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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de la mangiferina y su interacción con hierro sobre la transición de permeabilidad mitocondrial]]></article-title>
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</front><body><![CDATA[ <div align="right">       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"> <b>EDITORIAL      </b></font> </p>       <p>&nbsp;</p>       <p>&nbsp;</p> </div>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="4"><b>Efecto de la    mangiferina y su interacci&oacute;n con hierro sobre la transici&oacute;n de    permeabilidad mitocondrial*</b></font>     <P>&nbsp;     <P><font face="Geneva, Arial, Helvetica, san-serif" size="3"><b>Effect of mangiferin    and its interaction with iron on the transition of mitochondrial permeability    </b> </font>      <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;<hr size="1" noshade>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><i>Los polifenoles    naturales son compuestos ampliamente estudiados y reconocidos principalmente    por sus propiedades antioxidantes. Se considera que junto a las vitaminas y    sus precursores, son los principales responsables de los efectos beneficiosos    de frutas, vegetales y otros alimentos sobre la salud humana.<SUP>1</SUP> Sin    embargo, el consumo excesivo ya no de sus reservorios naturales sino de los    compuestos aislados por medio de suplementos nutricionales y alimento funcionales,    ha generado un amplio debate en la comunidad cient&iacute;fica, pues numerosos    reportes confirman las propiedades pro-oxidantes y citot&oacute;xicas de estos    compuestos.<SUP>2</SUP> Se ha observado que aquellos que presentan en su estructura    una agrupaci&oacute;n catec&oacute;lica, al actuar como antioxidantes, forman    derivados quin&oacute;nicos de oxidaci&oacute;n con la capacidad de reaccionar    covalentemente con grupos sulfidrilos (SH) (proteicos o no) y afectar la funci&oacute;n    celular.<SUP>3,4</SUP> </i></font>      <P><i><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La funci&oacute;n    mitocondrial es muy sensible a modificaciones del estado redox de sus grupos    sulfidrilos debido a la carencia de actividad catalasa, la incapacidad de sintetizar    de novo glutati&oacute;n (GSH) y la no existencia de un sistema de transporte    al citoplasma del glutati&oacute;n oxidado.<SUP>5</SUP> Uno de los mecanismos    que explica la disfunci&oacute;n mitocondrial asociada con disturbios en la    homeostasis redox de los grupos SH es la transici&oacute;n de permeabilidad    mitocondrial (TPM).<SUP>6,7</SUP> Este es un proceso que ocurre debido a la    apertura de poros o canales de naturaleza proteica en la membrana interna mitocondrial,    que originan su permeabilizaci&oacute;n, disipaci&oacute;n del potencial el&eacute;ctrico    y disminuci&oacute;n de la capacidad de s&iacute;ntesis de ATP. El establecimiento    de un estr&eacute;s oxidativo en el organelo favorece la ocurrencia de cambios    conformacionales en determinadas prote&iacute;nas de las membranas mitocondriales    que producen a su vez la TPM.<SUP>6,7</SUP> </font> </i>     <P><i><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los polifenoles    naturales muestran un comportamiento complejo en relaci&oacute;n con la TPM.    Por una parte pueden inducir este proceso, aspecto que se relaciona con sus    mecanismos de citotoxicidad, pero tambi&eacute;n lo inhiben, sobre todo cuando    se asocia con un estr&eacute;s oxidativo provocado por la participaci&oacute;n    catal&iacute;tica del hierro en la formaci&oacute;n de especies reactivas de    ox&iacute;geno (ERO). </font> </i>     <P><i><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para esclarecer    los mecanismos de inducci&oacute;n/inhibici&oacute;n de la TPM por los polifenoles    catec&oacute;licos, se estudiaron los efectos de la mangiferina y su interacci&oacute;n    con hierro sobre la funci&oacute;n mitocondrial. Se utiliz&oacute; como sistema    experimental fundamental, mitocondrias aisladas del h&iacute;gado de ratas Wistar    