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<publisher-name><![CDATA[Editorial Ciencias Médicas]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Interferencias en la validación del ensayo de lisado de amebocitos de Limulus para oxitetraciclina 50 mg/mL]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Interferences in the validation of the Limulus amebocyte lysate for oxytetracyline 50 mg/mL]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Pontificia Universidad Javeriana. Sede Bogotá D.C. ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The endotoxin analysis by the Limulus amebocyte lysate (LAL) assay is one of the main tests in the quality control of the manufacture of injectables due to their repercussion on human and animal health. That's why the validation of the technique is required for parenteral products. The LAL gel-clot method was used to validate the detection of bacterial endotoxin in the oxytetracycline produced by a veterinary pharmaceutical laboratory of Bogota-Colombia. To this end, samples were taken at the beginning, interval and end of 3 different batches of the medicine and the test of validation was made just as it is specified in the United States Pharmacopea XXV. The results for the Maximum Valid Dilution of the product (1:80) of the Spike test showed a 100 % of inhibition until dilution 1:16, and 0 % of inhibition in the following dilutions. In the Unspike test, it is seen an enhancement of the test from dilution 1:32. The label for a reagent of LAL with sensitivity (l) of 0.25 UE/mL and the operator who made the test made were validated.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify">Pontificia Universidad Javeriana </p> <h2 align="justify">Interferencias en la validaci&oacute;n del ensayo de lisado de amebocitos de <em>Limulu</em><em>s </em> para oxitetraciclina 50 mg/mL </h2>     <p align="justify"><a href="#autor">Olga Osorio Rojas,<span class="superscript">1</span> Ximena Carolina P&eacute;rez Mancilla,<span class="superscript">1</span> Janeth Arias Palacios,<span class="superscript">2</span> Dora Marcela Rodr&iacute;guez Vargas<span class="superscript">1</span> y Cindy Marlene Fern&aacute;ndez L&oacute;pez<span class="superscript">1</span></a><span class="superscript"><a name="cargo"></a></span> </p> <h4 align="justify">    <br> Resumen </h4>     <p align="justify">El an&aacute;lisis de endotoxina por medio del lisado de amebocitos de <em>Limulus </em> (LAL) es uno de los principales ensayos en el control de calidad de la fabricaci&oacute;n de inyectables por su repercusi&oacute;n en la salud humana y animal, raz&oacute;n por la que se requiere la validaci&oacute;n de la t&eacute;cnica para los productos parenterales. Se emple&oacute; el m&eacute;todo de LAL gel-clot para validar la detecci&oacute;n de endotoxina bacteriana en la oxitetraciclina producida por un laboratorio maquilador de productos farmac&eacute;uticos veterinarios de Bogot&aacute;, Colombia. Para este objetivo se tomaron muestras al inicio, intermedio y final de 3 lotes diferentes del medicamento y se realiz&oacute; la prueba de validaci&oacute;n tal y como lo especifica la United States Pharmacopea XXV. Los resultados para la m&aacute;xima diluci&oacute;n v&aacute;lida del producto (1:80) de la prueba Spike mostraron el 100 % de inhibici&oacute;n hasta la diluci&oacute;n 1:16 y 0 % de inhibici&oacute;n en las siguientes diluciones. En la prueba Unspike se muestra un realce de la prueba a partir de la diluci&oacute;n 1:32. El r&oacute;tulo para un reactivo de LAL con sensitividad (<span class="Estilo2">l</span>) de 0,25 unidades de endotoxinas por mililitro (UE/mL) y el operario que realiz&oacute; el ensayo quedaron validados. </p>     <p align="justify"><strong>Palabras clave</strong>: Endotoxina, lisado de amebocitos de <em>Limulus </em> (LAL), m&aacute;xima diluci&oacute;n v&aacute;lida, Spike, Unspike, validaci&oacute;n<strong>. </strong></p>     <p align="justify">En la actualidad los principales organismos a nivel internacional, encargados de regular la elaboraci&oacute;n de productos farmac&eacute;uticos exigen cada vez m&aacute;s en sus protocolos de calidad la aplicaci&oacute;n del ensayo de lisado de amebocitos de <em>Limulu</em>s (LAL), en el control de calidad en la fabricaci&oacute;n de medicamentos administrados por v&iacute;a intravenosa. Esto teniendo en cuenta que la presencia de pir&oacute;genos en estas y su subsiguiente administraci&oacute;n provoca respuestas fisiol&oacute;gicas severas que pueden provocar la muerte. As&iacute; pues, las endotoxinas bacterianas se refieren al complejo de lipopolisac&aacute;ridos asociados con la membrana externa de las bacterias gramnegativas como <em>Escherichia coli, Salmonella, Shigella, Neisseria, </em>y otros pat&oacute;genos importantes.