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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Frecuencia de aislamiento de Staphylococcus spp meticilina resistentes y Enterococcus spp vancomicina resistentes en hospitales de Cuba]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Frequency of methicilline-resistant Staphylococcus spp and vancomycin-resistant Enterococcus spp isolates in Cuban hospitals]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Centro de Química Farmacéutica  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Resistance to methicilline in Staphylococcus spp genus is a growing problem worldwide. The production of an altered penicillin-fixing protein with low mecA gen-mediated affinity to beta-lactams is responsible for this resistance. Although Staphylococcus spp still remain susceptible to vancomycin, some Enterococcus spp have acquired the capacity of neutralizing this drug. In Cuba , there was no updated data either on the rate of infection by methicilline-resistant Staphylococcus spp or on the circulation of this germ in the community; neither are there reports on vancomycin-resistant Enterococcus spp presence. In this study, 774 strains collected from hospitals in the country were analyzed. The mechanism of resistance was determined by the methods suggested in the NCCLS guidelines. The 9.3 % (23) and 4.0 % (7) of S. aureus isolates from the hospitals and the community respectively were methicilline-resistant carriers of mecA gen whereas 69.9 %(72) of negative Staphylococcus coagulase isolates showed resistance to oxacillin. Also, a vancomycin-resistant Enterococcus spp-carrying strain was detected. Our results revealed that in Cuba the methicilline-resistant S. aureus is not a problem neither at hospitals nor at the community setting. Despite the fact that the circulation of these germs in the community setting and also the circulation of vancomycin-resistant Enterococcus spp at hospital setting have been reported for the first time, their frequency is very low as a consequence of the advances in the implementation of policies aimed at a more rational use and consumption of antibiotics.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Staphylococcus spp]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <h2>Frecuencia de aislamiento de <em>Staphylococcus spp </em> meticilina resistentes y <em>Enterococcus spp </em> vancomicina resistentes en hospitales de Cuba </h2>     <p> <a href="#cargo">Leonora Gonz&aacute;lez Mesa,<span class="superscript">1 </span>Janet Morffi Figueroa,<span class="superscript">2</span> Loreta Nadal Becerra,<span class="superscript">3</span> Carlos Vallin Plous,<span class="superscript">4</span> Rolando Contreras<span class="superscript">4</span> y Gloria Roura<span class="superscript">5</span> </a><a name="autor"></a></p> <h4>Resumen</h4>     <p align="justify">La resistencia a meticilina en el g&eacute;nero <em>Staphylococcus spp </em> es un problema creciente en el &aacute;mbito mundial. La producci&oacute;n de una PBP alterada (PBP2a) con baja afinidad a betalact&aacute;micos, mediada por el gen <em>mec </em>A, es la responsable de esta resistencia. Mientras que los <em>Staphylococcus spp </em> todav&iacute;a permanecen sensibles a vancomicina, algunos <em>Enterococcus spp </em> han adquirido la capacidad de neutralizar esta droga. En nuestro pa&iacute;s no se conocen datos actualizados sobre la tasa de infecci&oacute;n por <em>S. aureus </em> meticilina resistente (SAMR), ni sobre la circulaci&oacute;n de este germen en la comunidad, tampoco existen reportes de <em>Enterococcus spp </em> vancomicina resistente (EVR). En este estudio fueron analizadas 774 cepas, colectadas en hospitales del pa&iacute;s. Se determin&oacute; el mecanismo de resistencia utilizando m&eacute;todos sugeridos por las gu&iacute;as NCCLS. El 9.3 % (23) <em></em>de los <em>S. aureus </em> aislados en los hospitales y 4.0% (7) <em>S. aureus </em>aislados en la comunidad, fueron SAMR, portadores del gen <em>mec </em>A, el 69.9 % (72) de <em>Staphylococcus </em>coagulasa negativo, fueron resistentes a oxacilina. En la detecci&oacute;n del <em>Enterococcus spp </em> vancomicina resistente (EVR), se encontr&oacute; una cepa portadora de este fenotipo. Nuestros resultados revelan que en nuestro pa&iacute;s los SAMR no son un problema en los hospitales, ni en el ambiente comunitario, a pesar de que se reporta por primera vez la circulaci&oacute;n de estos en la comunidad y la circulaci&oacute;n de EVR en el ambiente hospitalario, su frecuencia es muy baja lo que refleja los avances obtenidos en la aplicaci&oacute;n de pol&iacute;ticas encaminadas a racionalizar el uso y consumo de antibi&oacute;ticos. </p>     <p><em>Palabras clave</em>: <em>Staphylococcus spp</em>, <em>Enterococcus spp, </em> multiresistencia, gen <em>mec </em>A, uso racional de antibi&oacute;ticos. </p>     <p align="justify">La era antibi&oacute;tica moderna se inici&oacute; hace m&aacute;s de 60 a&ntilde;os con el descubrimiento de la penicilina. Tras los primeros resultados de la administraci&oacute;n de este antibi&oacute;tico, la humanidad concibi&oacute; la idea de eliminar las enfermedades ocasionadas por <em>Staphylococcus aureus, </em> causantes del 50 % de mortalidad por bacteriemia entre el 1936 y 1955.