expuestas a un da&ntilde;o oxidativo provocado por un exceso de Ca<SUP>2+</SUP>,    condici&oacute;n donde no existe participaci&oacute;n aparente del hierro en    la generaci&oacute;n de ERO; o provocado por una sobrecarga de hierro. Tambi&eacute;n    se realizaron experimentos en sistemas libres de mitocondrias para esclarecer    la interacci&oacute;n de este polifenol con hierro, a trav&eacute;s del sistema    desoxirribosa-Fe(III)/EDTA-citrato/ascorbato. Se demuestra por primera vez la    capacidad de la mangiferina de potenciar la TPM inducida por calcio, efecto    asociado con su actividad antioxidante sobre el organelo, probablemente debido    a la capacidad de sus productos de oxidaci&oacute;n de disminuir el contenido    de glutati&oacute;n (GSH) y grupos ti&oacute;licos proteicos mitocondriales.<SUP>8,9</SUP>    Sin embargo, esta xantona (mangiferina) inhibi&oacute; eficazmente la TPM inducida    por Fe(II)/citrato. Se plantea como un novedoso mecanismo de esta protecci&oacute;n    la capacidad de estimular la oxidaci&oacute;n del Fe(II) a Fe(III) y de formar    un complejo estable con este &uacute;ltimo, incapaz de ser reducido nuevamente    a Fe(II) por reductores biol&oacute;gicos potentes como el &aacute;cido asc&oacute;rbico.<SUP>10,11</SUP>    Estudios en sistemas libres de mitocondria mostraron adem&aacute;s una potente    actividad inhibitoria de la oxidaci&oacute;n de la desoxirribosa inducida por    Fe(III) y ascorbato, en presencia de diferentes ligandos como el EDTA y el citrato,    aun a concentraciones del metal que exced&iacute;an la capacidad estructural    de la mangiferina para coordinarlo. </font> </i>     <P><i><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se demostr&oacute;    que en aquellos sistemas donde participa el hierro en la formaci&oacute;n catal&iacute;tica    de ERO, la actividad antioxidante de la mangiferina se produce preferentemente    por medio de la inactivaci&oacute;n del metal, m&aacute;s que por el secuestro    directo de las ERO.<SUP>12,13</SUP> Estudios posteriores mostraron un incremento    de la actividad antioxidante de la mangiferina despu&eacute;s de interactuar    con Fe(III) (2:1), as&iacute; como un mejoramiento de la actividad citopretoctora    en hepatocitos sometidos a un da&ntilde;o oxidativo por anoxia/reoxigenaci&oacute;n.<SUP>14,15</SUP>    La interacci&oacute;n con hierro tambi&eacute;n previno la capacidad del polifenol    de inducir la TPM y de reducir las concentraciones de GSH y SH proteicos, e    inhibi&oacute; dicho proceso (TPM) provocado por inductores cl&aacute;sicos    de este. Lo que se demostr&oacute; mediante el estudio de la influencia de la    mangiferina y su complejo con Fe(III) sobre la ocurrencia de la TPM en mitocondrias    aisladas<SUP>16</SUP>. Los resultados en su conjunto permitieron proponer un    nuevo mecanismo de regulaci&oacute;n de la TPM por parte de la mangiferina y    el hierro, aplicable a otros polifenoles de estructura catec&oacute;lica.<SUP>16</SUP>    Tambi&eacute;n sugieren nuevas potencialidades terap&eacute;uticas para este    polifenol y extractos naturales que lo contienen y al mismo tiempo constituyen    un llamado de atenci&oacute;n sobre los posibles efectos t&oacute;xicos de estos    productos.</font> </i>      <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Gilberto    L&aacute;zaro Pardo Andreu y Ren&eacute; Delgado Hern&aacute;ndez    <br>   </b></font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Doctor    en Ciencias Farmac&eacute;uticas. Centro de Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica</font>     <P align="right">&nbsp;      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>REFERENCIAS    BIBLIOGR&Aacute;FICAS</b></font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1. Cao G, Russell    RM, Lischner N, Prior R. Serum antioxidant capacity is increased by consumption    of strawberries, spinach red wine or vitamin C in elderly women. J Nutr. 1998;128:2383-90.</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2. Galati G, O'Brien    PJ. Potential toxicity of flavonoids and other dietary phenolics: significance    for their chemopreventive and anticancer properties. Free Radic Biol Med. 2004;37:287-303.