<span class="superscript">1,2</span> </p>     <p align="justify">Ahora bien, el m&eacute;todo de LAL se fundamenta en la coagulaci&oacute;n de la hemolinfa por medio de la interacci&oacute;n de la endotoxina con los amebocitos contenidos en esta, causando la liberaci&oacute;n de una cascada de reacciones que hacen que se forme un gel visible y consistente (fig. 1).<span class="superscript">3-5</span> Muchos productos interfieren con el ensayo del LAL, no obstante, es tan sensible que detecta las cantidades de endotoxinas que son de inter&eacute;s. Para realizar la validaci&oacute;n de la t&eacute;cnica el producto debe ser diluido para eliminar la interferencia siempre y cuando aun permita que la concentraci&oacute;n cr&iacute;tica de endotoxinas sea detectada.<span class="superscript">6,7</span></p>     <p align="center"><a href="/img/revistas/far/v41n1/f0105107.jpg"><img src="/img/revistas/far/v41n1/f0105107.jpg" width="286" height="158" border="0"></a> </p>     
<p align="center"><strong>Tomado de</strong>: Perdomo 2004.    <br>   <strong>Fig. 1</strong>. Cascada de reacci&oacute;n de LAL activado por endotoxinas    para formar gel. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Entre los factores que pueden inhibir o incrementar la reacci&oacute;n de coagulaci&oacute;n est&aacute;n el pH, los cationes divalentes, los agentes quelantes, los excipientes, el material de vidrio y el magnesio, entre otros.<span class="superscript">8</span> </p>     <p align="justify">Por otra parte, es importante resaltar que la validaci&oacute;n, entendida como la obtenci&oacute;n de pruebas convenientemente documentadas demostrativas de que un proceso es lo suficientemente confiable como para producir el resultado previsto dentro de intervalos definidos,<span class="superscript">9</span> y toma cada d&iacute;a m&aacute;s importancia para las autoridades sanitarias, lo cual ha llevado a todas las empresas productoras o maquiladoras de productos farmac&eacute;uticos a disponer de documentaci&oacute;n detallada de la validaci&oacute;n de los sistemas, equipos y procesos de fabricaci&oacute;n, as&iacute; como la validaci&oacute;n de los m&eacute;todos anal&iacute;ticos. El objetivo del presente estudio fue validar la prueba de endotoxinas por el m&eacute;todo de LAL para un producto farmac&eacute;utico, oxitetraciclina (50 mg), en un laboratorio de servicios farmac&eacute;uticos veterinarios, mediante pruebas preliminares de interferencia de inhibici&oacute;n y realce entre el producto y el reactivo de LAL. </p> <h4 align="justify">M&eacute;todos </h4> <h6 align="justify">Muestreo </h6>     <p align="justify">El producto farmac&eacute;utico inyectable que se ensay&oacute; fue oxitetraciclina 50 mg suministrado por un laboratorio de servicios farmac&eacute;uticos. Las muestras se tomaron por medio de un muestreo aleatorio simple. Se seleccion&oacute; una muestra al inicio, intermedio y final de cada lote, con una diferencia m&iacute;nima de una semana por lote y de conformidad con la programaci&oacute;n de producci&oacute;n del laboratorio. El n&uacute;mero de lotes por producto usado para el desarrollo del proyecto fue de tres, por lo tanto se obtuvieron 9 muestras al final. </p> <h4 align="justify">Ensayo de endotoxinas bacterianas </h4> <h6 align="justify">Preparaci&oacute;n de las muestras </h6>     <p align="justify">El material de vidrio utilizado fue apirog&eacute;nico y la preparaci&oacute;n de las muestras se hizo as&eacute;pticamente para evitar contaminaci&oacute;n. Para garantizar una correcta despirogenizaci&oacute;n (reducci&oacute;n en al menos 3 ciclos logar&iacute;tmicos de la carga de endotoxinas) por medio de calor seco, las