<span class="superscript">1</span> Despu&eacute;s de 2 a&ntilde;os de introducci&oacute;n de la penicilina, aparecieron cepas resistentes. La industria farmac&eacute;utica respondi&oacute; a este desaf&iacute;o con la s&iacute;ntesis de la meticilina en 1959, primera generaci&oacute;n de penicilinas semisint&eacute;ticas, para el tratamiento de infecciones causadas por <em>S. aureus </em>resistentes a penicilina. A solo 2 a&ntilde;os fue descrito el primer <em>S. aureus </em> meticilina resistente (SAMR) y en 1963 el primer brote nosocomial epid&eacute;mico.<span class="superscript">2</span> </p>     <p align="justify">Los SAMR son resistentes a todos los betalact&aacute;micos (penicilinas, cefalosporinas, monobact&aacute;micos y carbapen&eacute;micos), por presentar el gen <em>mec </em>A que codifica para la producci&oacute;n de una nueva prote&iacute;na fijadora de penicilina (PBP 2a), que presenta baja afinidad por estos antibi&oacute;ticos; como resultado de transposici&oacute;n y la integraci&oacute;n de sitios espec&iacute;ficos en el cromosoma los SAMR presentan adem&aacute;s resistencia a otros grupos de antibi&oacute;ticos como los macr&oacute;lidos, aminogluc&oacute;sidos, tetraciclinas, sulfas y quinolonas, y queda como &uacute;nica opci&oacute;n terap&eacute;utica el antimicrobiano glucop&eacute;ptido vancomicina.<span class="superscript">2,3 </span></p>     <p align="justify">Mientras que los <em>Staphylococcus spp </em> todav&iacute;a permanecen sensibles a vancomicina, algunos <em>Enterococcus spp </em> han adquirido la capacidad de neutralizar la actividad bactericida de esta droga. La vancomicina es considerada el antibi&oacute;tico de &uacute;ltimo recurso contra pat&oacute;genos grampositivos.<span class="superscript">4 </span></p>     <p align="justify">Los <em>Enterococcus spp </em>son los responsables de infecciones nosocomiales como la endocarditis, bacteriemias, infecciones del tracto urinario y sepsis neonatal.<span class="superscript">5</span> De las 20 especies descritas hasta el momento, solo <em>E. faecalis </em> y <em>E. faecium </em> representan el 90 % de los aislados.<span class="superscript">6</span> La identificaci&oacute;n de <em>Enterococcus spp </em>a nivel de especie es importante para una adecuada terapia en determinadas infecciones, en particular endocarditis.<span class="superscript">7</span> </p>     <p align="justify">Los <em>Enterococcus spp </em>son intr&iacute;nsicamente resistentes a numerosos agentes antimicrobianos, como las cefalosporinas, penicilinas semisint&eacute;ticas resistentes a penicilinasas, a bajos niveles de aminogluc&oacute;sidos y clindamicina, adem&aacute;s poseen la capacidad de adquirir resistencia a otros agentes antimicrobianos y m&aacute;s recientemente a vancomicina.<span class="superscript">8</span> </p>     <p align="justify">La resistencia a vancomicina en <em>Enterococcus spp </em> (EVR) <em></em>fue detectada en 1980 y desde entonces ha existido un alarmante incremento en la incidencia de este tipo de resistencia, sobre todo en la mayor&iacute;a de las cepas aisladas en las unidades de cuidados intensivos.<span class="superscript">9</span> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">En 1988 se describe el primer brote en vivo de infecciones enteroc&oacute;cicas resistentes a vancomicina en un hospital londinense.<span class="superscript">10</span> Las cepas de EVR actualmente se dividen en 3 clases, <em>vanA</em>, <em>vanB </em> y <em>vanC, </em> de acuerdo con el fenotipo expresado por el gen que est&eacute; presente; el fenotipo m&aacute;s frecuente es <em>vanA</em>, que confiere altos niveles de resistencia a vancomicina y teicoplanina.<span class="superscript">11 </span></p>     <p align="justify">En Cuba no existen reportes de la circulaci&oacute;n de EVR, ni tampoco de la frecuencia de aislamientos de SAMR en la comunidad, solo datos que aportaron trabajos anteriores realizados en el 2002, que mostraron frecuencias de aislamientos del 20 % de SAMR aislados en hospitales.