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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización de aislamientos clínicos de Leptospira para su uso en vacunas veterinarias]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[One of the most important approaches for the development of Leptospira immunogens is to have very well characterized strains by their virulence and which are representative of the circulating serogroups from the clinical and veterinarian point of view. All of this allows to guarantee immunogens capable to protect against the serovars present in the formulation and that affect animals at risk. This paper was carried out from isolations of the causal agent of five autochthonous clinical cases of Leptospira at Holguín, by means of phenotypic conventional methods: growth at 13ºC, in supplemented media with 8-azaguanina and in the presence of sodium chloride. The isolations were also classified until serogroup level by the microaglutination technique. A strain of Ballum serogroup was selected and characterized from these isolations as a vaccinal candidate. The isolations did not show growth at 13ºC, not even when 8-azaguanina (2.25 mg/mL) was added to the culture, while all the strains showed conversion to spherical form in the presence of sodium chloride (1M). The classification of the isolations allowed having two strains belonging to the serogroup Ballum and two to Pomona. The selected strain showed high virulence and pathogenicity in the Syrian Hamster bio model, as well as a good stability in the culture media. Its classification until the serovar level by means of the use of monoclonal antibodies determined that it belonged to the Ballum serovar. The present paper sets for the first-time the bases for novel vaccinal formulations in animals, containing the serogroup Ballum.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</b></font></p>     <p>&nbsp;</p> 	    <p> <b><font face="verdana" size="4">Caracterización de aislamientos clínicos de <em>Leptospira</em> para su uso en vacunas veterinarias</font></b></p> 	    <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><span lang=EN-US>Characterization of clinical isolates of <em>Leptospira</em> for veterinary vaccines</span></b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Yaritza Cuba-Romero, <sup>1*</sup> Noemi Gainza-Santos, <sup>1</sup> Niurka Batista-Santiesteban, <sup>2</sup> Alfredo Saltaren-Cobas<sup>3</sup>, Mariela Naranjo-Medina<sup>2</sup></b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>1</sup>  Laboratorio de Leptospira del Grupo Empresarial LABIOFAM. La Habana. Cuba.    <br> 	<sup>2</sup> Instituto Finlay. La Habana. Cuba.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> 	<sup>3 </sup> Centro Provincial de Higiene y Epidemiolog&iacute;a. Holgu&iacute;n.</font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>email</b>: <a href="mailto:marielanar.finlay.edu.cu">marielanar@finlay.edu.cu</a></font></p>         <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">*Doctora, Master en Veterinaria, especialista del laboratorio de Leptospira.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr align="left" />     <p><font face="Verdana"><strong><font size="2">RESUMEN</font></strong></font>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Uno de los criterios m&aacute;s importantes para el desarrollo de inmun&oacute;genos de <em>Leptospira</em> es contar con cepas bien caracterizadas por su virulencia y representativa de los serogrupos circulantes desde el punto de vista cl&iacute;nico y veterinario. Todo lo cual permite garantizar inmun&oacute;genos capaces de proteger contra los serovares presente en la formulaci&oacute;n y que afectan a los animales en riesgo. Este trabajo se realiz&oacute; a partir de aislamientos del agente causal de cinco casos cl&iacute;nicos aut&oacute;ctonos de <em>Leptospira</em> en la provincia de Holgu&iacute;n, Cuba, mediante m&eacute;todos convencionales: crecimiento a 13&ordm;C, medio suplementado con 8-azaguanina y en presencia de cloruro de sodio. Adem&aacute;s, los aislamientos se clasificaron hasta nivel de serogrupo mediante la t&eacute;cnica de microaglutinaci&oacute;n. A partir de estos aislamientos fue seleccionada y caracterizada una cepa del serogrupo Ballum como candidato vacunal. Los aislamientos no mostraron crecimiento a 13&ordm;C, ni cuando se le a&ntilde;adi&oacute; al medio 8-azaguanina (2,25 mg/mL), mientras que todas las cepas mostraron conversi&oacute;n a forma esf&eacute;rica en presencia de cloruro de sodio (1M). La clasificaci&oacute;n de los aislamientos permiti&oacute; disponer de dos cepas pertenecientes al serogrupo Ballum y dos a Pomona. La cepa seleccionada mostr&oacute; alta virulencia y patogenicidad en el biomodelo H&aacute;mster Sirio, adem&aacute;s de buena estabilidad en los medios de cultivos. Su clasificaci&oacute;n hasta el nivel de serovar mediante el uso de anticuerpos monoclonales determin&oacute; su pertenencia al serovar Ballum. El presente trabajo, por primera vez, sienta las bases para formulaciones vacunales novedosas en animales, conteniendo el serogrupo Ballum.