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<institution><![CDATA[,. Instituto Superior de Medicina Militar Dr. Luis Díaz Soto  ]]></institution>
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<institution><![CDATA[,Facultad de Estomatología.  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The periodontal disease brings about the destruction of the protective and supporting tissues of the teeth, therefore, the role of enzymes capable of degrading connective tissue matrix is of great importance. There are evidences of the possible involvement of the matrix metalloproteinases, leukocyte proteases and bacterial proteases in the pathogenesis of such disease. Their action is controlled by specific inhibitors in the tissues. This means that any protease-inhibitor imbalance favouring the presence of proteases may lead to the destruction of matrix connective tissue. In turn, proteolytic activity is influenced by different factors that globally induce a degradative or formative phenotype, and thus, may be involved in the pathogenesis of the periodontal disease.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p>Facultad de Estomatolog&iacute;a. Instituto Superior de Ciencias M&eacute;dicas    de La Habana </p> <H2>   Enzimas proteol&iacute;ticas relacionadas con la enfermedad periodontal   inflamatoria</H2>   <I>Dra. B&aacute;rbara E. Garc&iacute;a Triana,<SUP>1</SUP> Dr. Agust&iacute;n   Vicedo Tomey,<SUP>2</SUP> Dr. Jos&eacute; C. Garc&iacute;a Pi&ntilde;eiro<SUP>3</SUP>   y Dr. Alberto Salda&ntilde;a Bernabeu<SUP>4</SUP></I>   <OL>       <LI>   Profesor Asistente. Facultad de Estomatolog&iacute;a.</LI>          <LI>   Profesor Titular. ICBP "Victoria de Gir&oacute;n".</LI>          <LI>   Investigador Titular. ICBP "Victoria de Gir&oacute;n".</LI>          <LI>   Profesor Asistente. Instituto Superior de Medicina Militar "Dr. Luis D&iacute;az   Soto".</LI>       </OL>   <B>Resumen: </B>La enfermedad periodontal inflamatoria ocasiona la destrucci&oacute;n   de los tejidos que protegen y soportan al diente; es por eso de gran importancia   el papel que pueden desempe&ntilde;ar las enzimas que sean capaces de degradar   la matriz del tejido conectivo, como las enzimas proteol&iacute;ticas.   Existen evidencias de que las metaloproteinasas de la matriz, las proteasas   leucocitarias y las bacterianas, pueden participar en la etiopatogenia   de esta enfermedad. Su acci&oacute;n es regulada en los tejidos, por la   presencia de inhibidores espec&iacute;ficos, de manera que un desbalance   proteasas-inhibidores a favor de los primeros, conducir&iacute;a a la destrucci&oacute;n   de las prote&iacute;nas de la matriz del tejido conectivo. A su vez, en   la actividad proteol&iacute;tica influyen diferentes factores, que de manera   global, inducen un fenotipo degradativo o formativo, y que por lo tanto,   podr&iacute;an estar involucrados en la etiopatogenia de la enfermedad   periodontal inflamatoria.          <P><B>Descriptores DeCS:</B> PERIODONTITIS/enzimolog&iacute;a; PEPTIDO   HIDROLASAS/metabolismo; PERIODONTITIS//etiolog&iacute;a.          <P>La enfermedad periodontal inflamatoria (EPI), es un proceso que afecta   a los tejidos que protegen y soportan al diente,1 y cuyos factores etiol&oacute;gicos   pueden ser locales o generales. El &iacute;ntimo contacto de los primeros   con los tejidos periodontales, los hace responsables directos del inicio   y desarrollo de la EPI, mientras que los factores generales act&uacute;an   modificando la respuesta del hu&eacute;sped.1,2          <P>La destrucci&oacute;n del tejido conectivo constituye un evento crucial   para el avance de la EPI desde la enc&iacute;a hacia los tejidos profundos.   