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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Análisis de los polimorfismos p. K832R y p. T991T en pacientes cubanos con diagnóstico clínico de la enfermedad de Wilson]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[p. K832R and p. T991T polymorphisms&#8217; analysis in Cuban patients with clinical diagnosis of Wilson's disease]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Wilson's disease is characterized by accumulation of copper in the liver, brain and cornea. It is transmitted with an autosomal recessive inherited disorder. The molecular causes are mutations in the ATP7B gene. It has been reported in the literature more than 139polymorphisms of the ATP7B gene. Objective: Identify the conformational changes in exons 10 and 13 and detect the polymorphisms p.K832R and p.T991T in the ATP7B gene in Cuban patients with clinical diagnosis of Wilson's disease. Material and Methods: Was performed a descriptive study including 27 patients with Wilson&#8217;s disease ranging in the time from 2012 to 2013. Were applied the polymerase chain reaction to amplify the fragment of interest and the Conformation Polymorphism Single-Chain procedures in the exon 10 and 13 of the ATP7B gene. The p. K832R and p. T991T polymorphisms were detected by sequencing this fragment. Results: Three different conformational changes were identified: (a, b and c) in exon 10 and (a and b) in exon 13 of the ATP7B gene. The allelic frequency of polymorphisms p. K832R and p. T991T in 27 Cuban patients with clinical diagnosis of Wilson's disease is 35.2% and 5.6%, respectively. Conclusions: It is the first time in Cuba that a combination of the polymorphisms p. K832R and p. T991T were identified which will allow to make possible molecular studies by indirect methods.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right" style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;line&#45;height: normal'><font color="#000000" size="3" face="verdana"><strong>CIENCIAS    B&Aacute;SICAS BIOM&Eacute;DICAS</strong></font></p>     <p align="right" style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;line&#45;height: normal'>&nbsp;</p>     <p align="right" style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;line&#45;height: normal'>&nbsp;</p>     <p align="left" style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;line-height: normal'><font color="#000000" size="2" face="verdana">    </font><font color="#000000" size="2" face="verdana">Universidad de Guant&aacute;namo,    Cuba    <br>   </font><font color="#000000" size="2" face="verdana">Centro Nacional de Gen&eacute;tica    M&eacute;dica (CNGM), Cuba    <br>   </font><font color="#000000" size="2" face="verdana">Instituto Nacional de Gastroenterolog&iacute;a,    Cuba    <br>   </font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;line&#45;height: normal'><font color="#000000" size="2" face="verdana">&nbsp;</font></p>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;line-height: normal'><font color="#000000" size="4" face="verdana"><b>An&aacute;lisis    de los polimorfismos p. K832R y p. T991T en pacientes cubanos con diagn&oacute;stico    cl&iacute;nico de la enfermedad de Wilson</b></font></p>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;line-height: normal'>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;line-height: normal'>&nbsp;</p>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;line-height: normal'><font color="#000000" size="3" face="verdana"><strong>p.    K832R and p. T991T polymorphisms&rsquo; analysis in Cuban patients with clinical    diagnosis of Wilson's disease</strong></font></p>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;line-height: normal'>&nbsp;</p>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;line-height: normal'>&nbsp;</p>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;line-height: normal'><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>Yulia    Clark Feoktistova<sup>I</sup>, Caridad Ruenes Domech<sup>II</sup>, Elsa F. Garc&iacute;a    Bacallao<sup>III</sup>, Hilda Roblejo BalbuenaIV, Zoe Robaina Jim&eacute;nez<sup>V</sup>,    Estela Morales Peralta<sup>VI</sup></b></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>&nbsp;</b></font></p>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana"><sup>I</sup>M&aacute;ster    en Ciencias en Bioqu&iacute;mica. Menci&oacute;n Biolog&iacute;a Molecular.    Investigador Agregado. Profesor Asistente. Universidad de Guant&aacute;namo.    <a href="mailto:yuliacf@cug.co.cu">yuliacf@cug.co.cu    <br>   </a></font><font color="#000000" size="2" face="verdana"><sup>II</sup>Especialista    Primer Grado de Medicina General Integral. Especialista Segundo Grado en Gastroenterolog&iacute;a.    