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<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Higiene y Epidemiología]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Control de medios de cultivo con empleo de cepas bacterianas autóctonas como patrones secundarios de referencia]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto Nacional de Higiene, Epidemiología y Microbiología  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A comparative study was conducted between bacterial pattern strains kept in the collection of microbial cultures of the National Institute of Hygiene, Epidemiology and Microbiology and wild strains isolated in the microbiological assays laboratories of this center in order to be used as secondary reference patterns in the quality control of the culture media and reagents. 7 culture media of the most demanded were tested at the Department of Health Microbiology from October, 2001, to November, 2002. Miles and Misra's techniques (modified) as well as the direct innoculation technique were used according to the working procedures established to this end. No differences were found in the responses obtained from the cultures tested during the verification in the culture media, which proves that the strains may be useful in the daily practice as secondary reference patterns in the assurance of microbiological quality.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Cepas bacterianas]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p>Instituto Nacional de Higiene, Epidemiolog&iacute;a y Microbiolog&iacute;a  (INHEM)</p><h2>Control de medios de cultivo con empleo de cepas bacterianas aut&oacute;ctonas  como patrones secundarios de referencia</h2>    <p><a href="#autor">Lic. Zulia Weng  Alem&aacute;n,<span class="superscript">1</span> T&eacute;c. B&aacute;rbara Iglesias  Hern&aacute;ndez,<span class="superscript">2</span> T&eacute;c. Mercedes Abreu  Orta<span class="superscript">3</span> y T&eacute;c. Jos&eacute; Ram&oacute;n  Beltr&aacute;n D&iacute;az<span class="superscript">3</span></a><span class="superscript"><a name="cargo"></a></span></p><h4>Resumen  </h4>    <p>Se realiz&oacute; un estudio comparativo entre cepas bacterianas patrones,  mantenidas en la colecci&oacute;n de cultivos microbianos del Instituto Nacional  de Higiene, Epidemiolog&iacute;a y Microbiolog&iacute;a, y cepas salvajes aisladas  en los laboratorios microbiol&oacute;gicos de ensayo del citado centro, para su  utilizaci&oacute;n como patrones secundarios de referencia en el control de la  calidad de los medios de cultivo y reactivos. Se probaron en el Departamento de  Microbiolog&iacute;a Sanitaria 7 medios de cultivo de los de mayor demanda, en  el per&iacute;odo de octubre de 2001 a noviembre de 2002, para lo cual se utilizaron  las t&eacute;cnicas de <i>Miles</i> y <i>Misra </i>(modificadas) e inoculaci&oacute;n  directa, seg&uacute;n los procedimientos de trabajo establecidos para este fin.  No se encontraron diferencias en las respuestas obtenidas de los cultivos ensayados  durante su verificaci&oacute;n en los medios de cultivo, lo que demuestra que  las cepas pueden ser &uacute;tiles en la pr&aacute;ctica diaria como patrones  secundarios de referencia en el aseguramiento de la calidad microbiol&oacute;gica.</p>    <p></p>    <p><i>Palabras  clave</i>: Cepas bacterianas, medios de cultivo, patrones de referencia, control  de calidad.</p>    <p></p>    <p>El control de la calidad en la preparaci&oacute;n y evaluaci&oacute;n  de los medios de cultivo es considerado como una esencial y buena pr&aacute;ctica  de laboratorio, necesaria para mantener el nivel y la ejecuci&oacute;n de cualquier  t&eacute;cnica microbiol&oacute;gica. Este es un proceso continuo que se extiende  desde las materias primas, a trav&eacute;s del productor hasta el producto final  utilizado en la meseta.