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<journal-title><![CDATA[Revista Cubana de Obstetricia y Ginecología]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Editorial Ciencias Médicas]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Detección de Chlamydia trachomatis en muestras de exudado endocervical mediante una prueba de diagnóstico rápido y dos técnicas de reacción en cadena de la polimerasa]]></article-title>
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<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0138-600X2014000100006&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0138-600X2014000100006&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0138-600X2014000100006&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Introducción: Chlamydia trachomatis es el principal agente bacteriano que produce infecciones de transmisión sexual. Objetivo: detectar la presencia de C. trachomatis utilizando una prueba de diagnóstico rápido y compararla con la reacción en cadena de la polimerasa (RCP). Métodos: se procesaron 50 muestras de exudado endocervical, de mujeres sintomáticas del municipio 10 de Octubre. A las muestras se les aplicó la prueba Chlamy-check-1, un ensayo de RCP del gen del plásmido críptico y una RCP en tiempo real (RCP-TR) de la proteína mayor de la membrana externa (MOMP) de C. trachomatis, que fue utilizada como referencia. Se calculó, sensibilidad, especificidad, valor predictivo positivo (VPP) y negativo (VPN). Resultados: de las muestras estudiadas, 44 resultaron positivas por la prueba rápida, mientras que por la RCP del plásmido críptico solo 3 muestras (6 %) amplificaron. Al aplicar la RCP-TR, 4 muestras (8 %) se confirmaron como positivas, coincidiendo 3 por los tres métodos de diagnóstico. Al evaluar la prueba Chlamy-check-1 frente a la prueba de referencia se observó una sensibilidad de 100 %, mientras que la especificidad fue de 13 %, así como un VPP de 9,1 % y VPN de 100 %. Por el contrario, la RCP del plásmido críptico mostró una sensibilidad y especificidad de 75 y 100 %, respectivamente; un VPP de 100 % y VPN de 97,9 %. Conclusiones: se obtuvo diferencia entre los porcentajes de positividad detectados con la prueba rápida, y las técnicas de RCP. La baja especificidad de la prueba rápida indica la necesidad de realizar estudios de evaluación de este estuche diagnóstico.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Introduction: Chlamydia trachomatis is the leading bacterial agent that causes sexually transmitted infections. Objective: to detect the presence of C. trachomatis using a rapid test and compare it with the chain reaction (PCR). Methods: 50 endocervical exudates taken from symptomatic women were processed in Diez de October municipality. The samples were applied the Chlamy-check-1 test, a PCR assay of the cryptic plasmid gene and a real-time PCR (RT-PCR) of major outer membrane protein (MOMP) of C. trachomatis which was used as reference. Sensitivity, specificity, positive (PPV) and negative (NPV) predictive value were calculated. Results: 44 samples were positive by the rapid test, whereas only three samples (6%) amplified by cryptic plasmid PCR. Applying RT-PCR, 4 samples (8%) were confirmed as positive, 3 samples matched with three diagnostic methods. In assessing the Chlamy-check-1 versus the reference test, 100% of sensitivity was observed, while the specificity was 13%> Also PPV was 9.1% and NPV was 100%. On the contrary, the cryptic plasmid PCR had 75 and 100% of sensitivity and specificity respectively, 100% PPV and 97.9% NPV. Conclusions: the difference was obtained between the percentages of positivity detected with both the rapid test, and CPR techniques. The low specificity of the rapid test indicates the need for further studies to evaluate this diagnostic kit.