Investigador Agregado. Profesor Auxiliar de la Universidad de Ciencias M&eacute;dicas    de La Habana. Instituto Nacional de Gastroenterolog&iacute;a. <a href="mailto:ruenes@infomed.sld.cu">ruenes@infomed.sld.cu    <br>   </a></font><font color="#000000" size="2" face="verdana"><sup>III</sup>Especialista    Segundo Grado de Gastroenterolog&iacute;a. Profesor auxiliar de la Universidad    de Ciencias M&eacute;dicas de La Habana. Instituto Nacional de Gastroenterolog&iacute;a.    <a href="mailto:egarcia@infomed.sld.cu">egarcia@infomed.sld.cu    <br>   </a></font><font color="#000000" size="2" face="verdana"><sup>IV</sup>Especialista    Primer Grado en Medicina General Integral y Gen&eacute;tica Cl&iacute;nica.    Asistente de la Universidad de Ciencias M&eacute;dicas de La Habana. Investigador    Agregado. Centro Nacional de Gen&eacute;tica M&eacute;dica. <a href="mailto:hilda.roblejo@infomed.sld.cu">hilda.roblejo@infomed.sld.cu    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   </a></font><font color="#000000" size="2" face="verdana"><sup>V</sup>Especialista    Gen&eacute;tica Cl&iacute;nica. Centro Nacional de Gen&eacute;tica M&eacute;dica.    <a href="mailto:zrobaina1@infomed.sld.cu">zrobaina1@infomed.sld.cu    <br>   </a></font><font color="#000000" size="2" face="verdana"><sup>VI</sup>Especialista    de Segundo Grado en Gen&eacute;tica Cl&iacute;nica. Doctor en Ciencias M&eacute;dicas.    Facultad de Ciencias M&eacute;dicas "10 de Octubre". <a href="mailto:fornaris@infomed.sld.cu">fornaris@infomed.sld.cu</a></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">&nbsp;</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>&nbsp;</b></font></p> <hr> <font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>RESUMEN</b></font>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>Introducci&oacute;n:</b>    La Enfermedad de Wilson se caracteriza por la acumulaci&oacute;n de cobre en    h&iacute;gado, cerebro, ri&ntilde;ones y cornea. Se transmite con un patr&oacute;n    de herencia autos&oacute;mico recesivo. La causa molecular que la provoca son    las mutaciones en el gen ATP7B. Se han informado en la literatura m&aacute;s    de 139 polimorfismos en el gen ATP7B.    <br>   </font><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>Objetivo:</b> Identificar    los cambios conformacionales en los exones 10 y 13 y detectar los polimorfismos    p.K832R y p.T991T en el gen ATP7B en pacientes cubanos con diagn&oacute;stico    cl&iacute;nico de Enfermedad de Wilson.    <br>   </font><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>Material y M&eacute;todos</b>:    Se realiz&oacute; un estudio descriptivo, durante el per&iacute;odo 2012 al    2013, que incluy&oacute; 27 pacientes con diagn&oacute;stico cl&iacute;nico    de Enfermedad de Wilson. Para la amplificaci&oacute;n del fragmento de inter&eacute;s,    se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica de Reacci&oacute;n en Cadena de la Polimerasa    y para identificar los cambios conformacionales se aplic&oacute; la t&eacute;cnica    de Polimorfismo Conformacional de Simple Cadena, en el ex&oacute;n 10 y 13 del    gen ATP7B. La presencia de los polimorfismos p.K832R y p.T991T fueron identificados    por secuenciaci&oacute;n.    <br>   </font><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>Resultados:</b> Se detectaron    tres cambios conformacionales diferentes denominados: (a, b y c) en el ex&oacute;n    10 y (a y b) en el ex&oacute;n 13 del gen ATP7B.&nbsp; La frecuencia al&eacute;lica    de los polimorfismos p. K832R y p.T991T en 27 pacientes cubanos con diagn&oacute;stico    cl&iacute;nico de la Enfermedad de Wilson es 35,2% y 5,6% respectivamente.    <br>   </font><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>Conclusiones:</b> Se    analiz&oacute; por primera vez en Cuba la combinaci&oacute;n de los polimorfismos    p. K832R y p. T991T que posibilitar&aacute; hacer estudios moleculares por m&eacute;todos    indirectos.</font></p>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>Palabras    claves:</b> Enfermedad de Wilson, polimorfismo p.K832R, p.T991T, SSCP, secuenciaci&oacute;n,    gen ATP7B.</font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%'>&nbsp; <hr> <font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>ABSTRACT</b></font>      <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>Introduction:</b>    Wilson's disease is characterized by accumulation of copper in the liver, brain    and cornea. It is transmitted with an autosomal recessive inherited disorder.    