<span class="superscript">1</span> Por esta raz&oacute;n,  se le confiere una gran importancia y est&aacute; considerado como uno de los  puntos cr&iacute;ticos de control en el an&aacute;lisis microbiol&oacute;gico,  del cual depende la seguridad de los resultados que emiten los laboratorios de  ensayo.</p>    <p>La ejecuci&oacute;n de pruebas microbiol&oacute;gicas con calidad  exige tambi&eacute;n de reactivos y colorantes de calidad,<span class="superscript">2</span>  as&iacute; como de medios de cultivo y patrones de referencia &oacute;ptimos.  Para lograr resultados satisfactorios y deseados en el campo de la investigaci&oacute;n,  es necesario disponer de microorganismos que sean capaces de facilitar y garantizar  la calidad en el desarrollo del trabajo.</p>    <p>En el Departamento de Microbiolog&iacute;a  Sanitaria del Instituto Nacional de Higiene, Epidemiolog&iacute;a y Microbiolog&iacute;a  (INHEM) se trabaja desde hace alg&uacute;n tiempo en la disponibilidad de microorganismos  para asegurar la calidad del trabajo diario. El empleo de cepas aisladas como  microorganismos de ensayo en los laboratorios, que garanticen la calidad de los  medios de cultivo y reactivos, es una alternativa posible cuando se tienen limitaciones  en la adquisici&oacute;n de material biol&oacute;gico certificado, siempre que  la pureza y estabilidad de las cepas sean garantizadas. Con el objetivo de evaluar  la utilidad de estos microorganismos en el control interno de la calidad, se realiz&oacute;  un estudio comparativo entre cepas bacterianas salvajes y cepas patrones de referencia  primaria, para lo cual se probaron 7 medios de cultivo, producidos en el laboratorio  de medios de cultivo del INHEM, entre octubre de 2001 y noviembre de 2002, para  el examen microbiano de muestras ambientales (aguas y alimentos).</p><h4></h4><h4>  M&eacute;todos</h4>    <p>Se emplearon r&eacute;plicas de cultivos procedentes de  la colecci&oacute;n americana de cultivos tipo (ATCC), como <i>Escherichia coli  </i>ATCC 25922, <i>Enterobacter aerogenes</i> ATCC 13048, <i>Pseudomonas aeruginosa  </i>ATCC 27853, <i>Salmonella typhimurium </i>ATCC 14028, <i>Shigella sonnei</i>  ATCC 25931, <i>Enterococcus faecalis</i> ATCC 19433, <i>Proteus vulgaris</i> ATCC  13315, utilizadas como cepas patrones, mientras que como cepas salvajes se probaron  cultivos de <i>Escherichia coli </i>3002 (aislada de agua de consumo), <i>Enterobacter  aerogenes</i> 3006 (aislado cl&iacute;nico), <i>Pseudomonas aeruginosa</i> 4001  (agua para hemodi&aacute;lisis), <i>Salmonella typhimurium</i> 3004 (agua de r&iacute;o),  <i>Shigella sonnei</i> (aislada de alimento); <i>Enterococcus faecalis </i>6001  (aislada de agua consumo) y <i>Proteus vulgaris</i> 3011 (aislado cl&iacute;nico).  </p><h6>Medios de cultivo </h6>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>El estudio se realiz&oacute; con 3 medios de  cultivo s&oacute;lidos (agar <i>Mac Conkey</i> (MAC); agar <i>Salmonella-Shigella</i>  (SS); agar verde brillante (VB) y 4 medios para la caracterizaci&oacute;n bioqu&iacute;mica  (agar hierro de <i>Kligler</i>; agar citrato de <i>Simmons</i> (Cit); caldo triptona  para la producci&oacute;n de indol y caldo rojo de metilo-<i>Voges Proskauer</i>  (MRVP) que corresponden a los medios de mayor demanda en microbiolog&iacute;a  sanitaria, preparados entre octubre de 2001 a noviembre de 2002, seg&uacute;n  las especificaciones del fabricante y los procedimientos de elaboraci&oacute;n  establecidos en el &aacute;rea para los medios de cultivo deshidratados, procedentes  de las casas comerciales BIOCEN<span class="superscript">3</span> y OXOID<span class="superscript">4</span>  y los preparados a partir de ingredientes b&aacute;sicos (api), respectivamente.  Su verificaci&oacute;n se ejecut&oacute; de acuerdo con la frecuencia de control  definida en el laboratorio, que establece realizar el control de la calidad cada  vez que se abra un nuevo lote de medio deshidratado y cada 6 meses para el medio  en uso, mientras que si es un lote pasado de su fecha de vencimiento, siempre  ser&aacute; controlado al igual que los medios de cultivo preparados a partir  de ingredientes b&aacute;sicos (api).