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana" size="2"><B>GINECOLOG&Iacute;A Y SALUD REPRODUCTIVA</B></font></p>    <p><B>  </B></p><B>     <P>     <P>     <P><font face="Verdana" size="4">Detecci&oacute;n de <I>Chlamydia  trachomatis</I> en muestras de exudado endocervical mediante una prueba de diagn&oacute;stico  r&aacute;pido y dos t&eacute;cnicas de reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa  </font>     <P>     <P>     <P>     <P>&nbsp;     <P><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Detection  of Chlamydia trachomatis in endocervical swab using rapid test and two reaction  techniques polymerase chain </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana" size="2">MSc.  Dianelys Rivero Figueroa,<SUP>I</SUP> Dra. C. Vivian Kour&iacute; Cardell&aacute;,<SUP>I</SUP></font><font face="Verdana" size="2"><sup>I</sup></font><font face="Verdana" size="2">  MSc. Consuelo Correa Sierra,<SUP>I</SUP></font><font face="Verdana" size="2"><sup>I</sup></font><font face="Verdana" size="2">  Dra. C. Isabel Mart&iacute;nez Motas,<SUP>II</SUP></font><font face="Verdana" size="2"><sup>I</sup></font><font face="Verdana" size="2">  MSc. Rafael Llanes Caballero,<SUP>I</SUP></font><font face="Verdana" size="2"><sup>I</sup></font>  <font face="Verdana" size="2">MSc. Rosa Teresita Barreal Gonz&aacute;lez,</font><font face="Verdana" size="2"><sup>I</sup></font><font face="Verdana" size="2">  MSc. Edel Garc&iacute;a Vega<SUP>IV</SUP></font> </B>     <P>     <P>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2"><SUP>I  </SUP>Centro Municipal de Higiene y Epidemiolog&iacute;a de 10 de Octubre. La  Habana, Cuba.     <br> </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>II </SUP>Instituto  de Medicina Tropical &quot;Pedro Kour&iacute;&quot;. La Habana, Cuba.     <br> </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>III</SUP>  Instituto &quot;Finlay&quot;. Centro de Investigaci&oacute;n y Producci&oacute;n  de Vacunas. La Habana, Cuba.    <br> </font><font face="Verdana" size="2"><SUP>IV</SUP>  Hospital Militar Central &quot;Dr. Luis D&iacute;az Soto&quot;. La Habana, Cuba.  </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;     <P>&nbsp; <hr size="1" noshade>     <P>     <P>     <P>     <P>     <P>     <P>     <p><font face="Verdana" size="2"><B>RESUMEN  </B></font></p>    <p><font face="Verdana" size="2"><B>Introducci&oacute;n: </b><I>Chlamydia</I>  <I>trachomatis</I> es el principal agente bacteriano que produce infecciones de  transmisi&oacute;n sexual.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </font><font face="Verdana" size="2"><B>Objetivo:  </B>detectar la presencia de<B> </B><I>C. trachomatis </I>utilizando una prueba  de diagn&oacute;stico r&aacute;pido y compararla con la reacci&oacute;n en cadena  de la polimerasa (RCP). <B>    <br> M&eacute;todos: </B>se procesaron 50 muestras  de exudado endocervical, de mujeres sintom&aacute;ticas del municipio 10 de Octubre.  A las muestras se les aplic&oacute; la prueba Chlamy-check-1, un ensayo de RCP  del gen del pl&aacute;smido cr&iacute;ptico y una RCP en tiempo real (RCP-TR)  de la prote&iacute;na mayor de la membrana externa (MOMP) de <I>C. trachomatis</I>,  que fue utilizada como referencia. Se calcul&oacute;, sensibilidad, especificidad,  valor predictivo positivo (VPP) y negativo (VPN).     <br> </font><font face="Verdana" size="2"><B>Resultados:  </B>de las muestras estudiadas, 44 resultaron positivas por la prueba r&aacute;pida,  mientras que por la RCP del pl&aacute;smido cr&iacute;ptico solo 3 muestras (6  %) amplificaron. Al aplicar la RCP-TR, 4 muestras (8 %) se confirmaron como positivas,  coincidiendo 3 por los tres m&eacute;todos de diagn&oacute;stico. Al evaluar la  prueba Chlamy-check-1 frente a la prueba de referencia se observ&oacute; una sensibilidad  de 100 %, mientras que la especificidad fue de 13 %, as&iacute; como un VPP de  9,1 % y VPN de 100 %. Por el contrario, la RCP del pl&aacute;smido cr&iacute;ptico  mostr&oacute; una sensibilidad y especificidad de 75 y 100 %, respectivamente;  un VPP de 100 % y VPN de 97,9 %. <B>    <br> Conclusiones: </B>se obtuvo diferencia  entre los porcentajes de positividad detectados con la prueba r&aacute;pida, y  las t&eacute;cnicas de RCP. La baja especificidad de la prueba r&aacute;pida indica  la necesidad de realizar estudios de evaluaci&oacute;n de este estuche diagn&oacute;stico.  </font></p>    <P>     <P><font face="Verdana" size="2"><B>Palabras clave:</B> <I>Chlamydia  trachomatis</I>, Chlamy-check-1, reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa, pl&aacute;smido  cr&iacute;ptico, prote&iacute;na mayor de la membrana externa (MOMP).</font> <hr size="1" noshade>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>ABSTRACT</b></font></p>    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Introduction</b>:  Chlamydia trachomatis is the leading bacterial agent that causes sexually transmitted  infections.    <br> <b>Objective</b>: to detect the presence of C. trachomatis using  a rapid test and compare it with the chain reaction (PCR).    <br> <b>Methods</b>:  50 endocervical exudates taken from symptomatic women were processed in Diez de  October municipality. The samples were applied the Chlamy-check-1 test, a PCR  assay of the cryptic plasmid gene and a real-time PCR (RT-PCR) of major outer  membrane protein (MOMP) of C. trachomatis which was used as reference. Sensitivity,  specificity, positive (PPV) and negative (NPV) predictive value were calculated.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>  <b>Results</b>: 44 samples were positive by the rapid test, whereas only three  samples (6%) amplified by cryptic plasmid PCR. Applying RT-PCR, 4 samples (8%)  were confirmed as positive, 3 samples matched with three diagnostic methods. In  assessing the Chlamy-check-1 versus the reference test, 100% of sensitivity was  observed, while the specificity was 13%&gt; Also PPV was 9.1% and NPV was 100%.  On the contrary, the cryptic plasmid PCR had 75 and 100% of sensitivity and specificity  respectively, 100% PPV and 97.9% NPV.     <br> <b>Conclusions</b>: the difference  was obtained between the percentages of positivity detected with both the rapid  test, and CPR techniques. The low specificity of the rapid test indicates the  need for further studies to evaluate this diagnostic kit. </font></p>    <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Keywords</b>:  Chlamydia trachomatis, Chlamydia check-1, chain reaction polymerase, cryptic plasmid,  major outer membrane protein (MOMP).</font> <hr size="1" noshade>     <p><font size="2">  </font> </p>    <p>&nbsp;</p>    <P>     <P><font face="Verdana" size="3"><B>INTRODUCCI&Oacute;N</B>  </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La infecci&oacute;n por <I>Chlamydia  trachomatis</I> se considera la m&aacute;s com&uacute;n de las infecciones de  transmisi&oacute;n sexual (ITS) de origen bacteriano. La frecuencia de la infecci&oacute;n  var&iacute;a entre 2 y 25 %, en dependencia de la poblaci&oacute;n investigada  y las t&eacute;cnicas de detecci&oacute;n utilizadas.<SUP>1</SUP> </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2">En la mujer, esta infecci&oacute;n ocasiona uretritis  e infecci&oacute;n cervical. No obstante, entre 70 y 90 % de los casos tiene un  curso asintom&aacute;tico,<SUP>2</SUP> por lo que el diagn&oacute;stico tard&iacute;o  favorece el desarrollo de la enfermedad inflamatoria p&eacute;lvica (EIP) y desencadena  complicaciones como el embarazo ect&oacute;pico, el dolor p&eacute;lvico cr&oacute;nico  y la infertilidad. De ah&iacute;, la importancia de un diagn&oacute;stico preciso  y r&aacute;pido para evitar la transmisi&oacute;n de la infecci&oacute;n y la  aparici&oacute;n de posibles secuelas.