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b>  <em>Leptospira</em>, Ballum, vacunas.</font></p> <hr align="left" />     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana"><strong><font size="2">ABSTRACT</font></strong></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><span lang=EN-US>One of the most important approaches for the development of <em>Leptospira</em> immunogens is to have very well characterized strains by their virulence and which are representative of the circulating serogroups from the clinical and veterinarian point of view. All of this allows to guarantee immunogens capable to protect against the serovars present in the formulation and that affect animals at risk. This paper was carried out from isolations of the causal agent of five autochthonous clinical cases of <em>Leptospira</em> at Holgu&iacute;n, by means of phenotypic conventional methods: growth at 13&ordm;C, in supplemented media with 8-azaguanina and in the presence of sodium chloride. The isolations were also classified until serogroup level by the microaglutination technique. A strain of Ballum serogroup was selected and characterized from these isolations as a vaccinal candidate. The isolations did not show growth at 13&ordm;C, not even when 8-azaguanina (2.25 mg/mL) was added to the culture, while all the strains showed conversion to spherical form in the presence of sodium chloride (1M). The classification of the isolations allowed having two strains belonging to the serogroup Ballum and two to Pomona. The selected strain showed high virulence and pathogenicity in the Syrian Hamster bio model, as well as a good stability in the culture media. Its classification until the serovar level by means of the use of monoclonal antibodies determined that it belonged to the Ballum serovar. The present paper sets for the first-time the bases for novel vaccinal formulations in animals, containing the serogroup Ballum.</span></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><span lang=EN-US>Keywords:</span></b></font><font face="verdana" size="2">  <em>Leptospira</em>, Ballum, vaccines.</font></p> <hr align="left" />     <p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana"><strong><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></strong></font>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La leptospirosis, es una de las zoonosis m&aacute;s difundidas en el mundo, la padecen por igual el hombre y animales, tanto dom&eacute;sticos como silvestres (1). Este microorganismo pertenece al orden Spirochaetales, a la familia Leptospiraceae y al g&eacute;nero <em>Leptospira</em>, la cual re&uacute;ne dos especies <em>L. interrogans</em> (pat&oacute;genas) y <em>L. biflexa</em> (no pat&oacute;gena). </font><font face="verdana" size="2">Debido al incremento de la incidencia de esta enfermedad, tanto en pa&iacute;ses desarrollados como en los subdesarrollados, es de vital importancia el estudio de la misma para la medicina veterinaria y humana. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La clasificaci&oacute;n de aislamientos, aunque no es de mucho valor cl&iacute;nico, tiene un gran impacto en los estudios epizootiol&oacute;gicos, ya que nos permite un control estricto de los serogrupos y serovares circulantes en animales en cualquier regi&oacute;n geogr&aacute;fica. Adem&aacute;s de ser imprescindible en la elaboraci&oacute;n de inmun&oacute;genos que brinden protecci&oacute;n a las especies inmunizadas. </font><font face="verdana" size="2">La leptospirosis veterinaria sigue siendo un problema de salud para nuestro pa&iacute;s, ya que los animales constituyen la principal fuente de transmisi&oacute;n de la enfermedad al hombre, de ah&iacute; la importancia de contar con vacunas veterinarias que cubran todos los serovares circulantes en las especies animales.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El Grupo Empresarial LABIOFAM (La Habana, Cuba), desde 1993 ha desarrollado una vacuna veterinaria, registrada, que incluye las cepas <em>L. interrogans</em> serovar Copenhageni, <em>L. interrogans</em> serovar Canicola, <em>L. interrogans</em> serovar Mozdok, para la protecci&oacute;n de las especies porcina, bovina y canina. </font><font face="verdana" size="2">Estudios recientes han demostrado que <em>L. interrogans</em> serovar Ballum es hoy la cepa de mayor circulaci&oacute;n en estas especies (2) y como se puede apreciar este serovar no est&aacute; incluido en la formulaci&oacute;n vacunal existente. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Aunque se han reportado pocos trabajos en los que se evidencia cierta protecci&oacute;n cruzada entre los serovares de leptospira (3), existe una opini&oacute;n generalizada entre los investigadores de la no existencia de protecci&oacute;n cruzada entre serogrupos/serovares que conforman una misma formulaci&oacute;n (3), de ah&iacute; que cobre gran importancia la inclusi&oacute;n de los serovares de mayor circulaci&oacute;n en el pa&iacute;s en las formulaciones utilizadas, con el fin de conferir mayor protecci&oacute;n a los animales y por ende al hombre. Para contar con inmun&oacute;genos capaces de proteger a las especies inmunizadas, es imprescindible la clasificaci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n de aislamientos de los serovares que conforman la formulaci&oacute;n, por lo que este trabajo de investigaci&oacute;n tiene como prop&oacute;sito clasificar por m&eacute;todos fenot&iacute;picos y serol&oacute;gicos aislamientos cl&iacute;nicos pertenecientes al serogrupo Ballum para su futura inclusi&oacute;n en formulaciones vacunales.