The molecular causes are mutations in the ATP7B gene. It has been reported in    the literature more than 139polymorphisms of the ATP7B gene.    <br>   </font><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>Objective:</b> Identify    the conformational changes in exons 10 and 13 and detect the polymorphisms p.K832R    and p.T991T in the ATP7B gene in Cuban patients with clinical diagnosis of Wilson's    disease.    <br>   </font><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>Material and Methods:</b>    Was performed a descriptive study including 27 patients with Wilson&rsquo;s    disease ranging in the time from 2012 to 2013. Were applied the polymerase chain    reaction to amplify the fragment of interest and the Conformation Polymorphism    Single&#45;Chain procedures in the exon 10 and 13 of the ATP7B gene. The p.    K832R and p. T991T polymorphisms were detected by sequencing this fragment.    <br>   </font><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>Results:</b> Three different    conformational changes were identified: (a, b and c) in exon 10 and (a and b)    in exon 13 of the ATP7B gene. The allelic frequency of polymorphisms p. K832R    and p. T991T in 27 Cuban patients with clinical diagnosis of Wilson's disease    is 35.2% and 5.6%, respectively.    <br>   </font><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>Conclusions:</b> It    is the first time in Cuba that a combination of the polymorphisms p. K832R and    p. T991T were identified which will allow to make possible molecular studies    by indirect methods.</font></p>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>Keywords:</b>    Wilson&rsquo;s disease, p. K832R polymorphism, p. T991T polymorphism, SSCP,    sequencing, ATP7B gene.</font></p>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%'>&nbsp;</p>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%'>&nbsp;</p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font color="#000000" size="3" face="verdana"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font>  </p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">La    Enfermedad de Wilson (EW, MIM 277900)<sup>1</sup> es un trastorno hereditario.    El patr&oacute;n de herencia es autos&oacute;mico recesivo. Se considera una    de las enfermedades raras descritas a nivel internacional. Se caracteriza por    la acumulaci&oacute;n de cobre fundamentalmente en el h&iacute;gado, cerebro    y cornea. El diagn&oacute;stico cl&iacute;nico&#45;gen&eacute;tico de esta enfermedad    resulta complejo.<sup>2</sup></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Se    caracteriza por da&ntilde;os en el h&iacute;gado, que puede ser desde la alteraci&oacute;n    de los niveles s&eacute;ricos de transaminasas hasta una cirrosis descompensada,    incluyendo incluso hepatitis fulminante. Los pacientes pueden presentar afectaciones    a nivel cerebral; las manifestaciones pueden ser desde temblores, diston&iacute;a,    entre otros. Es una enfermedad gen&eacute;tica tratable; sin embargo, puede    provocar alteraciones irreversibles que pueden llevar a la muerte de no atenderse    de forma adecuada. La causa molecular que la provoca son las mutaciones en el    gen ATP7B (MIM 606882), el cual presenta 21 exones y se han reportado m&aacute;s    de 500 mutaciones hasta la actualidad.<sup>3&#45;8</sup></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Adem&aacute;s    se han identificado m&aacute;s de 139 polimorfismos que est&aacute;n distribuidos    en todo el gen ATP7B y en los intrones, los exones m&aacute;s polim&oacute;rficos    reportados son: 2, 8 y el 16. En los exones 10 y 13 se han identificado varios    polimorfismos.<sup>9</sup></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Los    polimorfismos p.K832R y p.T991T se encuentran localizados en los exones 10 y    13 del gen ATP7B. Estos polimorfismos se han identificado en diversas poblaciones,    en pa&iacute;ses como en India, Canad&aacute;, China, Jap&oacute;n, Reino Unido    e Ir&aacute;n.<sup>10&#45;15</sup></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Para    la determinaci&oacute;n del espectro mutacional y la identificaci&oacute;n de    polimorfismos en el gen ATP7B es necesario una adecuada tecnolog&iacute;a de    cribaje. Una de las t&eacute;cnicas m&aacute;s utilizadas para este prop&oacute;sito    es el Polimorfismo Conformacional de Simple Cadena, SSCP (<i>del ingl&eacute;s    single&#45;strand conformation polymorphism</i>).