<SUP>1,3 </SUP> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P><font face="Verdana" size="2">Las  t&eacute;cnicas de amplificaci&oacute;n de &aacute;cidos nucleicos (NAAT, del  ingl&eacute;s <I>Nucleic Acid Amplification Tests</I>) logran este prop&oacute;sito  y constituyen el patr&oacute;n de referencia para el diagn&oacute;stico de <I>C.  trachomatis</I> a partir de muestras uretrales, del c&eacute;rvix y la orina,  en virtud de su elevada sensibilidad y especificidad; entre ellas cobra mayor  importancia la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (RCP).<SUP>4-6</SUP>  Sin embargo, el elevado costo de estas t&eacute;cnicas dificultan su implementaci&oacute;n  para un uso masivo en los pa&iacute;ses con escasos recursos, y conduce al empleo  de t&eacute;cnicas de detecci&oacute;n de ant&iacute;genos, que a pesar de su  baja sensibilidad en comparaci&oacute;n con las pruebas moleculares, agilizan  el diagn&oacute;stico,<SUP>7</SUP> en particular las pruebas de diagn&oacute;stico  r&aacute;pido, dise&ntilde;adas para utilizar en las consultas m&eacute;dicas  como un apoyo al diagn&oacute;stico cl&iacute;nico, pues brindan un resultado  en alrededor de 20 a 30 min, a trav&eacute;s de la interpretaci&oacute;n cualitativa  del mismo.<SUP>5,8</SUP> </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">En Cuba  existen limitados reportes de estudios sobre la frecuencia de<I> </I>infecci&oacute;n  genital por <I>C. trachomatis</I>. Los primeros trabajos publicados refieren el  empleo de t&eacute;cnicas de RCP para estudiar mujeres con antecedentes de infertilidad,<SUP>9</SUP>  as&iacute; como seropositivas al VIH.<SUP>10</SUP> En estos momentos, el pa&iacute;s  cuenta con una t&eacute;cnica de diagn&oacute;stico r&aacute;pido, Chlamy-check-1  (<I>Vedalab</I>, Francia), que se distribuye y aplica en diferentes centros de  salud. Sin embargo, se conoce que estos m&eacute;todos r&aacute;pidos pueden generar  resultados falsos positivos, por lo que deben complementarse con m&eacute;todos  moleculares de referencia.<SUP>11-13</SUP> El presente estudio se realiz&oacute;  con el objetivo de detectar la presencia de<B> </B><I>C. trachomatis </I>en muestras  de exudado endocervical, utilizando esta prueba r&aacute;pida, as&iacute; como  comparar esta t&eacute;cnica con t&eacute;cnicas de RCP. </font>     <P>     <P>     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana" size="3"><B>M&Eacute;TODOS</B>  </font>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Selecci&oacute;n de las muestras cl&iacute;nicas</I>  </font>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Se procesaron 50 muestras de exudado  endocervical, de mujeres en edad reproductiva (15 a 49 a&ntilde;os) con dolor  abdominal bajo, del municipio 10 de Octubre, en el per&iacute;odo comprendido  entre los meses de abril y septiembre de 2010. </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Se  utilizaron 2 hisopos pl&aacute;sticos est&eacute;riles para la toma de la muestra  en el canal endocervical. El primer hisopo se utiliz&oacute; para la detecci&oacute;n  de <I>C. trachomatis</I>, mediante la prueba de diagn&oacute;stico r&aacute;pido  Chlamy-check-1 (<I>Vedalab</I>, Francia). Mientras que, el segundo se suspendi&oacute;  en el medio de transporte (UTM-RT, del ingl&eacute;s <I>Universal Transport Medium-Room  Temperature</I>) (<I>Copan Diagnostics Inc</I>) y se conserv&oacute; a -70 &#186;C  en el laboratorio de ITS del Instituto de Medicina Tropical &quot;Pedro Kour&iacute;&quot;  (IPK), hasta la realizaci&oacute;n de los ensayos de RCP. </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>Prueba  de diagn&oacute;stico r&aacute;pido