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana"><strong>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</strong></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cepas bacterianas </b></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La selecci&oacute;n de las cepas candidatas vacunales se realiz&oacute; a partir de cinco aislamientos cl&iacute;nicos de <em>Leptospira</em> procedentes del Centro Provincial de Higiene y Epidemiolog&iacute;a de Holgu&iacute;n. </font><font face="verdana" size="2">Estos aislamientos se obtuvieron de personas con sintomatolog&iacute;a compatible con una leptospirosis en diferentes centros asistenciales de esta provincia, entre marzo y junio del 2012. Todas las cepas se aislaron por hemocultivo en el medio Korthoff (4). </font><font face="verdana" size="2">Como controles en los diferentes ensayos se utilizaron las cepas vacunales 87, 169 y 108, pertenecientes a los serogrupos Canicola, Icterohaemorrhagiae y Pomona, respectivamente, integrantes de la vacuna Polivalente-Leptospira. </font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estas cepas se aislaron originalmente a partir de un material remitido al Centro Nacional de Epizootiolog&iacute;a y Diagn&oacute;stico Veterinario de La Habana y donados por el Instituto Finlay al Laboratorio Biol&oacute;gico y Farmac&eacute;utico LABIOFAM. </font><font face="verdana" size="2">Todas las cepas se conservaron en el medio semis&oacute;lido Fletcher a 28-30&ordm;C (5) y se mantuvieron siempre mediante cultivos en el medio proteico Korthof, bajo condiciones est&aacute;ticas a 28-30&ordm;C en el Departamento de Microbiolog&iacute;a de LABIOFAM. </font><font face="verdana" size="2">La virulencia de las cepas vacunales y de los aislamientos se mantuvo a trav&eacute;s de pases peri&oacute;dicos en h&aacute;msteres (6).</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><strong> Caracterizaci&oacute;n de los aislamientos en pat&oacute;genos y no pat&oacute;genos mediante m&eacute;todos fenot&iacute;picos convencionales</strong></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><em>a) Prueba de crecimiento a 13&ordm;C de temperatura</em></font></p> 	    <p align="justify">	<font face="verdana" size="2">La prueba fue realizada a los cinco aislamientos, con la utilizaci&oacute;n como control pat&oacute;geno una cepa vacunal <em>L. interrogans</em> serovar Copenhageni y como control no pat&oacute;geno la cepa <em>L. biflexa</em> serovar Patoc. Todo el estudio se realiz&oacute; en tubos de cristal de 15 mL con rosca, los cuales se inocularon con 0,1 mL del medio crecido proveniente de un cultivo est&aacute;tico de 5-7 d&iacute;as en el medio proteico Korthoff, con una concentraci&oacute;n de 2 x10<sup>8</sup> leptospira/mL y 10 mL de medio fresco. </font> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los tubos se incubaron a 13&deg;C de temperatura. Posteriormente se verific&oacute; el crecimiento a los 7, 14, 21 y 30 d&iacute;as post-inoculaci&oacute;n, mediante observaciones bajo el microscopio de campo oscuro. En cada muestreo se observaron caracter&iacute;sticas culturales como motilidad, uniformidad celular y se realizaron controles de pureza a los cultivos mediante tinci&oacute;n de Gram, siembra en caldo triptona soya y caldo tioglicolato. La evaluaci&oacute;n de cada cepa se realiz&oacute; por triplicado.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><em>b) Prueba de 8-azaguanina (2,25 mg/mL)</em> </font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Primeramente se procedi&oacute; a preparar una suspensi&oacute;n de 8-azaguanina a una concentraci&oacute;n de 2,25 mg/mL, utilizando como disolvente agua destilada. Posteriormente la suspensi&oacute;n se diluy&oacute; a&ntilde;adiendo 1mL de esta suspensi&oacute;n a 9 mL de medio Korthoff fresco, con ayuda de un agitador magn&eacute;tico. Seguidamente la suspensi&oacute;n se esteriliz&oacute; durante 20 min a 121&deg;C. A continuaci&oacute;n se inocul&oacute; 0,1mL del medio de cultivo proveniente de un cultivo est&aacute;tico de 5-7 d&iacute;as en el medio proteico fresco con una concentraci&oacute;n ajustada de 2 x 10<sup>8</sup> c&eacute;lulas/mL (conteo directo de c&eacute;lulas en c&aacute;mara de Petroff-Hausser), de cada una de las cepas a evaluar y se procedi&oacute; a incubar a 28-30&deg;C. </font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se monitore&oacute; el crecimiento a los 7, 14, 21 y 30 d&iacute;as post-inoculaci&oacute;n mediante la observaci&oacute;n al microscopio de campo oscuro. En cada muestreo se procedi&oacute; como se describe m&aacute;s arriba.