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<publisher-name><![CDATA[Editorial Ciencias Médicas]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Parámetros inflamatorios en saliva y sangre en niños y adolescentes sanos]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Inflammatory parameters in saliva and blood from healthy children and adolescents]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[At present times, there is interest in the use of saliva as a diagnosis, prediction and progression alternative of different pathologies in relation to the body fluids. To correlate the concentrations of IL-1, IL-6, TNF-a, substances reactive to thiobarbituric acid (RSTBA) and O2- in the saliva and blood of systematically healthy children and adolescents. A cross-sectional study was performed in 23 healthy children and adolescents aged from 4 to 17 underwent to clinical tests to demonstrate the oral conditions and immunological to identify the cytokine levels and the RSTBAs by colorimetry trial. There was a significant difference in saliva samples compared to that of peripheral blood in study cytokines and RSTBAs: IL-1 (blood: 1.646 ± 0.13 pg/mL, saliva: 552.36 ± 75.7 pg/mL; IL-6 (blood: 3.506 ± 1.85 pg/mL, saliva: 26.89 ± 9.97 pg/mL: TNF-a (blood: 12.91 ± 3.05 pg/mL, saliva: 43.56 ± 6.44 pg/mL), RSTBA (blood: 9.46 ± 3.26 nmol/mL, saliva: 1.26 ± 0.03 nmol/mL). There was not a statistically significant difference among blood and saliva samples for IL-1, IL-6 and RSTBA values. As regards TNF-a it was demonstrated a significant correlation, r s= 0.78. There was not evidence of cells positive to O2 in study samples. Results of correlation analysis obtained among the saliva and serum samples not offer evidences that saliva may be used as body fluid allows substituting the serum determination of IL-1, IL-6 and RSTBA. In the case of the TNF-a, there was a significant correlation, which could to propose the possible substitution of serum samples for the salivary ones.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">    <B>ART&Iacute;CULOS ORIGINALES</B></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="4"><b>Par&aacute;metros    inflamatorios en saliva y sangre en ni&ntilde;os y adolescentes sanos</b></font></p>     <p>&nbsp;</p> <B>    <P>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3">Inflammatory parameters    in saliva and blood from healthy children and adolescents</font>     <P>     <P>     <P>      <P>  </B>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Ninoska Tahis    Viera Sirit<SUP>I</SUP>, Thais Teresita Morales Rojas<SUP>II</SUP>, Alejandra    Isabel Mor&oacute;n Medina<SUP>III</SUP>, Rita Mireya Navas Perozo<SUP>IV</SUP>,    Adriana Beatriz Pedrea&ntilde;ez Santana<SUP>V</SUP></b><FONT COLOR="#ff0000">    </FONT></font>      <P>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><SUP>I</SUP> Doctora    en Medicina. Profesora Titular. Facultad de Odontolog&iacute;a. Universidad    de Zulia, Venezuela.    <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><SUP>II</SUP>    Doctora en Estomatolog&iacute;a. Profesora<SUP> </SUP>Titular. Facultad de Odontolog&iacute;a.    Universidad de Zulia, Venezuela.    <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><SUP>III</SUP>    Doctora en Estomatolog&iacute;a. Asistente. Facultad de Odontolog&iacute;a.    Universidad de Zulia, Venezuela.    <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><SUP>IV</SUP>    M&aacute;ster en Administraci&oacute;n del Sector Salud. Profesora<SUP> </SUP>Titular.    Facultad de Odontolog&iacute;a. Universidad de Zulia, Venezuela.    <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><SUP>V</SUP>    Doctora en Medicina. Facultad de Medicina. Universidad de Zulia, Venezuela.