De ah&iacute; la importancia de la funci&oacute;n que pueden desempe&ntilde;ar   enzimas que sean capaces de degradar la matriz del tejido conectivo y fundamentalmente   las fibras col&aacute;genas. Las candidatas por excelencia para este rol   son las enzimas proteol&iacute;ticas (proteasas). Las posibles fuentes   de estas enzimas son: las bacterias presentes en el surco gingival, los   fibroblastos gingivales, las c&eacute;lulas endoteliales y los leucocitos   polimorfonucleares neutr&oacute;filos (PMN) y macr&oacute;fagos, que son   atra&iacute;dos hacia el surco gingival como consecuencia de los eventos   inflamatorios.3          <P>Existen evidencias que se&ntilde;alan a las proteasas como involucradas   en la etiopatogenia de la EPI.4-9 Esto sugiere que la determinaci&oacute;n   de su actividad en el fluido gingival crevicular (FGC), podr&iacute;a tener   valor diagn&oacute;stico, pron&oacute;stico y terap&eacute;utico. Por lo   tanto, nos vimos motivados a profundizar en el conocimiento de las enzimas   proteol&iacute;ticas involucradas en la EPI, as&iacute; como en su regulaci&oacute;n.   <H4>   Enzimas proteol&iacute;ticas</H4>   Las enzimas proteol&iacute;ticas catalizan la hidr&oacute;lisis de enlaces   pept&iacute;dicos de p&eacute;ptidos y prote&iacute;nas. Su s&iacute;ntesis   se realiza en forma de zim&oacute;geno, de mayor peso molecular, que posteriormente   es activado por prote&oacute;lisis.10          ]]></body>
<body><![CDATA[<P>Se pueden clasificar en 2 grandes grupos: peptidasas (exopeptidasas)   y proteinasas (endopeptidasas). Las peptidasas act&uacute;an sobre los   enlaces pept&iacute;dicos de los extremos de la cadena y pueden ser aminopeptidasas   o carboxipeptidasas. Las proteinasas act&uacute;an en el interior de la   cadena y se clasifican de acuerdo con la identidad del residuo catal&iacute;tico   primario. As&iacute; pueden ser: serinproteinasas, cisteinil-proteinasas,   aspartilproteinasas y metalo-proteinasas.          <P>Las proteasas relacionadas con la EPI, son proteinasas. Las m&aacute;s   estudiadas son las siguientes:   <H4>   Metaloproteinasas de la matriz (MMP)</H4>   Estas presentan un &aacute;tomo met&aacute;lico como residuo catal&iacute;tico   primario, generalmente un &aacute;tomo de Zn2+.   <UL>       <LI>   <I>Colagenasas (MMP-1 y MMP-8)</I>: presentan un peso molecular de alrededor   de 54 kDa en su forma latente y su sustrato es el col&aacute;geno presente   en la matriz del tejido conectivo.5,11</LI>       </UL>   Su acci&oacute;n consiste en la cat&aacute;lisis de una ruptura &uacute;nica   en las cadenas a del col&aacute;geno intersticial tipos I, II y III. Se   generan as&iacute; fragmentos de 1/4 y 3/4 de col&aacute;geno. Tambi&eacute;n   presentan cierta actividad gelatinasa. Son incapaces de actuar sobre el   col&aacute;geno tipo IV.11          <P>Se sabe que estas enzimas est&aacute;n relacionadas con la destrucci&oacute;n   h&iacute;stica en la enfermedad periodontal.12 La colagenasa de vertebrado   es producida por fibroblastos, c&eacute;lulas epiteliales y macr&oacute;fagos.   Degrada a mayor velocidad al col&aacute;geno tipo I que al II, y se ha   encontrado incrementada en el FGC de pacientes con periodontitis juvenil.4,12   La colagenasa producida por los PPM se nombra colagenasa de neutr&oacute;filo   (MMP-8) y se distingue por el hecho de que degrada a los col&aacute;genos   I y II a igual velocidad. Se ha detectado su actividad en el FGC de pacientes   con periodontitis del adulto.4,5,12   <UL>       <LI>   <I>Gelatinasas (MMP-2 y MMP-9)</I>: el peso molecular es de 72 kDa en su   forma latente para la enzima producida por los fibroblastos gingivales   (gelatinasa A o tisular, [MMP-2]). La producida por los PMN tiene un peso   molecular de 92 kDa (gelatinasa B o de neutr&oacute;filo, [MMP-9].5</LI>       </UL>   Su acci&oacute;n consiste en hidrolizar los productos de la ruptura del   col&aacute;geno por las colagenasas, siempre que est&eacute;n desnaturalizados.   Tambi&eacute;n presentan actividad colagenasa tipo IV. Adem&aacute;s act&uacute;an   sobre otras mol&eacute;culas de la matriz del tejido conectivo asociadas   con el col&aacute;geno.          <P>Ambos tipos de gelatinasas se han encontrado en el FGC de pacientes   con periodontitis del adulto y periodontitis juvenil localizada.12 La gelatinasa   de 92 kDa se ha detectado tambi&eacute;n en el exudado inflamatorio de   sitios con periodontitis experimental en monos <I>cynomolgus.5</I>   <UL>       <LI>   <I>MMP-V</I>: es producido por c&eacute;lulas osteobl&aacute;sticas, fibroblastos   gingivales y del ligamento periodontal. Su peso molecular en forma latente   es de 54 kDa. Act&uacute;a catalizando la ruptura de los fragmentos de   1/4 y 3/4 de col&aacute;geno "nativos" tipos I, II y III, originados por   la acci&oacute;n de la colagenasa y sobre los cuales la gelatinasa no puede   actuar. De ah&iacute; la importancia de la acci&oacute;n de la MMP-V.11</LI>       </UL>   Se ha demostrado la existencia de esta enzima de manera predominante, en   el FGC de sitios con periodontitis del adulto, severamente inflamados.   Por otra parte, la demostraci&oacute;n del origen osteobl&aacute;stico   de esta proteasa, apoya el planteamiento de que los osteoblastos intervienen   en la reabsorci&oacute;n &oacute;sea activa. Por ejemplo, se ha sugerido   que la degradaci&oacute;n osteoide localizada por parte de los osteoblastos,   es necesaria para la exposici&oacute;n de la matriz mineralizada subyacente.11   <UL>       ]]></body>
<body><![CDATA[<LI>   <I>Estromelisina (MMP-3):</I> su peso molecular en forma latente es de   54 kDa. Presenta una especificidad de sustrato mucho m&aacute;s amplia.13   Cataliza la ruptura del col&aacute;geno tipo IV y de diferentes mol&eacute;culas   de la matriz asociadas con las fibras col&aacute;genas. Entre ellas fibronectina,   laminina y proteoglicanos. Tambi&eacute;n presenta actividad gelatinol&iacute;tica   limitada. Se ha reportado un incremento preferencial de la actividad de   MMP-3 con respecto a MMP-1 en la enc&iacute;a afectada por periodontitis.   Esto podr&iacute;a ser relevante en la destrucci&oacute;n h&iacute;stica,   debido a su amplio espectro y a su capacidad de activar a otras MMP.14,15</LI>       </UL>      <H4>   Elastasa leucocitaria y catepsina G</H4>   Ambas son producidas por los PMN. Son serinproteinasas. En contacto con   c&eacute;lulas epiteliales gingivales en cultivo, provocan la desuni&oacute;n   de &eacute;stas presumiblemente por degradaci&oacute;n de la matriz intercelular.16   Se ha reportado la elevaci&oacute;n sitio-espec&iacute;fica de los niveles   de elastasa en el FGC en pacientes con periodontitis destructiva severa.17   <H4>   Argingipa&iacute;na</H4>   Es una cisteinilproteinasa espec&iacute;fica para la arginina. Su origen   es bacteriano: <I>Porphyromonas gingivalis</I> (PG), un anaerobio com&uacute;nmente   asociado con la enfermedad periodontal progresiva. La enzima se compone   de una &uacute;nica cadena polipept&iacute;dica de peso molecular de 44   kDa. Sus propiedades enzim&aacute;ticas revelan varias caracter&iacute;sticas   distintivas: la actividad proteol&iacute;tica es absolutamente tiol-dependiente;   sin embargo, la enzima tambi&eacute;n tiene en parte caracter&iacute;sticas   tanto de metalo como de serinproteinasa. Es capaz de evadir los sistemas   de defensa normales del hospedero, pues no es inhibida por inhibidores   de proteasas end&oacute;genos. A pesar de su estrecha especificidad, degrada   extensivamente los col&aacute;genos tipos I y IV y la inmunoglobulina G.18   Lo m&aacute;s importante es que la enzima tiene la habilidad de interrumpir   las funciones de los PMN. Estos datos sugieren que la argingipa&iacute;na   desempe&ntilde;a una funci&oacute;n fundamental como factor de virulencia   de la PG en el desarrollo de la EPI.18   <H4>   Regulaci&oacute;n de la actividad proteol&iacute;tica en los tejidos</H4>   El control celular se realiza a varios niveles, que incluye: s&iacute;ntesis   y secreci&oacute;n, activaci&oacute;n e inhibici&oacute;n.12   <H4>   Inhibidores tisulares de proteasas</H4>   El papel de los inhibidores de proteasas en la etiopatogenia de la EPI,   adquiere gran relevancia, puesto que un desbalance inhibidores/proteasas   a favor de las &uacute;ltimas, puede desencadenar la destrucci&oacute;n   de los tejidos periodontales.          <P>Dentro de los inhibidores tisulares o end&oacute;genos de proteasas,   se encuentran el inhibidor tisular de metaloproteinasa-1 (TIMP-1) y el   inhibidor tisular de metaloproteinasa-2 (TIMP-2).13          <P>El inhibidor principal es TIMP-1, una glicoprote&iacute;na de 30 kDa.   