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><em>c) Conversi&oacute;n a formas esf&eacute;ricas en NaCl (1M)</em></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se disolvi&oacute; NaCl (1M) en 10 mL de agua de calidad farmac&eacute;utica, la cual fue previamente esterilizada durante 15 min a 121&deg;C. Posteriormente se adicion&oacute; 1 mL de esta suspensi&oacute;n a 7 mL de medio Korthoff fresco. Se procedi&oacute; a inocular 0,7 mL de una suspensi&oacute;n celular de cada una de las cepas en estudio, provenientes de un cultivo est&aacute;tico de 5-7 d&iacute;as en el medio proteico Korthof, con una concentraci&oacute;n ajustada de 2 x 10<sup>8</sup> c&eacute;lulas/mL (conteo directo de c&eacute;lulas en c&aacute;mara de Petroff-Hausser). Se incub&oacute; a 28-30&deg;C por 2 h y a continuaci&oacute;n se procedi&oacute; a verificar las formas esf&eacute;ricas por observaci&oacute;n bajo el microscopio de campo oscuro cada 20 min durante 1 h. Cada cepa se evalu&oacute; por triplicado.</font> </p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b> Clasificaci&oacute;n de los aislamientos hasta el nivel de serogrupo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La clasificaci&oacute;n de los aislamientos hasta el nivel de serogrupo se realiz&oacute; mediante la t&eacute;cnica de microaglutinaci&oacute;n microsc&oacute;pica (MAT) (7), con el empleo de antisueros policlonales de referencia espec&iacute;ficos para los 11 serogrupos circulantes en Cuba (8): Ballum, Pomona, Canicola, Icterohaemorrhagiae, Pyrogenes, Tarassovi, Australis, Hebdomadis, Bataviae, Automnalis y Sejroe, producidos en el Laboratorio de Referencia Internacional de Leptospirosis del Instituto Tropical de Holanda y donados por el Instituto Finlay al Laboratorio Biol&oacute;gico y Farmac&eacute;utico LABIOFAM. </font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como controles, se utilizaron las cepas de referencia Mus 127 y Arb&oacute;rea (Ballum), 5621 (Pomona), Hond Utrecht IV (Canicola), M20 (Icterohaemorrhagiae), Salinen (Pyrogenes), Perepelicin (Tarassovi), Ballico (Australis), Hebdomadis (Hebdomadis), Van Tiene (Bataviae), Akiyami A (Autumnalis) y Hardjoprajitno (Sejroe). Todas estas cepas forman parte de la colecci&oacute;n INPPAZ/OPS, donada al Instituto Finlay por la Organizaci&oacute;n Panamericana de la Salud (OPS). Esta t&eacute;cnica se realiz&oacute; con ant&iacute;genos vivos y la incorporaci&oacute;n de las respectivas cepas hom&oacute;logas de referencia como controles de aglutinaci&oacute;n para cada antisuero.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b> Animales de experimentaci&oacute;n</b></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este trabajo se utiliz&oacute; el biomodelo animal Mesocricetus auratus. Se emplearon animales de ambos sexos, con un peso entre 45-60 g, procedentes del Centro para la Producci&oacute;n de Animales de Laboratorio (CENPALAB, La Habana, Cuba) con sus correspondientes certificados de calidad higi&eacute;nico-sanitaria y gen&eacute;tica.</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los animales permanecieron bajo condiciones controladas de temperatura (21-24&ordm;C), humedad (20-25%), ciclo alternado de luz/oscuridad de 12 h y recibieron alimentaci&oacute;n y agua acidulada <em>ad libitum</em>. Para todos los experimentos, los animales se distribuyeron de forma aleatoria en cajas met&aacute;licas y en grupos individuales de 5 animales por caja. </font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Todas las operaciones de esta investigaci&oacute;n se realizaron siguiendo las Buenas Pr&aacute;cticas de Laboratorio (BPL), establecidas en los Procedimientos Normalizados de Operaciones (PNO), elaborados por la Direcci&oacute;n de Calidad del Grupo Empresarial LABIOFAM y se tuvieron en cuenta las normas y regulaciones bio&eacute;ticas vigentes, tanto nacionales como internacionales. En todos los ensayos que implicaron el uso de los animales de experimentaci&oacute;n se cumplieron los principios generales bio&eacute;ticos, as&iacute; como del manejo de los animales de laboratorio.</font></p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b> Evaluaci&oacute;n cualitativa de la virulencia</b></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la realizaci&oacute;n de este ensayo solo se utilizaron los aislamientos pertenecientes al serogrupo Ballum. Este ensayo se realiz&oacute; seg&uacute;n la metodolog&iacute;a descrita por Gonz&aacute;lez y cols., (9). Se inocularon por v&iacute;a intraperitoneal (IP), grupos de cinco animales, con dosis de 0,05; 0,1; 0,2; 0,4; 0,6; 0,8 y 1,0 mL de una suspensi&oacute;n bacteriana ajustada a 8 x 10<sup>6</sup> c&eacute;lulas/mL (conteo directo de c&eacute;lulas en c&aacute;mara de Petroff-Hausser), proveniente de un cultivo est&aacute;tico de 5-7 d&iacute;as en el medio proteico Korthof. </font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los animales inoculados se observaron durante un periodo de 14 d&iacute;as post-inoculaci&oacute;n. Como criterio de aceptaci&oacute;n de este ensayo, se estableci&oacute; que las cepas que produjeran la muerte de todos los animales inoculados con dosis menor o igual a 0,2 mL de la suspensi&oacute;n bacteriana se consideraran altamente virulentas. En cambio si la muerte de los animales fue producida con dosis entre 0,4 y 0,8 mL las cepas fueron consideradas con moderada virulencia y para menores niveles de letalidad las cepas se clasificaron como de baja virulencia o avirulentas.