</font>      <P>     <P>     <P><hr size="1" noshade>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>RESUMEN</B>    </font> </p>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En la actualidad    se ha mostrado inter&eacute;s en el empleo de la saliva para ser utilizada como    una alternativa de diagn&oacute;stico, predicci&oacute;n y progresi&oacute;n    de diversas enfermedades con relaci&oacute;n a otros fluidos corporales. Los    objetivos trazados para la realizaci&oacute;n de este trabajo fueron: correlacionar    las concentraciones en saliva y sangre de IL-1, IL-6, TNF-<font face="Symbol">a</font>,    sustancias reactivas al &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico y O<SUB>2</SUB><SUP>-</SUP>    de ni&ntilde;os y adolescentes sist&eacute;micamente sanos. Se realiz&oacute;    un estudio de corte transversal en 23 ni&ntilde;os y adolescentes sanos, entre    4 y 17 a&ntilde;os de edad. Se les realizaron evaluaciones cl&iacute;nicas para    determinar las condiciones bucales y estudios inmunol&oacute;gicos con el prop&oacute;sito    de identificar los niveles de citosinas, a trav&eacute;s del ensayo inmunoenzim&aacute;tico    indirecto, el O<SUB>2</SUB><SUP>-</SUP> por m&eacute;todo citoqu&iacute;mico    y las sustancias reactivas al &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico, a trav&eacute;s    del ensayo colorim&eacute;trico. Hubo diferencia significativa entre las muestras    de saliva y las de sangre perif&eacute;rica respecto a las citosinas y sustancias    reactivas al &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico estudiadas. Los resultados fueron:    IL<I>-</I>1 en sangre= 1,646 &#177; 0,13 pg/mL y de IL-1 en saliva= 552,36 &#177;    75,7 pg/mL; IL-6 en sangre= 3,506 &#177; 1,85 pg/mL, e IL-6 en saliva= 26,89    &#177; 9,97 pg/mL. Al analizar el TNF-<font face="Symbol">a</font> en sangre    fue de 12,91 &#177; 3,05 pg/mL y en saliva= 43,56 &#177; 6,44 pg/mL, las sustancias    reactivas al &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico en sangre= 9,46 &#177; 3,26    nmol/mL y en saliva= 1,26 &#177; 0,03 nmol/mL. No se observ&oacute; correlaci&oacute;n    estad&iacute;sticamente significativa entre las muestras de sangre y saliva    para los valores de IL-1, IL-6 y sustancias reactivas al &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico.    En cuanto al TNF-<font face="Symbol">a</font> se evidenci&oacute; una correlaci&oacute;n    significativa, r<SUB>s</SUB>= 0,78. No se evidenciaron c&eacute;lulas positivas    para el O<SUB>2</SUB><SUP>- </SUP>en las muestras estudiadas. Los resultados    del an&aacute;lisis de correlaci&oacute;n obtenido entre las muestras salivales    y s&eacute;ricas, no aportaron evidencias suficientes para sugerir que la saliva    pueda ser utilizada como fluido corporal que permita sustituir la determinaci&oacute;n    s&eacute;rica de IL-1, IL-6 y sustancias reactivas al &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico.    En cuanto al TNF-<font face="Symbol">a</font> se evidenci&oacute; una correlaci&oacute;n    significativa, lo cual podr&iacute;a plantear la posible sustituci&oacute;n    de muestras s&eacute;ricas por salivales. </font>      <P>      <P> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I>Palabras clave:</I>  IL-1, IL-6, TNF-<font face="Symbol">a</font>, sustancias reactivas al &aacute;cido  tiobarbit&uacute;rico, O<SUB>2</SUB><SUP>-</SUP>, saliva, sangre.  <hr size="1" noshade></font>     <P>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>ABSTRACT</B>    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">At present times,    there is interest in the use of saliva as a diagnosis, prediction and progression    alternative of different pathologies in relation to the body fluids. To correlate    the concentrations of IL-1, IL-6, TNF-<font face="Symbol">a</font>, substances    reactive to thiobarbituric acid (RSTBA) and O<SUB>2</SUB><SUP>-</SUP> in the saliva and    blood of systematically healthy children and adolescents. A cross-sectional    study was performed in 23 healthy children and adolescents aged from 4 to 17    underwent to clinical tests