<span class="superscript">12</span> </p>     <p align="justify">El objetivo del presente trabajo es determinar la frecuencia de aislamientos de <em>Staphylococcus </em>resistentes a meticilina, provenientes de infecciones intrahospitalarias y/o adquiridas en la comunidad y demostrar la circulaci&oacute;n en nuestro pa&iacute;s de cepas <em>Enterococcus </em>resistentes a vancomicina. </p> <h4>M&eacute;todos </h4>     <p><em>Microorganismos ensayados</em>. Se analizaron 674 cepas de <em>Staphylococcus spp</em>, aisladas de la comunidad e intrahospitalarias y 100 cepas de <em>Enterococcus spp </em>aisladas de hospitales. </p>     <p align="justify">La conservaci&oacute;n de las cepas se realiz&oacute; por el m&eacute;todo de crioconservaci&oacute;n a-70 0 C, para <em>Staphylococcus spp, </em>en medio Mueller-Hinton con 30 % de glicerol y suplementado con oxacilina (si la cepa era resistente meticilina); en el caso de los <em>Enterococcus spp </em>se utiliz&oacute; el mismo m&eacute;todo, pero el medio infusi&oacute;n cerebro coraz&oacute;n con 30 % de glicerol y suplementado con vancomicina (para la confirmaci&oacute;n si la cepa era vancomicina resistente). </p>     <p align="justify">Las cepas <em>S. aureus </em>1870, sensible a meticilina y <em>S. aureus </em>1426 resistente a meticilina y las cepas de <em>E. faecium </em>173, sensible a vancomicina y <em>E. faecium </em>174, resistente a vancomicina, donadas por el doctor <em>Eddie Power </em> del St Thomas Hospital, en Londres, fueron utilizadas como control negativo y positivo en los ensayos. </p>     <p align="justify"><em>Clasificaci&oacute;n de las cepas</em>. Todas las cepas de <em>Staphylococcus spp </em>fueron clasificadas seg&uacute;n el m&eacute;todo de Rapi-Staph y la prueba de la Staphylasa de la BioMereux , as&iacute; como los criterios morfol&oacute;gicos de crecimiento en placas de agar sangre de carnero al 5 % y en el medio Staphylo 110 (Merck).<span class="superscript">13,14</span> Las cepas de <em>Enterococcus spp </em> se identificaron por el sistema API 20 Strep (BioMerieux) y posteriormente se confirmaron seg&uacute;n criterios de <em>Facklam </em> y <em>Collins</em>.<span class="superscript">6</span> </p>     <p align="justify"><em>Ensayos de susceptibilidad</em><strong>. </strong>Se utiliz&oacute; el m&eacute;todo de difusi&oacute;n en discos para la determinaci&oacute;n de la susceptibilidad para <em>Staphylococcus spp </em> de los siguientes antibi&oacute;ticos: penicilina G (P), oxacilina (OX), eritromicina (E), clindamicina (DA), tetraciclina (TE), ciprofloxacina (CIP), cotrimoxasol (SXT), gentamicina (CN), cloranfenicol (C) y vancomicina (VA) (Unipath-Oxoid). </p>     <p align="justify">Para los <em>Enterococcus spp </em>se probaron los discos de antibi&oacute;ticos siguientes: <em></em>penicilina G (P), vancomicina (VA), teicoplanina (TEC), tetraciclina (TE), ciprofloxacina (CIP), cloranfenicol (C), eritromicina (E), gentamicina (CN) 120 &micro;g/mL, nitrofuranto&iacute;na (F), y rifampicina (RD) (Unipath-Oxoid), seg&uacute;n NCCLS.<span class="superscript">15 </span></p>     <p align="justify"><em>Ensayo de crecimiento en placas de oxacilina para Staphylococcus spp y en placas de vancomicina para Enterococcus spp</em>. Las cepas de <em>Staphylococcus spp </em> fueron sembradas en medio Mueller-Hinton agarizado que conten&iacute;a oxacilina (Smithkline Beecham Pharmaceuticals) a 6 &micro;g/mL m&aacute;s 4 % NaCl e incubada a 35 0 C por 24 h; las cepas capaces de crecer en este medio fueron clasificadas como meticilino resistentes (SMR). Los <em>Enterococcus spp </em>capaces de crecer en medio agar infusi&oacute;n cerebro coraz&oacute;n con 6 &micro;g/mL de vancomicina (sigma) a 35 0 C por 24 h, son clasificadas como EVR, seg&uacute;n lo recomendado en las gu&iacute;as NCCLS.<span class="superscript">15 </span></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><em>Determinaci&oacute;n de la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria (MIC)</em>. Cada cepa SMR y EVR se le determin&oacute; la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria por el m&eacute;todo de microdiluci&oacute;n en caldo, seg&uacute;n NCCLS, 15 con una concentraci&oacute;n inicial de c&eacute;lulas de aproximadamente 5<span class="Estilo1"> &acute; </span>10 5 ufc/mL. Los antibi&oacute;ticos utilizados fueron oxacilina (Smithkline Beecham Pharmaceuticals), penicilina (sigma) y vancomicina (sigma) a concentraciones desde 0,25 hasta 256 mg/mL. </p>     <p align="justify"><em>Detecci&oacute;n de la presencia del gen mecA, en SAMR</em>. Para la detecci&oacute;n de la presencia del gen mecA, se utiliz&oacute; la metodolog&iacute;a descrita por <em>Steven M. Salisbury </em> y otros, de reacci&oacute;n m&uacute;ltiple en cadena de la polimerasa utilizando los primer descritos por <em>Predari </em> y otros y los primer universales modificados por <em>Relman </em> y otros para la identificaci&oacute;n del RNA 16S ribosomal. Los reactivos utilizados para la reacci&oacute;n fueron obtenidos de <em>Amershan </em>, Inglaterra.