Es sintetizado por mes&eacute;nquima, epitelios y algunas c&eacute;lulas   de la inflamaci&oacute;n. Tambi&eacute;n se encuentra en sangre como b-1   anticolagenasa. Parece estar relacionado con la regulaci&oacute;n de la   actividad de la colagenasa durante el remodelado h&iacute;stico, inflamaci&oacute;n,   salida del diente y cicatrizaci&oacute;n. Ha sido tambi&eacute;n encontrado   en el FGC de la g&iacute;ngiva sana, pero decrece su concentraci&oacute;n   mientras aumenta el grado de la inflamaci&oacute;n. Al parecer est&aacute;   involucrado en la regulaci&oacute;n de otras metaloproteinasas, como son:   MMP-2, MMP-3 y MMP V, a las cuales puede inactivar cuando son liberadas   a los tejidos bucales.13 El TIMP-2 es particularmente activo para la MMP-2.13          <P>Otro factor importante en la concentraci&oacute;n de la actividad proteol&iacute;tica   en la inflamaci&oacute;n , es el inhibidor de amplio espectro a-2-macroglobulina.   Se considera que mientras los TIMP funcionan pericelularmente, la a-2-macroglobulina   lo hace en los fluidos corporales.9 En el FGC de sitios con periodontitis,   se ha reportado su conversi&oacute;n a una forma inactiva.19   <H4>   Citocinas</H4>   En la regulaci&oacute;n de la s&iacute;ntesis y actividad de las proteinasas   y sus inhibidores, intervienen diferentes factores, como por ejemplo las   citocinas: factor de crecimiento transformante-b ( TGF-b)20 e interleucina-1a   (IL-1a).21 Ambas han sido relacionados con la EPI9 .          <P>El TGF-b1 act&uacute;a de una forma concentrada que conduce a la formaci&oacute;n   de componentes extracelulares de la matriz. Suprime la actividad proteol&iacute;tica   mediante la reducci&oacute;n de la s&iacute;ntesis de proteinasas y el   incremento de la expresi&oacute;n de inhibidores.20 La IL-1a, por el contrario,   induce un fenotipo degradativo, al estimular la actividad de MMP.21          <P>Durante el inicio y desarrollo de la EPI, las prote&iacute;nas de la   matriz del tejido conectivo son degradadas por la acci&oacute;n de proteasas   como: las metaloproteinasas de la matriz, la elastasa y catepsina G leucocitarias   y la argingipa&iacute;na bacteriana. La regulaci&oacute;n de la actividad   proteol&iacute;tica en los tejidos periodontales , se realiza a trav&eacute;s   de diferentes factores , por ejemplo: TGF-b e IL-1a, que act&uacute;an   simult&aacute;neamente sobre las prote&iacute;nas del tejido conectivo,   las proteasas y sus inhibidores, induciendo un fenotipo degradativo o formativo.          <P><B>Summary: </B>The periodontal disease brings about the destruction   of the protective and supporting tissues of the teeth, therefore, the role   of enzymes capable of degrading connective tissue matrix is of great importance.   There are evidences of the possible involvement of the matrix metalloproteinases,   leukocyte proteases and bacterial proteases in the pathogenesis of such   disease. Their action is controlled by specific inhibitors in the tissues.   This means that any protease-inhibitor imbalance favouring the presence   of proteases may lead to the destruction of matrix connective tissue. In   turn, proteolytic activity is influenced by different factors that globally   induce a degradative or formative phenotype, and thus, may be involved   in the pathogenesis of the periodontal disease.          <P><B>Subject headings:</B> PERIODONTITIS/enzymology; PEPTIDE HYDROLASES/metabolism;   PERIODONTITIS/etiology.   <H4>   Referencias bibliogr&aacute;ficas</H4>      <OL>       <LI>   Segu&iacute; O. Epidemiolog&iacute;a de las perodontopat&iacute;as. Rev   Cubana Estomatol 1978;15:148-59.</LI>          ]]></body>