to demonstrate the oral conditions and immunological    to identify the cytokine levels and the RSTBAs by colorimetry trial. There was    a significant difference in saliva samples compared to that of peripheral blood    in study cytokines and RSTBAs: IL-1 (blood: 1.646 &#177; 0.13 pg/mL, saliva:    552.36 &#177; 75.7 pg/mL; IL-6 (blood: 3.506 &#177; 1.85 pg/mL, saliva: 26.89    &#177; 9.97 pg/mL: TNF-<font face="Symbol">a</font> (blood: 12.91 &#177; 3.05    pg/mL, saliva: 43.56 &#177; 6.44 pg/mL), RSTBA (blood: 9.46 &#177; 3.26 nmol/mL,    saliva: 1.26 &#177; 0.03 nmol/mL). There was not a statistically significant    difference among blood and saliva samples for IL-1, IL-6 and RSTBA values. As    regards TNF-<font face="Symbol">a</font> it was demonstrated a significant correlation,    r<SUB>s</SUB>= 0.78. There was not evidence of cells positive to O<SUB>2</SUB>    in study samples. Results of correlation analysis obtained among the saliva    and serum samples not offer evidences that saliva may be used as body fluid    allows substituting the serum determination of IL-1, IL-6 and RSTBA. In the    case of the TNF-<font face="Symbol">a</font>, there was a significant correlation,    which could to propose the possible substitution of serum samples for the salivary    ones. </font>      <P>      <P> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I>Key words</I>:  IL-1, IL-6, TNF-<font face="Symbol">a</font>, RSTBA, O<SUB>2</SUB><SUP>-</SUP>, saliva, blood.  <hr size="1" noshade></font>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <P>      <P>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></B>    </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La saliva es una    secreci&oacute;n compleja proveniente de las gl&aacute;ndulas salivales mayores    en el 93 % de su volumen y de las menores en el 7 % restante. Es est&eacute;ril    cuando emerge de las gl&aacute;ndulas salivales, pero deja de serlo inmediatamente    cuando se mezcla con el fluido crevicular, restos de alimentos, microorganismos,    c&eacute;lulas descamadas de la mucosa bucal, entre otras.<SUP>1 </SUP>El 99    % de la saliva es agua, mientras que el 1 % restante est&aacute; constituido    por mol&eacute;culas org&aacute;nicas e inorg&aacute;nicas.<SUP>2 </SUP>Existen    diversas v&iacute;as por las que algunos elementos que no son constituyentes    habituales de la saliva pueden llegar a ella, a trav&eacute;s de rutas intracelulares    y extracelulares. Las v&iacute;as intracelulares m&aacute;s habituales son la    difusi&oacute;n pasiva y el transporte activo, mientras que la ultrafiltraci&oacute;n    a trav&eacute;s de las estrechas uniones celulares, es el mecanismo extracelular    m&aacute;s conocido. </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Algunas mol&eacute;culas    pueden llegar a la saliva desde el suero y atravesar las barreras de los capilares,    los espacios intersticiales y las membranas de las c&eacute;lulas acinares y    ductales, hasta llegar a la luz de los t&uacute;bulos excretores. Asimismo los    componentes del suero tambi&eacute;n pueden llegar a la saliva a trav&eacute;s    del fluido crevicular. Gracias a esta posibilidad, se abre una perspectiva para    su aplicaci&oacute;n en el diagn&oacute;stico de determinadas afecciones.<SUP>3    </SUP>As&iacute; pues, el uso de la saliva como alternativa para el diagn&oacute;stico    o como elemento para monitorear la evoluci&oacute;n de determinadas enfermedades    o la dosificaci&oacute;n de diversos medicamentos, es una v&iacute;a prometedora.    Esta incrementa su atractivo para el diagn&oacute;stico, debido a que la saliva    es de f&aacute;cil recolecci&oacute;n.<SUP>4</SUP> </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las citosinas son    prote&iacute;nas solubles de bajo peso molecular mediadoras del crecimiento    celular, de la inflamaci&oacute;n, la inmunidad, la diferenciaci&oacute;n y    la reparaci&oacute;n, entre otras funciones. Ante una invasi&oacute;n microbiana    sirven para iniciar la respuesta inflamatoria y para definir la magnitud y naturaleza    de la respuesta inmunitaria espec&iacute;fica.