<span class="superscript">16 </span></p>     <p align="justify"><em>Detecci&oacute;n del genotipo de resistencia a vancomicina en (EVR)</em>. El genotipo vanA fue confirmado por la amplificaci&oacute;n del respectivo gen, por reacci&oacute;n m&uacute;ltiple en cadena de la polimerasa (RCP). La secuencia de primer de oligonucle&oacute;tidos, las condiciones para la amplificaci&oacute;n y la confirmaci&oacute;n del gen se realizaron seg&uacute;n la descripci&oacute;n de <em>Clark N </em> y <em>Cooksey B</em>.<span class="superscript">17 </span></p> <h4>Resultados </h4>     <p align="justify">Fueron analizadas 674 cepas de <em>Staphylococcus spp</em>, 266 aisladas de la comunidad y 408 de origen intrahospitalario de 6 hospitales pedi&aacute;tricos del pa&iacute;s. </p>     <p align="justify">De las 266 cepas de <em>Staphylococcus spp </em>de la comunidad, el 65,4 % (174) fue <em>S. aureus </em>y el 34,5 % (92) <em>Staphylococcus </em>coagulasa negativo (SCN). Los <em>S. aureus </em> (4,0 %), 7 presentaron resistencia a meticilina por el m&eacute;todo de Kirby-Bauer, todas estas cepas crecieron en placas con oxacilina y fueron portadoras del gen <em>mec </em>A. </p>     <p align="justify">Los aislados de origen intrahospitalario, de un total de 408, el (60,2 %) (246) correspondi&oacute; <em>S. aureus </em>y el 39,7 % (162) SCN. De los <em>S. aureus</em>,  el 10,1 % (25) mostr&oacute; resistencia a meticilina por Kirby-Bauer, el 9,3 % (23) creci&oacute; en placas de oxacilina y fue portador del gen <em>mec </em>A. En el caso de las cepas de SCN, la presencia del gen <em>mec </em>A condiciona el 69,9 % (72) de la resistencia a oxacilina, mientras que el 18,4 % (19) mostr&oacute; valores de MIC borderline entre 2 y 8 &micro;g/mL, lo que indica la presencia del fenotipo de resistencia heterog&eacute;neo. </p>     <p align="justify">La tabla 1 resume los ensayos realizados a las cepas y el porcentaje de resistencia encontrado para cada m&eacute;todo utilizado; se muestran los valores de resistencia a la eritromicina y el porcentaje de cepas portadoras del fenotipo inducible de resistencia a todos los antibi&oacute;ticos macr&oacute;lidos, lincosamidas y estreptograminas (MLS). </p>     <p align="center">Tabla 1. Resultados obtenidos en las cepas de <em>Staphylococcus spp </em>analizadas </p> <table align="center" cellpadding="0" cellspacing="3">   <tr>     <td width="92" valign="bottom">    <p align="center">Cepas     <br>     </p>     </td>     <td width="81" valign="bottom">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">Resistencia Oxa por KB </p>     </td>     <td width="69" valign="bottom">    <p align="center">OSP </p></td>     <td width="69" valign="bottom">    <p align="center">Gen mecA </p>     </td>     <td width="81" valign="bottom">    <p align="center">Resistencia Peni por KB </p>     </td>     <td width="58" valign="bottom">    <p align="center">?-lacta-masas </p></td>     <td width="81" valign="bottom">    <p align="center">Resistencia Eritro por KB </p>     </td>     <td width="92" valign="bottom">    <p align="center">Fenotipo inducible MLS </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="92" valign="top">    <p><em>S.aureus </em>(comunidad) N=174 </p>     </td>     <td width="81" valign="top">    <p align="center">7     <br>       (4,0 %) </p>     </td>     <td width="69" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">7     <br>       (4,0 %) </p>     </td>     <td width="69" valign="top">    <p align="center">7     <br>       (4,0 %) </p>     </td>     <td width="81" valign="top">    <p align="center">164     <br>       (94 %) </p>     </td>     <td width="58" valign="top">    <p align="center">164     <br>       (100 %) </p>     </td>     <td width="81" valign="top">    <p align="center">58     <br>       (33,3 %) </p>     </td>     <td width="92" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">15     <br>       (8,6 %) </p>     </td>   </tr>   <tr>     <td width="92" valign="top">    <p><em>S.