condiciones se controlaron permanentemente a 250 &deg;C por 30 min. Se midi&oacute; el pH de las muestras, considerando que deb&iacute;a estar en un intervalo de 6,0-8,0. </p> <h4 align="justify">Procedimiento de la validaci&oacute;n </h4> <ul>       <li>Generalidades   </li>     </ul>     <blockquote>       <p align="justify">La prueba de LAL por el m&eacute;todo gel-clot se realiz&oacute; adicionando 0,1 mL del reactivo de LAL de sensitividad <span class="Estilo2">l</span> = 0,25 UE/mL con 0,1 mL de la muestra. El tubo se agit&oacute; suave pero completamente, se incub&oacute; en un ba&ntilde;o de agua no circulante a 37 &plusmn; 1 &ordm;C por 60 &plusmn; 2 min. Al final de este periodo de incubaci&oacute;n, se retir&oacute; el tubo del ba&ntilde;o y se invirti&oacute; en un &aacute;ngulo de 180 &ordm;C para realizar la lectura. </p> </blockquote> <ul>       <li><strong align="justify"></strong>Valoraci&oacute;n del operario y sensitividad del LAL </li>     </ul>     ]]></body>
<body><![CDATA[<blockquote>       <p align="justify">Se prepararon muestras con concentraciones conocidas de endotoxina, mediante diluciones a partir del control est&aacute;ndar de endotoxina con potencia de 5 000 UE/mL (reconstituido con agua LWR seg&uacute;n recomendaciones del proveedor) para obtener concentraciones de 1,0 (4<span class="Estilo2">l</span>); 0,5 (2<span class="Estilo2">l</span>); 0,25 (<span class="Estilo2">l</span>); 0,125 (1/2<span class="Estilo2">l</span>) y 0,06 (1/4<span class="Estilo2">l</span>) UE/mL. Se adicion&oacute; 0,1 mL de reactivo LAL (reconstituido seg&uacute;n indicadores del fabricante con agua LWR) a 0,1 mL de cada diluci&oacute;n en an&aacute;lisis (1,0; 0,5; 0,25; 0,125 y 0,06 UE/mL) y a los controles negativos, consistentes en 0,1 mL de agua libre de pir&oacute;genos, en un tubo de vidrio (10 x 75 mm) despirogenizado, se realiz&oacute; el an&aacute;lisis por cuadruplicado a cada diluci&oacute;n, se puso en ba&ntilde;o de Mar&iacute;a a 37 &ordm;C durante 1 h y una vez completado el tiempo se realizaron las lecturas. Se determin&oacute; la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar y promedio geom&eacute;trico para el analista. </p> </blockquote> <ul>       <li>         <p>Estimaci&oacute;n de la m&aacute;xima diluci&oacute;n v&aacute;lida </p>   </li>     </ul>     <blockquote>       <p align="justify">Se calcul&oacute; la m&aacute;xima diluci&oacute;n v&aacute;lida (MDV) que puede ser aplicada a cada producto terminado utilizando la f&oacute;rmula del LAL para la MDV: MDV= l&iacute;mite de endotoxina (UE/mL)/sensitividad del LAL.<span class="superscript">10 </span></p>       <p align="justify"> En la ecuaci&oacute;n el l&iacute;mite de endotoxina corresponde al l&iacute;mite permitido por la USP, para el caso de la oxitetraciclina fue 0,4 UE/mg. La sensitividad del reactivo de LAL fue 0,25 <span class="Estilo2">l</span>. </p> </blockquote> <ul>       <li>Ensayos preliminares</li>     </ul>     ]]></body>
<body><![CDATA[<blockquote>       <p align="justify">Para la realizaci&oacute;n de los ensayos preliminares de los lotes de producto terminado se practicaron las diluciones de volumen final de 0,1 mL de acuerdo con el c&aacute;lculo de la MDV por duplicado, en agua para el caso del ensayo <em>Unspike </em>(realce), o en una concentraci&oacute;n conocida de endotoxina, que en este caso fue 0,5 UE/mL (2<span class="Estilo2">l</span>) para el ensayo <em>Spike </em> (inhibici&oacute;n). Se analizaron adem&aacute;s controles negativos consistentes en 0,1 mL de agua libre de pir&oacute;genos. Se probaron todas las muestras con 0,1 mL de reactivo de LAL, se incubaron y se determin&oacute; su absorbancia.  </p> </blockquote> <ul>       <li>Tratamiento estad&iacute;stico de los resultados </li>     </ul>     <blockquote>       <p align="justify">Se llam&oacute; punto final al &uacute;ltimo punto en el cual se midi&oacute; un valor de absorbancia positivo. A cada punto final se le calcul&oacute; el logaritmo. Una vez obtenidos los respectivos logaritmos se hall&oacute; la sumatoria (<span class="Estilo2">&aring;</span>) y luego el promedio (<img src="/img/revistas/far/v41n1/X.jpg" width="17" height="20">). Con el valor del promedio (<img src="/img/revistas/far/v41n1/X.jpg" width="17" height="20">) se calcul&oacute; el promedio geom&eacute;trico (GM) seg&uacute;n la ecuaci&oacute;n: </p> </blockquote>     