<SUP>5 </SUP>Un subgrupo de estas    citocinas lo constituyen las proinflamatorias como el factor de necrosis tumoral    alfa (TNF-<font face="Symbol">a</font>), la interleucina 1 (IL-1) y la interleucina    6 (IL-6), que median y modulan la activaci&oacute;n del sistema inmune y dirigen    los cambios metab&oacute;licos que se producen como consecuencia de la inflamaci&oacute;n.    El est&iacute;mulo inflamatorio inicial induce la formaci&oacute;n de una cascada    de citocinas, lo que conlleva a la liberaci&oacute;n de especies reactivas del    ox&iacute;geno y del nitr&oacute;geno como el ani&oacute;n super&oacute;xido    (O<SUB>2</SUB><SUP>-</SUP>), &oacute;xido n&iacute;trico, per&oacute;xido de    hidr&oacute;geno y finalmente el malondialdeh&iacute;do, entre otras sustancias    reactivas al &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico (SRATB), como uno de los productos    de la peroxidaci&oacute;n lip&iacute;dica derivado de la descomposici&oacute;n    del &aacute;cido araquid&oacute;nico.<SUP>6</SUP> </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Estudios previos<SUP>7,8    </SUP>han demostrado que las c&eacute;lulas epiteliales de la mucosa bucal act&uacute;an    como barrera f&iacute;sica contra la invasi&oacute;n de microorganismos pat&oacute;genos.    A su vez, presentan receptores encargados del reconocimiento de algunos componentes    bacterianos, que finalmente favorecen la s&iacute;ntesis de mol&eacute;culas    de adhesi&oacute;n tisular y la producci&oacute;n de citosinas, caracter&iacute;sticas    del proceso inflamatorio. En diversas afecciones inflamatorias, tanto las c&eacute;lulas    infiltrantes, como las c&eacute;lulas propias de la cavidad bucal, son capaces    de sintetizar grandes cantidades de radicales libres, en respuesta a diversos    est&iacute;mulos.<SUP>9 </SUP>Todos estos hallazgos condujeron a la realizaci&oacute;n    de este estudio con el prop&oacute;sito de correlacionar diversos par&aacute;metros    inflamatorios como TNF-<font face="Symbol">a</font>, IL-1, IL-6, O<SUB>2</SUB><SUP>-    </SUP>y SRATB, en muestras de sangre y saliva en ni&ntilde;os y adolescentes    sist&eacute;micamente sanos, para determinar el posible papel de la saliva como    fluido corporal m&aacute;s accesible para el diagn&oacute;stico de dichos par&aacute;metros.    Los estudios se iniciaron a partir de ni&ntilde;os sanos, ya que no existe en    la literatura informaci&oacute;n sobre valores de referencia.</font>      <P>      <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">M&Eacute;TODO</font></B>    </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La muestra de estudio    estuvo conformada por 23 ni&ntilde;os y adolescentes, que asistieron al Centro    de Atenci&oacute;n Integral del Ni&ntilde;o y a la Cl&iacute;nica de la Facultad    de Odontolog&iacute;a de la Universidad de Zulia, Venezuela, con previa evaluaci&oacute;n    cl&iacute;nica realizada por el pediatra. En la muestra 13 individuos fueron    del sexo masculino y 10 del femenino, con un promedio de edad de 12,69 con una    desviaci&oacute;n est&aacute;ndar de &#177; 3,32 y un rango de 5 a 17 a&ntilde;os.    </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Como criterios    de exclusi&oacute;n se tuvieron: la presencia de alguna enfermedad sist&eacute;mica    o su sospecha, la existencia de cavidades cariosas activas, de procesos periodontales    severos (IG= grado 3) o de alguna otra lesi&oacute;n de la mucosa bucal. Este    estudio fue aprobado por el Instituto de Investigaciones de la Facultad de Odontolog&iacute;a    &quot;Luz&quot;. Cada uno de los padres o representantes de los sujetos que    participaron en el estudio, firmaron un informe de consentimiento, luego de    explicarles el