</em><em>aureus </em>(hospitales) N=246 </p>     </td>     <td width="81" valign="top">    <p align="center">25     <br>       (10,1 %) </p>     </td>     <td width="69" valign="top">    <p align="center">23     <br>       (9,3 %) </p>     </td>     <td width="69" valign="top">    <p align="center">23     <br>       (9,3 %) </p>     </td>     <td width="81" valign="top">    <p align="center">236     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       (95 %) </p>     </td>     <td width="58" valign="top">    <p align="center">236     <br>       (100 %) </p>     </td>     <td width="81" valign="top">    <p align="center">118     <br>       (47,9 %) </p>     </td>     <td width="92" valign="top">    <p align="center">70     <br>       (28,4 %) </p>     </td>   </tr>   <tr>     <td width="92" valign="top">    <p><em>SCN </em>(hospitales) N=162 </p>     </td>     <td width="81" valign="top">    <p align="center">103     <br>       (85,1 %) </p>     </td>     <td width="69" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">91     <br>       (88,3 %) </p>     </td>     <td width="69" valign="top">    <p align="center">72     <br>       (69,9 %) </p>     </td>     <td width="81" valign="top">    <p align="center">150     <br>       (92 %) </p>     </td>     <td width="58" valign="top">    <p align="center">150     <br>       (100 %) </p>     </td>     <td width="81" valign="top">    <p align="center">129     <br>       (74,0 %) </p>     </td>     <td width="92" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">0     <br>       (0 %) </p>     </td>   </tr> </table>     <p align="center"><em>&nbsp; </em>SCN: <em>Staphylococcus </em> coagulasa negativo, Oxa: oxacilina, KB: m&eacute;todo de Kirby-Bauer, OSP: crecimiento en placas de oxacilina, Peni: penicilina, Eritro: eritromicina, MLS: macrolidos-lincosamidas y estreptograminas. </p>     <p align="justify">Las 30 cepas de <em>S. aureus </em>resistentes a meticilina, aisladas de la comunidad e intrahospitalarias, que crecieron en placas de oxacilina, mostraron valores de MIC &gt; 16 &micro;g/mL, lo que indica as&iacute; que el mecanismo prevalente de resistencia es el homog&eacute;neo, por la presencia del gen <em>mec </em>A. </p>     <p align="justify">Solamente 2 cepas presentaron valores de MIC entre 2 y 8 &micro;g/mL, las cuales no mostraron resistencia cruzada con otras familias de antibi&oacute;ticos, lo que indic&oacute; la posible presencia de prote&iacute;nas de uni&oacute;n a penicilinas (PBP) modificadas. </p>     <p align="justify">Todas las cepas resistentes a meticilina fueron resistentes a penicilina y el 100 % productoras de penicilinasas. Los porcentajes de resistencia encontrados para las cepas SMR frente a otras familias de antibi&oacute;ticos se presentan en la tabla 2. </p>     <p align="justify">Las cepas SAMR se mostraron sensibles a ciprofloxacina, clindamicina y vancomicina, por lo que pudieran ser opciones terap&eacute;uticas en el tratamiento de infecciones causadas por estos microorganismos. </p>     <p align="center">Tabla 2. Porcentaje de resistencia para otros antibi&oacute;ticos en cepas de <em>Staphylococcus spp </em>meticilina resistentes </p> <table align="center" cellpadding="0" cellspacing="3">   <tr>     <td width="154" valign="bottom">    <p align="center">Antibi&oacute;ticos </p></td>     <td width="154" valign="bottom">    <p align="center"><em>S. aureus </em> meticilina resistentes de la comunidad (%)     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       N=7 </p>     </td>     <td width="154" valign="bottom">    <p align="center">&nbsp; </p>             <p align="center"><em>S. aureus </em> meticilina resistentes intrahospitalarios (%) N=23 </p>     </td>     <td width="154" valign="bottom">    <p align="center">SCN meticilina resistentes intrahospitalarios (%)           <br>        N=72 </p>     </td>   </tr>   <tr>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">Penicilina </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">100 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">100 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">100 </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">Oxacilina </p></td>     <td width="154" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">100 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">100 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">100 </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">Eritromicina </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">59 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">76 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">73 </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">Clindamicina </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">10 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">12 </p></td>     <td width="154" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">14 </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">Gentamicina </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">45 