<p align="center">GM = antilog <img src="/img/revistas/far/v41n1/X.jpg" width="17" height="20"></p>     
<blockquote>       <p align="justify">El promedio deb&iacute;a encontrarse entre <span class="Estilo2">l</span>/2 y 2/<span class="Estilo2">l</span> , para que los resultados fuesen v&aacute;lidos. </p>       <p align="justify">La desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (<span class="Estilo2">s</span><span class="subscript">n–1</span> ), tambi&eacute;n se calcul&oacute; con base en los datos obtenidos al calcular el logaritmo del punto final, seg&uacute;n la f&oacute;rmula:</p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a href="/img/revistas/far/v41n1/for05107.jpg"><img src="/img/revistas/far/v41n1/for05107.jpg" width="148" height="38" border="0"></a></p>       
<p align="justify"> donde: </p>       <p align="justify">n= <img width="2" height="2" src="../../../clip_image005.gif">n&uacute;mero de datos    <br>     X= logaritmos punto final </p> </blockquote> <h4 align="justify">Resultados </h4> <h6 align="justify">Preparaci&oacute;n de las muestras </h6>     <p align="justify">Al momento de medir el pH al producto a analizar se obtuvo un valor de 7,2, que no ocasiona interferencia con los ensayos, raz&oacute;n por la que no fue necesario realizar un ajuste de pH. </p> <h6 align="justify">Validaci&oacute;n del operario y la sensitividad del reactivo de LAL </h6>     <p align="justify">El valor de la sensitividad (<span class="Estilo2">l</span>) del reactivo dictado por el certificado entregado por el proveedor es de 0,25 UE/mL. En primera instancia se realiz&oacute; el ensayo de validaci&oacute;n de sensitividad y operario (realizado simult&aacute;neamente) con el agua producida por la empresa, la cual pasa por un sistema de osmosis reversa y ultrafiltraci&oacute;n, que demostr&oacute; no ser apta para realizar los ensayos posteriores; esto teniendo en cuenta que en los ensayos realizados los controles negativos (realizados con agua de la empresa) dan valores positivos. Por esta raz&oacute;n el agua utilizada fue agua comercial libre de pir&oacute;genos. </p>     <p align="justify">Al realizar nuevamente la validaci&oacute;n de la sensitividad y el operario con agua apir&oacute;gena, los valores de la media geom&eacute;trica y la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar fueron de 0,5 y 0 respectivamente. Los resultados de este ensayo se muestran en la figura 2. Los valores de la media geom&eacute;trica y la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar para estos ensayos, realizados simult&aacute;neamente, fueron de 0,5 y 0 respectivamente. </p>     <p align="center"><a href="/img/revistas/far/v41n1/f0205107.jpg"><img src="/img/revistas/far/v41n1/f0205107.jpg" width="214" height="149" border="0"></a></p>     
<p align="center"><strong>Fig. 2</strong>. El operario y la sensitividad se encuentran dentro de los par&aacute;metros establecidos. </p> <h6 align="justify">M&aacute;xima diluci&oacute;n v&aacute;lida </h6>     <p align="justify">Ya que la oxitetraciclina 50 mg se encuentra incluida en las monograf&iacute;as de la United States Pharmacopea, se calcul&oacute; el valor de la MDV con base en el l&iacute;mite de endotoxina encontrado en la USP XXV (0,4 UE/mg), de la siguiente manera siguiente: </p> <ul>       ]]></body>
<body><![CDATA[<li>Se expres&oacute; el l&iacute;mite de endotoxina en UE/mL: </li>     </ul>     <blockquote>       <p align="justify"> 0,4 UE/mg (l&iacute;mite de endotoxina)<span class="superscript">*</span> 50 mg/mL (potencia del producto)= 20 UE/mL (l&iacute;mite de endotoxina en UE/mL) </p> </blockquote> <ul>       <li>Se hall&oacute; la MDV utilizando el valor de la sensitividad o <span class="Estilo2">l</span>      y el l&iacute;mite anteriormente hallado: </li>     </ul>     <blockquote>       <p align="center"> <img src="/img/revistas/far/v41n1/far05107.gif" width="158" height="38"> </p> </blockquote>     