prop&oacute;sito de este. Se realiz&oacute; un estudio de corte    transversal, en el cual se determinaron las concentraciones de TNF-<font face="Symbol">a</font>,    IL-1, IL-6, O<SUB>2</SUB><SUP>- </SUP>y SRATB,<SUP> </SUP>en las muestras de    saliva y de sangre, en cada uno de los individuos incluidos en el estudio. </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La evaluaci&oacute;n    cl&iacute;nica fue realizada por un odont&oacute;logo debidamente entrenado    en la detecci&oacute;n de signos y s&iacute;ntomas de tejido blando en la cavidad    bucal. Para realizar el examen bucal se utiliz&oacute; luz hal&oacute;gena y    un espejo bucal plano. Inicialmente fueron evaluados los tejidos blandos, se    emple&oacute; gasa para separar los labios, los carrillos y la lengua, con la    finalidad de observar toda la mucosa bucal. Posteriormente, se evalu&oacute;    el estado gingival y se utiliz&oacute; el &iacute;ndice gingival de <I>Loe y    Silness,</I><SUP>10</SUP> y el estado de higiene bucal mediante los criterios    del &iacute;ndice de placa (IP) de <I>Silness y Loe</I>.<SUP>11 </SUP>En la    dentici&oacute;n primaria, se evaluaron los &oacute;rganos dentarios: 54, 64,    74, 84, 81 y 71. En la dentici&oacute;n permanente se evaluaron los &oacute;rganos    dentarios: 16, 26, 36, 46, 31 y 41. En casos de dentici&oacute;n mixta en el    sector anterior, los dientes temporales ya exfoliados se sustituyeron por el    permanente correspondiente y en el sector posterior, se evaluaron los primeros    molares permanentes. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se tomaron muestras    de 6 mL de sangre perif&eacute;rica, a trav&eacute;s de la punci&oacute;n de    la vena bas&iacute;lica media, luego de la asepsia de la zona en cuesti&oacute;n.    Se utiliz&oacute; el sistema Vacutainer<font face="Symbol">&Ograve;</font> sin    anticoagulante. Las muestras se mantuvieron a temperatura ambiente por una hora.    Luego se centrifugaron a 300 g &#215; 10 minutos a 4 &#186;C. Se aspir&oacute;    la fracci&oacute;n s&eacute;rica y se dividi&oacute; en cuatro al&iacute;cuotas    a -20 &#186;C hasta ser utilizadas. Las muestras salivales fueron tomadas en    las primeras horas de la ma&ntilde;ana. Se recolectaron 2 cc de saliva total    no estimulada en un envase est&eacute;ril, la cual fue transportada en hielo    hasta el laboratorio. Las muestras se centrifugaron a 15 000 rpm durante 15    minutos a 4 &#176;C. El sobrenadante se trasvas&oacute; a otro tubo est&eacute;ril    y se almacen&oacute; a -20 &#186;C hasta ser utilizada. </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las citocinas salivales    y s&eacute;ricas, fueron detectadas a trav&eacute;s del ensayo inmunoenzim&aacute;tico    indirecto, para lo cual se utiliz&oacute; el <I>kit</I> comercial R&amp;D systems<font face="Symbol">&Ograve;</font>    para determinar cuantitativamente, los niveles de citocinas presentes en estas    muestras. Este m&eacute;todo se fundamenta en la detecci&oacute;n del ant&iacute;geno    presente en la muestra, cuando el anticuerpo est&aacute; unido en la fase s&oacute;lida.    Posteriormente se le adicion&oacute; un anticuerpo marcado con una enzima y    finalmente su respectivo substrato. La concentraci&oacute;n de las citocinas    se obtuvo, a trav&eacute;s de la actividad de la enzima frente al substrato    y se reportaron en picogramos por mililitro (pg/mL). </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La producci&oacute;n    de ani&oacute;n super&oacute;xido, se determin&oacute; a nivel de leucocitos    polimorfonucleares y mononucleares mediante el m&eacute;todo citoqu&iacute;mico    descrito previamente por <I>Briggs y otros.