</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>&nbsp;</b></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="3" face="verdana"><b>OBJETIVO</b></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Considerando    que en Cuba no existe el diagn&oacute;stico molecular de la Enfermedad de Wilson    nos proponemos como objetivo identificar los cambios conformacionales en los    exones 10 y 13 y detectar los polimorfismos p.K832R y p.T991T en el gen ATP7B    en pacientes cubanos con diagn&oacute;stico cl&iacute;nico de esta enfermedad.    La identificaci&oacute;n del SNP (Polimorfismo de un solo nucle&oacute;tido)    va a constituir una herramienta molecular para el asesoramiento gen&eacute;tico    adecuado para el individuo afectado y su familia.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">&nbsp;</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="3" face="verdana"><b>MATERIAL    Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Se    realiz&oacute; un estudio descriptivo en el Centro Nacional de Gen&eacute;tica    M&eacute;dica y el Instituto Nacional de Gastroenterolog&iacute;a, durante el    per&iacute;odo 2012&#45;2013, que incluy&oacute; 27 pacientes cubanos (9 mujeres    y 18 hombres) con diagn&oacute;stico cl&iacute;nico de EW, asist&iacute;an a    la consulta del Instituto Nacional de Gastroenterolog&iacute;a. Estos pacientes    dieron su consentimiento para participar en la investigaci&oacute;n, de acuerdo    con los principios &eacute;ticos de la Declaraci&oacute;n de Helsinki.</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Las    variables analizadas fueron: frecuencia al&eacute;lica del polimorfismo p.K832R    (cambio conformacional a para la variante normal y cambio conformacional b para    la presencia del polimorfismo p.K832R en estado heterocig&oacute;tico y c para    la presencia del polimorfismo p.K832R en estado homocig&oacute;tico). Otras    variables fueron: frecuencia al&eacute;lica del polimorfismo p.T991T (cambio    conformacional a para la variante normal y cambio conformacional b para la presencia    del polimorfismo p.T991T en estado heterocig&oacute;tico) y manifestaciones    cl&iacute;nicas (hep&aacute;ticas, neurol&oacute;gicas y mixtas). La evaluaci&oacute;n    de las manifestaciones cl&iacute;nicas fue realizada por un equipo multidisciplinario    (gastroenter&oacute;logos, genetistas, neur&oacute;logos, bioqu&iacute;micos),    siguiendo los criterios de diagn&oacute;stico de la enfermedad.</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Se    seleccionaron los exones 10 y 13 del gen ATP7B para la detecci&oacute;n de cambios    conformacionales y la identificaci&oacute;n de los polimorfismos p.K832R y T991T.    A todos los pacientes se les tom&oacute; una muestra de sangre y se extrajo    el ADN, mediante el m&eacute;todo de precipitaci&oacute;n salina<sup>16</sup>    a partir de 10 ml de sangre perif&eacute;rica con &aacute;cido etildiaminotetraac&eacute;tico    (EDTA, del ingl&eacute;s Ethylene Diamine Tetra Acetic Acid) (56 mg/ml).</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%;text&#45;autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Las    condiciones para la amplificaci&oacute;n de los exones 10 y 13 mediante la t&eacute;cnica    de Reacci&oacute;n en Cadena de la Polimerasa (PCR, del ingl&eacute;s <i>Reverse    Transcription Polymerase Chain Reaction</i>) fueron: 100ng de ADN, 10 pmoles/&micro;L    de cada oligonucl&eacute;otido del ex&oacute;n10: (E10R: 5&acute; CAGCTGGCCTAGAACCTGA    3&acute;, E10L: 5&acute; TATCCTCCT GAGGGAACATG 3&acute;) Y EL EX&Oacute;N 13:    (F) 5'&#45;AGT CGC CAT GTA AGT GAT AA&#45;3' Y (R) 5'&#45;CTG AGG GAA CAT GAA    ACA A&#45;3', 1MM DE DNTPS (BOEHRINGER), 10X tamp&oacute;n PCR, 15mM de MgCl<sub>2</sub>,    1u de Taq polimerasa (Amplicen), en un volumen de 25 &micro;l.<sup>17</sup></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%;text&#45;autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Posteriormente    se realiz&oacute; la electroforesis SSCP. Se mezcl&oacute; 3,5&micro;l con una    soluci&oacute;n de parada de bromofenol azul (0,05 % BFA, 10mM NaOH, 95% formamida,    20mM EDTA) y 1 &micro;l del producto amplificado, en un volumen final de 7&micro;L.    Se aplic&oacute; en un gel de acrilamida comercial (GeneGel Excel 12,5/24 Kit).    La visualizaci&oacute;n del ADN se realiz&oacute; por el m&eacute;todo de tinci&oacute;n    con plata, siguiendo las instrucciones del juego comercial: kit Plus One DNA    Silver Staining (<i>Amersham Biosciences</i>, 2007).</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Se    procedi&oacute; a la secuenciaci&oacute;n del patr&oacute;n alterado por SSCP.    El secuenciador utilizado fue ALF&#45;Express II (<i>Amersham Pharmacia Biotech</i>).    