</p><h6>Evaluaci&oacute;n microbiol&oacute;gica  de los medios de cultivo s&oacute;lidos </h6>    <p>Se prepararon los cultivos de  trabajo en caldo cerebro coraz&oacute;n,<span class="superscript">3</span> con  la incubaci&oacute;n a 35 &plusmn; 2 &ordm;C durante 18 a 24 h. A partir de los  caldos con crecimiento se realizaron diluciones seriadas con soluci&oacute;n salina  fisiol&oacute;gica, de las cuales se sembraron al&iacute;cuotas de 5 &micro;L  de cada diluci&oacute;n con pipeta <i>Eppendorf</i>, en cada placa de medio a  probar (MAC, SS y VB), la que estaba dividida en 8 sectores radiales. Se probaron  las 8 diluciones por cepa (figura). Para el an&aacute;lisis de las muestras se  utiliz&oacute; la t&eacute;cnica de <i>Miles </i>y <i>Misra</i> &quot;modificada&quot;  (<i>L&oacute;pez N</i>. Procedimiento de control de la calidad de los medios s&oacute;lidos.  En: INHEM, eds. Manual de procedimientos del &aacute;rea de control de la calidad.  2 ed. La Habana: INHEM, 1998:5-7), y como medios de referencia, agar nutriente  y agar sangre.<span class="superscript">3</span> Una vez inoculados se dejaron  reposar por 30 min para luego incubar a 35 &plusmn; 2 &ordm;C por 24 h. La lectura  se realiz&oacute; seg&uacute;n los criterios del anteproyecto de norma ramal del  MINSAP 1990.</p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/hie/v42n1/f0104104.jpg"><img src="/img/revistas/hie/v42n1/f0104104.jpg" width="180" height="225" border="0"></a></p>    
<p align="center"></p>    <p align="center">FIG.  Procedimiento de trabajo para la evaluaci&oacute;n de los medios s&oacute;lidos.</p>    <p></p><h6>C&aacute;lculos  </h6>    <p>Se determinaron las UFC/mL y las razones de productividad (RP) de cada  medio de cultivo mediante las f&oacute;rmulas siguientes:     <br>     <br> UFC/mL = n<span class="subscript">o  </span>x fd x v<span class="subscript">o </span>(n<span class="subscript">o</span>:  n&uacute;mero de colonias contables en la primera diluci&oacute;n; fd: factor  de diluci&oacute;n; v<span class="subscript">o</span>: volumen sembrado).</p>    <p align="center"><a href="/img/revistas/hie/v42n1/form04104.jpg"><img src="/img/revistas/hie/v42n1/form04104.jpg" width="301" height="108" border="0"></a></p>    
]]></body>
<body><![CDATA[<p>Los  rangos de raz&oacute;n de productividad para microorganismos controles positivos  en medios selectivos son de 30 a <font face="Symbol">&sup3;</font> 70 %, mientras  que para los microorganismos que no deben crecer son de 0,1 % a 0 %, seg&uacute;n  el anteproyecto de norma ramal del MINSAP 1990 (L&oacute;pez N. Procedimiento  de control de la calidad de los medios s&oacute;lidos. En: INHEM, eds. Manual  de procedimientos del &aacute;rea de control de la calidad. 2 ed. La Habana: INHEM,  1998:5-7). </p>    <p></p><h6>Evaluaci&oacute;n microbiol&oacute;gica de los medios  para caracterizaci&oacute;n bioqu&iacute;mica </h6>    <p>A partir de los caldos con  crecimiento fueron inoculados directamente las cepas de control en cada medio  de cultivo, seg&uacute;n las caracter&iacute;sticas de este. Los medios bioqu&iacute;micos  evaluados fueron agar citrato de <i>Simmons </i>y agar hierro de <i>Kligler</i>,<span class="superscript">3</span>  caldo triptona para la producci&oacute;n de indol y caldo MRVP (api). </p>    <p>Para  cada medio de cultivo se verific&oacute; el pH del medio listo para usar, mediante  cintas indicadoras de pH VEB (rango 5-9) y Merck (6,5-10), as&iacute; como su  esterilidad, para lo cual una placa o tubo de medio se incub&oacute; durante 24  h a 35 &plusmn; 2 &deg;C.