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">55 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">58 </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">Cloranfenicol </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">40 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">45 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">43 </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">Ciprofloxacina </p></td>     <td width="154" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">9 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">10 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">12 </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">Cotrimoxasol </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">62 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">76 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">64 </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">Tetraciclina </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">51 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">58 </p></td>     <td width="154" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">50 </p></td>   </tr>   <tr>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">Vancomicina </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">0 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">0 </p></td>     <td width="154" valign="top">    <p align="center">0 </p></td>   </tr> </table>     <p align="justify">Para los estudios de detecci&oacute;n del EVR se analizaron un total de 100 cepas, procedentes de 3 hospitales. Para la caracterizaci&oacute;n a nivel de especie se utiliz&oacute; la prueba de fermentaci&oacute;n de az&uacute;cares (sorbitol y arabinosa). Como resultado se obtuvo que el 84 % fueron <em>E. faecalis</em>, 11 % <em>E. faecium </em> y 5 % <em>E. spp. </em></p>     <p align="justify">Los ensayos de susceptibilidad realizados mostraron que una cepa de <em>E. faecium </em>portaba el fenotipo EVR para el 1,6 % de frecuencia de aparici&oacute;n; los valores de MIC para vancomicina fueron 256 &micro;g/mL y para la teicoplanina de 32 &micro;g/mL; se realiz&oacute; la amplificaci&oacute;n del respectivo gen, por reacci&oacute;n m&uacute;ltiple en cadena de la polimerasa (PCR) y fue confirmado el genotipo <em>vanA. </em></p>     <p>La tabla 3 muestra los resultados de la susceptibilidad de <em>Enterococcus spp </em>. a los diferentes antibi&oacute;ticos probados en el estudio. </p>     <p align="center">Tabla 3. Resultados de los ensayos de susceptibilidad frente a las cepas <em>Enterococcus spp</em></p> <table align="center" cellpadding="0" cellspacing="3">   <tr>     <td width="79" valign="bottom">    <p align="center">Cepas </p></td>     <td width="48" valign="bottom">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">VA     <br>         (%) </p></td>     <td width="48" valign="bottom">    <p align="center">CN     <br>         (%) </p></td>     <td width="48" valign="bottom">    <p align="center">TEC     <br>         (%) </p></td>     <td width="48" valign="bottom">    <p align="center">TE     <br>         (%) </p></td>     <td width="48" valign="bottom">    <p align="center">P     <br>         (%) </p></td>     <td width="48" valign="bottom">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">CIP     <br>         (%) </p></td>     <td width="60" valign="bottom">    <p align="center">NOR     <br>         (%) </p></td>     <td width="48" valign="bottom">    <p align="center">C     <br>         (%) </p></td>     <td width="48" valign="bottom">    <p align="center">F     <br>         (%) </p></td>     <td width="48" valign="bottom">    <p align="center">RD     <br>         (%) </p></td>     <td width="48" valign="bottom">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">E     <br>       (%) </p>        </td>   </tr>   <tr>     <td width="79" valign="top">    <p><em>&nbsp; </em><em>E.faecalis </em></p>     </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">0 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">40 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">0 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">70 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">0 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">30 </p>        </td>     <td width="60" valign="top">    <p align="center">30 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">55 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">30 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">55 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">55 </p>     </td>   </tr>   <tr>     <td width="79" valign="top">    <p><em>&nbsp; </em><em>E.faecium</em> </p>     </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">25 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">25 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">25 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">60 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">50 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">0 </p>        </td>     <td width="60" valign="top">    <p align="center">0 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">25 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">37 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">25 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">25</p>        </td>   </tr>   <tr>     <td width="79" valign="top">    <p align="left"><em>&nbsp; </em><em>E.spp </em></p>     </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">0 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">33 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">0 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">66 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">0 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">33 </p>        </td>     <td width="60" valign="top">    <p align="center">33 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">33 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">33 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">33 </p>        </td>     <td width="48" valign="top">    <p align="center">33</p>        </td>   </tr> </table>     <p align="center">VA: vancomicina, CN: gentamicina, TEC: teicoplanina, TE: tetraciclina, P: penicilina, CIP: ciprofloxacina, NOR: norfloxacina, C: cloranfenicol, F: nitrofuranto&iacute;na, RD: rifampicina y E: eritromicina. </p>     <p align="justify">Ninguna de las especies de <em>Enterococcus </em> presentaron resistencia a altos niveles de aminogluc&oacute;sidos. <em>E. faecalis </em> mostr&oacute; elevada resistencia a tetraciclina, eritromicina, cloranfenicol y rifampicina y <em>E. faecium </em>a tetraciclina y penicilina; en el caso de la penicilina; la resistencia est&aacute; condicionada por beta lactamasas. </p> <h4>Discusi&oacute;n </h4>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Los resultados indican que la resistencia a meticilina en estos medios, es baja tanto en las aisladas de hospitales como en las provenientes de la comunidad; si lo comparamos con los resultados obtenidos en estudios anteriores, donde se obtuvo 20 % de SAMR,<span class="superscript">12</span> se puede decir que la incidencia de estas cepas disminuy&oacute;. Los datos disponibles indican que la resistencia a meticilina en <em>S. aureus</em>, no es un problema en Am&eacute;rica Latina, donde seg&uacute;n un estudio de <em>Resist Net</em><span class="superscript">18</span> la prevalencia del SAMR oscil&oacute; entre 5 y 26 % en diversos pa&iacute;ses suramericanos. Sin embargo, el Sistema Nacional de Vigilancia de Infecciones Nosocomiales de Estados Unidos (NNIS), report&oacute; un incremento del 40 % en la frecuencia de cepas de SAMR hacia 1999, comparado con el basal de 1994-1998. Adicionalmente se describe que la mortalidad en sujetos que presentan bacteriemia por este agente se encuentra entre 15-60 %.<span class="superscript">19,20 </span></p>     <p align="justify">Los resultados descritos en este estudio para las cepas de <em>Staphylococcus </em>coagulasa negativo resistentes a meticilina (69,9 %) superan los niveles declarados para estas cepas en los estudios realizados en el 2002 (42 %) 12 y superan los diferentes reportes encontrados en EU (57 %), Canad&aacute; (51 %), Europa (59 %) y Am&eacute;rica Latina (68 %).<span class="superscript">21,22</span> Este resultado no es alarmante, pero si constituye una alerta en nuestro pa&iacute;s, teniendo en cuenta que el nicho ecol&oacute;gico y las frecuencias de infecci&oacute;n por este germen est&aacute;n relacionados con el uso de dispositivos invasivos, como cat&eacute;teres, o casos de pacientes que son dializados o que reciben repetidos y prolongados tratamientos.<span class="superscript">23</span> El n&uacute;mero de aislados SCN resistente a oxacilina est&aacute; en aumento, es necesario seguir muy de cerca el uso de los antibi&oacute;ticos glucop&eacute;ptidos (vancomicina), ya que este tipo de aislado limita la terapia a este antibi&oacute;tico. Las infecciones causadas por <em>S. aureus </em>intermedios y resistentes a vancomicina (SA-VIR) son raros; hasta la fecha en Estados Unidos solo se han reportado 8 casos de SAVI y 2 casos de SAVR, lo que representa un verdadero desaf&iacute;o para la terapia antimicrobiana.