</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b> Selecci&oacute;n inicial de las cepas candidatas vacunales</b></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La selecci&oacute;n de las cepas candidatas vacunales se bas&oacute; en los resultados de la clasificaci&oacute;n serol&oacute;gica, es decir, que pertenecieran al serogrupo Ballum y adem&aacute;s mostraran una alta virulencia en el modelo animal. </font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b> Clasificaci&oacute;n serol&oacute;gica hasta el nivel de serovar</b></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una vez seleccionada la cepa 245-12 como candidata vacunal, por su virulencia, se clasific&oacute; hasta el nivel de serovar mediante la t&eacute;cnica MAT utilizando un panel de cuatro anticuerpos monoclonales (AcM F74C1-6, AcM F74C4-4, AcM F74C7-3 y AcM F74C12-1) producidos por el laboratorio de Referencia Internacional de Leptospirosis del Instituto de Medicina Tropical de Holanda y donadas por el Instituto Finlay a los Laboratorios Biol&oacute;gicos y Farmac&eacute;uticos LABIOFAM.</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n de la Dosis Letal Media (DL<sub>50</sub>)</b></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La determinaci&oacute;n de la DL<sub>50</sub> de la cepa seleccionada, en el biomodelo H&aacute;mster Sirio, se realiz&oacute; seg&uacute;n la metodolog&iacute;a propuesta por Reed y Muench (10). A partir de un cultivo en fase exponencial crecido en medio proteico Korthof bajo condiciones controladas de cultivo est&aacute;tico a 28-30&ordm;C de temperatura. Se prepar&oacute; una suspensi&oacute;n bacteriana con una concentraci&oacute;n celular equivalente a 10-12 leptospiras por campo de observaci&oacute;n, bajo microscopio de campo oscuro, para lo cual se diluy&oacute; el cultivo en medio Korthof fresco. </font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A partir de esta suspensi&oacute;n se realizaron diluciones seriadas en el mismo medio de cultivo desde 10<sup>-3</sup> hasta 10<sup>-7</sup>. Grupos de 5 animales fueron inoculados con 0,5 mL de cada diluci&oacute;n por v&iacute;a IP. </font></p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los animales se sometieron a una observaci&oacute;n cl&iacute;nica durante 14 d&iacute;as, evalu&aacute;ndose la aparici&oacute;n de signos cl&iacute;nicos que indicaran la presencia de la enfermedad como: pilo erecci&oacute;n, excitabilidad, ictero de piel y las mucosas, hemorragias a trav&eacute;s de los orificios naturales, postraci&oacute;n y muerte. Para expresar la mortalidad en porciento se emple&oacute; la formula siguiente: </font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mortalidad % = (N&uacute;mero de animales muertos / Total de animales inoculados) x 100</font>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como controles negativos se utilizaron animales inoculados con el medio l&iacute;quido Korthof.</font></p>         <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana"><strong><font size="3">RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</font></strong></font>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b> Caracterizaci&oacute;n de los aislamientos en pat&oacute;genos y no pat&oacute;genos mediante m&eacute;todos fenot&iacute;picos convencionales</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><em>a) Prueba de crecimiento a 13&deg;C de temperatura</em> </font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cinco cepas aisladas, as&iacute; como la cepa control perteneciente al serogrupo <em>L. interrogans</em> serovar copenhageni, no manifestaron crecimiento a la temperatura de 13&deg;C lo que concuerda con lo planteado por Gallegos y Sand&iacute; (11). Mientras que la cepa <em>L. biflexa</em> serovar Patoc, si mostr&oacute; crecimiento a la temperatura de 13&deg;C coincidiendo tambi&eacute;n con lo planteado por estos autores. </font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nuestros resultados concuerdan con lo se&ntilde;alado por diversos autores (12) quienes expresan que las especies pat&oacute;genas de leptospira no manifiestan crecimiento a bajas temperaturas mientras que las no pat&oacute;genas (<em>L. biflexa</em>) presentan 35 genes de ARN-t que pudieran estar influyendo en el r&aacute;pido crecimiento de estas a bajas temperaturas. </font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><em>b) Prueba de 8-azaguanina (2,25 mg/mL)</em> </font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los aislamientos en estudio as&iacute; como la cepa <em>L. interrogans</em> serovar Copenhageni utilizada como control, no manifestaron crecimiento en el medio selectivo rico en 8-azaguanina (2,25 mg/ml), mientras que la cepa control <em>L. biflexa</em> serovar Patoc, mostr&oacute; un correcto crecimiento. </font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estos resultados est&aacute;n en concordancia con lo planteado por Gallegos y Sand&iacute; (11), quienes plantean que la inhibici&oacute;n del crecimiento de las cepas pat&oacute;genas bajo condiciones favorables para el crecimiento de las cepas sapr&oacute;fitas es el principal criterio de diferenciaci&oacute;n entre ellas. Las cepas pat&oacute;genas en un medio de cultivo selectivo rico en 8-azaguanina no manifiestan crecimiento ya que las mismas no tienen la capacidad de incorporar bases de pirimidinas ex&oacute;genas en sus &aacute;cidos nucle&iacute;cos.