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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad antibacteriana de terpenoides y alcaloides aislados de tres plantas colombianas]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The antibacterial potential of 14 compounds obtained from three native Colombian species( [Pleurothyrium cinereum [van der Werff], Esenbeckia alata [Karst & Triana], Reputia heptaphylla [Pittier]) was assessed by agar diffusion method versus four bacterial species: Enterococcus faecalis 29212, Staphylococcus aureus 6539, Escherichia coli 25922 and Salmonella tiphymurium 14028s. The assessed compounds showed activity versus strains at different levels, maintaining a trend and selectivity according the base nucleus. The 4-methoxi-1-methyl-quinolin-2-(1H) alkaloid, other (8) was the compound with the highest activity.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <div align="right">       <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>PRODUCTOS      NATURALES </B></font></p>       <p>&nbsp;</p>       <p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="4"><b>Actividad      antibacteriana de terpenoides y alcaloides aislados de tres plantas colombianas</b></font></p>       <p align="left">&nbsp;</p>       <p align="left">&nbsp;</p>       <p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>Antibacterial      activity of terpenes and alkaloids isolated from three Colombian plants </b></font></p>       <p align="left">&nbsp;</p>       <p align="left">&nbsp;</p>       <p align="left"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Luis      Enrique Cuca Su&aacute;rez<SUP>I</SUP>; Carlos Andr&eacute;s Coy Barrera<SUP>I</SUP>;      Ericsson David Coy Barrera<SUP>II</SUP>; Jos&eacute; Manuel Lozano Moreno<SUP>III</SUP></b></font></p> </div> <B></B>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><SUP>I</SUP>Doctor    en Ciencias Qu&iacute;micas. Laboratorio de Investigaci&oacute;n en Productos    Naturales Vegetales. Facultad de Ciencias. Departamento de Qu&iacute;mica. Universidad    Nacional de Colombia. Bogot&aacute; D.C., Colombia.    <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><SUP>II</SUP>Doctor    en Ciencias Qu&iacute;micas. Facultad de Ciencias B&aacute;sicas, Universidad    Militar Nueva Granada, Campus Universitario Rio Grande. Cundinamarca, Colombia.    <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><SUP>III</SUP>Doctor    en Ciencias Farmace&uacute;ticas. Departamento de Farmacia. Facultad de Ciencias.    Universidad Nacional de Colombia. Bogot&aacute; D.C., Colombia. </font>     <P>     <P> <hr size="1" noshade>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>RESUMEN</B>    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El potencial antibacteriano    de 14 compuestos obtenidos de 3 especies nativas colombianas (<I>Pleurothyrium    cinereum</I> [van der Werff], <I>Esenbeckia alata </I>[Karst &amp; Triana],    y <I>Raputia heptaphylla</I> [Pittier]) fue evaluado mediante la inhibici&oacute;n    del crecimiento bacteriano por el m&eacute;todo de difusi&oacute;n en agar contra    4 cepas bacterianas:<I> Enterococcus faecalis </I>29212, <I>Staphylococcus aureus    </I>6539, <I>Escherichia coli </I>25922 y <I>Salmonella tiphymurium </I>14028s.    Los compuestos evaluados mostraron actividad frente a las cepas a diferentes    niveles, observando una tendencia y selectividad seg&uacute;n    el n&uacute;cleo base. El alcaloide 4-metoxi-1-metil-quinolin-2-(1H<I>)</I>-ona    (8) fue el compuesto que present&oacute; la mayor actividad. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Palabras clave:</B>    Actividad antibacteriana, Lauraceae, Rutaceae, alcaloides, terpenos. </font> <hr size="1" noshade>     <P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>ABSTRACT</B>    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">The antibacterial    potential of 14 compounds obtained from three native Colombian species( [<I>Pleurothyrium    cinereum</I> [van der Werff], <I>Esenbeckia alata</I> [Karst &amp; Triana],    <I>Reputia heptaphylla</I> [Pittier]) was assessed by agar diffusion method    versus four bacterial species: <I>Enterococcus faecalis</I> 29212, <I>Staphylococcus    aureus</I> 6539, <I>Escherichia coli</I> 25922 and <I>Salmonella tiphymurium</I>    14028s. The assessed compounds showed activity versus strains at different levels,    maintaining a trend and selectivity according the base nucleus. The 4-methoxi-1-methyl-quinolin-2-(1H)    alkaloid, other (8) was the compound with the highest activity. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Key words:</B>    Antibacterial activity, Lauraceae, Rutaceae, alkaloids, terpenes. </font> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></B>    </font></p>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En la actualidad,    el hecho que los microorganismos autopromuevan resistencia a distintos antibi&oacute;ticos    est&aacute; estrechamente relacionado a su uso indiscriminado. Por ello, se    hace necesaria la constante b&uacute;squeda de nuevas entidades qu&iacute;micas    que puedan actuar, ya sea, directamente sobre los microorganismos o por inhibici&oacute;n    de los mecanismos de resistencia de estos, sobre todo aquellas bacterias con    importancia cl&iacute;nica. Las plantas medicinales representan una fuente muy    importante para encontrar esta clase de compuestos.<SUP>1</SUP> Cerca de 1340    plantas son posibles fuentes de agentes antibacterianos de un n&uacute;mero    aproximado de 25000 a nivel mundial.<SUP>2</SUP><FONT COLOR="#ff0000"> </FONT>Como    parte de la investigaci&oacute;n enfocada a la b&uacute;squeda de sustancias    bioactivas de la flora colombiana, en el presente trabajo, un grupo de 14 compuestos    [thalicminina (1), pleurotirina (2), y acido kauren&oacute;ico (3) aislados    de <I>Pleurothyrium cinereum</I> (Lauraceae); skimmianina (4), dictamnina (5),    3-metoxi-1-metil-(1H)-indol (6), 3-(benzo[1,3]dioxo-5-il)-N-fenetilacrilamida    (7), 4-metoxi-1-metil-quinolin-2-(1H<I>)</I>-ona (8), &aacute;cido betul&iacute;nico    (9), lupeol (10), aislados de <I>Esenbeckia alata</I> (Rutaceae); y kokusaginina    (11), flindersiamina (12), N-metil-8-metoxi-flindersina (13), N-metilflindersina    (14), aislados de <I>Raputia heptaphylla</I> (Rutaceae)] fueron evaluados contra    cepas de bacterias est&aacute;ndar grampositivas: <I>Enterococcus faecalis </I>29212    y <I>Staphylococcus aureus </I>6539 y gramnegativas: <I>Escherichia coli </I>25922    y <I>Salmonella tiphymurium </I>14028s, mediante el m&eacute;todo de difusi&oacute;n    en agar, bajo modificaci&oacute;n del m&eacute;todo previamente reportado.<SUP>3</SUP>    Las cepas bacterianas fueron utilizadas como modelo de pat&oacute;genos humanos    de alta incidencia en el pa&iacute;s. </font>     <P>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">M&Eacute;TODOS    </font> </B></font> <B>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Materiales y equipos</font> </B>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los espectros RMN    <SUP>1</SUP>H, RMN <SUP>13</SUP>C y HMBC se tomaron en un espectr&oacute;metro    BRUKER Avance 400, empleando CDCl<SUB>3</SUB> como solvente; los desplazamientos    qu&iacute;micos (<font face="Symbol">d</font>) se referenciaron a TMS como patr&oacute;n    interno (<SUP>1</SUP>H 400 MHz y <SUP>13</SUP>C 100 MHz). Los espectros IR fueron    tomados con KBr en un espectr&oacute;metro Perkin-FT-IR-Pannagon-500 serie 1000.    