</I><SUP>12</SUP> Este se fundamenta    en la oxidaci&oacute;n de la diaminobencidina, a un pol&iacute;mero osmof&iacute;lico    e insoluble, para lo cual las c&eacute;lulas se expusieron a un medio que conten&iacute;a    un inhibidor de peroxidasa, diaminobencidina y Mn<SUP>++</SUP>. El super&oacute;xido    presumiblemente oxida los iones Mn<SUP>++</SUP> a Mn<SUP>+++</SUP>, que posteriormente    tiene la capacidad de oxidar la diaminobencidina y se obtiene como resultado    en la formaci&oacute;n de dep&oacute;sitos electrodensos productos de la reacci&oacute;n.    Finalmente, se observaron bajo el microscopio, Axioskop-Zeiss (de Alemania)    y se reportaron como porcentaje de c&eacute;lulas positivas para el ani&oacute;n    super&oacute;xido. Se realiz&oacute; el ensayo del &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico    descrito por <I>Ottawa y otros</I>.<SUP>13</SUP> Este m&eacute;todo se fundamenta    en la detecci&oacute;n colorim&eacute;trica de los productos de la hidr&oacute;lisis    de hidroper&oacute;xidos lip&iacute;dicos, como el malondialdeh&iacute;do (MDA),    a trav&eacute;s de la<B> </B>formaci&oacute;n de un complejo de color rosado,    con el &aacute;cido tiobarbit&uacute;rico a temperaturas cercanas a los 100    &#176;C en medio &aacute;cido. </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La comparaci&oacute;n    de los resultados obtenidos se realiz&oacute; mediante el programa <I>GraphPad    Instat</I> versi&oacute;n 3.05 y <I>Graph Pad 4</I> para la representaci&oacute;n    gr&aacute;fica de los datos. Las comparaciones entre los grupos se realizaron    mediante la prueba t para muestras pareadas. Los resultados se presentaron como    media, desviaci&oacute;n est&aacute;ndar y la correlaci&oacute;n de las variables    se realiz&oacute; a trav&eacute;s de la prueba de coeficiente de correlaci&oacute;n    de Spearman. Se consider&oacute; un valor de p&lt; 0,05 como estad&iacute;sticamente    significativo. </font>      <P>      <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">RESULTADOS</font>    </B> </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En cuanto a la    evaluaci&oacute;n cl&iacute;nica, el estado de salud gingival present&oacute;    la distribuci&oacute;n porcentual siguiente: 9 individuos (39 %) con grado 0;    11 individuos (48 %) con grado 1 y un 13 % (3 infantes) con grado 2. Todos los    sujetos presentaron alg&uacute;n grado de &iacute;ndice de placa. El grado 1    result&oacute; ser el de mayor frecuencia. En las muestras estudiadas, todos    los individuos presentaron niveles apreciables de TNF-<font face="Symbol">a</font>,    IL-1, IL-6 y SRATB. En cuanto a los niveles de IL-1, IL-6 y TNF-<font face="Symbol">a</font>,    se evidenci&oacute; un incremento significativo en las muestras de saliva, al    compararlas con las muestras de sangre. La IL-1 en sangre fue de 1,646 &#177;    0,13 pg/mL y en saliva de 552,36 &#177; 75,7 pg/mL. La IL-6 en sangre tuvo un    valor de 3,506 &#177; 1,85 pg/mL, mientras que en saliva ascendi&oacute; a 26,89    &#177; 9,97 pg/mL. En cuanto al TNF-<font face="Symbol">a,</font> en sangre    fue de 12,91 &#177; 3,05 pg/mL y en la saliva fue de 43,56 &#177; 6,44 pg/mL    (<a href="#f01_02">Figs. 1</a>,<B> </B><a href="#f02_02">2</a><B> </B>y <a href="#f03_02">3</a>).    El an&aacute;lisis de la prueba t para muestras pareadas result&oacute; con    p&lt; 0,05. El par&aacute;metro que mostr&oacute; menor valor en sangre perif&eacute;rica    fue la IL-1, mientras que el TNF-<font face="Symbol">a</font> fue el de mayor    valor en ese fluido corporal.</font>      <P align="center"><a name="f01_02"></a><img src="/img/revistas/est/v48n3/f0102311.jpg" width="404" height="227">      
<P align="center"><a name="f02_02"></a><img src="/img/revistas/est/v48n3/f0202311.jpg" width="402" height="236">     
<P align="center"><a name="f03_02"></a><img src="/img/revistas/est/v48n3/f0302311.jpg" width="402" height="234">     