Chlamy-check-1</I> </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Una  vez obtenidas las muestras cl&iacute;nicas, se les aplic&oacute; el test de diagn&oacute;stico  r&aacute;pido Chlamy-check-1 para la detecci&oacute;n de <I>C. trachomatis</I>,  siguiendo las indicaciones recomendadas por el fabricante<I> </I>(<I>Vedalab</I>,  Francia). Esta prueba constituye un ensayo inmunocromatogr&aacute;fico que identifica  el ant&iacute;geno de lipopolisac&aacute;rido (LPS) espec&iacute;fico del g&eacute;nero  <I>Chlamydia</I>, presente en las muestras de exudados endocervicales y uretrales,  en aproximadamente 20 min, utilizando una combinaci&oacute;n &uacute;nica de conjugado  anticuerpo monoclonal-colorante y anticuerpo en fase s&oacute;lida. </font>     <P>      <P><font face="Verdana" size="2">T&Eacute;CNICAS DE RCP PARA EL DIAGN&Oacute;STICO  DE </font><font face="Verdana" size="2"><I>C. TRACHOMATIS    <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </I></font><I>  </I> <I>     <P><font face="Verdana" size="2">Extracci&oacute;n de ADN de las muestras  cl&iacute;nicas</font> </I>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Se realiz&oacute;  la extracci&oacute;n de ADN de las 50 muestras cl&iacute;nicas mediante el estuche  comercial QIAamp DNA Mini Kit (<I>Qiagen</I>, Alemania), a partir de un volumen  de 200 &#181;L del medio de transporte UTM-RT, previa centrifugaci&oacute;n a  14 000 x <I>g</I>, a 4 &#186;C durante 1 h, luego se suspendi&oacute; el pellet  y se procedi&oacute; a la extracci&oacute;n del ADN, siguiendo las indicaciones  del fabricante. El ADN obtenido se almacen&oacute; a -20 &#186;C hasta la realizaci&oacute;n  de las RCP. </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>RCP en tiempo real  (TR) del gen de la b globina humana</I> </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Como  control interno de la extracci&oacute;n de ADN de las muestras cl&iacute;nicas  se realiz&oacute; una RCP-TR (metodolog&iacute;a TaqMan), empleando un juego de  cebadores complementarios a un fragmento del gen que codifica para la prote&iacute;na  </font><font face="Symbol" size="2">b</font><font face="Verdana" size="2"> globina  humana, seg&uacute;n el protocolo descrito por <I>Schmitz</I> y otros.<SUP>14</SUP>  Este protocolo de RCP se manej&oacute; desde el punto de vista cualitativo, considerando  que la muestra era positiva (ausencia de inhibici&oacute;n) si se observaba la  aparici&oacute;n de una curva de fluorescencia con un punto de corte (Cp) inferior  al ciclo 40. El proceso se llev&oacute; a cabo en un equipo <I>LightCycler 1.5  </I>(<I>Roche Diagnostics</I>, Alemania). </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>RCP  del gen del pl&aacute;smido cr&iacute;ptico de C. trachomatis</I> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2">Se  emple&oacute; una RCP cualitativa, complementaria a una regi&oacute;n del pl&aacute;smido  cr&iacute;ptico presente en <I>C. trachomatis</I>, que amplifica un fragmento  de 517 pares de base (pb). La reacci&oacute;n de amplificaci&oacute;n se realiz&oacute;  en un volumen total de 50 &#181;L, con una mezcla constituida por: 5 &#181;L de  tamp&oacute;n de la enzima (Tris-HCL 10 mM pH=9), 8 &#181;L de MgCl<SUB>2 </SUB>(25  mM), 0,8 &#181;L dNTPs (25 mM), 1 &#181;L (10 pmoles) de cada cebador, 0,5 &#181;L  de enzima Taq ADN polimerasa (5U/&#181;L) (<I>Roche</I>, Alemania) y agua libre  de ARNasas y ADNasas para completar el volumen final. La amplificaci&oacute;n  se realiz&oacute; en un termociclador (VWR, <I>Doppio</I>, B&eacute;lgica), siguiendo  los ciclos previamente publicados.<SUP>15</SUP> Como sustrato de la reacci&oacute;n  se emple&oacute; 5 &#181;L de ADN correspondiente a cada muestra cl&iacute;nica.  