</font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mayor&iacute;a de los medios de cultivo se mantuvieron libres de contaminantes y donde se observ&oacute; crecimiento (<em>L. biflexa</em> serovar Patoc), el microorganismo present&oacute; una correcta motilidad y uniformidad celular. </font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><em>c) Conversi&oacute;n a formas esf&eacute;ricas en NaCl (1M)</em></font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bajo la observaci&oacute;n al microscopio de campo oscuro, los aislamientos se presentaron como formas esf&eacute;ricas y brillantes. La OMS en el a&ntilde;o 2008 plante&oacute; que las cepas pat&oacute;genas de leptospira se presentan de esta manera una vez que se le a&ntilde;ade NaCl (1M) al medio de cultivo, debido a la conformaci&oacute;n el&aacute;stica de su membrana citoplasm&aacute;tica. Igualmente la cepa pat&oacute;gena control <em>L. interrogans</em> serovar Copenhageni mostr&oacute; conversi&oacute;n a forma esf&eacute;rica. </font>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estos resultados muestran que a los 20 min de aplicado el NaCl (1M) comenz&oacute; a observarse la conversi&oacute;n a formas esf&eacute;ricas, mientras que la cepa de <em>L. biflexa</em> serovar Patoc, no mostr&oacute; cambios en su forma, lo cual puede estar dado por que las cepas sapr&oacute;fitas mantienen su forma espiral al ser expuestas a este compuesto, debido a la alta resistencia a la conversi&oacute;n manifestada por estos microorganismos (12). </font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas pat&oacute;genas mostraron, de forma homog&eacute;nea y gradual, la conversi&oacute;n a c&eacute;lulas esf&eacute;ricas hasta el tiempo m&aacute;ximo observado, 60 min.    </font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los controles de pureza para el aislamiento 336-12 no fueron satisfactorios debido a que se encontr&oacute; presencia de hongos en los mismos, por lo que finalmente se decidi&oacute; rechazar este aislamiento.</font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b> Clasificaci&oacute;n de los aislamientos hasta el nivel de serogrupo</b></font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los antisueros policlonales y monoclonales espec&iacute;ficos de referencia a Leptospira son producidos en muy pocos laboratorios especializados bajo procedimientos normalizados internacionalmente. Aunque en los &uacute;ltimos a&ntilde;os han sido introducidos una gran variedad de modernos m&eacute;todos para el an&aacute;lisis gen&eacute;tico, el tipaje y la clasificaci&oacute;n de cepas de <em>Leptospira</em>; la clasificaci&oacute;n serol&oacute;gica mediante la t&eacute;cnica de microaglutinaci&oacute;n constituye a&uacute;n el m&eacute;todo m&aacute;s utilizado, a pesar de ser laboriosa y limitada para la clasificaci&oacute;n hasta serogrupo, si no se dispone de una bater&iacute;a de anticuerpos monoclonales (13).</font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La clasificaci&oacute;n serol&oacute;gica realizada por la t&eacute;cnica de MAT, utilizando anticuerpos policlonales de referencia, a los cinco aislamientos caracterizados como pat&oacute;genos, permiti&oacute; la identificaci&oacute;n de dos serogrupos (<a href="#t1">Tabla 1</a>), entre los 11 que circulan entre humanos en Cuba (14).</font></p>     <p align="center"><a name="t1"></a><img src="/img/revistas/vac/vac25n1/t0102116.jpg" name="t1" width="500" height="195" id="t1"> </p>       
<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta clasificaci&oacute;n determin&oacute; que los serogrupos presentes fueron Pomona (50%) y Ballum (50%), resultados que concuerdan con Obreg&oacute;n y cols., (14) quien expresa que en los &uacute;ltimos diez a&ntilde;os se ha observado una alternancia entre ambos serogrupos, en lo referente a la prevalencia epidemiol&oacute;gica. Como es conocido los cerdos son los principales reservorios del serogrupo Pomona, mientras que las ratas y ratones lo son del serogrupo Ballum (14). </font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta alternancia entre ambos serogrupos puede deberse a que las condiciones higi&eacute;nico-sanitarias del pa&iacute;s se han visto afectadas por pr&aacute;cticas no convencionales como la cr&iacute;a de cerdos sin las normas necesarias y el insuficiente control de los roedores. Situaci&oacute;n que ha conllevado al aumento de la incidencia. Adem&aacute;s, en la Tabla 1 se muestran, para ambas cepas, los t&iacute;tulos por la t&eacute;cnica de MAT frente a los antisueros policlonales utilizados.