Un paso cr&iacute;tico y decisivo fue la purificaci&oacute;n del producto de    PCR, el cual se realiz&oacute; con el juego comercial de la Qiagen ( <i>QIAquick,    PCR Purification Kit</i>). Los resultados fueron analizados mediante el programa    inform&aacute;tico del equipo y comparados con la secuencia de ADN de referencia    del gen <i>ATP7B</i> (GenBank: NM000053), el cod&oacute;n de iniciaci&oacute;n    fue ATG.</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>&nbsp;</b></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="3" face="verdana"><b>RESULTADOS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">La    edad de inicio de la enfermedad de los 27 pacientes analizados fue de 25,4 a&ntilde;os&plusmn;3,1    y la edad de los pacientes que contienen los polimorfismos p.K832R y p.T991T    fue de 24,3 a&ntilde;os &plusmn;2,6.</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Se    identificaron tres cambios conformacionales denominados: a, b y c en el ex&oacute;n    10 y dos cambios en el ex&oacute;n 13, con el uso de la t&eacute;cnica SSCP.    El cambio conformacional a correspondi&oacute; a la variante normal en los dos    exones estudiados. Las muestras que presentaron el cambio conformacional b y    c se secuenciaron. Se obtuvo como resultado la identificaci&oacute;n del polimorfismo    p.K832R en estado heterocig&oacute;tico y homocig&oacute;tico el ex&oacute;n    10 y p.T991T en estado heterocig&oacute;tico en el ex&oacute;n 13. Se identificaron    cinco homocig&oacute;ticos y nueve heterocig&oacute;ticos en el ex&oacute;n    10 para el polimorfismo p.K832R. Se detectaron tres pacientes heterocig&oacute;ticos    para el polimorfismo p.T991T. Se identific&oacute; este polimorfismo p.K832R    y p.T991T en 51,9% y 11,1 de los pacientes cubanos analizados respectivamente.</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Los    18 pacientes que presentaron los polimorfismos p.K832R y p.T991T provienen de    las provincias: Pinar de R&iacute;o (6), La Habana (4), Matanzas (3), Camag&uuml;ey    (2), Santi Spiritus (1), Ciego de &Aacute;vila (1) y Guant&aacute;namo (1).</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%;text&#45;autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">El    polimorfismo p.K832R es consecuencia de un cambio de adenina por guanina, lo    cual provoca el cambio del amino&aacute;cido lisina por arginina en la posici&oacute;n    832 de la prote&iacute;na ATP7B en el cuarto segmento de transmembrana.</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%;text&#45;autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">El    polimorfismo p.T991T es consecuencia de un cambio de citosina por guanina, lo    cual no provoca el cambio del amino&aacute;cido treonina en la posici&oacute;n    991 de la prote&iacute;na ATP7B en el sexto segmento de transmembrana.</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Estos    polimorfismos no afectan la funci&oacute;n de la prote&iacute;na y se ha identificado    en diversas poblaciones con una frecuencia mayor que 1%.</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">La    frecuencia al&eacute;lica en los 27 pacientes cubanos estudiados de los polimorfismos    p.K832R y p.T991T es de 35,2% y 5,6% respectivamente. (<a href="/img/revistas/rhcm/v16n2/t0104217.gif">Tabla1</a>).</font></p>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">En    esta investigaci&oacute;n se analizaron las manifestaciones cl&iacute;nicas    de los pacientes que presentaron los polimorfismos p.K832R y p.T991T, las cuales    se agruparon en diferentes grupos: hep&aacute;ticas, neurol&oacute;gicas, mixtas    y asintom&aacute;ticas; estas son las manifestaciones m&aacute;s frecuentes    informadas en la literatura internacional en los pacientes con diagn&oacute;stico    cl&iacute;nico de la Enfermedad de Wilson. (<a href="/img/revistas/rhcm/v16n2/t0204217.jpg">Tabla2</a>).</font></p>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%'>&nbsp;</p>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%'><font color="#000000" size="3" face="verdana"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Se    han informado en la literatura internacional m&aacute;s de 139 polimorfismos    en el gen ATP7B en pacientes con la Enfermedad de Wilson.<sup>3</sup></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">La    edad de inicio de la enfermedad de los 27 pacientes estudiados es similar a    la edad de inicio de los pacientes donde se identificaron los polimorfismos    p.K832R y p.T991T. Por tanto, la presencia de los polimorfismos estudiados no    influye en la edad de inicio de la enfermedad. Las provincias m&aacute;s representadas    fueron Pinar de R&iacute;o y La Habana.