</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">3. Bast A, Haenen    GR. The toxicity of antioxidant and their metabolites. Environ Toxicol Pharmacol.    2002;11:251-8.</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">4. Monks TJ, Lau    SS. Pharmacology and toxicology of polyphenolic-glutathione conjugates. Annu    Rev Pharmacol Toxicol. 1998;38:229-55.</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">5. Griffith OW,    Meister A. Origin and turnover of mitochondrial glutathione. Proc Natl Acad    Sci USA. 1985;82:4668-72.</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">6. Kowaltowski    AJ, Castilho RF, Vercesi AE. Mitochondrial permeability transition and oxidative    stress. FEBS Lett. 2001;495:12-5.</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">7. Bernardi P,    Krauskopf A, Basso E, Petronilli V, Blalchy-Dyson E, Di Lisa F, et al. The mitochondrial    permeability transition from in vitro artefact to disease target. FASEB J. 2006;273:2077-99.</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">8. Pardo-Andreu    G, Delgado R, Velho JA, Curti C, Vercesi AE. Mangiferin, a natural occurring    glucosyl xanthone, increases susceptibility of rat liver mitochondria to calcium-induced    permeability transition. Arch Biochem Biophys. 2005;439:184-93.</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">9. Pardo-Andreu    GL, Junqueira-Dorta D, Delgado R, Cavalheiro RA, Santos AC, Vercesi AE, et al.    Vimang (Mangifera indica L. extract) induces permeability transition in isolated    mitochondria, closely reproducing the effect of mangiferin, Vimang's main component.    Chemico-Biol Interact. 2006;159:141-8.</font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">10. Andreu GL,    Delgado R, Velho JA, Curti C, Vercesi AE. Iron complexing activity of mangiferin,    a naturally occurring glucosylxanthone, inhibits mitochondrial lipid peroxidation    induced by Fe2+-citrate. Eur J Pharmacol. 2005;513:47-55.</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">11. Pardo-Andreu    G, Delgado R, Velho J, Inada NM, Curti C, Vercesi AE. Mangifera indica L. extract    (Vimang) inhibits Fe2+-citrate-induced lipoperoxidation in isolated rat liver    mitochondria. Pharmacol Res. 2005;51:427-35.</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">12. Pardo-Andreu    GL, Delgado R, N&uacute;&ntilde;ez-Sell&eacute;s AJ, Vercesi AE. Dual mechanism    of mangiferin protection against iron-induced damage to 2-deoxyribose and ascorbate    oxidation. Pharmacol Res. 2006;53:253-60.</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">13. Pardo Andreu    G, Delgado R, N&uacute;&ntilde;ez-Sell&eacute;s AJ, Vercesi AE. Mangifera indica    L. extract (Vimang) inhibits 2-deoxyribose damage induced by Fe (III) plus ascorbate.    Phytother Res. 2006;20:120-4.</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">14. Pardo-Andreu    G, S&aacute;nchez-Baldoqu&iacute;n C, &Aacute;vila-Gonz&aacute;lez R, Delgado    R, Naal Z, Curti C. Fe(III) improves antioxidant and cytoprotecting activities    of mangiferin. Eur J Pharmacol. 2006;547:31-6.</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">15. Pardo-Andreu    GL, S&aacute;nchez-Baldoqu&iacute;n C, &Aacute;vila-Gonz&aacute;lez R, Suzuki    Yamamoto ET, Revilla A, Uyemura SA, et al. Interaction of Vimang (Mangifera    indica L. extract) with Fe (III) improves its antioxidant and cytoprotecting    activity. Pharmacol Res. 2006;54:389-95.</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">16. Pardo-Andreu    GL, Cavalheiro RA, Naal Z, Vercesi AE, Curti C. Fe(III) shifts the mitochondria    permeability transition-eliciting capacity of mangiferin to organelle's protection.    J Pharmacol Exper Ther. 2006;320:646-53.</font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">* Trabajo presentado    en opci&oacute;n al grado cient&iacute;fico de Doctor en Ciencias Farmac&eacute;uticas,    junio 2007.</font>      ]]></body>
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