<p align="justify">La MDV para oxitetraciclina 50 mg fue 1:80, lo que significa que no debe diluirse m&aacute;s de 1:80 el producto en los ensayos preliminares. </p>     <p align="justify">Conforme a esto se prepararon diluciones de producto para las pruebas <em> Spike </em> y <em> Unspike </em> hasta la diluci&oacute;n 1:64 que es el m&uacute;ltiplo de 2 anterior a 1:80. </p> <h4 align="justify">Ensayos preliminares </h4>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Los ensayos preliminares son &uacute;tiles para determinar la diluci&oacute;n de trabajo para el producto. El primer lote de oxitetraciclina utilizado fue el 31 967 con una presentaci&oacute;n de 500 mL. </p> <h6 align="justify">Ensayo de inhibici&oacute;n (<em>Spike</em>) </h6>     <p align="justify">Se contamin&oacute; la muestra con endotoxina equivalente a 2<span class="Estilo2">l</span> (0,5 UE/mL), esper&aacute;ndose por ende, formaci&oacute;n de un gel firme en todas las diluciones. Los resultados se evidencian en la figura 3, donde se muestra inhibici&oacute;n hasta la diluci&oacute;n 1:16.</p>     <p align="center"><a href="/img/revistas/far/v41n1/f0305107.jpg"><img src="/img/revistas/far/v41n1/f0305107.jpg" width="226" height="141" border="0"></a> </p>     
<p align="center"><strong>Fig . 3</strong>. En el ensayo S<em>pike </em>(inhibici&oacute;n) se evidencia una inhibici&oacute;n total de la reacci&oacute;n hasta una diluci&oacute;n 1:16 y a partir de la diluci&oacute;n 1:32 se dan resultados positivos, mientras que en el ensayo <em>Unspike </em> (realce) se muestra un realce de la prueba en las diluciones 1:32 y 1:64. </p> <h6 align="justify">Ensayo de realce (<em>Unspike</em>) </h6>     <p align="justify">Se realizaron diluciones del producto en agua libre de pir&oacute;genos, esper&aacute;ndose resultados negativos. Tal y como se muestra en la figura 3, existe realce de la prueba ya que se form&oacute; gel en las diluciones 1:32 y 1:64. <strong></strong></p> <h4 align="justify">Discusi&oacute;n </h4>     <p align="justify">Se realizaron todos los procedimientos tal y como lo indica la USP XXV<span class="superscript">11</span> y el proveedor del producto. El m&eacute;todo utilizado para realizar el ensayo de LAL fue el de gelificaci&oacute;n, debido a que es sensible, reproducible, sencillo; se diferencia f&aacute;cilmente un resultado positivo y uno negativo, es ampliamente usado y adem&aacute;s implica menos costos que otros m&eacute;todos como el cromog&eacute;nico.<span class="superscript">12 </span></p>     <p align="justify">En lo referente a los reactivos empleados, deben tenerse en cuenta 2 par&aacute;metros como son la sensitividad del reactivo de LAL (<span class="Estilo2">l</span>) y la potencia del control de endotoxina est&aacute;ndar (CSE), que en nuestro caso fueron <span class="Estilo2">l</span> = 0,25 y 5 000 UE/mL. Estos par&aacute;metros son dictados por el certificado de calidad entregado por el proveedor, que garantiza que se est&aacute; utilizando un CSE con la potencia indicada. </p>     <p align="justify">La sensitividad (<span class="Estilo2">l</span>) del reactivo es importante porque por medio de esta se define qu&eacute; concentraci&oacute;n de endotoxina se quiere detectar, raz&oacute;n por la cual debe asegurarse que este valor (<span class="Estilo2">l</span>) sea el mismo o cercano a lo que dicta el certificado. En nuestro caso particular, el reactivo mostr&oacute; tener una sensitividad de 0,5 UE/mL, lo que significa que detecta a partir de dicha concentraci&oacute;n de endotoxina, y no a partir de 0,25 UE/mL como dictaba el certificado. Este fen&oacute;meno pudo deberse a variables como el almacenamiento, el procedimiento de rehidrataci&oacute;n o la manipulaci&oacute;n.<span class="superscript">13</span> </p>     <p align="justify">Es probable entonces que si se forma un gel viscoso en una prueba, pero este no mantiene su integridad, se encuentren endotoxinas en el producto o en lo que se est&eacute; analizando, pero en concentraciones menores a la sensitividad del reactivo. </p>     <p align="justify">La potencia del CSE es importante porque a partir de esta se realizan diluciones para valorar al reactivo, lo que puede ocasionar un cambio dram&aacute;tico en el estimado de la sensitividad si no se reconstituye de la forma adecuada. Adem&aacute;s, tambi&eacute;n se valora al operario que va a realizar las pruebas, por ende, del buen manejo del CSE tambi&eacute;n puede depender la confiabilidad de los resultados de la validaci&oacute;n del ensayo de LAL. Por estas razones es importante seguir un esquema estandarizado y preciso para mezclar y diluir el CSE, as&iacute; se asegura la reproducibilidad de los resultados.