</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">En    Cuba, se comienza a realizar la detecci&oacute;n de polimorfismos en el gen    ATP7B en 2008. Un paso previo a la b&uacute;squeda de mutaciones y polimorfismos    en este gen es la detecci&oacute;n de cambios conformacionales. El polimorfismo    p.K832R y p.T991T son informados en diversos pa&iacute;ses; sin embargo, hay    reportes en los cuales no informan la frecuencia al&eacute;lica. (<a href="/img/revistas/rhcm/v16n2/t0104217.gif">Tabla1</a>).</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%;text&#45;autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">La    frecuencia al&eacute;lica del polimorfismo p.K832R en 27 pacientes cubanos con    diagn&oacute;stico cl&iacute;nico de la Enfermedad de Wilson result&oacute;    ser la m&aacute;s alta, comparada con los datos de los pa&iacute;ses analizados,    lo cual debe ser por el origen &eacute;tnico de nuestra poblaci&oacute;n. Hubiese    sido interesante que los investigadores espa&ntilde;oles hubiesen publicado    la frecuencia de este polimorfismo en su poblaci&oacute;n para compararla con    el nuestro (<a href="/img/revistas/rhcm/v16n2/t0104217.gif">Tabla1</a>). Los datos de los pa&iacute;ses    consultados presentaron frecuencias al&eacute;licas similares a esta investigaci&oacute;n,    por ejemplo: en un estudio en pacientes chinos<sup>11</sup> y en pacientes iran&iacute;es,<sup>13</sup>    pues no hubo diferencias significativas al compararlo con los resultados obtenidos    en pacientes cubanos. Sin embargo, en Jap&oacute;n informan una frecuencia de    2,4%, la cual es muy baja y se comporta como una variante polim&oacute;rfica    rara.<sup>10</sup></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">La    frecuencia al&eacute;lica del polimorfismo p.T991T en 27 pacientes cubanos con    diagn&oacute;stico cl&iacute;nico de la Enfermedad de Wilson result&oacute;    ser la m&aacute;s alta, comparada con los datos de los pa&iacute;ses analizados,    lo cual debe ser por el origen &eacute;tnico de nuestra poblaci&oacute;n aunque    fue similar a lo informado en Canad&aacute;. (<a href="/img/revistas/rhcm/v16n2/t0104217.gif">Tabla1</a>).    Los investigadores espa&ntilde;oles no han informado la frecuencia de este polimorfismo    en su pa&iacute;s<sup>21</sup> dato que ser&iacute;a de utilidad para compararlo    con los resultados obtenidos en esta investigaci&oacute;n, por el origen &eacute;tnico    de nuestra poblaci&oacute;n y es de esperar que las frecuencias obtenidas en    Espa&ntilde;a sean similares a las de Cuba.</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Entre    las principales manifestaciones cl&iacute;nicas en los pacientes que presentaron    el polimorfismo p.K832R fueron m&aacute;s frecuentes las hep&aacute;ticas (27,8%),    entre las que se encontraron: ictericia, esplenomegalia, ascitis, hepatomegalia,    entre otras. Las manifestaciones neurol&oacute;gicas se detectaron en 22,2%    de los pacientes. Las manifestaciones mixtas se identificaron en 100% de los    pacientes con el polimorfismo p.T991T (<a href="/img/revistas/rhcm/v16n2/t0204217.jpg">Tabla2</a>). En    nuestro estudio no se evidenci&oacute; manifestaciones psiqui&aacute;tricas    en los 27 pacientes analizados.</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">En    los dos polimorfismos analizados las manifestaciones hep&aacute;ticas son las    m&aacute;s frecuentes, una raz&oacute;n pudiera ser que la mayor&iacute;a de    los pacientes se diagnostican en el Instituto Nacional de Gastroenterolog&iacute;a    y llegan a este centro por sintomatolog&iacute;a hep&aacute;tica. Adem&aacute;s    en la literatura se informa que la mayor frecuencia de las manifestaciones en    los pacientes con la enfermedad de Wilson son precisamente las hep&aacute;ticas.<sup>21</sup>    En ambos polimorfismos se identifican un n&uacute;mero reducido de pacientes    con manifestaciones neurol&oacute;gicas de acuerdo con lo informado en la literatura.<sup>21,22</sup></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">En    Cuba se hab&iacute;a identificado el polimorfismo p.K832R con anterioridad en    100 pacientes cubanos por este colectivo de autores en 2013<sup>22</sup> y su    frecuencia fue muy similar al informado en este estudio que es continuidad del    mismo.</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">En    tres pacientes se identificaron la presencia de ambos polimorfismos y presentaron    manifestaciones mixtas. La combinaci&oacute;n de estos dos polimorfismos son    utilizados en diversas investigaciones en el estudio molecular de pacientes    con la Enfermedad de Wilson.