</p><h4>Resultados </h4>    <p>La tabla 1 muestra los resultados  del control de la calidad de los medios de cultivo s&oacute;lidos, mientras que  la tabla 2 ilustra los datos del chequeo de la calidad de los medios utilizados  en las pruebas bioqu&iacute;micas. Ning&uacute;n medio de cultivo fue descartado  por contaminaci&oacute;n que indicara fallas en la esterilidad ni en el pH de  los medios listos para usar. </p>    <p align="center">Tabla 1.<i> </i>Resultados  del control de la calidad de los medios de cultivo s&oacute;lidos; INHEM, 2002.</p><table width="75%" border="1" align="center">  <tr> <td rowspan="4">     <p align="center"></p>    <p align="center"></p>    <p align="center"></p>    <p align="center"></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"></p>    <p align="center"></p>    <p align="center"></p>    <p align="center"></p>    <p align="center"></p>    <p align="center"></p>    <p align="center"></p>    <p align="center"></p>    <p align="center"></p>    <p align="center"></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">Microorganismos  de ensayo </p></td><td colspan="3">     <div align="center">Medios de cultivo evaluados</div></td></tr>  <tr> <td>     <div align="center">Agar <i>Mac Conkey</i></div></td><td>     <div align="center">Agar  <i>Salmonella-Shigella </i></div></td><td>     <div align="center">Agar verde brillante</div></td></tr>  <tr> <td>     <div align="center">n = 20 </div></td><td>     <div align="center">n = 17  </div></td><td>     <div align="center">n = 17</div></td></tr> <tr> <td>     <div align="center">Promedio  RP</div></td><td>     <div align="center">Promedio RP </div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">Promedio  RP</div></td></tr> <tr> <td>     <div align="left"><i>Escherichia coli </i>ATCC 25922  </div></td><td>     <div align="center">95 %</div></td><td>     <div align="center">0,1  % </div></td><td>     <div align="center">50 %</div></td></tr> <tr> <td>     <div align="left"><i>Escherichia  coli </i>3002 </div></td><td>     <div align="center">100 % </div></td><td>     <div align="center">0  % </div></td><td>     <div align="center">35 %</div></td></tr> <tr> <td>     <div align="left"><i>Salmonella  typhimurium</i> ATCC 14028 </div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">110 % </div></td><td>      <div align="center">75 % </div></td><td>     <div align="center">80 %</div></td></tr>  <tr> <td>     <div align="left"><i>Salmonella typhimurium</i> 3004 </div></td><td>      <div align="center">104 % </div></td><td>     <div align="center">80 % </div></td><td>      <div align="center">82 %</div></td></tr> <tr> <td>     <div align="left"><i>Enterococcus  faecalis</i> ATCC 19433</div></td><td>     <div align="center">0,1 % </div></td><td>      <div align="center">-</div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">-</div></td></tr> <tr>  <td>     <div align="left"><i>Enterococcus faecalis</i> 6001 </div></td><td>     <div align="center">0,1  %</div></td><td>     <div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">-</div></td></tr>  <tr> <td>     <div align="left"><i>Proteus vulgaris</i> ATCC 13315</div></td><td>      <div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">- </div></td><td>     <div align="center">70  %</div></td></tr> <tr> <td>     <div align="left"><i>Proteus vulgaris</i> 3010 </div></td><td>      ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">- </div></td><td>     <div align="center">70  %</div></td></tr> </table>    <p align="center">&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;  Total de controles realizados (n); no se evalu&oacute; (-). </p>    <p align="center">&nbsp;</p>    <p align="center">Tabla  2. Datos del chequeo de la calidad de los medios utilizados en las pruebas bioqu&iacute;micas;  INHEM, 2002.