Los espectros de masas por impacto electr&oacute;nico (EM-IE) se tomaron en    un instrumento Finnigan SSQ 710 a 70 eV. La cromatograf&iacute;a en columna    (CC) se realiz&oacute; utilizando s&iacute;lica gel (Merck, 40-63 &micro;m)    y la cromatograf&iacute;a en capa delgada (CCD) empleando cromatoplacas Merck    de s&iacute;lica gel HF<SUB>254</SUB> de 0,3 mm de espesor; los solventes utilizados    se destilaron antes de su utilizaci&oacute;n, y fueron &eacute;ter de petr&oacute;leo    (EdP), acetato de isopropilo (AcOIPr), metanol (MeOH), hexano (Hex), tolueno    (Tol) y acetato de etilo (AcOEt). </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Materiales vegetales</B>    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las muestras de    <I>Pleurothyrium cinereum</I> (van der Werff), <I>Esenbeckia alata </I>(Karst    &amp; Triana) y <I>Raputia heptaphylla</I> (Pittier) fueron colectadas en el    2005 en los municipios de Tumaco (departamento de Nari&ntilde;o), Colos&oacute;    (Departamento de Sucre) y Alb&aacute;n (Departamento de Cundinamarca), respectivamente.    Los espec&iacute;menes se identificaron por los bi&oacute;logos Ayda Luc&iacute;a    Pati&ntilde;o, Zaleth Cordero y Olimpo Garc&iacute;a, respectivamente. Una muestra    de cada esp&eacute;cimen se deposit&oacute; en el Herbario Nacional Colombiano,    del Instituto de Ciencias Naturales de la Universidad Nacional de Colombia bajo    los n&uacute;meros de colecci&oacute;n COL518334 (<I>P.cinereum</I>), COL481090    (<I>E. alata</I>) y COL511102 (<I>R. heptaphylla</I>). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Extracci&oacute;n    y aslamiento</B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los materiales    vegetales (hojas y corteza), secos y molidos, se sometieron a extracci&oacute;n    por percolaci&oacute;n con etanol al 96 % a temperatura ambiente, partiendo    de 250 g de hojas de <I>P. cinereum</I>; 750 g de hojas y 800 g de corteza<B>    </B>de <I>E. alata</I>; y 1,9 kg de hojas y 450 g de corteza de <I>R. heptaphylla</I>.    El solvente fue independientemente retirado a presi&oacute;n reducida, obteniendo    los correspondientes extractos etan&oacute;licos denominados PcH (21 g), EaH    (70 g), EaC (96 g), RhH (80 g), y RhC (35 g). Los procesos detallados de fraccionamiento,    purificaci&oacute;n e identificaci&oacute;n de los compuestos 1-3 aislados del    extracto PcH, 4 y 10 de EaH, y 12-14 de RhH han sido previamente reportados.<SUP>4-6</SUP>    Adicionalmente, el extracto EaH se someti&oacute; a fraccionamiento s&oacute;lido-l&iacute;quido    en un equipo Soxhlet, utilizando solventes en polaridad creciente: EdP (42 g),    CHCl<SUB>3</SUB> (3,4 g), AcOEt (8,5 g). Luego de purificaciones sucesivas por    CC en gel de s&iacute;lice con los extractos etan&oacute;licos, se aislaron    los compuestos 5-7<SUP>7-9</SUP> de la fracci&oacute;n soluble en CHCl<SUB>3</SUB>,    y 8-9<SUP>10,11</SUP> de la fracci&oacute;n AcOEt. El compuesto 11<SUP>7</SUP>    se obtuvo del extracto RhC, luego de realizar un procedimiento de extracci&oacute;n    &aacute;cido-base asistido por ultrasonido,<SUP>12</SUP> con posterior purificaci&oacute;n    por CC sobre gel de s&iacute;lice. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Medios para    cultivo bacteriano y otros reactivos</B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para los cultivos    y subcultivos de las cepas grampositivas se utiliz&oacute; caldo de tripticasa    de soya (TSB; Difco Laboratories, Detroit, MI, USA). En los cultivos y subcultivos    de las cepas gramnegativas se emple&oacute; base Luria Broth (LB; Gibco, Cerdanyola    del valle, Barcelona, Espa&ntilde;a). Para realizar la dispersi&oacute;n bacteriana    en los ensayos de difusi&oacute;n radial se emple&oacute; medio dispersivo bajo    en nutrientes preparado con<B> </B>10 g de agarosa de baja electro endosmosis<B>    </B>(Sigma Chem. Co, St. Louis, MO, USA), Tween-20 al 0,02 (v/v) (Merck, Darmstadt,    Alemania) y 0,3 g de TSB (tripticasa de soya<B>)</B> (Difco Laboratories, Detroit,    MI, USA) para un volumen final de un litro de soluci&oacute;n. En la detecci&oacute;n    del crecimiento bacteriano se emple&oacute; un medio nutritivo revelador en    una sobrecapa mediante la mezcla de los siguientes componentes: 20 g de agar-agar    (Difco Laboratories, Detroit, MI. USA), tween-20 al 0,02 (v/v) (Merck, Darmstadt,    Alemania) y 10 g de tripticasa de soya (TSB), <I>buffer</I> fosfato salino (PBS)    pH 7,2-7,4 se prepar&oacute; de la siguiente manera: 0,2 g KH<SUB>2</SUB>PO<SUB>4</SUB>,    32 g NaCl, 0,8 g de KCl, 4,6 de Na<SUB>2</SUB>HPO4 para un volumen de 1 L de    soluci&oacute;n. Como controles positivos se utilizaron los antibi&oacute;ticos    ampicilina (A) 50,8 mg/mL, (Binotal; Bayer&#174; Alemania), sulfato de kanamicina    (K) 10,25 mg/mL (Gibco, Cerdanyola del valle, Barcelona, Espa&ntilde;a), tetraciclina    monohidratada (T) 4,12 mg/mL (Sigma Chem. Co, St. Louis, MO, USA). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Ensayo de atividad    atibacteriana</B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La actividad antibacteriana    se evalu&oacute; frente a cepas de bacterias grampositivas: <I>Staphylococcus    aureus</I> ATCC 6538 y <I>Enterococcuss faecalis</I> ATCC 29212 y gramnegativas:    <I>Escherichia coli</I> ATCC 25922 y <I>Salmonella tiphymurium </I>ATCC 14028s,    aportadas para este estudio por el Profesor E. A. Groisman del Departamento    de Microbiolog&iacute;a Molecular de la Universidad de Washington, St. Louis,    MO, USA. La actividad antibacteriana del compuesto se evalu&oacute; por la t&eacute;cnica    de difusi&oacute;n radial adaptada de la metodolog&iacute;a previamente publicada    por <I>Lehrer</I> y otros<SUP>3</SUP> y se realiz&oacute; en la Fundaci&oacute;n    Instituto de Inmunolog&iacute;a de Colombia (FIDIC), seg&uacute;n el protocolo    reportado previamente,<SUP>10,13</SUP> obteniendo los respectivos % de inhibici&oacute;n    de crecimiento bacteriano.</font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">RESULTADOS</font></B>    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En la <a href="#f1">figura    1</a> se presentan las estructuras de los compuestos evaluados, los cuales<B>    </B>fueron elucidados mediante el uso integrado de t&eacute;cnicas espectrosc&oacute;picas    [IR, EM, RMN <SUP>1</SUP>H y <SUP>13</SUP>C (1D y 2D)], correspondientes a 2    alcaloides aporf&iacute;nicos (1-2), un diterpeno de n&uacute;cleo kaurano (3),    4 alcaloides furoquinol&iacute;nicos (4-5 y 11-12), 1 alcaloide ind&oacute;lico    (6), 1 acrilamida (7), 1 alcaloide quinol&oacute;nico (8), 2 triterpenos pentac&iacute;clicos    (9-10), y 2 alcaloides piranoquinol&oacute;nicos (13-14). </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/far/v45n2/f0112111.jpg" width="470" height="530"> <a name="f1"></a>     
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En la <a href="#f2">figura    2</a> se exponen los resultados del ensayo de inhibici&oacute;n de crecimiento    de las cepas bacterianas evaluadas por el m&eacute;todo de difusi&oacute;n en    agar. De los 14 compuestos utilizados en este ensayo, los alcaloides de tipo    oxoaporf&iacute;nico (1-2) y los triterpenos pentac&iacute;clicos (9-10) no    presentaron actividad contra las cepas evaluadas. Contrariamente, el diterpeno    (3), los alcaloides quinol&iacute;nicos (4-5, 8, y 11-14), el alcaloide ind&oacute;lico    (6) y la acrilamida (7) presentaron actividad contra las cepas bacterianas a    diferentes niveles. </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/far/v45n2/f0212111.jpg" width="471" height="452"> <a name="f2"></a>     