</font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estos resultados confirman una vez m&aacute;s la alta presencia del serogrupo Ballum entre los serogrupos de mayor circulaci&oacute;n en las especies animales (de cuatro aislamientos, dos pertenecen al serogrupo Balum, lo que representa el 50%) y la necesidad de incluir el serogrupo Ballum dentro de la formulaci&oacute;n vacunal existente.</font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b> Evaluaci&oacute;n cualitativa de la virulencia</b></font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aunque la virulencia de los microorganismos pat&oacute;genos es casi siempre cuantificada en modelos animales mediante el c&aacute;lculo de la dosis letal media, en este trabajo se utilizaron m&eacute;todos cualitativos de estimaci&oacute;n de la virulencia que, aunque menos exactos, fueron igualmente reproducibles y requirieron muchos menos animales, lo que los hace m&aacute;s apropiados para estimar simult&aacute;neamente esta capacidad en un gran n&uacute;mero de cepas (15). </font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La determinaci&oacute;n de la virulencia en h&aacute;msteres como segundo criterio de selecci&oacute;n de las cepas candidatas vacunales, proporcion&oacute; la divisi&oacute;n de las cepas pertenecientes al serogrupo Ballum en dos categor&iacute;as; alta y moderada virulencia.</font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cepa 245-12 mostr&oacute; una elevada virulencia en el biomodelo animal empleado, lo que determin&oacute; su selecci&oacute;n como cepa candidata vacunal, ya que produjo la muerte de todos los animales inoculados con dosis menores o iguales a 0,2 mL de la suspensi&oacute;n bacteriana. </font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es sabido que existen factores asociados a la membrana externa de las cepas virulentas que intervienen activamente en la inmunogenicidad y son capaces de brindar un resultado real de la protecci&oacute;n del candidato vacunal lo cual constituye el principal correlato de protecci&oacute;n (16), de ah&iacute; que la virulencia sea uno de los criterios principales para la selecci&oacute;n de las cepas.</font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otra parte la cepa 192-12 mostr&oacute; una virulencia moderada y por consiguiente no fue seleccionada como candidata vacunal. Este diferente comportamiento entre cepas de un mismo serogrupo puede estar dado por lo planteado por diversos autores, quienes expresan que pases sucesivos en los medios de cultivos influyen negativamente en la virulencia, debido a la perdida de importantes factores asociados a la misma en las cepas de leptospiras (17). </font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una vez aisladas, las cepas son mantenidas en cultivos de agar semis&oacute;lido al 2% (medio Fletcher) y hasta el momento en que son trabajadas en el laboratorio son sometidas a varios subcultivos. </font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta metodolog&iacute;a influye negativamente en el mantenimiento de la virulencia, pues es bien conocido que los subcultivos seleccionan aquellos microorganismos que tienen mayor tasa de crecimiento, y un aumento de esta propiedad, por lo general, est&aacute; correlacionado con la p&eacute;rdida de factores de virulencia. </font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Algunos factores de virulencia de Leptospira que se pierden con los pases o subcultivos en medios microbiol&oacute;gicos son las prote&iacute;nas <em>flaA</em> y <em>flaB</em> relacionadas con la motilidad (17) y las prote&iacute;nas ligA y ligB de uni&oacute;n a fibronectina presentes solamente en cepas pat&oacute;genas (18).</font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b> Clasificaci&oacute;n serol&oacute;gica de la cepa seleccionada hasta el nivel de serovar</b></font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El tipaje con los anticuerpos monoclonales arroj&oacute; como resultado que la cepa 245-12 pertenece al serovar Ballum, con un t&iacute;tulo de 1:1028.</font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b> Determinaci&oacute;n de la DL<sub>50</sub></b></font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Numerosos estudios han mostrado diferencias sustanciales en la expresi&oacute;n de los ant&iacute;genos importantes en la patog&eacute;nesis de la enfermedad leptospir&oacute;sica, entre cepas isog&eacute;nicas virulentas y avirulentas. </font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta desigual arquitectura antig&eacute;nica al parecer se revierte en una desigual capacidad protectora de unas y otras cepas, al ser incluidas en preparados vacunales de c&eacute;lulas enteras (3-18); de ah&iacute; la importancia de que las cepas seleccionadas muestren una elevada virulencia en los modelos animales y sea este otro importante criterio de selecci&oacute;n.</font></p>       <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Utilizando la metodolog&iacute;a descrita por Reed y Muench para el c&aacute;lculo de la DL<sub>50</sub>, obtuvimos como resultado una DL<sub>50</sub>= 6,25 c&eacute;lulas, lo que sit&uacute;a a esta cepa dentro de la clasificaci&oacute;n de cepa altamente virulenta y corrobora los resultados encontrados en la evaluaci&oacute;n cualitativa de la misma (<a href="/img/revistas/vac/vac25n1/t0202116.jpg">Tabla 2</a>). </font></p>       
