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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Validación de un método analítico de determinación de dopamina por cromatografía líquida de alta resolución]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Centro Nacional de Investigaciones Científicas (CNIC).  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: dopamine is an endogenous hormone in the catecholamine group, which is used to simulate the sympathetic nervous system action and to raise the heart rate and the blood pressure. However, this drug has high genotoxicity and is associated with the treatment of diseases such as schizophrenia and Parkinson's disease. For this reason, the determination of dopamine in wastewaters coming from its production has been of great interest. Objective: to validate a high performance liquid chromatography method for quantification of dopamine present in aqueous solutions. Methods: the validation used a RP-18 250 x 4.6 mm 5 µm column, mobile phase: 1 % NaH2PO4 /CH3OH (90/10), 1.0 mL/min flow rate and a visible ultraviolet detector at 280 nm. Detection limits and quantitation were estimated in addition to evaluating the drug stability under the analysis conditions. Results: documented evidence showed that the method proved to be linear (r= 0.999 and r²= 0.998), accurate and precise in the range of 1 x 10-4 mol/L to 2 x 10-3 mol/L. This method was also selective against potential degradation products from ozonization. Conclusions: the studied method was linear, precise and accurate in the range of tested concentrations, allowing the dopamine determination in aqueous solutions.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p ALIGN="RIGHT"><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> </FONT><B><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">ART&#205;CULO    ORIGINAL</FONT></B></p>     <p>&nbsp; </p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b><FONT SIZE="4">Validaci&#243;n  de un m&#233;todo anal&#237;tico de determinaci&#243;n de dopamina por cromatograf&#237;a  l&#237;quida de alta resoluci&#243;n</FONT></b> </FONT></p>    <p>&nbsp;</p>    <p><FONT FACE="Verdana" SIZE="3"><B>Validation  of analytical method for dopamine determination by high-performance liquid chromatography  </B> </FONT></p>    <p>&nbsp; </p>    <p>&nbsp;</p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>Lic. Dayl&#237;n  Hern&#225;ndez Falc&#243;n, Dra.C. Asela Fern&#225;ndez Garc&#237;a, Dr.C. Oscar  Ernesto Ledea Lozano</b> </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> Centro Nacional  de Investigaciones Cient&#237;ficas (CNIC). La Habana, Cuba. </FONT></p>    <p>&nbsp;</p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;  </p><HR SIZE="1" noshade>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>RESUMEN</b> </FONT></p>    <p>  <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>Introducci&#243;n:</b> la dopamina es una hormona  end&#243;gena del grupo de las catecolaminas que se emplea como f&#225;rmaco para  simular la acci&#243;n del sistema nervioso simp&#225;tico, promueve el incremento  de la frecuencia cardiaca y la presi&#243;n arterial. Sin embargo; este medicamento  presenta un alto potencial genot&#243;xico y est&#225; asociado al tratamiento  de enfermedades como la esquizofrenia y el Mal del Parkinson. Por tal motivo ha  resultado de gran inter&#233;s su determinaci&#243;n en las aguas residuales que  emergen de su producci&#243;n. <b>    <BR>Objetivo:</b> validar un m&#233;todo para  la cuantificaci&#243;n por cromatograf&#237;a l&#237;quida de alta resoluci&#243;n  de la dopamina presente en disoluciones acuosas. <b>    <BR>M&#233;todos:</b> la validaci&#243;n  se llev&#243; a cabo empleando una columna RP-18 de 250 x 4,6 mm, 5 &#181;m; fase  m&#243;vil: NaH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> al 1 %/CH<sub>3</sub>OH (90/10); flujo:  1,0 mL/min y un detector ultravioleta visible a 280 nm. Se calcularon los l&#237;mites  de detecci&#243;n y cuantificaci&#243;n, y se evalu&#243; la estabilidad del medicamento  en las condiciones de an&#225;lisis. <b>    <BR>Resultados:</b> se obtuvieron pruebas  documentadas que demuestran que el m&#233;todo result&#243; ser lineal (r= 0,999  y r<sup>2</sup>= 0,998), exacto y preciso en el intervalo de 1 x 10<sup>-4 </sup>mol/L  a 2 x 10<sup>-3 </sup>mol/L; adem&#225;s, fue selectivo frente a los posibles  productos de degradaci&#243;n obtenidos mediante la ozonizaci&#243;n. <b>    <BR>Conclusiones:</b>  el m&#233;todo estudiado resulta lineal, preciso y exacto en el intervalo de concentraciones  analizado, lo que permite la determinaci&#243;n de dopamina en soluci&#243;n acuosa.  </FONT></p>    <p> <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>Palabras clave: </b> dopamina,  cromatograf&#237;a l&#237;quida de alta resoluci&#243;n, validaci&#243;n.</FONT></p><HR SIZE="1" noshade>    <p><FONT FACE="Verdana" SIZE="2"><B>ABSTRACT</B></FONT></p>    <P><B><FONT FACE="Verdana" SIZE="2">Introduction:</FONT></B><FONT FACE="Verdana" SIZE="2">  dopamine is an endogenous hormone in the catecholamine group, which is used to  simulate the sympathetic nervous system action and to raise the heart rate and  the blood pressure. However, this drug has high genotoxicity and is associated  with the treatment of diseases such as schizophrenia and Parkinson's disease.  For this reason, the determination of dopamine in wastewaters coming from its  production has been of great interest.     ]]></body>
<body><![CDATA[<BR><B>Objective: </B>to validate a high  performance liquid chromatography method for quantification of dopamine present  in aqueous solutions.    <BR><B>Methods:</B> the validation used a RP-18 250 x 4.6  mm 5 &micro;m column, mobile phase: 1 % NaH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> /CH<sub>3</sub>OH  (90/10), 1.0 mL/min flow rate and a visible ultraviolet detector at 280 nm. Detection  limits and quantitation were estimated in addition to evaluating the drug stability  under the analysis conditions.    <BR><B>Results:</B> documented evidence showed that  the method proved to be linear (r= 0.999 and r<sup>2</sup>= 0.998), accurate and  precise in the range of 1 x 10<sup>-4 </sup> mol/L to 2 x 10<sup>-3 </sup> mol/L.  This method was also selective against potential degradation products from ozonization.      <BR><B>Conclusions:</B> the studied method was linear, precise and accurate in  the range of tested concentrations, allowing the dopamine determination in aqueous  solutions.    <BR></FONT></P>    <P><FONT FACE="Verdana" SIZE="2"><B>Keywords:</B> dopamine,  High Performance Liquid Chromatography, validation.</FONT>    <BR></P><HR SIZE="1" noshade>    <P>&nbsp;</P>    <P>&nbsp;</P>    <P><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b><FONT SIZE="3">INTRODUCCI&#211;N</FONT></b>  </FONT></P>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> La dopamina o 2-(3,4-dihidroxifenil)  etilamina; 3-hidroxitiramina, es una hormona end&#243;gena del grupo de las catecolaminas.  Se genera en el hipot&#225;lamo y act&#250;a como neurotrasmisor e intermediario  en la s&#237;ntesis de la norepinefrina y la epinefrina en el sistema nervioso  central y periterial. Una gran variedad de enfermedades como la esquizofrenia  y el mal del Parkinson est&#225;n dadas por aberraciones en la neurotransmisi&#243;n  de la dopamina.<sup>1,2</sup> </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> Como  f&#225;rmaco, la dopamina act&#250;a como simpaticomim&#233;tico (simulando la  acci&#243;n del sistema nervioso simp&#225;tico), promoviendo el incremento de  la frecuencia cardiaca y la presi&#243;n arterial, a su vez, puede producir efectos  delet&#233;reos como taquicardia o hipertensi&#243;n arterial. Promueve el incremento  de la fuerza de la contracci&#243;n del m&#250;sculo card&#237;aco, y provoca  dilataci&#243;n de los vasos sangu&#237;neos renales.<sup>3</sup> Se ha demostrado  que la dopamina presenta un alto potencial genot&#243;xico ya que modifica y da&#241;a  el ADN.<sup>4</sup> Por tales motivos ha resultado de gran inter&#233;s su determinaci&#243;n  y estudio con diferentes m&#233;todos y condiciones y en particular en aquellas  relacionadas con el tratamiento de los residuales de la industria farmac&#233;utica  para la conservaci&#243;n de medio ambiente. </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  Entre los m&#233;todos anal&#237;ticos que han sido empleados para la determinaci&#243;n  de dopamina est&#225;n la espectroscopia infrarroja-tranformada de Furier, la  fluorescencia y el uso de un electrodo de carbono v&#237;treo modificado.