<span class="superscript">13</span> </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">En los primeros resultados se determin&oacute; que el agua de la empresa no era apta para realizar el ensayo, por cuanto los controles negativos y las &uacute;ltimas diluciones de endotoxina mostraron datos positivos. Es entonces de gran trascendencia que el agua tenga buenos par&aacute;metros fisicoqu&iacute;micos y sea apir&oacute;gena, porque esta va a ser usada para realizar diluciones de producto, ocasionando falsos resultados positivos si no cumple con estos requisitos. Por la misma raz&oacute;n es importante usar controles negativos durante la prueba que muestren que el agua no est&aacute; interfiriendo con los resultados. </p>     <p align="justify">Es preciso ejecutar ensayos en los que se valide el operario, ya que de la realizaci&oacute;n de diluciones y el dep&oacute;sito exacto de las cantidades estipuladas de cada reactivo siguiendo procedimientos estandarizados, depende el &eacute;xito, la confiabilidad y la reproducibilidad del ensayo de LAL. El operario tambi&eacute;n debe asegurar que no se est&aacute; introduciendo endotoxina durante la manipulaci&oacute;n. Por esta &uacute;ltima raz&oacute;n, es de car&aacute;cter fundamental que todos los equipos que use el operario est&eacute;n libres de endotoxina y que sean los m&aacute;s adecuados para realizar el ensayo. </p>     <p align="justify">La MDV para oxitetraciclina 50 mg/mL indic&oacute; que solo era posible diluir el producto hasta 1:80, ya que a diluciones mayores no es posible detectar el valor l&iacute;mite de endotoxina. Por este motivo se realizaron los ensayos hasta la diluci&oacute;n 1:64. Adem&aacute;s se escogi&oacute; esta diluci&oacute;n debido a que el factor de diluci&oacute;n que se utiliza es de 2, y 64 es el m&uacute;ltiplo de 2 anterior m&aacute;s cercano a 80, lo que permite mayor facilidad a la hora de hacer el ensayo. </p>     <p align="justify">En lo referente a los ensayos preliminares realizados para oxitetraciclina 50 mg, cabe anotar que en el ensayo <em>Spike </em> se denota una interferencia inhibitoria hasta la diluci&oacute;n 1:16 de producto; los resultados de las diluciones 1:32 y 1:64 resultan positivos. Se descarta el pH como inhibidor en la prueba ya que este fue tomado previo al ensayo y fue cercano a 7, aunque existen diversas variables que tambi&eacute;n pueden contribuir a que se d&eacute; este fen&oacute;meno inhibitorio. Entre estas encontramos diferentes componentes de los productos, como alcoholes, sustancias inmiscibles con el reactivo y agentes quelantes como el EDTA dis&oacute;dico, que es empleado en el laboratorio en la producci&oacute;n de oxitetraciclina 50 mg/mL, y que podr&iacute;a enlazar los cationes divalentes causando inhibici&oacute;n en la reacci&oacute;n de coagulaci&oacute;n. El porcentaje de inhibici&oacute;n es de cero a partir de la diluci&oacute;n 1:32, lo que dar&iacute;a a pensar que el componente que causa esta interferencia en el ensayo desaparece o est&aacute; presente en niveles insignificantes a partir de esta diluci&oacute;n. </p>     <p align="justify">En el ensayo <em>U</em><em>nspike</em>, que permite ver el realce de la prueba, ya sea por presencia de endotoxina o cualquier otro compuesto que induce la reacci&oacute;n enzim&aacute;tica, se observaron resultados positivos en las diluciones 1:32 y 1:64, lo que indica que el producto analizado no pod&iacute;a quedar validado por cuanto alguno de sus m&uacute;ltiples componentes como el cloruro de magnesio pod&iacute;an potenciar un resultado positivo. Seg&uacute;n <em>Tsuji </em> y <em>Steindler </em> en 1983,<span class="superscript">14</span> el magnesio incrementa la sensibilidad de LAL de diferentes formas; por ejemplo, actuando en la fase inicial del reconocimiento de la endotoxina modificando su tama&ntilde;o para una identificaci&oacute;n m&aacute;s f&aacute;cil por el LAL, o acelerando la tasa de