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estos resultados est&aacute;n en correspondencia con aquellos com&uacute;nmente mostrados por cepas de Leptospiras altamente virulentas obtenidos por otros investigadores (9). Adem&aacute;s se encuentran dentro del mismo rango de <font face="verdana" size="2">DL<sub>50</sub></font> obtenido para las cepas que conforman la vacuna Polivalente-Leptospira.</font><font face="verdana" size="2">   </font></p>       <p></p>     <p align="JUSTIFY"><font face="Verdana"><strong>REFERENCIAS</strong></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Haake DA, Levett PN. Leptospirosis in humans. Current Topics in Microbiology and Immunology. 2015;387: 65-97.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Teresa PP. Leptospirosis animal en Cuba. En: Congreso Internacional de Leptospirosis, Sifilis y Borreliosis: Espiroquetas. Palacio de las Convenciones, La Habana, 5-7 de mayo, 2010. La Habana. IPK; 2010:10-1.     </font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Gonz&aacute;lez M, Mart&iacute;nez R, Cruz R, Infante J, Gonz&aacute;lez I, Bar&oacute; M et al. vax-SPIRAL&reg;. Vacuna antileptospir&oacute;sica trivalente para uso humano, investigaci&oacute;n, desarrollo e impacto sobre la enfermedad en Cuba. Biotec Aplic 2004;2(2):107-11.</font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Korthof G. Experimentalles schlammfieber beim menschen. Zentr Bakteriol Parasitenk Abt I Orig A 1932;125:429-32.     </font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Fletcher W. Recent work on leptospirosis, tsutsugamushi disease and tropical typhus in the Federated Malay States. Trans Roy Soc Trop Med Hyg 1928;21:265-82.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Faine S. Guidelines for the control of leptospirosis. Geneva: WHO;1982.     </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Cole J, Sulzer C, Pursell A. Improved microtechnique for the leptospiral microscopic agglutination test. Appl Microbiol 1973;5:65-9.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Rodr&iacute;guez I, Obreg&oacute;n A, Rodr&iacute;guez J, Fern&aacute;ndez C, Arzola A, Victoria B. Caracterizaci&oacute;n serol&oacute;gica de cepas aisladas de pacientes con leptospirosis humana en Cuba. Rev Cub Hig Epidemiol 2002;40(1):11-5.    <br> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Gonz&aacute;lez A, Batista N, Vald&eacute;s Y, Gonz&aacute;lez M. Crecimiento, virulencia y antigenicidad de Leptospira interrogans serovar mozdok en medio EMJH modificado. Rev Cub Med Trop 2002;54(1):32-6.    </font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Reed LJ, Muench H. A simple method of estimating fifty percent endpoints. Am J Hyg. 1938;27(3):493-7.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Gallegos A, Sand&iacute; V. Leptospirosis. Rev Med Costa Rica Centroam 2010;592:115-21.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Picardeau M, Bulach D, Bouchier C, Zuerner R, Zidane N, Wilson P, et al. Genome sequence of the saprophyte Leptospira biflexa provides insights into the evolution of Leptospira and the pathogenesis of leptospirosis. PLoS ONE 2008;3:1599-1607.    </font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Gonz&aacute;lez A. Evaluaci&oacute;n de la potencialidad vacunal de dos cepas de Leptospira interrogans serogrupo Ballum. [Tesis de Maestr&iacute;a]. La Habana: Facultad de Biolog&iacute;a, Universidad de La Habana; 2003.</font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Obreg&oacute;n AM, Fern&aacute;ndez C, Rodr&iacute;guez I, Rodr&iacute;guez J, Zamora Y. Avances de laboratorio en el diagn&oacute;stico serol&oacute;gico y la investigaci&oacute;n de la leptospirosis humana en Cuba. Rev Cub Med Trop 2007;59(1):1-7.    </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Fajardo E, Ortiz B, Ch&aacute;vez A, Gainza N, Izquierdo L, Hern&aacute;ndez Y, et al. Estandarizaci&oacute;n de la dosis 50 de las cepas de Leptospira interrogans utilizadas en el control de la vacuna cubana contra la leptospirosis humana. Rev Cub Med Trop 1998;50(1):22-6     <br> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Colleen L, Lau C, Smythe L, Weinstein P. Leptospirosis: An emerging disease in travellers, Travel Medicine and Infectious Diseases 2010;8(1):33-9.     </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Choy HA, Kelley MM, Chen TL, Moller AK, Matsunaga J, Haake DA. Physiological osmotic induction of Leptospira interrogans adhesion: LigA and LigB bind extracellular matrix proteins and fibrinogen. Infect Immun 2007;75(5):2441-50.    <!-- ref --> </font></font>    <p></p> 	    <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Recibido: Abril de 2015&nbsp;&nbsp;&nbsp; &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; &nbsp;&nbsp;&nbsp;Aceptado: Mayo de 2015</i></font></p> </font>     ]]></body><back>
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