<sup>5,6</sup>  En cuanto a los m&#233;todos cromatogr&#225;ficos se destaca el uso de la cromatograf&#237;a  de gases para la determinaci&#243;n de dopamina proveniente de diferentes matrices<sup>7,8</sup>  y de la cromatograf&#237;a l&#237;quida junto a la detecci&#243;n electroqu&#237;mica  o con ionizaci&#243;n electroespray y espectrometria de masas con el mismo fin.<sup>9-11</sup>  Otros m&#233;todos como la detecci&#243;n amperom&#233;trica usando un biosensor  de tirosana para la determinaci&#243;n de dopamina se han desarrollado recientemente.<sup>12</sup>  </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> El desarrollo riguroso de un m&#233;todo  anal&#237;tico lleva aparejado un proceso de validaci&#243;n que asegura la confiabilidad  de los resultados. El objetivo de este trabajo fue validar un m&#233;todo anal&#237;tico  de determinaci&#243;n de dopamina por cromatograf&#237;a l&#237;quida de alta  resoluci&#243;n (CLAR), debido al inter&#233;s de estudiar la presencia de dicho  medicamento en aguas residuales provenientes de plantas productoras de este y  su comportamiento frente a un proceso degradativo usualmente empleado en el tratamiento  de las aguas residuales. </FONT></p>    <p> <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>    <BR><FONT SIZE="3">M&#201;TODOS</FONT></b>  </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">     <BR>REACTIVOS </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  Los reactivos empleados para el desarrollo experimental fueron de grado anal&#237;tico.  Las disoluciones patr&#243;n de dopamina se prepararon con un est&#225;ndar de  referencia de los Laboratorios Farmac&#233;uticos Eduardo Reyes Canto, La Habana.  Se emple&#243; dihidrogeno fosfato de potasio (KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>) de  la BDH y metanol (CH<sub>3</sub>OH) de la Merck para cromatograf&#237;a l&#237;quida.  Los ajustes de pH se realizaron con &#225;cido fosf&#243;rico e hidr&#243;xido  de sodio, ambos de la Merck. </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">     ]]></body>
<body><![CDATA[<BR>INTRUMENTACI&#211;N  </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> El an&#225;lisis de la dopamina fue  llevado a cabo en un cromat&#243;grafo l&#237;quido de alta resoluci&#243;n equipado  con una bomba LKB 2150 (LKB, Bromma, Sweden), un inyector manual con <I>loop</I>  de 20 &#181;L (Rheodyne 7725i), un detector espectrofotom&#233;trico de longitud  de onda variable Knauer K-2501 (Knauer, Germany), una interfase Knauer, que permite  la adquisici&#243;n de los cromatogramas mediante el software Eurochrom 2000 (Knauer,  Germany). La determinaci&#243;n se realiz&#243; en fase reversa y modo isocr&#225;tico.  Se emple&#243; una mezcla KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> 0,1 mol/L-CH<sub>3</sub>OH  (90:10) como fase m&#243;vil y una columna RP 18 de 250 x 4 mm (5 &#181;m), Grace  Vydac. Se trabaj&#243; con una velocidad de flujo de 1 mL/min. La longitud de  onda para la detecci&#243;n UV se seleccion&#243; tomando la de m&#225;xima absorvancia  en un espectro UV (200-600 nm) de una disoluci&#243;n de dopamina. Se emple&#243;  un espectofot&#243;metro Cintral 101 para este fin. </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  El pH fue medido con un pHmetro-conduct&#237;metro InoLab. En todos los casos  se realizaron las determinaciones a temperatura ambiente (25 <sup>o</sup>C). </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  Se emplearon dos programas de computaci&#243;n: Microsoft<sup>&#174;</sup> Excel  2007 y el programa estad&#237;stico STATGRAPHICS Plus 5.0 para el procesamiento  estad&#237;stico de los resultados. </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">      <BR>PARTE EXPERIMENTAL </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> El procedimiento  para la determinaci&#243;n de dopamina por CLAR fue validado teniendo en cuenta  los par&#225;metros de linealidad, precisi&#243;n (repetibilidad, reproducibilidad,  robustez), exactitud y selectividad, seg&#250;n las gu&#237;as Harmonised Tripartite  Guideline (ICH) 2005, World Health Organization (WHO) 2006 y EURACHEM<a> 1998.