</p><table width="75%" border="1" align="center"> <tr> <td rowspan="3">      <div align="center">Microorganismos de ensayo</div></td><td colspan="8">     <div align="center">Medios  de cultivo evaluados</div></td></tr> <tr> <td>     <div align="center">Agar hierro  de <i>Kligler</i></div></td><td>     <div align="center"></div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center"></div></td><td>      <div align="center"></div></td><td>     <div align="center">Cit</div></td><td>     <div align="center">CTI</div></td><td>      <div align="center">RM</div></td><td>     <div align="center">VP</div></td></tr> <tr>  <td>     <div align="center">Glu</div></td><td>     <div align="center">Lac</div></td><td>      <div align="center">Gas</div></td><td>     <div align="center">H<span class="subscript">2</span>S</div></td><td>      ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center"></div></td><td>     <div align="center"></div></td><td>     <div align="center"></div></td><td>      <div align="center"></div></td></tr> <tr> <td height="21"><i>Escherichia coli  </i>ATCC 25922</td><td height="21">     <div align="center">+</div></td><td height="21">      <div align="center">+</div></td><td height="21">     <div align="center">+</div></td><td height="21">      <div align="center">-</div></td><td height="21">     <div align="center">-</div></td><td height="21">      <div align="center">+</div></td><td height="21">     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">+</div></td><td height="21">      <div align="center">-</div></td></tr> <tr> <td><i>Escherichia coll </i>3002</td><td>      <div align="center">+</div></td><td>     <div align="center">+</div></td><td>     <div align="center">+</div></td><td>      <div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">+</div></td><td>      <div align="center">+</div></td><td>     <div align="center">-</div></td></tr> <tr>  <td><i>Enterobacter serogenes</i> ATCC 13048</td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">NP</div></td><td>      <div align="center"></div></td><td>     <div align="center"></div></td><td>     <div align="center"></div></td><td>      <div align="center">+</div></td><td>     <div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">-</div></td><td>      <div align="center">+</div></td></tr> <tr> <td><i>Enterobacter aerogenes</i> 3006</td><td>      <div align="center">NP</div></td><td>     <div align="center"></div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center"></div></td><td>      <div align="center"></div></td><td>     <div align="center">+</div></td><td>     <div align="center">-</div></td><td>      <div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">+</div></td></tr> <tr>  <td><i>Salmonella typhimurlum</i> ATCC 14028</td><td>     <div align="center">+</div></td><td>      <div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">+</div></td><td>     <div align="center">+</div></td><td>      ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">+</div></td><td>     <div align="center">NP</div></td><td>     <div align="center">NP</div></td><td>      <div align="center">NP</div></td></tr> <tr> <td><i>Salmonella typhimurlum</i>  3004</td><td>     <div align="center">+</div></td><td>     <div align="center">-</div></td><td>      <div align="center">+</div></td><td>     <div align="center">+</div></td><td>     <div align="center">+</div></td><td>      <div align="center">NP</div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">NP</div></td><td>     <div align="center">NP</div></td></tr>  <tr> <td><i>Shigella sonnel</i> ATCC 25931</td><td>     <div align="center">+</div></td><td>      <div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">-</div></td><td>      <div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">NP</div></td><td>     <div align="center">NP</div></td><td>      <div align="center">NP</div></td></tr> <tr> <td><i>Shigella sonnel</i></td><td>      ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">+</div></td><td>     <div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">-</div></td><td>      <div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">NP</div></td><td>      <div