute;ptido. </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para  la titulaci&oacute;n de los anticuerpos antip&eacute;ptidos se emple&oacute; el  ELISA, previamente descrito. Se evaluaron diluciones (1/50, 1/100, 1/500, 1/1000,  1/5000 y 1/10000) de los sueros. El t&iacute;tulo de anticuerpos antip&eacute;ptidos  se defini&oacute; como la m&aacute;s alta diluci&oacute;n donde el valor de DO  492 nm fuese tres veces la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar del valor de DO 492  nm obtenida para el suero preinmune. </font>     <p><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">An&aacute;lisis  estad&iacute;stico </font></b>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se  evalu&oacute; la anormalidad de la distribuci&oacute;n de los datos directos o  transformados (log 10, Kolmogorov-Smirnov con Dallal-Wilkinson Lillie para el  valor de P), as&iacute; como la homogeneidad de varianza (Bartlett's test). Para  comparar la antigenicidad de los diferentes ant&iacute;genos se emple&oacute;  el An&aacute;lisis de Varianza (One-way ANOVA) y para evaluar el reconocimiento  del mismo ant&iacute;geno por los anticuerpos despu&eacute;s de inmunizaciones  sucesivas se emple&oacute; el ANOVA de medidas repetitivas. Posteriormente las  medias se compararon mediante la prueba de comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple  de Turkey. Para los an&aacute;lisis se utiliz&oacute; el programa estad&iacute;stico  GraphPad Prism (San Diego, CA, USA, <a href="http://www.graphpad.com" target="_blank">http://www.graphpad.com</a>).  Los valores de p &lt; 0,05 se consideraron significativos. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="JUSTIFY">&nbsp;      <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><strong>RESULTADOS</strong><b>  Y DISCUSI&Oacute;N</b> </font>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Inducci&oacute;n  de la respuesta de anticuerpos anti-MAP46-56 </b></font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El  MAP46-56 es un heterod&iacute;mero de cuatro ramificaciones con dos copias de  cada uno de los p&eacute;ptidos que lo forman (46 y 56). Para la inducci&oacute;n  de anticuerpos anti-MAP46-56 en los ratones se emple&oacute; un esquema de cuatro  inmunizaciones cada 14 d&iacute;as. Para determinar la inducci&oacute;n de respuesta  de anticuerpos contra este MAP se emple&oacute; un ELISA en el cual dicho MAP  se emple&oacute; como ant&iacute;geno de recubrimiento. Los anticuerpos anti-MAP46-56  se indujeron a partir de la tercera inmunizaci&oacute;n p &lt; 0,001 (d&iacute;a  42) (<a href="#f2">Fig. 2</a>). No se encontraron diferencias significativas en  los niveles de anticuerpos producidos a los d&iacute;as 42 y 56 p &gt; 0,05 (<a href="#f3">Fig.  3</a>). El grupo control no desarroll&oacute; anticuerpos anti-MAP46-56 en ninguno  de los tiempos evaluados (<a href="#f2">Fig. 2</a>). Los sueros de estos ratones  inmunizados se emplearon para comparar las dos construcciones pept&iacute;dicas  que contienen los mimotopos 46 y 56 en cuanto a su capacidad de ser reconocidos  por los anticuerpos. </font>     <p align="center"><img src="/img/revistas/vac/v22n3/f0208313.jpg" width="512" height="480"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><a name="f2" id="t"></a></font>      
<p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Comparaci&oacute;n  de la antigenicidad de los mimotopos 46 y 56 como p&eacute;ptidos lineales y MAPs  </b></font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n  de dos formatos pept&iacute;dicos para determinar la inducci&oacute;n de respuesta  en el tiempo</b> </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Dado  que los p&eacute;ptidos adoptan diferentes conformaciones al emplearlos en inmunoensayos,  es muy &uacute;til evaluar la antigenicidad de los mismos en diferentes formatos  (8). En el presente trabajo para evaluar la antigenicidad de los mimotopos 46  y 56 se sintetizaron dos formatos diferentede cada secuencia pept&iacute;dica:  p&eacute;ptidos lineales y MAPs tetram&eacute;ricos compuestos por cuatro copias  de los p&eacute;ptidos en estudio <a href="#f1">(Fig. 1</a>), los cuales se emplearon  como ant&iacute;genos de recubrimiento en el ELISA y se enfrentaron a los sueros  de los ratones inmunizados con el MAP46-56. </font>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El  suero preinmune y los obtenidos a los d&iacute;as 14 y 28 no reconocieron los  dos p&eacute;ptidos evaluados en ninguno de los formatos sintetizados; solo los  sueros obtenidos a los d&iacute;as 42 y 56 mostraron reconocimiento, como era  esperado, debido a que el MAP46-56 indujo respuesta a partir de la tercera inmunizaci&oacute;n  (<a href="#f2">Fig. 2</a>). Para un mismo formato pept&iacute;dico no hubo diferencias  en el reconocimiento de los p&eacute;ptidos 46 y 56 por los sueros obtenidos al  d&iacute;a 42 y 56. Los p&eacute;ptidos 46 y 56, tanto los lineales como en el  formato de MAP detectaron la presencia de los anticuerpos espec&iacute;ficamente  en los tiempos en los cuales se produjeron (42 y 56 d&iacute;as) tal y como fue  previamente determinado al emplear el MAP46-56. Los resultados fueron coincidentes  con independencia del ant&iacute;geno