<sup>13-15</sup></a><sub>  </sub>Adem&#225;s se evalu&#243; el rango y la sensibilidad del m&#233;todo as&#237;  como la estabilidad de la muestra en las condiciones de an&#225;lisis. </FONT></p>    <p>  <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>Linealidad: </b> los experimentos se llevaron  a cabo mediante el an&#225;lisis de disoluciones est&#225;ndar de dopamina por  triplicado (0,1; 0,5; 0,8; 1; 1,2; 1,5; 2 x 10<sup>-3</sup> mol/L) en un intervalo  de 10-200 % de la cantidad te&#243;rica declarada como 100 % (1 x 10<sup>-3</sup>  mol/L). </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> Se emple&#243; el m&#233;todo  de regresi&#243;n simple para la obtenci&#243;n de la curva de calibraci&#243;n.  Adem&#225;s se determin&#243; r coeficiente de correlaci&#243;n lineal (r), coeficiente  de determinaci&#243;n (r<SUP>2)</SUP>, intercepto (a), y pendiente (b), para el  95 % de confianza. </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> Criterios de aceptaci&#243;n:  </FONT></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> - Ecuaci&#243;n de la recta: y= bx  + a; r<FONT FACE=Symbol>&#179;</FONT> 0,99 y r<sup>2</sup><FONT FACE=Symbol>&#179;</FONT>  0,98 </FONT></P>    <P><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> - Prueba de hip&#243;tesis nula  de la ordenada en el origen a= 0. </FONT></P>    <P><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  - Prueba de la hip&#243;tesis nula de la pendiente: b= 0. Se determin&#243; a  partir de una prueba ANOVA de la regresi&#243;n, teniendo en cuenta la probabilidad  asociada al valor de la pendiente, es decir, si la p&lt;&lt; 0,05; el valor de  "b" difiere significativamente de cero. </FONT></P>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  Adem&#225;s, la desviaci&#243;n est&#225;ndar relativa de la pendiente (Sb<sub>relativa</sub>)  debe ser menor del 2 %. </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> Adicionalmente,  se determin&#243; el error absoluto medio (MAE) que es el valor medio de los residuos  y el estad&#237;stico Durbin-Watson (DW) que examina los residuos. </FONT></p>    <p>  <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>Sensibilidad: </b> la evaluaci&#243;n de este  par&#225;metro se realiz&#243; estimando el l&#237;mite de cuantificaci&#243;n  (LC) y el l&#237;mite de detecci&#243;n (LD) a partir de la curva de regresi&#243;n.  Los LD y LC fueron calculados seg&#250;n la gu&#237;a ICH como 3,3 &#8706;/ (pendiente  de la curva) y 10 &#8706;/ (pendiente de la curva), respectivamente, donde &#8706;  es la desviaci&#243;n est&#225;ndar del intercepto.<sup>13</sup> </FONT></p>    <p>  <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>Exactitud: </b> se determin&oacute; por la adici&#243;n  de cantidades conocidas de dopamina a una disoluci&#243;n y la posterior determinaci&#243;n  de la muestra. La exactitud como porcentaje del recobrado fue evaluada a diferentes  niveles de concentraci&#243;n por triplicado (0,5; 1 y 1,5 x 10<sup>-3</sup> mol/L).  Se incluy&#243; la determinaci&#243;n del recobrado medio y del coeficiente de  variaci&#243;n (CV) total. </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> Recobrado  (R)= Concentraci&#243;n recobrado real/ Concentraci&#243;n a&#241;adida x 100  </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> Criterios de aceptaci&#243;n: 97%&#8804;  R&#8804; 103 % y CV&#8804; 2,0 %. </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  Adem&#225;s, se realiz&#243; la prueba G de Cochran y la prueba de la t de Student,  siendo n-1 los grados de libertad y <FONT SIZE="3">&#945;</FONT>= 0,05. </FONT></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>Precisi&#243;n: </b> La precisi&#243;n de los  ensayos fue determinada en t&#233;rmino de repetibilidad, reproducibilidad intermedia  y robustez. </FONT></p>    <BLOCKQUOTE>    <P><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">- Repetibilidad:  se evaluaron muestras con la concentraci&#243;n equivalente al 100 %, un valor  bajo y otro alto, comprendidos dentro del intervalo de la linealidad del m&#233;todo,  50 y 150 % respectivamente. Se calcul&#243; el CV en estos tres niveles de concentraci&#243;n  y se compar&#243; con el criterio establecido. Las determinaciones fueron realizadas  por el mismo analista, por sextuplicado, en las mismas condiciones de trabajo.  