align="center">NP</div></td><td>     <div align="center">NP</div></td></tr> <tr>  <td><i>Pseudomonas aeruginosa</i> ATCC 25923</td><td>     <div align="center">-</div></td><td>      <div align="center">-</div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">-</div></td><td>      <div align="center">NP</div></td><td>     <div align="center">NP</div></td><td>     <div align="center">NP</div></td><td>      <div align="center">NP</div></td></tr> <tr> <td><i>Pseudomonas aeruginosa</i>  6001</td><td>     <div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">-</div></td><td>      <div align="center">-</div></td><td>     <div align="center">-</div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">NP</div></td><td>      <div align="center">NP</div></td><td>     <div align="center">NP</div></td><td>     <div align="center">NP</div></td></tr>  <tr> <td>Total de controles realizados</td><td>     <div align="center">30</div></td><td>      <div align="center"></div></td><td>     <div align="center"></div></td><td>     <div align="center"></div></td><td>      <div align="center">30</div></td><td>     <div align="center">35</div></td><td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="center">35</div></td><td>      <div align="center">35</div></td></tr> </table>    <p>Fermentaci&oacute;n de glucosa  y lactosa (Glu y Lac); producci&oacute;n de gas y sulf&uacute;rico (Gas y H<span class="subscript">2</span>S);  agar citrato de Simmons (Cit); caldo triptona para la producci&oacute;n de indol  (CTI); rojo de metilo (RM); Voges-Proskauer (VP); respuesta positiva (+); respuesta  negativa (-); no procede (NP).</p><h4>Discusi&oacute;n</h4>    <p>El control de reactivos,  colorantes, medios de cultivo y patrones de referencia constituye uno de los par&aacute;metros  m&aacute;s importantes para garantizar la calidad de las investigaciones en el  campo de la microbiolog&iacute;a. </p>    <p>Del an&aacute;lisis de la tabla 1, se  aprecia correspondencia entre los porcentajes de recobrado de las cepas evaluadas  (referencia y salvajes) y la selectividad del medio para el total de controles  ejecutados. La totalidad de los chequeos realizados al medio agar Mac Conkey correspondi&oacute;  a un lote vencido (fecha de caducidad: 1998, verificado cada vez que se prepar&oacute;)  mientras que para los medios agar verde brillante y agar Salmonella-Shigella,  un 50 y un 60 % correspondieron a la apertura de frascos de nuevos lotes y en  tiempo (2 de cada medio con fecha de caducidad: 2002) y un 50 y 40 % a lotes vencidos  (2 de agar VB y 3 de agar SS), respectivamente, lo que pudiera explicar el dato  relativo al recobrado de las cepas de <i>Escherichia coli </i>para el medio agar  verde brillante.</p>    <p>Por su parte, los datos que muestra la tabla 2 ilustran  que el 100 % de las respuestas bioqu&iacute;micas obtenidas para todos los medios  verificados son iguales para ambas cepas de control (referencia y salvaje), lo  que justifica su utilizaci&oacute;n como microorganismos de control siempre y  cuando su pureza y estabilidad sean &iacute;ntegras. Adem&aacute;s, estos resultados  se corresponden con los obtenidos por <i>Rivas</i> <i>Beades</i> (<i>L&oacute;pez  N</i>. Procedimiento de control de la calidad de los medios s&oacute;lidos. En:  INHEM, eds. Manual de procedimientos del &aacute;rea de control de la calidad.  2 ed. La Habana: INHEM, 1998:5-7) y <i>Leyva </i>(L&oacute;pez N. Procedimiento  de control de la calidad de los medios s&oacute;lidos. En: INHEM, eds. Manual  de procedimientos del &aacute;rea de control de la calidad. 2 ed. La Habana: INHEM,  1998:5-7) durante la evaluaci&oacute;n de medios de cultivo &uacute;tiles en el  estudio de las caracter&iacute;sticas fisiol&oacute;gicas de bacterias de la familia  <i>Enterobacteriaceae</i>.