Se incluy&oacute; adem&aacute;s, un control negativo que conten&iacute;a agua  libre de ARNasas y ADNasas. </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Una vez  obtenido el producto de la RCP se observ&oacute; en un gel de agarosa al 2 %.  Las bandas de ADN amplificadas se visualizaron mediante un transiluminador de  luz ultravioleta (<I>Uvitec</I>, Francia) y se definieron sus tama&ntilde;os,  empleando un marcador de peso molecular (MPM) de 100 pb (ADN Ladder, <I>Promega</I>,  EUA). </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2"><I>RCP-TR cuantitativa del  gen de la MOMP de C. trachomatis</I> </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Se  utiliz&oacute; como prueba confirmatoria, una RCP-TR comercial que amplifica,  detecta y cuantifica un fragmento de 136 pb del gen que codifica para la MOMP  (del ingl&eacute;s <I>Major Outer Membrane Protein</I>) de <I>C. trachomatis</I>,  empleando el estuche comercial LightMix Kit <I>Chlamydia trachomatis </I>(<I>TIB  MOLBIOL</I>, Alemania), que contiene una mezcla de cebadores y probe de hibridaci&oacute;n  (Light Mix), un control interno (IC Mix) y un est&aacute;ndar de <I>C. trachomatis</I>  constituido por un fragmento de ADN del gen que codifica para la MOMP, clonado  y purificado, con una concentraci&oacute;n en el rango de 10<SUP>6</SUP> copias/&#181;L-10  copias/&#181;L. Este ensayo tiene un l&iacute;mite de detecci&oacute;n de 10 copias/&#181;L  de <I>C. trachomatis</I>. </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">La mezcla  de reacci&oacute;n se realiz&oacute; en un volumen de 20 &#181;L, compuestos por:  2 &#181;L de Master Mix (FastStar DNA Master HybProbe, <I>Roche</I>, Alemania),  2,4 &#181;L de MgCl<SUB>2 </SUB>(25 mM),<SUB> </SUB>2 &#181;L de Light Mix, 2  &#181;L de IC Mix, 6,6 &#181;L de agua y 5 &#181;L de ADN extra&iacute;do de cada  muestra cl&iacute;nica, siguiendo las indicaciones de la casa comercial <I>TIB  MOLBIOL</I>. La amplificaci&oacute;n se realiz&oacute; en un equipo <I>LightCycler  1.5 </I>(<I>Roche Diagnostics</I>, Alemania), siguiendo los par&aacute;metros  de ciclaje recomendados por la casa comercial. El an&aacute;lisis y la cuantificaci&oacute;n  de las muestras se realizaron de manera autom&aacute;tica, empleando el m&eacute;todo  de la derivaci&oacute;n secundaria m&aacute;xima, versi&oacute;n 3.3 del programa  del <I>LightCycler 1.5</I>. </font>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="2"><I>An&aacute;lisis  estad&iacute;stico</I> </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Se calcul&oacute;  sensibilidad, especificidad, valor predictivo positivo (VPP) y valor predictivo  negativo (VPN) de la prueba r&aacute;pida (Chlamy-check-1) y de la RCP de pl&aacute;smido  cr&iacute;ptico, para ello se utiliz&oacute; el programa estad&iacute;stico Epidat  versi&oacute;n 4.0 para Windows. Tambi&eacute;n se realiz&oacute; c&aacute;lculo  de frecuencia expresada en porcentaje para la presentaci&oacute;n de los resultados.  </font>     <P>&nbsp;     <P>     <P>     <P><font face="Verdana" size="3"><B>RESULTADOS</B></font><font face="Verdana" size="2">  </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Se obtuvieron 44 (88 %) muestras positivas  y 6 (12 %) negativas a<I> C. trachomatis</I> mediante la prueba r&aacute;pida  Chlamy-check-1, fueron v&aacute;lidos todos los resultados. </font>     <P><font face="Verdana" size="2">Al  determinar la calidad del ADN extra&iacute;do de las muestras cl&iacute;nicas,  se comprob&oacute; que todos los ADN generaron curvas de amplificaci&oacute;n  (indicador de la producci&oacute;n de amplicones), con Cp entre los ciclos 22-28,  lo que indic&oacute; que no exist&iacute;a ninguna muestra inhibida y que ten&iacute;an  cantidades suficientes de ADN por lo que eran &uacute;tiles para aplicar los ensayos  de RCP (<a href="#f1">Fig. 1</a>). </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/gin/v40n1/f0106114.jpg" width="580" height="612"><a