Criterio de aceptaci&#243;n: CV&#8804; 1,5 %. </FONT></P>    <P><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">-  Reproducibilidad intermedia: se determin&#243; por el an&#225;lisis de muestras  de 1 x 10<sup>-3 </sup>mol/L bajo las mismas condiciones y en el mismo laboratorio,  pero d&#237;as diferentes por dos analistas diferentes. Se calcul&#243; el CV  total. Criterio de aceptaci&#243;n: CV&#8804; 2,0 %. Adem&#225;s, se realiz&#243;  la prueba F de Ficher y la t de Student, para comparar varianzas y medias, respectivamente.  </FONT></P>    <P><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">- Robustez: se analizaron muestras  de concentraci&#243;n 1 x 10<sup>-3 </sup>mol/L por triplicado y se evalu&#243;  la influencia de la variaci&#243;n de tres factores que pudieran incidir en los  resultados como son: variaci&#243;n del pH de la fase m&#243;vil en &#177; 0,2  unidades, variaci&#243;n de la composici&#243;n org&#225;nica de la fase m&#243;vil  en &#177; 2 % y el empleo de otra columna de separaci&#243;n, Lichrospher&#174;  100 RP18 (5 &#181;m), Merck. Se realizaron las pruebas estad&#237;sticas ANOVA  y Cochran. </FONT></P></BLOCKQUOTE>    <p> <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>Rango:  </b> se estableci&#243; el intervalo en que se cumplieron los criterios de linealidad,  exactitud y precisi&#243;n del m&#233;todo estudiado. </FONT></p>    <p> <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>Selectividad:  </b> Se prepar&#243; una disoluci&#243;n de DA de 1x 10<sup>-3 </sup>mol/L y la  misma fue sometida a condiciones favorables para su degradaci&#243;n, como la  oxidaci&#243;n mediante la ozonizaci&#243;n, determinando as&#237; la posibilidad  de la aparici&#243;n de interferencias en la determinaci&#243;n de dicho medicamento  por la presencia de los productos de degradaci&#243;n. </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  Criterio de aceptaci&#243;n: No deben aparecer se&#241;ales interferentes atribuidas  a los posibles productos de degradaci&#243;n, que coincidan con el tiempo de retenci&#243;n  del patr&#243;n del analito, o que est&#233;n muy cercanas a la zona de inter&#233;s  anal&#237;tico para la dopamina. </FONT></p>    <p> <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>Estabilidad  de las disoluciones patr&#243;n de dopamina: </b> teniendo en cuenta que la dopamina  se degrada por diversos factores o puede hidrolizarse, fue necesario establecer  el tiempo y la temperatura en la cual la disoluci&#243;n de dopamina es estable  para su posterior uso. Para ello, se midieron tres disoluciones patrones de 1  x 10<sup>-3 </sup>mol/L de dopamina a las 0, 4, 12, 24, 36 y 48 h despu&#233;s  de su preparaci&#243;n. El mismo procedimiento se realiz&#243; a temperatura ambiente  y manteniendo las muestras en refrigeraci&#243;n a 10<sup> o</sup>C. </FONT></p>    <p>  <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>    ]]></body>
<body><![CDATA[<BR><FONT SIZE="3">RESULTADOS </FONT> </b> </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  En la <A HREF="img/revistas/far/v48n3/f0104314.jpg">figura 1</A> (A) se muestra el espectro UV obtenido  para una muestra patr&#243;n de dopamina de concentraci&#243;n de 1x10<sup>-3  </sup>mol/L. En este se puede observar un m&#225;ximo de absorci&#243;n a 280  nm, por lo que los an&#225;lisis empleando CLAR se realizaron a esta longitud  de onda. La absorbancia fue m&#237;nima en el intervalo de los 300-600 nm. El  cromatograma obtenido para la misma muestra se presenta en la <A HREF="img/revistas/far/v48n3/f0104314.jpg">figura  1</A> (B). El tiempo de retenci&#243;n, ancho y altura del pico cromatogr&#225;fico  son adecuados para realizar la determinaci&#243;n de DA con el m&#233;todo propuesto.  </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> La curva de calibraci&#243;n obtenida  al graficar el &#225;rea integrada bajo el pico cromatogr&#225;fico contra la  concentraci&#243;n de las muestras se presenta en la <A HREF="#fig2">figura 2</A>.