<sup>20</sup> En Venezuela se utilizan estos dos    polimorfismos y otros tres m&aacute;s (p.V456L, IVS3, p.V1140A) para determinar    los haplotipos en familias donde haya al menos un individuo afectado con la    enfermedad de Wilson.<sup>20</sup></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">La    identificaci&oacute;n de los polimorfismos p.K832R y p.T991T permitir&aacute;    en un futuro inmediato el diagn&oacute;stico molecular por m&eacute;todos indirectos    y su correlaci&oacute;n con las manifestaciones cl&iacute;nicas presentes en    los pacientes cubanos analizados. En los pacientes cubanos con la Enfermedad    de Wilson son informativos los polimorfismos p.K832R y p.T991T. Por lo que ser&aacute;    una herramienta molecular importante para el asesoramiento gen&eacute;tico.    Es necesario implementar el estudio de los polimorfismos p.V456L, IVS3 y p.V1140A    para la construcci&oacute;n de haplotipos en pacientes cubanos con la Enfermedad    de Wilson e instaurar el diagn&oacute;stico molecular por m&eacute;todos indirectos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">&nbsp;</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="3" face="verdana"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Est&aacute;    disponible la identificaci&oacute;n de los polimorfismos p.K832R y p.T991T en    pacientes cubanos con diagn&oacute;stico cl&iacute;nico de la Enfermedad de    Wilson a la Red Nacional de Gen&eacute;tica M&eacute;dica y el Instituto Nacional    de Gastroenterolog&iacute;a. Las manifestaciones hep&aacute;ticas son las m&aacute;s    frecuentes en los pacientes que presentan los polimorfismos p.K832R y p.T991T.    La combinaci&oacute;n de estos polimorfismos nos permitir&aacute; en un futuro    establecer una estrategia para el diagn&oacute;stico molecular de la Enfermedad    de Wilson en Cuba.</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">&nbsp;</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="3" face="verdana"><b>REFERENCIAS    BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana"><b>&nbsp;</b></font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">1.    Online Mendelian Inheritance in Man, OMIM<sup>&reg;</sup>. Johns Hopkins University,    Baltimore, MD. Numero MIM: {MIM 277900}: {fecha de acceso: 27 de mar 2017}:    Disponible en: <a href="https://www.omim.org/entry/277900">https://www.omim.org/entry/277900</a></font></p>     <!-- ref --><p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">2.    Kumar SS, Kurian G, Roberts EA. Genetics of Wilson's disease: a clinical perspective.    Indian J Gastroenterol. 2012; 31 (6): 285&#45;93.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">3.    Kenney SM, Cox DW. Sequence Variation Database for the Wilson Disease Copper    Transporter, ATP7B. Hum Mutat. 2007; 28 (12):1171&#45;77.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">4.    Li XH, Lu Y, Ling Y, Fu QC, Xu J, Zang GQ, <i>et al.</i> Clinical and molecular    characterization of Wilson's disease in China: identification of 14 novel mutations.    BMC Med Genet. 2011; 12: 6.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%;text&#45;autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">5.    Wu F, Wang J, Pu Ch, Qiao Li and Chunmeng J. Wilson's disease: A Comprehensive    Review of the Molecular Mechanisms. Int J Mol Sci. 2015;16: 6419&#45;6431.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%;text&#45;autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">6.Beinhardt    S,&nbsp; Leiss W,&nbsp; Stattermayer&nbsp; AF, Graziadei I, Zoller H, Stauber    R, <i>et al.</i> Long&#45;term outcomes of patients with Wilson disease in a    large Austrian cohort. Clin. Gastroenterol. Hapatol. 2014; 12: 683&#45;689.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%;text-autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">7.    Zimbrean PC and Schilsky ML. Psychiatric aspects of Wilson disease: A review.    Gen. Hosp. Psychiatry. 2014; 36: 53&#45;62.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%;text-autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">8.    Badenas Orquin C. Avances en el diagn&oacute;stico molecular de la Enfermedad    de Wilson. Gastroenterol Hepatol. 2011; 34 (6): 428&#45;33.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">9.    Gupta A, Maity B, Trivedi R, Ray J, Das SK, <i>et al</i>. Molecular pathogenesis    of Wilson&#45;disease: haplotype analysis, detection of prevalent mutations    and genotype phenotype correlation in Indian patients. Hum Genet. 2005; 118    (1): 49&#45;57.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%;text-autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">10.    