producci&oacute;n de la reacci&oacute;n en cascada, o contribuyendo a la formaci&oacute;n de un gel m&aacute;s firme formando puentes sobre las micelas del gel. Existen otras razones por las que se pueden observar resultados positivos en la prueba <em>Unspike</em>, como la aparici&oacute;n de endotoxina en el producto, o la presencia de sustancias como los glucanos y la tripsina. Los valores negativos de las primeras diluciones en esta prueba, son coherentes con la respuesta presentada en los ensayos <em>Spike</em>, que presentan inhibici&oacute;n hasta la diluci&oacute;n 1:16, raz&oacute;n por la que no se observ&oacute; el realce de la prueba sino en las 2 &uacute;ltimas diluciones. </p>     <p align="justify">Por sugerencia del proveedor de los reactivos, y para corroborar los resultados de los ensayos preliminares, espec&iacute;ficamente en <em>Unspike</em>, se realiz&oacute; una prueba de rutina utilizando la MDV, volvi&eacute;ndose a obtener resultados positivos en cada uno de los 3 lotes muestreados. Ya que el agua de la empresa no fue apta para realizar la validaci&oacute;n del r&oacute;tulo y del operario, y a partir de esta misma se fabrica la oxitetraciclina. Se tom&oacute; la determinaci&oacute;n de asegurar la ausencia de pir&oacute;genos en el agua y el resto de la materia prima para poder realizar la validaci&oacute;n del producto terminado. </p>     <p align="justify">Esta prueba, como todos las pr&aacute;cticas por las que se realizan mediciones, permite tener controles en los procesos productivos, manifestando problemas si los hubiere y permitiendo tomar diversas decisiones sobre los procedimientos, materiales y equipos. Por esta raz&oacute;n, aunque la oxitetraciclina no haya sido validada para realizar an&aacute;lisis de LAL, y los resultados no hayan sido los esperados, estos ayudan a dilucidar todos aquellos factores en la fabricaci&oacute;n del producto que pueden interferir en cuanto a su calidad, y cambiar a favor de las necesidades que tiene la empresa, como lo es una certificaci&oacute;n; para lo que es necesario la validaci&oacute;n de las pruebas de endotoxina. Igualmente, aportan porque se puede tener un mayor control de todos los par&aacute;metros que pueden a llegar a causar falencias en el resultado de los ensayos de LAL, en oxitetraciclina o cualquier otro producto del laboratorio que requiera una valoraci&oacute;n de endotoxinas bacterianas. </p> <h4 align="justify"><span class="Estilo3">  </span><span class="Estilo6">Agradecimientos</span> </h4>     <p align="justify">Agradecemos la colaboraci&oacute;n y ayuda de Janeth Arias, e igualmente a Valerio Casta&ntilde;o y a Marcela Rodr&iacute;guez por permitir el desarrollo de este proyecto. </p>     <p align="justify"><strong>Tomado de</strong>: Perdomo 2004</p> <h4 align="left">Summary</h4> <h6 align="left">Interferences in the validation of the <em>Limulus </em> amebocyte lysate for oxytetracyline 50 mg/mL </h6>     <p align="justify">The endotoxin analysis by the <em>Limulus </em> amebocyte lysate (LAL) assay is one of the main tests in the quality control of the manufacture of injectables due to their repercussion on human and animal health. That's why the validation of the technique is required for parenteral products. The LAL gel-clot method was used to validate the detection of bacterial endotoxin in the oxytetracycline produced by a veterinary pharmaceutical laboratory of Bogota-Colombia. To this end, samples were taken at the beginning, interval and end of 3 different batches of the medicine and the test of validation was made just as it is specified in the United States Pharmacopea XXV. The results for the Maximum Valid Dilution of the product (1:80) of the Spike test showed a 100 % of inhibition until dilution 1:16, and 0 % of inhibition in the following dilutions. In the Unspike test, it is seen an enhancement of the test from dilution 1:32. The label for a reagent of LAL with sensitivity (<span class="Estilo2">l</span>) of 0.25 UE/mL and the operator who made the test made were validated. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><strong>Key words</strong>: Endotoxin, <em>Limulus </em> Amebocyte Lysate (LAL), maximum valid dilution, Spike, Unspike, validation.