</FONT></p>    <p ALIGN="CENTER"><IMG src="img/revistas/far/v48n3/f0204314.jpg" WIDTH="420" HEIGHT="384"><A NAME="fig2"></A></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  Los resultados correspondientes a la validaci&#243;n de este m&#233;todo para  la linealidad, exactitud y precisi&#243;n (repetibilidad, reproducibilidad intermedia)  se resumen en la <A HREF="img/revistas/far/v48n3/t0104314.gif">tabla 1</A>, donde Fexp, texp, Ftab y  ttab se refieren al valor con respecto a F Fisher y t de Student tabulados y determinados  experimentalmente. En la <A HREF="img/revistas/far/v48n3/t0204314.gif">tabla 2</A> se muestran los resultados  obtenidos para la determinaci&#243;n de la robuztez del m&#233;todo, manteniendo  la velocidad de flujo de 1 mL/min, la longitud de onda a 280 nm y variando un  solo par&#225;metro a la vez, el cual es se&#241;alado en la segunda columna de  la <A HREF="img/revistas/far/v48n3/t0204314.gif">tabla 2</A>. </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  El cromatograma obtenido luego de la ozonizaci&#243;n se muestra en la <A HREF="#fig3">figura  3</A>, en la que se observan dos productos de degradaci&#243;n P1 y P2. A partir  de la separaci&#243;n cromatogr&#225;fica aplicada se logr&#243; una adecuada  separaci&#243;n del analito y sus productos. </FONT></p>    <p ALIGN="CENTER"><IMG src="img/revistas/far/v48n3/f0304314.jpg" WIDTH="420" HEIGHT="529"><A NAME="fig3"></A></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  Las muestras estudiadas no mostraron ninguna se&#241;al de degradibilidad o hidr&#243;lisis  durante los primeras 48 h despu&#233;s de preparada la disoluci&#243;n, por lo  que en todas las condiciones evaluadas los cromatogramas fueron similares al presentado  con anterioridad (<A HREF="img/revistas/far/v48n3/f0104314.jpg">Fig. 1</A>) (B). El valor F de la tabla  ANOVA fue de 1,49; con p= 0,31 siendo este mayor que 0,05 por lo que no hay diferencias  significativas entre los resultados obtenidos a las diferentes temperaturas durante  las primeras 48 horas. </FONT></p>    <p> <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>    <BR><FONT SIZE="3">DISCUSI&#211;N</FONT></b>  </FONT></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> El sistema tuvo un comportamiento  lineal en el intervalo de 10-200 %, ya que se cumplieron todos los criterios estad&#237;sticos  establecidos al procesar los resultados por regresi&#243;n lineal. Se obtuvo una  elevada proporcionalidad entre la respuesta obtenida y la concentraci&#243;n del  analito. Dado que la probabilidad estad&#237;stica en la tabla ANOVA es inferior  a 0,01, existe relaci&#243;n estad&#237;sticamente significativa entre &aacute;rea  y concentraci&#243;n para un nivel de confianza del 99 %.<sup>13,15</sup> </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  El estad&#237;stico r<sup>2</sup> indica que el modelo explica un 99,89% de la  variabilidad en &aacute;rea. El coeficiente de correlaci&#243;n indica una relaci&#243;n  relativamente fuerte entre las variables. El error est&#225;ndar de la estimaci&#243;n  muestra que la desviaci&#243;n t&#237;pica de los residuos es 0,85. </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  El valor medio de los residuos (MAE) es de 0,67. Dado que la probabilidad estad&#237;stica  de DW es inferior a 0,05, hay indicio de una posible correlaci&#243;n serial.  </FONT></p>    <p> <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>Sensibilidad: </b> el m&#233;todo  fue suficientemente sensible para el prop&#243;sito con que fue desarrollado,  pues es capaz de detectar una cantidad equivalente al 5,50 % de degradaci&#243;n  del principio activo. </FONT></p>    <p> <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>Exactitud:  </b> el recobrado medio no excedi&#243; el l&#237;mite de 97-103 %, por lo que  el m&#233;todo fue exacto. Adem&#225;s el CV total qued&#243; comprendido en el  intervalo de aceptaci&#243;n. La G<sub>exp</sub> fue menor que G<sub>tab</sub>  de la prueba G de Cochran, por lo que las varianzas de los tres niveles de concentraci&#243;n  evaluados fueron equivalentes y no influy&#243; el factor de concentraci&#243;n  en la exactitud del m&#233;todo. Por su parte, la prueba t de Student corrobor&#243;  la exactitud, ya que el valor obtenido fue inferior al tabulado, por lo que no  existieron diferencias estad&#237;sticamente significativas entre el recobrado  medio y el 100 %. De modo que se puede afirmar que la t&#233;cnica fue exacta  y no se afect&#243; por errores sistem&#225;ticos de forma significativa.