<P>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">DISCUSI&Oacute;N</font></B>    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los 14 compuestos    evaluados se aislaron previamente a partir de los extractos etan&oacute;licos    obtenidos de las especies <I>Pleurothyrium cinereum</I> (van der Werff) (Lauraceae),    <I>Esenbeckia alata </I>(Karst &amp; Triana) (Rutaceae) y <I>Raputia heptaphylla</I>    (Pittier) (Rutaceae),<SUP>4-6</SUP> mediante m&eacute;todos cromatogr&aacute;ficos    convencionales (CC, CCD preparativo), cuyas estructuras qu&iacute;micas (<a href="#f1">fig.    1</a>) se determinaron por el uso combinado de t&eacute;cnicas espectrosc&oacute;picas    (RMN en 1D y 2D, IR, y EM) y por comparaci&oacute;n con los datos reportados    en la literatura.<SUP>4-6</SUP> </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Varias de las especies    de las familias Lauraceae y Rutaceae se utilizaron a nivel tradicional para    el tratamiento de diversas infecciones,<SUP>1,14</SUP> lo cual ha generado un    aumento en el inter&eacute;s por determinar el(los) metabolito(s) responsable(s)    de la actividad. En el presente caso, los compuestos obtenidos de estas 3 especies    mostraron disposici&oacute;n hacia la actividad antibacteriana, aunque m&aacute;s    baja que los controles positivos utilizados, presentando una clara tendencia    en la selectividad por parte de algunos de los n&uacute;cleos. Por ejemplo,    los alcaloides quinol&iacute;nicos (5 y 12-14) presentaron una actividad preferente    con respecto a la inhibici&oacute;n de crecimiento de las cepas bacterianas    gramnegativas. Sin embargo, se puede observar que, aunque la skimmianina (4)    y la kokusaginina (11), son alcaloides furoquinol&iacute;nicos, como la dictamina    (5), la actividad fue selectiva hacia la cepa bacteriana <I>S. faecalis</I>    (grampositiva), lo cual permite sugerir que la presencia de los 2 grupos metoxilo    adicionales en el anillo quinol&iacute;nico ser&iacute;a responsable de este    hecho. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Adicionalmente,    se observa que las furanoquinolinas presentan un mayor efecto inhibitorio que    las piranoquinolinas, como es el caso de los compuestos 5 y 12-14. Para el caso    de la acrilamida (7), present&oacute; un efecto antibacteriano &uacute;nicamente    contra la cepa <I>S. aureus, </I>cuya caracter&iacute;stica de selectividad    es compartida con los compuestos 4, 6 y 11 que fueron preferentemente activos    contra <I>E. faecalis</I>, y 14 contra <I>E. coli</I>, lo cual resulta interesante    desde el punto de vista farmacol&oacute;gico y cl&iacute;nico. Caso contrario,    ocurri&oacute; con el diterpeno (3) y el alcaloide quinol&oacute;nico (8), los    cuales fueron activos tanto a cepas grampositivas como a gramnegativas, lo que    indica una tendencia de amplio espectro. Los alcaloides de tipo oxoaporf&iacute;nico    (1-2) y los triterpenos pentac&iacute;clicos (9-10) no fueron activos en las    condiciones del ensayo. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Teniendo en cuenta    estudios anteriores de actividad antibacteriana con especies de la familia Lauraceae,    se resaltan los estudios realizados a las especies del g&eacute;nero Lindera,<SUP>15,16    </SUP>donde se ha encontrado que los aceites esenciales (constituidos principalmente    por monoterpenos y sus derivados) poseen una actividad antibacteriana relevante,    destacando la actividad de la especie <I>Lindera strychnifolia</I>, cuyo aceite    esencial mostr&oacute; concentraciones m&iacute;nimas inhibitorias (CMI's) de    0,01, 6,25, y 3,13 mg/mL contra cepas de <I>S. aureus</I>, <I>E. coli</I> y    <I>S. typhimurium</I>, respectivamente.