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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Different ways of vegetative multiplication of Rosmarinus officinalis L. (romero) were studied by 2 experiments. In the first one, we assayed 3 types of stakes: terminal and intermediate buds and buds with heel, planted in 5 substrata: soil and organic matter; organic matter and gravel of siliceous rock; zeolites; organic matter from rotten trunks of real palm and core (by-product of sugar manufacture) in 3 different dates (January, May and October) for 2 years. In the second experiment, we made assays with some concentrations of different growth-promoting auxins: indole-3-acetic acid (0, 50, and 100 ppm) in stakes of terminal and intermediate buds. The results showed that zeolite was the best substrate as well as the stakes of terminal buds with which it was possible to obtain a high number of plantules of excellent quality and their spreading during the whole year. No satisfactory results were attained with the growth regulators and the assayed concentrations.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p>Estación Experimental de Plantas Medicinales “Dr. Juan Tomás Roig” </p> <h2>Multiplicación vegetativa de Rosmarinus officinalis L. (Romero) </h2>     <p><a href="#cargo">Ing. Ciro Mario Lemes Hernández,<span class="superscript">1</span>    Téc. Carlos A. Rodríguez Ferradá<span class="superscript">2</span> y Dra. Lérida    Acosta de la Luz<span class="superscript">3 </span></a><span class="superscript"><a name="autor"></a></span></p> <h4>Resumen </h4>     <p>Se estudiaron en Rosmarinus officinalis L. (romero) diferentes vías para su    multipliación vegetativa para lo que se realizaron 2 experimentos. En el primero    se probaron 3 tipos de estacas: yemas terminales, intermedias, y con talón plantadas    en 5 sustratos: tierra y materia orgánica; materia orgánica y gravilla de roca    silicea; zeolitas; materia orgánica proveniente de troncos descompuestos de    palma real y meollo (subproducto de la fabricación de azúcar de caña) en 3 fechas    diferentes (enero, mayo, octubre) durante 2 años. Para el segundo experimento    se hicieron ensayos con varias concentraciones de diferentes auxinas estimuladoras    del crecimiento: ácido indol 3 acético; ácido indol 3 butírico; ácido naftalen-acético    (0, 50 y 100 ppm) en estacas de yemas terminales e intermedias. Los resultados    mostraron que la zeolita fue el mejor sustrato, así como las estacas de yemas    terminales con las que se pudo obtener un elevado número de plántulas de excelente    calidad y su propagación durante todo el año. Con los reguladores del crecimiento    y las concentraciones experimentadas no se lograron resultados satisfactorios.  </p>     <p>DeCs: ROSMARINUS OFFICINALIS/uso terapéutico; EXTRACTOS VEGETALES/uso terapéutico;    PLANTAS MEDICINALES/crecimiento & desarrollo; MEDICINA HERBARIA; REGULADORES    DE CRECIMIENTO DE PLANTAS; CULTIVOS AGRÍCOLAS/crecimiento & desarrollo. </p>     <p>&nbsp;</p> <h4>Summary </h4>     <p>Different ways of vegetative multiplication of Rosmarinus officinalis L. (romero)    were studied by 2 experiments. In the first one, we assayed 3 types of stakes:    terminal and intermediate buds and buds with heel, planted in 5 substrata: soil    and organic matter; organic matter and gravel of siliceous rock; zeolites; organic    matter from rotten trunks of real palm and core (by-product of sugar manufacture)    in 3 different dates (January, May and October) for 2 years. In the second experiment,    we made assays with some concentrations of different growth-promoting auxins:    indole-3-acetic acid (0, 50, and 100 ppm) in stakes of terminal and intermediate    buds. The results showed that zeolite was the best substrate as well as the    stakes of terminal buds with which it was possible to obtain a high number of    plantules of excellent quality and their spreading during the whole year. No    satisfactory results were attained with the growth regulators and the assayed    concentrations. </p>     <p>Subject headings: ROSMARINUS OFFICINALIS/therapeutic use; PLANT EXTRACTS/therapeutic    use; PLANTS, MEDICINAL/growth & development; MEDICINE, HERBAL; PLANT GROWTH    REGULATORS; CROPS, AGRICULTURAL/growth & development. </p>     <p>Rosmarinus officinalis L. (romero), es un arbusto leñoso que llega alcanzar    un metro o más de altura, siempre verde que despide un perfume aromático alcanforado.    