<sup>13,16,17</sup>  </FONT></p>    <p> <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>Precisi&#243;n</b> </FONT></p>    <BLOCKQUOTE>    <P><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">-  Repetibilidad: se obtuvieron CV bajos para la repetibilidad del m&#233;todo, inferiores  en todos los casos al 1,5 % establecido como l&#237;mite y se demostr&#243; la  repetibilidad de la respuesta anal&#237;tica.<sup>13-17</sup> </FONT></P>    <P><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">-  Reproducibilidad intermedia: se obtuvo un CV inferior al criterio de aceptaci&#243;n.  Este an&#225;lisis se complement&#243; con las pruebas estad&#237;sticas de Fisher  y la t de Student donde la Fexp &lt; Ftab y Texp&lt; Ttab, por lo que no existieron  diferencias significativas entre las precisiones de los analistas, independientemente  del d&#237;a en que se efectu&oacute; el ensayo. El conjunto de dichos resultados  permiti&#243; asegurar que estos fueron homog&#233;neos, lo que ratifica la precisi&#243;n  del m&#233;todo en estudio ya que los errores aleatorios no repercutieron apreciablemente.<sup>13-17</sup>  </FONT></P>    <P><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">- Robustez: Puesto que la probabilidad  estad&#237;stica de la prueba de Fisher as&#237; como la prueba de Cochran es  superior a 0,05 en ambos casos, no hay diferencia estad&#237;sticamente significativa  entre las medias y entre las desviaciones t&#237;picas para un nivel de confianza  del 95 %, lo que demuestra la robustez del m&#233;todo. </FONT></P></BLOCKQUOTE>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>  <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>Rango: </b> cumplidas las especificaciones de  linealidad, precisi&#243;n y exactitud del m&#233;todo, queda establecido que  el intervalo anal&#237;tico es de 10-200 %, lo que verifica que el m&#233;todo  anal&#237;tico es adecuado para su aplicaci&#243;n a muestras que contienen principio  activo a concentraciones dentro del intervalo de concentraci&#243;n definido.  </FONT></p>    <p> <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b>Selectividad:</b> el procedimiento  cromatogr&#225;fico empleado garantiza la adecuada selectividad del m&#233;todo  frente a las posibles interferencias en un proceso de degradaci&#243;n. Por tanto,  el m&#233;todo puede emplearse para la determinaci&#243;n de DA frente a sus productos  de degradaci&#243;n P1 y P2.<b> </b> </FONT></p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  El m&#233;todo estudiado bajo las condiciones descritas, demostr&#243; ser lineal,  preciso y exacto, con un l&#237;mite de detecci&#243;n de 5,48 x 10<sup>-5 </sup>mol/L  y de cuantificaci&#243;n de 1,66 x 10<sup>-4 </sup>mol/L. Las muestras pueden  almacenarse a temperatura ambiente o inferior y ser analizadas en las primeras  48 h despu&#233;s de su preparaci&#243;n. La metodolog&#237;a empleada permite  la determinaci&#243;n de dopamina en disoluci&#243;n acuosa y puede ser &#250;til  para realizar estudios de degradaci&#243;n del medicamento. </FONT></p>    <p> <FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><b><FONT SIZE="3">    <BR>REFERENCIAS  BIBLIOGRAF&#205;AS</FONT></b> </FONT></p>    <!-- ref --><p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> 1.  Bahena R, Flores G, Arias JA. Dopamina: s&#237;ntesis, liberaci&#243;n y receptores  en el Sistema Nervioso Central. Rev Biomed. 2000;11(1):39-60.     </FONT></p>    <!-- ref --><p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  2. Hornykiewicz O. Dopamine (3-hidroxytyramine) and brain function. Pharmacol  Rev. 1996;18:925-64.     </FONT></p>    <!-- ref --><p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> 3. Meana JJ,  Garc&#237;a JA. Transmisi&#243;n catecolamin&#233;rgica. F&#225;rmacos agonistas  catecolamin&#233;rgicos. En: Flores J. Farmacolog&#237;a Humana. 5ta ed. Espa&#241;a:  Editoral Elsevier; 2008. p. 235-60.     </FONT></p>    <!-- ref --><p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  4. Stokes AH, Hastings TG, Vrana KE. Cytotoxic and genotoxic potential of dopamine.  Mini-Review J Neurosci Res. 1999;55:659-65.     </FONT></p>    <!