<SUP>15</SUP> As&iacute; mismo, &aacute;cidos    endi&aacute;ndricos (denominados como &aacute;cidos beilschmi&eacute;dicos-A,    -B y -C) obtenidos de la corteza de <I>Beilschmiedia anacardioides</I> (Lauraceae),    mostraron efectos antibacterianos, cuya actividad representativa fue dada por    el &aacute;cido beilschmi&eacute;dico-C, con una CMI de 22,7 &micro;M contra    <I>S. faecalis</I>.<SUP>17</SUP> Adicionalmente, alcaloides aislados de especies    de la familia Rutaceae han mostrado igualmente propiedades antibacterianas.    Un ejemplo importante se tiene para el caso de especies del g&eacute;nero <I>Toddalia</I>    (Rutaceae), espec&iacute;ficamente de la especie <I>Toddalia aculeata,</I><SUP>18</SUP><I>    </I>cuyos alcaloides del tipo 2-quinolona mostraron inhibici&oacute;n de crecimiento    bacteriano con porcentajes alrededor de 70 % contra <I>E. coli</I> a 16 mg/mL,    lo cual est&aacute; acorde con lo encontrado para los alcaloides 8, 13 y 14;    y de la especie <I>Toddalia asi&aacute;tica</I>,<SUP>19</SUP> de la cual se    obtuvo la flindersina, un alcaloide piranoquinol&oacute;nico (precursor biosint&eacute;tico    de los alcaloides 13 y 14), el cual present&oacute; MIC's muy significativos    con valores de 62,5, &gt;250, y 31,25 &micro;g/mL contra <I>S. aureus</I>, <I>E.    coli</I> y <I>E. faecalis</I>, respectivamente. Por otro lado, aunque los alcaloides    furanoquinol&iacute;nicos presentan una baja actividad, nuestros resultados    mostraron que el alcaloide skimmianina (4) present&oacute; actividad contra    <I>S. typhimurium</I> y <I>E. coli</I>, pese a que reportes previos mostraron    lo contrario.<SUP>20</SUP> </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Todos estos resultados    permiten establecer que los compuestos que presentaron actividad, servir&iacute;an    como cabezas de serie para posteriores estudios de relaci&oacute;n estructura-actividad    con el fin de realizar una optimizaci&oacute;n estructural que conlleve a la    obtenci&oacute;n de sustancias m&aacute;s activas. No obstante, se requieren    estudios adicionales enfocados al esclarecimiento de la forma de acci&oacute;n    de estos compuestos en las bacterias con la intenci&oacute;n de alcanzar conclusiones    inambiguas. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>AGRADECIMIENTOS</B>    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Agradecemos al    Departamento de Qu&iacute;mica de la Universidad Nacional de Colombia, sede    Bogot&aacute;, a la Divisi&oacute;n de Investigaciones de Bogot&aacute; (DIB)    (C&oacute;digo de Proyecto No. 8003383, de 2009), y al Instituto Francisco Jos&eacute;    de Caldas-Colciencias, por la financiaci&oacute;n de este trabajo. Agradecemos    tambi&eacute;n al Laboratorio de Resonancia Magn&eacute;tica Nuclear de la Universidad    Nacional de Colombia, por el registro de los espectros RMN. </font>     <P>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">REFERENCIAS    BIBLIOGR&Aacute;FICAS</font></B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1. Gibbons S. Anti-staphylococcal    plants. Nat Prod Rep<I>. </I>2004;21:263-77. </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2. Cowan MM. Plant    products as antimicrobial agents. Clin Microbiol Rev. 1999;12:564-82. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">3. Lehrer R, Rosenman    M, Jackson R, Einsenhauer P. Ultrasensitive assays for endogenous antimicrobial    polypeptides. J Immunol Meth<I>. </I>1991;137:167-73. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">4. Coy ED, Cuca,    LE. Nuevo alcaloide oxoaporf&iacute;nico y otros constituyentes qu&iacute;micos    aislados de <I>Pleurothyrium cinereum</I> (Lauraceae). Rev Colomb Quim. 2008;37:127-34.    </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">5. Cuca LE, Coy    CA. Metabolites Isolated from <I>Esenbeckia alata</I> (Karst &amp; Triana) Rutaceae.    Biochem Syst Ecol. 2007;35:386-8. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">6. Coy CA, Cuca    LE, Delgado LG, Mu&ntilde;oz DL, Robledo S, Granados,D. Estudio de la actividad    leishmanicida e inmunomoduladora de extractos y compuestos de origen vegetal    (especies colombianas). Biom&eacute;dica. 2010;30(Suppl. 1):75-6.<B> </B> </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">7. Bhattacharya    J, Serur LM, Cheriyan UO. Isolation of alkaloids of <I>Monnieria trifolia.</I>    J Nat Prod. 1984;47:379-81. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">8. Selvakumar N,    Redi B-Y, Azhagan AM, Kher MK, Babu JM, Iqbal J. A direct entry to the 1-methoxyindole    skeleton and to the corresponding indoles by a novel rearrangement: general    syntheses of substituted 1-methoxyindoles. Tetrahedron Lett. 2003;44:7065-9.    </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">9. Bohlman F, Zdero    C, King RM, Robinson H. Phenylethylamide aus <I>Critoniella acuminata.</I> Planta    Med. 1984;50:187-8. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">10. Cuca LE, Patarroyo    ME, Lozano JM, Delle Monache F. Biological activity of secondary metabolites    from <I>Peltostigma guatemalensis.</I> Nat Prod Res. 2009;23:370-4. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">11. Mahato S, Kundu    A. <SUP>13</SUP>C NMR spectra of pentacyclic triterpenoids a compilation and    some salient features. Phytochemistry. 1994;37:1517-75. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">12. Li H, Chen    B, Yao S. Application of ultrasonic technique for extracting chlorogenic acid    from <I>Eucommia ulmodies</I> Oliv. (<I>E. ulmodies</I>). Ultrason Sonochem.    2005;12:295-300. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">13. Cuca LE, Bernal    FA, Coy CA, Coy ED. Essential oil composition and antimicrobial activity of    fruits of <I>Iryanthera ulei</I> W. from Colombia. J Chil Chem Soc. 2009;54:363-5.    </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">14. Evans WC, Trease    WC. Pharmacognosy. 14. ed. London: W. B. Sanders Company LTD; 1996. p. 37, 253,    340, 341, 496. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">15. Yan R, Yang    Y, Zeng Y, Zou G. Cytotoxicity and antibacterial activity of <I>Lindera strychnifolia</I>    essential oils and extracts. J Ethnopharmacol. 2009;121:451-5. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">16. Comai S, Dall'Acqua    S, Grillo A, Castagliuolo I, Gurung K, Innocenti G. Essential oil of <I>Lindera    neesiana</I> fruit: Chemical analysis and its potential use in topical applications.    Fitoterapia. 2010;81:11-6. </font>    <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">17. Chouna JR,    Nkeng-Efouet PA, Lenta BN, Devkota KP, Neumann B, Stammler HG, et al. 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<body><![CDATA[<br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Aprobado:    9 de enero de 2011. </font>     <P>     <P>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Dr. <I>Ericsson    David Coy Barrera</I>. Laboratorio de Investigaci&oacute;n en Productos Naturales    Vegetales. Facultad de Ciencias. Departamento de Qu&iacute;mica. Universidad    Nacional de Colombia. Carrera 30 No. 45-03, AA 14490. Bogot&aacute; D.C., Colombia.    Correo electr&oacute;nico: <U><FONT  COLOR="#0000ff"><a href="mailto:edcoyb@unal.edu.co">edcoyb@unal.edu.co</a></FONT></U>    </font>      ]]></body><back>
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