Presenta hojas sentadas y lineales, flores en cimas racimosas axilares, bracteadas,    de color azulado.<span class="superscript">1,2</span></p>     <p> La especie es originaria de las tierras del mediterráneo, donde es cultivada    desde tiempos remotos, fundamentalmente en Grecia, Italia, España y Portugal.    En Cuba fue introducida desde la conquista española y se le cultiva con frecuencia    en patios y jardines de poblaciones rurales y urbanas.<span class="superscript">3</span>  </p>     <p>Al romero se le atribuyen múltiples propiedades medicinales: antirreumático,    rubefasciente, sedante, diurético, colagogo, digestivo, vulnerario, tónico,    antiespasmódico, estimulante de la circulación periférica, antibacteriano, colerético    y protector del tejido hepático, las 2 últimas están científicamente comprobadas.    Su principio activo es un aceite esencial compuesto por cineol, canfeno, borneol,    alcanfor y otros; además se le han identificado alcaloides, saponinas, taninos,    flavonoides, ácidos orgánicos y un principio amargo.<span class="superscript">4</span>  </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>Debido a que la especie en nuestras condiciones no produce semillas y a la    dificultad de su propagación vegetativa se realizó la siguiente investigación    con el objetivo de obtener un método rápido y eficiente de multiplicación y    considerando también que el éxito en el enraizamiento de una estaca depende    de factores internos como la estructura anatómica del tallo de la planta madre    y de factores externos como son los ambientales y el lecho de enraizamiento.  </p> <h4>Métodos</h4>     <p>Los estudios se realizaron durante 2 años en naves techadas de la Estación    Experimental de Plantas Medicinales “Dr. Juan Tomás Roig”, en San Antonio de    los Baños, provincia La Habana, Cuba y comprendieron 2 experimentos. En uno    de ellos se emplearon 3 tipos de estacas, las que se plantaron en 5 sustratos    diferentes y 3 fechas diferentes; en el otro experimento se probaron el enraizamiento    de 2 tipos de estacas en varias concentraciones de diferentes auxinas del crecimiento.  </p>     <p>El material de propagación se obtuvo de 10 plantas adultas de aproximadamente    5 a 6 años de edad, cultivadas bajo techo de la mencionada estación, las que    siempre se encontraron en estado de floración en el momento de la preparación    de las estacas. Las mismas se confeccionaron con una longitud de 10 a 12 cm    y fueron despojadas de las hojas en su tercio inferior. </p>     <p>Los tipos de estacas utilizadas fueron: yemas terminales (F) cortadas con tijeras;    de las zonas o intermedias de las ramas (I); de yemas terminales con talón (T)    separadas de la planta tirando según lo descrito por Hartman y Kester,<span class="superscript">5    </span>las que se plantaron en los siguientes sustratos: mezcla de tierra y    materia orgánica (7:3); materia orgánica y gravilla de roca silícea (1:1); zeolitas    (tamaño de la partícula de 2 a 3 mm de diámetro); materia orgánica proveniente    de troncos descompuestos de palma real (Rystonea regia) y meollo (subproducto    de la fabricación del azúcar de caña). El experimento se llevó a cabo en 3 fechas:    enero, mayo y octubre. </p>     <p>Las estacas se plantaron siguiendo un diseño de bloques al azar con 3 réplicas.    Los factores evaluados fueron los sustratos, los tipos de estacas y las fechas.    Se utilizó un análisis de varianza de doble clasificación, modelo factorial.    La comparación de las medias se hizo mediante la prueba de rangos múltiples    de Duncan. Para evaluar la posible influencia de los estimuladores del crecimiento    sobre el enraizamiento, se sumergieron las estacas de yemas terminales (F) e    intermedias (I) en soluciones de 0, 50 y 100 ppm de las auxinas ácido indol    3 acético (AIA), ácido indol 3 butírico (AIB), ácido naftalen-acético (ANA)    por 24 h. Estas pruebas se efectuaron en octubre, febrero y junio. </p> <h4>Resultados</h4>     <p>La figura 1 representa los resultados del análisis estadístico del comportamiento    de las diferentes estacas en los distintos sustratos. Como se observa la zeolita    resultó el mejor medio enraizador entre los resultados, donde los porcentajes    de estacas enraizadas alcanzaron valores de hasta 90 %, destacándose que superaron    significativamente a los restantes tratamientos en cualquiera de los tipos de    estacas y fechas probadas. De igual manera los porcentajes de estacas de yemas    terminales con y sin talón (F y T) enraizadas fueron superiores al de las estacas    intermedias (I). El medio enraizador donde se empleó el meollo fue el peor e    incluso en los meses de octubre y enero ninguna de las estacas enraizó.