<span class="superscript">5</span> </p>    <p>El 100 % de  los controles realizados a los medios agar hierro de <i>Kligler</i> y agar citrato  de <i>Simmons</i> correspondieron a lotes vencidos (fecha de caducidad: 1997 y  1998 en cada caso), mientras que todas las evaluaciones realizadas para los medios  caldo triptona para la producci&oacute;n de indol y MRVP corresponden a cada una  de las veces que se prepar&oacute; el medio de cultivo, por ser preparado a partir  de sus ingredientes b&aacute;sicos. </p><h4>Consideraciones finales</h4>    <p>De  los resultados de este estudio se concluye que no se encontraron diferencias significativas  entre las respuestas de las cepas bacterianas ensayadas (referencia y aut&oacute;ctonas)  durante la evaluaci&oacute;n de los medios de cultivo, lo que permite su utilizaci&oacute;n  como microorganismos secundarios de referencia en la evaluaci&oacute;n de la calidad  de los medios de cultivo y reactivos para ensayos microbiol&oacute;gicos. Por  otra parte, se recomienda extender el estudio a microorganismos de otros g&eacute;neros  bacterianos para la verificaci&oacute;n de la calidad de medios de cultivo y reactivos.</p><h4>Summary</h4>    <p>A  comparative study was conducted between bacterial pattern strains kept in the  collection of microbial cultures of the National Institute of Hygiene, Epidemiology  and Microbiology and wild strains isolated in the microbiological assays laboratories  of this center in order to be used as secondary reference patterns in the quality  control of the culture media and reagents. 7 culture media of the most demanded  were tested at the Department of Health Microbiology from October, 2001, to November,  2002. <i>Miles </i>and <i>Misra</i>'s techniques (modified) as well as the direct  innoculation technique were used according to the working procedures established  to this end. No differences were found in the responses obtained from the cultures  tested during the verification in the culture media, which proves that the strains  may be useful in the daily practice as secondary reference patterns in the assurance  of microbiological quality.    <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <i>Key words</i>: Bacterial strains, culture  media, reference patterns, quality control.</p><h4></h4><h4></h4><h4>Referencias  bibliogr&aacute;ficas</h4><ol>     <!-- ref --><li> Snell JJS. Quality control in microbiology.  En: Barrow GI., Feltham RKA, eds. Cowan &amp; Steel&acute;s manual for identification  of medical bacteria. 3 ed. Cambridge: University Press, 1999:p.184-218[    STANDARDIZEDENDPARAG]<br> </li>    <!-- ref --><li>  Ortega Y, Quevedo F. Control de la calidad en los laboratorios de microbiolog&iacute;a  sanitaria. 1 ed, M&eacute;xico DC: OPS/OMS, 1991:p.152[    STANDARDIZEDENDPARAG]<br> </li>    <!-- ref --><li> Rodr&iacute;guez  C. Manual de medios de cultivo. 2 ed, La Habana: BIOCEN, 2001:p.200.    <br> </li>    <!-- ref --><li>  OXOID. Manual. Barcelona: UNIPATH;1995:p.389.    <br> </li>    <!-- ref --><li> Garrity GM, Winters  M, Searles DB. Taxonomic outline of the prokaryotic genera. Bergey&acute;s Manual  of Systematic Bacteriology. 2nd ed. New York: Springer Verlag, 2001;p.13-4.</li>    </ol>    <p>Recibido:  7 de marzo de 2004. Aprobado:12 de abril de 2004.    <br> Lic. <i>Zulia Weng Alem&aacute;n</i>.  Instituto Nacional de Higiene, Epidemiolog&iacute;a y Microbiolog&iacute;a (INHEM).  Infanta 1158 e/ Llin&aacute;s y Clavel, Centro Habana, Ciudad de La Habana, Cuba.  e-mail: <a href="mailtoweng@infomed.sld.cu">weng@infomed.sld.cu</a>    <br> </p>    <p><a href="#cargo"><span class="superscript"><b>1</b></span>  Licenciada en Ciencias Farmac&eacute;uticas. Aspirante a investigadora.    <br> <span class="superscript"><b>2</b></span>  T&eacute;cnica en Procesos Biol&oacute;gicos. Adiestrada.     <br> <span class="superscript"><b>3</b></span>  T&eacute;cnico A en Laboratorio Sanitario.</a><a name="autor"></a></p>    <p>&nbsp; </p>      ]]></body><back>
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