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">    <br>   Con relaci&oacute;n al ani&oacute;n super&oacute;xido no se evidenciaron c&eacute;lulas    positivas en las muestras estudiadas. En cuanto a la concentraci&oacute;n de    SRATB, se evidenci&oacute; un incremento significativo en las muestras de sangre    al compararlas con las de saliva. En sangre los niveles de SRATB fueron de 9,46    &#177; 3,2 nmol/mL, mientras que en la saliva fueron de 1,26 &#177; 0,03 nmol/mL,    la prueba t para muestras pareadas result&oacute; con p&lt; 0,05 (<a href="#f04_02">Fig.    4</a>). Al realizar los an&aacute;lisis estad&iacute;sticos para evidenciar    una posible asociaci&oacute;n entre las muestras de sangre y saliva, se observ&oacute;    que no hubo una correlaci&oacute;n estad&iacute;sticamente significativa para    IL-1, IL-6 y SRATB; r<SUB>s</SUB>= 0,17 (p= 0,44); r<SUB>s</SUB>= 0,02 (p= 0,92)    y r<SUB>s</SUB>= 0,06 (p= 0,81). En cuanto al TNF-<font face="Symbol">a</font>    se evidenci&oacute; una correlaci&oacute;n significativa r<SUB>s</SUB>= 0,78    (p&lt; 0,05).</font>      <P align="center"><a name="f04_02"></a><img src="/img/revistas/est/v48n3/f0402311.jpg" width="392" height="228">      
<P align="center">     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">DISCUSI&Oacute;N</font></B>    </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La saliva provee    un medio ideal para la detecci&oacute;n de marcadores proinflamatorios de la    cavidad bucal de origen granuloc&iacute;tico y mucoso,<SUP>14</SUP> por lo que    en este estudio se evidenciaron niveles elevados de TNF-<font face="Symbol">a</font>,    IL-1 e IL-6 en muestras salivales de sujetos sanos, tal como lo reportan <I>SahebJamee    y otros</I>,<SUP>15 </SUP>quienes no evidenciaron diferencias estad&iacute;sticamente    significativas en los niveles de citosinas, entre el grupo control (pacientes    sanos) y un grupo de pacientes con carcinoma de c&eacute;lulas escamosas. Estos    hallazgos pudieran estar vinculados con diversos procesos como el recambio dentario    y el estado de salud gingival, donde se evidenci&oacute; la presencia de inflamaci&oacute;n    grado 1 y grado 2 en 14 de los sujetos evaluados. </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En el estudio,    todos los sujetos evaluados presentaron niveles de citosinas proinflamatorias    en las muestras estudiadas. Esto coincidi&oacute; con los hallazgos reportados    por <I>Chiappelli y otros</I>,<SUP>16 </SUP>en donde se detectaron niveles de    citocinas proinflamatorias en muestras de sangre y saliva de individuos normales.    Esto se puede explicar, debido a que las citosinas son mediadores solubles que    controlan muchas funciones fisiol&oacute;gicas como la inflamaci&oacute;n, entre    otros procesos biol&oacute;gicos. Por otra parte, no se observ&oacute; en ambos    estudios, correlaci&oacute;n estad&iacute;sticamente significativa, para las    IL-1 e IL-6. Sin embargo, en cuanto al TNF-<font face="Symbol">a</font>, una    correlaci&oacute;n significativa fue evidenciada en los resultados de este trabajo,    probablemente debido a que esta, es la que desencadena la cascada de producci&oacute;n    de citocinas proinflamatorias, involucradas en diversos procesos inflamatorios.    </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los niveles observados    de IL-1 salival en las muestras evaluadas coinciden con lo reportado por <I>Ulker    y otros</I><SUP>17 </SUP>quienes estudiaron los niveles de IL-1, en muestras    de saliva en pacientes con gingivitis; esta similitud de resultados, posiblemente    se pudiese explicar por la presencia de IG grado 1 y 2, en los sujetos del presente    estudio. Al evaluar los niveles de IL-6 en las muestras estudiadas, se evidenci&oacute;    que no hubo correlaci&oacute;n significativa entre los fluidos corporales estudiados,    los que coincidi&oacute; con los hallazgos reportados por <I>Minetto y otros,</I><SUP>18</SUP>    que reportaron la ausencia de relaci&oacute;n significativa entre los niveles    de IL-6 salival y s&eacute;rica. </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La saliva total    contiene diversos agentes