</p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><a href="/img/revistas/pla/v6n3/f0101301.gif"><img src="/img/revistas/pla/v6n3/f0101301.gif" width="238" height="159" border="0"></a></p>     
<p align="center">Fig. 1. Porcentaje de estacas enraizadas para los tratamientos    estudiados. </p>     <p> En la figura 2, parte (a) se muestra la conducta de las raíces cuando se empleó    zeolita como sustrato, determinándose que en las estacas de yemas terminales    (F) el número de raíces fue apreciablemente mayor aunque para los otros tipos    también se alcanzaron cifras altas. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a href="/img/revistas/pla/v6n3/f0201301.gif"><img src="/img/revistas/pla/v6n3/f0201301.gif" width="253" height="133" border="0"></a></p>     
<p align="center">Fig. 2. Número de raíces por estaca cuando se empleó como sustrato    la zeolita. </p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p>Los valores de esta misma variable, pero relacionados con la época de plantación,    aparecen en la parte (b) de la misma figura 3; en ésta se demuestra que a pesar    de no haber grandes diferencias, el mes de enero resultó el mejor, sin diferir    significativamente de octubre. </p>     <p>Las cualidades evaluadas en el momento de extraer las estacas apoyaron los    criterios para señalar a la zeolita como el mejor sustrato, ya que las raíces    de las estacas allí plantadas presentan mayores longitudes y grosor, en ocasiones    hasta 20 cm de longitud (ver tabla). </p>     <p align="center"><a href="/img/revistas/pla/v6n3/f0301301.gif"><img src="/img/revistas/pla/v6n3/f0301301.gif" width="258" height="103" border="0"></a></p>     
<p align="center">Fig. 3. Porcentaje de estacas enraizadas tratadas con diferentes    auxinas y varias concentraciones. </p>     <p>En la figura 4 aparecen los datos del comportamiento de las estacas en relación    a las auxinas de crecimiento. Se presentan solamente los datos del mes de febrero,    por ser la única fecha en que se lograron resultados positivos, aunque con valores    inferiores al 50 %. </p>     <p>De forma general se observa que las estacas de yemas terminales (F) enraizaron    en mayor número que las intermedias (I) y que con la más alta concentración    (100 ppm) del ácido indolacético (AIA) y del naftalenacético (ANA)se alcanzaron    los más altos valores.</p> <h4>Discusión</h4>     <p> La cantidad de estacas enraizadas fue considerable y no hubo variaciones apreciables    ni entre el tipo de estacas o las fechas estudiadas cuando se empleó la zeolita    como sustrato, lo que resulta de gran importancia para el productor que puede    utilizar cualquier parte de las ramas del romero para la confección de las estacas    y escoger la fecha en función a su disponibilidad en cuanto a fuerza de trabajo,    preparación de la tierra, etc.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p> De esta forma queda eliminado el criterio como se ha dicho en ocasiones de    que solamente el mes de febrero era el idóneo para su multiplicación.<span class="superscript">6</span>    Se puede llegar a la conclusión que es el medio de enraizamiento el que condiciona    el éxito no en la multiplicación de esta especie. La zeolita está compuesta    por minerales del tipo aluminio silicato cuyas partículas poseen gran porosidad    y de la que se aconseja su utilización como sustrato para cultivos en planteros    con mayores niveles de crecimiento y desarrollo, con la condición de mantener    una humedad constante por lo que ha sido recomendada para la reproducción de    muchas especies.<span class="superscript">7 </span></p>     <p>Con la aplicación de los reguladores del crecimiento no se favoreció el incremento    del número de estacas enraizadas, lo que ratifica una vez más lo importante    que es el medio utilizado para su propagación. No obstante Kumar (1980) hace    referencias a que probando con reguladores del crecimiento en estacas de romero    alcanzó hasta un 95 % de estacas enraizadas cuando se trataron con 5 000 ppm    de ANA y AIA.