<body><![CDATA[<LI>   Borges C. Estudio epidemiol&oacute;gico de la enfermedad parodontal. Rev   Cubana Estomatol 1984;21:273-9.</LI>          <LI>   Woolley DE, Evanson JM. Collagenases in normal and pathological connective   tissues. New York: John Wiley and Sons Ltd, 1980:8-10.</LI>          <LI>   Suomalainen K, Sorsa T, Saxen L, Vauhkonen M, Uitto VJ. Collagenase activity   in gingival crevicular fluid of patients with juvenile periodontitis. Oral   Microbiol Immunol 1991;6:24-9.</LI>          <LI>   Overall CM, Sodek J, McCulloch CA, Birek P. Evidence for polymorphonuclear   leukocyte collagenase and 72-KD gelatinase in gingival crevicular fluid.   Infect Immunol 1991;59:4687-92.</LI>          <LI>   Makela M, Soderling E, Paunio K, Talonpoika J, Hyyppa T. Protein composition   of crevicular fluid before and after treatment. Scand J Dent Res 1991;99:413-23.</LI>          <LI>   Tremble PM, Damsky CH, Werb Z. Fibronection fragments, but not intact fibronectin,   signalling througth the fibronectin receptor induce metalloproteinase gene   expression in fibroblast. Matrix Supplement 1992;1:212-4.</LI>          <LI>   Vernillo AT, Ramamurthy NS, Golub LM, Rifkin BR. The nonantimicrobial properties   of tetracycline for the treatment of periodontal disease. Curr Opin Periodontol   1994;112:111-8.</LI>          <LI>   Ryan ME, Ramamurthy S, Golub LM. Matrix metalloproteinases and their inhibition   in periodontal treatment. Curr Opin Periodontol 1996;3:85-96.</LI>          <LI>   Barrett AJ. The classification of proteinases. En: Evered D, Whelan J,   eds. Protein degradation in health and diseases. Amsterdam: Excerpta Medica,   1980:3.</LI>          <LI>   Overall CM, Sodek J. Initial characterization of a neutral metaloproteinase,   active on native &frac34;-collagen fluid. J Dent Res 1987;66:1271-82.</LI>          ]]></body>
<body><![CDATA[<LI>   Sorsa T, Saari H, Konttinen YT, Suomalainen K, Lindy S, Uitto VJ. Non-proteolytic   activation of latent human neutrophil collagenase and its role in matrix   destruction in periodontal diseases. Int J Tissue React 1989;11:153-9.</LI>          <LI>   Drouin L, Overall CM, Sodek J. Identification of matrix metalloendoproteinase   inhibitor (TIMP) in human parotid and submandibular saliva: partial purification   and characterization. J Periodontol Res 1988;23:370-7.</LI>          <LI>   Kubota T, Nomura T, Takahashi T, Hara K. Expression of mRNA for matrix   metalloproteinases and tissue inhibitors of metalloproteinases in periodontitis-affected   human gingival tissue. Arch Oral Biol 1996;41:253-62.</LI>          <LI>   Haerian A, Adonogianaki E, Mooney J, Docherty JP, Kinane DF. Gingival crevicular   stromelysin, collagenase and tissue inhibitor of metalloproteinases levels   in healthy and diseased sites. J Clin Periodontol 1995;22:505-9.</LI>          <LI>   Altman LC, Baker C, Fleckman P, Luchtel D, Oda D. Neutrophil-mediated damage   to human gingival epithelial cells. J Periodontol Res 1992;27:70-9.</LI>          <LI>   Jin LJ, Soder PO, Adman B, Bergstrom K. Granulocyte elastase in gingival   crevicular fluid: improved monitoring of the site-specific response to   treatment in patients with destructive periodontitis. J Clin Periodontol   1995;22:240-6.</LI>          <LI>   Yamamoto K. Studies on periodontal pathogenic proteinases from Porphyromonas   gingivalis and host cells. Nippon Yakurigaku Zasshi 1995;105:345-55.</LI>          <LI>   Rosin M, Benjamin P, Rogers P, Gibson M, Van-Leuven F, Johnson NW, Curtis   M. Elevated conversion of alpha-2-macroglobulin to the complexed form in   gingival crevicular fluid from adult periodontitis patients. J Periodontol   Res 1995;30:436-44.</LI>          <LI>   Overall CM, Wrana JL, Sodek J. Transcriptional and postranscriptional regulation   of 72-kDa gelatinase/type IV collagenase by transforming growth factor-beta   1 in human fibroblasts. J Biol Chem 1991;266:14064-71.</LI>          <LI>   Scheller M, Zimmermann B, Bernimoulin JP, Scholz P. Induction of metalloproteinase   activity, cartilage matrix degradation and inhibition of endochondral mineralization   in vitro by E. Coli lipopolysaccharide is mediated by interleukin 1 alpha.   Cytokine 1995; 7:331-7.</LI>       ]]></body>
<body><![CDATA[</OL>   Recibido: 30 de enero de 1998. Aprobado: 25 de febrero de 1998.          <P>Dra. <I>B&aacute;rbara E. Garc&iacute;a Triana.</I> Facultad de Estomatolog&iacute;a.   Salvador Allende esq. Ayestar&aacute;n, CP 10300, Ciudad de La Habana,   Cuba.              ]]></body><back>
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