antimicrobianos, lisozimas, lactoferrina, Ig A y peroxidasa,    entre otros. La peroxidasa cataliza la inhibici&oacute;n del crecimiento bacteriano    y previene la acumulaci&oacute;n del per&oacute;xido de hidr&oacute;geno, as&iacute;    las prote&iacute;nas presentes en la saliva protegen de la acci&oacute;n del    ox&iacute;geno y de especies reactivas del ox&iacute;geno. En este sentido,    los resultados de este trabajo evidenciaron una disminuci&oacute;n en la peroxidaci&oacute;n    de l&iacute;pidos SRATB en las muestras de saliva, en comparaci&oacute;n con    las de sangre. Esto difiere de lo reportado por <I>Salvolini y otros,</I><SUP>19</SUP>    quienes observaron incremento del MDA en saliva de adultos mayores. Esta poca    producci&oacute;n de MDA en saliva en el presente estudio, pudiese estar relacionada    con una disminuci&oacute;n de los radicales libres, lo que coincide con la ausencia    evidenciada de c&eacute;lulas productoras de ani&oacute;n super&oacute;xido    en saliva y por ende, en la muestra objeto de estudio no se observaron da&ntilde;os    tisulares. </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El resultado obtenido    del an&aacute;lisis de correlaci&oacute;n entre las muestras salivales y s&eacute;ricas,    no aport&oacute; suficientes evidencias para sugerir que la saliva pueda ser    utilizada como fluido corporal que permita sustituir la determinaci&oacute;n    s&eacute;rica de IL-1, IL-6 y SRATB. En cuanto al TNF-<font face="Symbol">a</font>,    se apreci&oacute; una correlaci&oacute;n significativa, lo cual podr&iacute;a    plantear la posible sustituci&oacute;n de muestras s&eacute;ricas por muestras    salivales. Todos estos hallazgos sugieren la necesidad de realizar estudios    futuros con mayores muestras poblacionales, que permitan corroborar la posibilidad    de utilizar la saliva como fluido corporal, para determinar par&aacute;metros    inflamatorios en el diagn&oacute;stico de diversas enfermedades, tanto sist&eacute;micas    como del sistema estomatogn&aacute;tico.</font>      <P>      <P>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">REFERENCIAS    BIBLIOGR&Aacute;FICAS</font></B> </font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1. Tenovuo J. Salivary    parameters of relevance for assessing caries activity in individuals and populations.    Community Dent Oral Epidemiol. 1997;25(1):82-6.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2. Hofman LF. Human    saliva as a diagnostic specimen. J Nutr. 2001;131(5):1621-5.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">3. Haeckel R, H&auml;necke    P. The application of saliva, sweat and tear fluid for diagnostic purposes.    Ann Biol Clin. 1993;51(10-11):903-10.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">4. Chistodoulides    N, Floriano PN, Acosta SA, Ballard KL, Weigum SE, Mohanty S, et al. Toward the    development of a lab-on-a-chip dual-functions leukocyte and C-reactive protein    analysis method for the assessment of inflammation and cardiac risk. Clin Chem.    2005;51(12):2391-5.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">5. Oberholzer A,    Oberholzer C, Moldawer LL. Cytokine signaling-regulation of the immune response    in normal and critically ill states. Crit Care Med. 2000;28(4):3-12.     </font>     ]]></body>
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<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Recibido: 24 de    abril de 2011.    <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Aprobado:    3 de mayo de 2011.</font>     <P>     <P>      <P>      <P>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Dra.<I> Ninoska    Viera. </I>Facultad de Odontolog&iacute;a. Universidad de Zulia, Venezuela.    Correo electr&oacute;nico: <U><FONT COLOR="#0000ff"><a href="mailto:ninoskaviera@gmail.com">ninoskaviera@gmail.com</a></FONT></U>    </font>       ]]></body><back>
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