<span class="superscript">8</span> </p> <h4>Conclusiones </h4>     <p>La zeolita resultó el mejor sustrato para propagar estacas de romero, garantizando    plántulas de calidad y un alto porcentaje de estacas enraizadas. </p>     <p>De contar con suficiente material para la propagación es aconsejable utilizar    solamente las del tipo yema terminal. Bajo estas condiciones es posible asegurar    que se puede propagar el romero durante todo el año. </p>     <p>Con los reguladores del crecimiento utilizados y en las concentraciones probadas    no se logró resultados satisfactorios para ningún tipo de estaca. </p>     <p align="center">Tabla. Evaluación cualitativa de algunas características de    las raíces en los sustratos estudiados</p> <table width="75%" border="1" align="center">   <tr>      <td> Característica </td>     <td>            <div align="center">Tierra + Materia Orgánica</div>     </td>     <td>            <div align="center">Materia orgánica + Gravilla Sílice </div>     </td>     <td>            <div align="center">Zeolita</div>     </td>     <td>            <div align="center">Materia Orgánica Palma Real </div>     </td>     <td>            ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">Meollo</div>     </td>   </tr>   <tr>      <td>Largo</td>     <td>            <div align="center">Cortas (1 ó 2 cm) </div>     </td>     <td>            <div align="center">Cortas (1 ó 2 cm)</div>     </td>     <td>            <div align="center">Largas </div>     </td>     <td>            <div align="center">Medias de</div>     </td>     <td>            <div align="center"></div>     </td>   </tr>   <tr>      <td>&nbsp;</td>     <td>            <div align="center"></div>     </td>     <td>            <div align="center"></div>     </td>     <td>            <div align="center">(5 a 10 cm) |</div>     </td>     <td>            <div align="center">(3 a 8 cm)</div>     </td>     <td>            ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">Cortas</div>     </td>   </tr>   <tr>      <td>Grosor </td>     <td>            <div align="center">Finas</div>     </td>     <td>            <div align="center">Finas</div>     </td>     <td>            <div align="center">Gruesas</div>     </td>     <td>            <div align="center">Gruesas</div>     </td>     <td>            <div align="center">Finas </div>     </td>   </tr> </table>     <p>&nbsp;</p> <h4>Referencias bibliográficas </h4> <ol>       <!-- ref --><li> Roig JT. Plantas medicinales, aromáticas o venosas de Cuba. La Habana:Editorial      Ciencias y Técnica, 1974:940. </li>    <!-- ref --><li>Thomson WAR. Guía práctica ilustrada de las plantas medicinales. Barcelona:      Editorial Blume, 1981:220. </li>    <!-- ref --><li>Fuentes V, Granda M. Conozca las plantas medicinales. La Habana: Editorial      Científico-Técnica, 1997:244.</li>    <!-- ref --><li> Cuba. Ministerio de Salud Pública. FITOMED I. La Habana:Editorial Ciencias      Médicas, 1991.</li>    <!-- ref --><li> Hartmann HT, Kester DE. Propagación de plantas. La Habana:Editorial Científico-Técnica,      1997:290. </li>    <!-- ref --><li> Acosta L. Proporciónese salud. Cultive plantas medicinales. La Habana:Editorial      Científico-Técnica, 1995:227. </li>    <!-- ref --><li> Triana C, Triana J. Las zeolitas. Más de cien formas de utilización y aplicación.      La Habana:Editorial Científico-Técnica, 1992:50.</li>    <!-- ref --><li> Kumar N, Arugman R. Effect of growth regulators on rooting of rosmary (Rosmarinus      officinalis L.). Indian Perfumer 1980;24(4):210-3. </li>    </ol>     <p>Recibido: 15 de noviembre del 2000. Aprobado: 2 de enero del 2001.     <br>   Ing. Ciro M. Lemes Hernández. Estación Experimental de Plantas Medicinales “Dr.    Juan Tomás Roig”. Ave. 93. No. 8008. Güira de Melena. Provincia Habana. CP 33600.  </p>     <p><span class="superscript"><a href="autor">1</a></span><a href="#autor"> Aspirante    a Investigador.    <br>   <span class="superscript">2</span> T&eacute;cnico Medio Agr&iacute;cola.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <span class="superscript">3</span> Investigadora Titular.</a><a name="cargo"></a>    <br> </p>      ]]></body><back>
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