-- ref --><p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  5. Jing L, Haiyan D, Wanzhi W, Shenglian L. Spectrometric investigations on the  binding of dopamine to bovine serum albumin. Physics and Chemistry of Liquids.  2012;50(4):453-64.     </FONT></p>    <!-- ref --><p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> 6. Sopis Ch, Sukon  P, Suwan Ch. Fabrication of Modified SWNTs/Glassy Carbon Electrode for the determination  of dopamine. Molecular Crystals and Liquid Crystals. 2011;538(1):292-7.     </FONT></p>    <!-- ref --><p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  7. Yar M, Ali L, Ali S, Ali A. Capillary gas chromatographic determination of  dopamine by pre-column derivatization method using trifluoroacetylacetone as Derivatizing  reagent. J Chem Soc Pak. 2010;32(6):781-5.     </FONT></p>    <!-- ref --><p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  8. Musshoff F, Schmidt P, Dettmeyer R, Priemerb F, Jachauc K, Madeaa B. Determination  of dopamine and dopamine-derived (R)-/(S)-salsolinol and norsalsolinol in various  human brain areas using solid-phase extraction and gas chromatography/ mass spectrometry.  Forensic Science International. 2000;113:359-66.    <!-- ref --> </FONT> </FONT>    <!-- ref --><p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  10. G&#322;&#243;d BK, Staczak KI. Application of RP-HPLC-ED assay to analysis  of the blood of Parkinson's disease patients. Acta Chromatog. 2005;15:276-88.      </FONT></p>    <!-- ref --><p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> 11. El-Beqqali A, Kussak A, Abdel  M. Determination of dopamine and serotonin in human urine samples utilizing microextraction  online with liquid chromatography/electrospray tandem mass. Spectrometry. J Sep  Sci. 2007;30:421-4.     </FONT></p>    <!-- ref --><p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> 12. Wang Y, Zhang  X, Chen Y, Xu H, Tan Y, Wang S. Detection of Dopamine Based on Tyrosinase-Fe<sub>3</sub>O<sub>4</sub>  Nanoparticles-chitosan Nanocomposite Biosensor. Am J Biomed Sci. 2010;2(3):209-16.      </FONT></p>    <!-- ref --><p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> 13. ICH-Harmonised tripartite Guideline.  Validation of analytical Procedures: Text and Methodology Q2(R1). 2005.     </FONT></p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  14. WHO-Technical Report Series No. 937. Appendix 4n Analytical Method Validation:  2006.     </FONT></p>    <!-- ref --><p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"> 15. EURACHEM Guide: The Fitness  for Purpose of Analytical Methods. A Laboratory Guide to Method Validation and  Related Topics. 1998.    </FONT></p>    <!-- ref --><p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">16. Bonfilio  R, Laignier EC, Benjamim M, Nunes HR. Analytical Validation of Quantitative High-Performance  Liquid Chromatographic Methods in Pharmaceutical. Analysis: A Practical Approach.  Crit Rev Analyt Chem. 2012;42(1):87-100.     </FONT></p>    <!-- ref --><P><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">  17. Kazusaki M, Ueda S, Takeuchi N, Ohgami Y. Validation of analytical procedures  by high&#8722;performance liquid chromatography for pharmaceutical analysis. Chromatography.  2012;33:(2):65-73.    </FONT></P>    <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp; </p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana">Recibido:  10 de julio de 2014.    <BR>Aprobado: 15 de agosto de 2014.</FONT></p>    <p>&nbsp;</p>    <p>&nbsp;</p>    <p><FONT SIZE="2" FACE="Verdana"><i>Dayl&#237;n  Hern&#225;ndez Falc&#243;n</i> <b>.</b> Centro Nacional de Investigaciones Cient&#237;ficas  (CNIC). Ave. 25 esq. 158, Cubanacan, Playa, La Habana, Cuba. </FONT></p>        ]]></body><back>
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<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
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<surname><![CDATA[Bahena]]></surname>
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<surname><![CDATA[Flores]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
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<surname><![CDATA[Arias]]></surname>
<given-names><![CDATA[JA]]></given-names>
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