Nanji M, Nguyen V, Kawasoe J, Inui K, Endo F, Nakajima T, <i>et al</i>. Haplotype    and Mutation Analysis in Japanese Patients with Wilson Disease. Am J Hum Genet.1997;    60: 1423&#45;1429.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%;text-autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">11.    Sheng Y, Liang G, Quan&#45;Xiang S, Lin&#45;Fu Z. Wilson disease: Identification    of two novel mutations and clinical correlation in Eastern Chinese patients.    World J Gastroenterol. 2007; 13 (38): 5147&#45;5150.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%;text-autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">12.    Wang LH, Huang YQ, Shang X, Su QX, Xiong FX, Qing&#45;Yun Y, <i>et al</i>. Mutation    analysis of 73 southern Chinese Wilson's disease patients: identification of    10 novel mutations and its clinical correlation. Journal of Human Genetics.    2011; 56: 660&#45;665.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%;text-autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">13.    Narges Z, Reza S, Esteghamat S, Mohsen Ch, Montazer M. Prevalence of ATP7B Gene    Mutations in Iranian Patients With Wilson Disease. Hepat Mon. 2011; 11 (11):    890&#45;894.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%;text-autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">14.    Abdelghaffar Tawhida Y, Elsayed Solaf M, Elsobky E,&nbsp; Bochow B, Buttner    J, Schmidt H. Mutational analysis of ATP7B gene in Egyptian children with Wilson    disease: 12 novel mutations. 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Nucleic Acids Res 1988; 16 (3): 1215.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%;text&#45;autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">17.Loudianos    G, Dessi V, Lovicu M, Angius A, Nurchi AM, Sturniolo GC, Marcellini M, <i>et    al</i>. Further delineation of the molecular pathology of Wilson disease in    the mediterranean population. Hum Mutat. 1998; 12: 89&#45;94.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">18.    Papur OS, Akman SA, Cakmur R, Terzioglu O. Mutation analysis of&nbsp; ATP7B    gene in Turkish Wilson disease patients: Identification of&nbsp; five novel    mutations. Eur J Med Genet. 2013; 56: 175&#45;79.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana">19.    Shah A, Chernov I, Zhang H, Ross B, Das K, Lutsenko S, <i>et al</i>. Identification    and Analysis of Mutations in the Wilson Disease Gene (ATP7B): Population Frequencies,    Genotype&#45;Phenotype Correlation and Functional Analyses. Am. J.Hum. Genet.    1997; 61: 317&#45;28.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%;text-autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">20.    Paradisi I, De Freitas L, Arias S. Most frequent mutation c.3402 del C (p.Ala1135GlnfsX13)    among Wilson disease patients in Venezuela has a wide distribution and two old    origins. European Journal of Medical Genetics. 2015; 58: 59&#45;65.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%;text&#45;autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">21.    Margarit E, Bach V, G&oacute;mez D, Bruguera M, Jara P, Queralt R, Ballesta    F. Mutation analysis of Wilson disease in the Spanish population &#150;identification    of a prevalent substitution and eight novel mutations in the ATP7B gene. Clin    Genet. 2005; 68: 61&#45;68.    </font></p>     <!-- ref --><p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%;text-autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">22.    Feoktistova YC, Ruenes C, Garc&iacute;a Bacallao EF, Collazo Mesa T, Robaina    Jim&eacute;nez Z, Casta&ntilde;eda C, Roblejo H. Identificaci&oacute;n del polimorfismo    K832R en pacientes con diagn&oacute;stico cl&iacute;nico de la Enfermedad de    Wilson. Revista Habanera Ciencias M&eacute;dicas. 2013; 12 (2): 197&#45;202.    </font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%;text&#45;autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%;text&#45;autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">&nbsp;</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%;text&#45;autospace:none'>&nbsp;</p>     <p style='margin-bottom:0cm;margin-bottom:.0001pt;text-align: justify;line-height:150%;text-autospace:none'><font color="#000000" size="2" face="verdana">Recibido:    15 de junio de 2016.    <br>   </font><font color="#000000" size="2" face="verdana">Aprobado: 2 de marzo de    2017.</font></p>     <p style='margin&#45;bottom:0cm;margin&#45;bottom:.0001pt;text&#45;align: justify;line&#45;height:150%'><font color="#000000" size="2" face="verdana"><i>&nbsp;</i></font></p>      ]]></body><back>
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