<span class="superscript">24</span> En este estudio todas las cepas SAMR ensayadas se mostraron sensibles a vancomicina. </p>     <p align="justify">Los <em>Enterococcus spp </em> han emergido en todo el mundo como importantes pat&oacute;genos nosocomiales, son causantes de infecci&oacute;n en pacientes transplantados y con bacteriemia nosocomial.<span class="superscript">25</span> La resistencia a la vancomicina en los enterococos fue descrita por primera vez en Europa en 1986, casi 30 a&ntilde;os despu&eacute;s de su introducci&oacute;n cl&iacute;nica, e sta resistencia ha alcanzado una gran relevancia en Estados Unidos, donde aproximadamente la mitad de las cepas la presentan, llega a afectar al 95 % de los <em>E. faecium</em>, y en pa&iacute;ses como Espa&ntilde;a no supera el 5 %.<span class="superscript">26</span> Afortunadamente en nuestro pa&iacute;s representa solamente un 1,6 %. La resistencia de los enterococos a los glucop&eacute;ptidos ha tra&iacute;do 2 consecuencias cl&iacute;nicas importantes: dificultades terap&eacute;uticas y riesgo de diseminaci&oacute;n entre ellos y a otros pat&oacute;genos como <em>S. aureus</em>. </p>     <p align="justify"><em>E. faecalis </em>mostr&oacute; elevada resistencia a tetraciclina, eritromicina, cloranfenicol y rifampicina. <em>E. faecium </em>mostr&oacute; elevada resistencia a tetraciclina y penicilina, en el caso de la penicilina la resistencia esta condicionada por beta lactamasas. </p>     <p align="justify">En conclusi&oacute;n, la frecuencia de aparici&oacute;n de cepas de SAMR fue bajo, tanto en el ambiente intrahospitalario (10,1 %), como en el comunitario (4,0 %). Sin embargo, los aislados de <em>Staphylococcus </em>coagulasa negativo resistentes a meticilina (69,9 %), alcanzaron niveles de emergencia declarados para estas cepas, lo cual nos alerta que hay que seguir una vigilancia estricta a este pat&oacute;geno. Todas las cepas SAMR resultaron sensibles a los glucop&eacute;ptidos y quinolonas presentando altos porcientos de resistencia a eritromicina, cotrimoxasol y tetraciclina. </p>     <p>Se demostr&oacute; la presencia de una cepa de <em>E. faecium </em> resistente a vancomicina, portadora del gen <em>Van </em>A. </p> <h4>Summary</h4> <h6>Frequency of methicilline-resistant <em>Staphylococcus </em>spp and vancomycin-resistant <em>Enterococcus </em>isolates in Cuban hospitals</h6>     <p align="justify">Resistance to methicilline in <em>Staphylococcus spp </em> genus is a growing problem worldwide. The production of an altered penicillin-fixing protein with low <em>mecA </em> gen-mediated affinity to beta-lactams is responsible for this resistance. Although <em>Staphylococcus spp </em> still remain susceptible to vancomycin, some <em>Enterococcus spp </em> have acquired the capacity of neutralizing this drug. In Cuba , there was no updated data either on the rate of infection by methicilline-resistant Staphylococcus spp or on the circulation of this germ in the community; neither are there reports on vancomycin-resistant Enterococcus spp presence. In this study, 774 strains collected from hospitals in the country were analyzed. The mechanism of resistance was determined by the methods suggested in the NCCLS guidelines. The 9.3 % (23) and 4.0 % (7) of <em>S. aureus </em> isolates from the hospitals and the community respectively were methicilline-resistant carriers of mecA gen whereas 69.9 %(72) of negative <em>Staphylococcus coagulase </em>isolates showed resistance to oxacillin. Also, a vancomycin-resistant <em>Enterococcus spp</em>-carrying strain was detected. Our results revealed that in Cuba the methicilline-resistant <em>S. aureus </em> is not a problem neither at hospitals nor at the community setting. Despite the fact that the circulation of these germs in the community setting and also the circulation of vancomycin-resistant <em>Enterococcus spp </em> at hospital setting have been reported for the first time, their frequency is very low as a consequence of the advances in the implementation of policies aimed at a more rational use and consumption of antibiotics. </p>     <p><em>Key words</em>: <em>Staphylococcus spp, Enterococcus spp</em>, multiresistance, mecA gen, rational use of antibiotics </p> <h4>Referencias bibliogr&aacute;ficas </h4>     <!-- ref --><p>1. Neu H. The crisis in antibiotic resistance. Science. 1992;257:1064. <!-- ref --><p>2. Anonymus. Antibiotic that resist resistance. Science. 1995;270:724. <!-- ref --><p>3. Pausen IT, Firth N, Skurray RA. Resistance to antimicrobial agents other than beta-lactams. In: Archer GL, Crosseley K (eds). The Staphylococci in human disease. New York : Churchill Livingtone; 1996. p. 175-212. <!-- ref --><p>4. Emori TG, Gaynes RP. 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