</p> <h4>Referencias bibliogr&aacute;ficas </h4> <ol>       <li>         <div align="justify">Todar K. Mechanisms of bacterial pathogenicity: endotoxins. University of Wisconsin-Madison Department of Bacteriology. 2002. [Cited Mar 2004]. Available from: <a href="http://textbookofbacteriology.net/endotoxin.html%20">http://textbookofbacteriology.net/endotoxin.html </a></div>   </li>       <li>         <div align="justify">Iriarte MJ, Ugarte JC. Utilidad de la determinaci&oacute;n de endotoxinas en diferentes ambientes laborales como indicador de riesgo por agentes biol&oacute;gicos MAGFRE Medicina. 2001;12(4):234-40. </div>   </li>       <li>         <div align="justify">Perdomo M R. Ensayo del lisado de amebocitos de <em>Limulus </em> (LAL). Revista Cubana Farm. 2004;38(1). [citado Oct 2004]. D isponible en: <a href="http://bvs.sld.cu/revistas/far/vol38_1_04/far08104.htm%20">http://bvs.sld.cu/revistas/far/vol38_1_04/far08104.htm </a></div>   </li>       <li>         <div align="justify">Roth R, Tobia, PS. Lipopolysaccharide-binding proteins of Limulus amebocyte yeast. Infection Immunity. 1993;61(3):1033-9. </div>   </li>       <li>         ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="justify">Speer BR. 2003. Xiphosura: Horseshoe crabs. Associates of Cape Cod Inc. Routine testing and retest. LAL Update. Jun 1997;15(2). [Cited Mar 2004]. Available from: <a href="http://www.ucmp.berkeley.edu/arthropoda/chelicerata/%20xiphosura.html%20">http://www.ucmp.berkeley.edu/arthropoda/chelicerata/ xiphosura.html </a></div>   </li>       <li>         <div align="justify">Cooper J. Validation of bacterial endotoxins test methods. LAL Times. 1999;6(2). </div>   </li>       <li>         <div align="justify">Agudelo CM. V aloraci&oacute;n de endot&oacute;xinas bacterianas en sueros antiof&iacute;dicos de origen equino, optimizaci&oacute;n de m&eacute;todos en control de calidad. Bogot&aacute;: Universidad Nacional de Colombia; 1999. </div>   </li>       <li>         <div align="justify">Chaloner-Larsson G, Anderson R, Egan A. Gu&iacute;a de la OMS sobre los requisitos de las pr&aacute;cticas adecuadas de fabricaci&oacute;n (PAF). II parte: Validaci&oacute;n. Ginebra. 1998. [citado Feb 2004] . Disponible en: <a href="http://www.who.ch/gpv-documents%20">http://www.who.ch/gpv-documents </a></div>   </li>       <li>         <div align="justify">Guidance for Human and Veterinary Drus Products &amp; Biologicals. Departament of health and human services, Public health services, Food &amp; Drug Administration, appendix E. USA. Julio, 1991. </div>   </li>       <li>         ]]></body>
<body><![CDATA[<div align="justify">United States Pharmacopeia XXV. The US Pharmacopeial Convention, Inc. Rockville: Marck Printing; 2001. </div>   </li>       <li>         <div align="justify">G&oacute;rny R, Douwes J, Versloot P, Heederik, D, Dutkiewicz J. Application of the Classic <em>Limulus </em>Test And The Quantitative Kinetic Chromogenic Lal Method For Evaluation of Endotoxin Concentration In Indoor Air. Ann Agric Environ Med. 1999;6:45-51 </div>   </li>       <li>         <div align="justify">Rastogi S, Seligmann E, Hochstein D, Dawson J, Farag, L. Statistical procedure for evaluating the sensitivity of Limulus Amoebocyte Lysate by using a Reference lysate. Appl Environ Microbiol. 1979;38(5):911-5. </div>   </li>       <li>         <div align="justify">Tsuji K, Steindler K. Use of Magnesium To Increase Sensitivity of Limulus Amoebocyte Lysate for Detection of Endotoxin. Appl Environ Microbiol. 1983;45(4):1342-50. </div>   </li>     </ol>     <p>Recibido: 11 de octubre de 2006. Aprobado: 17 de noviembre de 2006.    <br> <em>Olga Osorio Rojas </em>. Pontificia Universidad Javeriana. Sede Bogot&aacute; D.C. Carrera 7 No. 40-62. Bogot&aacute;, Colombia. Correo electr&oacute;nico: <strong><a href="mailto:osorioo@javeriana.edu.co">osorioo@javeriana.edu.co </a></strong></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><span class="Estilo1"><a href="#cargo">1</a></span><a href="#cargo"> Microbi&oacute;loga Industrial.    <br> <span class="superscript"><b>2</b></span> Master en Ciencias. Docente.</a><span class="superscript"><a name="autor"></a></span> </p>      ]]></body><back>
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