de recubrimiento empleado. De lo anterior  podemos plantear que ambas construcciones pept&iacute;dicas resultaron &uacute;tiles  para evaluar la inducci&oacute;n de respuesta de anticuerpos en el tiempo. </font>      <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Determinaci&oacute;n  de niveles de anticuerpos inducidos empleando los dos construcciones pept&iacute;dicas</b>  </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las  secuencias pept&iacute;dicas 46 y 56 en el formato MAP fueron mejor reconocidas  por los anticuerpos que como p&eacute;ptidos lineales (<a href="#f3">Fig. 3</a>  y <a href="#f4">Fig. 4</a>). Ambos p&eacute;ptidos en forma de MAP fueron reconocidos  por diluciones mayores de los sueros (<a href="#f4">fig. 4</a>). Estudios comparativos  entre MAPs y p&eacute;ptidos lineales demuestran que el arreglo multim&eacute;rico  de los MAPs permite superar la dificultad de los p&eacute;ptidos lineales para  unirse a las superficies s&oacute;lidas, lo que resulta en una mejor capacidad  de uni&oacute;n a dichas superficies y por tanto en un aumento de la sensibilidad,  en comparaci&oacute;n con sus respectivos mon&oacute;meros (12, 15). Se plantea  que los MAPs son capaces de unir una cantidad significativamente mayor de anticuerpos  que el p&eacute;ptido monom&eacute;rico a la misma concentraci&oacute;n (11).  Esto puede estar favorecido debido a que en la estructura del MAP el p&eacute;ptido  antig&eacute;nico representa m&aacute;s del 80% de la misma (11). Con los MAPs  se detectan bajas concentraciones de anticuerpos en el suero (16, 17), lo cual  explica que los t&iacute;tulos de anticuerpos calculados cuando se emplearon los  MAPs como ant&iacute;genos de recubrimiento fueron mayores que al emplear p&eacute;ptidos  lineales. Los p&eacute;ptidos 46 y 56, tanto como p&eacute;ptidos lineales o en  forma de MAPs, fueron &uacute;tiles para evaluar la respuesta de anticuerpos en  el tiempo. El formato MAP permiti&oacute; una mayor sensibilidad en la detecci&oacute;n  de los anticuerpos inducidos por el inmun&oacute;geno. Estos resultados son de  importancia para una posterior aplicaci&oacute;n de los ant&iacute;genos evaluados  en un ensayo tipo ELISA para estudios de inmunogenicidad. </font>     <p align="center"><img width="408" height="550" src="/img/revistas/vac/v22n3/f0308313.jpg"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><a name="f3" id="t"></a></font>    
<p align="center">  <img src="/img/revistas/vac/v22n3/f0408313.jpg" width="408" height="550"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><a name="f4" id="t"></a></font>      
<p>&nbsp;</p>    <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>REFERENCIAS</strong></font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"></font>  </p>    <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1.  Dubois ME, Hammarlund E, Slifka MK. Optimization of peptide-based ELISA for serological  diagnostics: a retrospective study of human monkeypox infection. Vector Borne  Zoonotic Dis 2012;12(5):400-9.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2.  Fern&aacute;ndez L, Chan WC, Egido M, G&oacute;mara MJ, Haro I. Synthetic peptides  derived from an N-terminal domain of the E2 protein of GB virus C in the study  of GBV-C/HIV-1 co-infection. J Pept Sci 2012;18(5):326-35.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">3.  Vergara-Alert J, Argilaguet JM, Busquets N, Ballester M, Mart&iacute;n-Valls GE,  Rivas R, et al. Conserved synthetic peptides from the hemagglutinin of influenza  viruses induce broad humoral and T-Cell responses in a pig model. PLoS ONE 2012;7(7):e40524.  Disponible en: <a href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22815759%20" target="_blank">http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22815759  </a></font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">4.  Krivitskaia VZ, Somonina AA, Votsekhovskaia EM, Amosova IV, Mil'kint KK, Sukhovetskaia  VF, et al. The application of synthetic peptides to characterize the site-directed  antiviral humoral immune response in patients with respiratory syncytial viral  infection. Klin Lab Diagn 2012;(7):42-5.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">5.  Garay H, Men&eacute;ndez T, Cruz-Leal Y, Coizeau E, Noda J, Morera V, et al. 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Disponible en:<a href="http://www.virologyj.com/content/6/1/186" target="_blank">http://www.virologyj.com/content/6/1/186</a>  </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">8.  Casey JL, Coley AM, Street G, Parisi K, Devine PL, Foley M. Peptide mimotopes  selected from a random peptide library for diagnosis of Epstein-Barr virus infection.  J Clin Microbiol 2006;44:764-71.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">9.  Gomara MJ, Riedemann S, Vega I, Ibarra H, Ercilla G, Haro I. Use of linear and  multiple antigenic peptides in the immunodiagnosis of acute hepatitis A virus  infection. J Immunol Methods 2000;234 (1-2):23-34.     </font>     <!-- ref --><p align="JUSTIFY"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">10.  Van Regenmortel MVH. Antigenicity and immunogenicity of synthetic peptides. 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