name="f1"></a>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Al aplicar el ensayo de RCP del pl&aacute;smido  cr&iacute;ptico a los 50 ADN extra&iacute;dos, solo 3 muestras amplificaron (n&uacute;meros  13, 33 y 44, 6 %) (<a href="#f2">Fig. 2</a>). </font>     <P align="center"><img src="/img/revistas/gin/v40n1/f0206114.jpg" width="420" height="236"><a name="f2"></a>      <P><font face="Verdana" size="2">De igual manera, mediante la RCP-TR de MOMP (<a href="#f1">Fig.  1</a>), se confirmaron 4 muestras positivas (n&uacute;meros 13, 33, 44 y 34, 8  %), mostrando niveles variables de carga bacteriana: <I>muestra 13</I>: 1,4 x  10<SUP>2</SUP> copias/&#181;L, <I>muestra 33</I>: 8,4 x 10<SUP>2</SUP> copias/&#181;L,  <I>muestra 44</I>: 8,5 x 10<SUP>3</SUP> copias/&#181;L y<I> muestra 34</I>: 8,5  x 10<SUP>2 </SUP>copias/&#181;L, coincidiendo 3 de estas muestras como positivas  por las 3 t&eacute;cnicas diagn&oacute;sticas utilizadas. </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Al  evaluar el comportamiento de la prueba Chlamy-check-1 frente a la RCP-TR de MOMP  (usada como prueba de referencia) se observaron valores de sensibilidad de 100  %, mientras que la especificidad fue de solo de 13 %, as&iacute; como un VPP de  9,1 % y VPN de 100 %. Por el contrario, la RCP del pl&aacute;smido cr&iacute;ptico  mostr&oacute; valores de sensibilidad y especificidad de 75 y 100 %, respectivamente;  as&iacute; como un VPP de 100 % y VPN de 97,9 %. </font>     <P>&nbsp;     <P>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana" size="3"><B>DISCUSI&Oacute;N</B>  </font>     <P><font face="Verdana" size="2">La infecci&oacute;n genital por <I>C.  trachomatis</I> constituye un importante problema de salud p&uacute;blica mundial.<SUP>3</SUP>  En Cuba se desconoce su frecuencia pues debido a las caracter&iacute;sticas del  microorganismo (intracelular obligado), resulta dif&iacute;cil y costoso contar  con m&eacute;todos de elevada sensibilidad y especificidad. Por esta raz&oacute;n,  existe una escasa cobertura diagn&oacute;stica en el pa&iacute;s y se cuenta con  pocos estudios en mujeres con mayor riesgo.<SUP>9,10,16</SUP> </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Sin  embargo, en los &uacute;ltimos a&ntilde;os Cuba ha adquirido pruebas r&aacute;pidas  que, si bien constituyen una alternativa diagn&oacute;stica para el tamizaje de  la infecci&oacute;n, requieren de su complementaci&oacute;n con pruebas de referencia.<SUP>11-13</SUP>  </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">En correspondencia con estos antecedentes,  se decidi&oacute; realizar el presente estudio donde se incluyeron mujeres con  s&iacute;ntomas asociados a la infecci&oacute;n por <I>C. trachomatis</I>. Al  aplicar la prueba r&aacute;pida Chlamy-check-1 en 50 muestras de exudado endocervical,  el porcentaje de positividad obtenido fue superior al reportado por <I>Ortiz</I>  y otros (45,2 %), en el a&ntilde;o 2010, al emplear el mismo estuche diagn&oacute;stico  en muestras similares de mujeres inf&eacute;rtiles y abortadoras habituales atendidas  en el Hospital Ginecobst&eacute;trico &quot;Ram&oacute;n Gonz&aacute;lez Coro&quot;.<SUP>17</SUP>  Sin embargo, en pa&iacute;ses como el L&iacute;bano, al aplicar el mismo <I>test  </I>diagn&oacute;stico a 557 muestras de mujeres de una comunidad rural, no detectaron  casos positivos,<SUP>18</SUP> resultado que difiere con la presente investigaci&oacute;n  y que pudiera estar justificado por las normas sociales que rigen dicho territorio,  pues seg&uacute;n expresan los autores, es una comunidad religiosa, donde las  relaciones sexuales prematrimoniales y extramatrimoniales resultan en sanciones  sociales y persecuci&oacute;n. Del mismo modo, un estudio en Alemania se&ntilde;ala,  en mujeres con inflamaci&oacute;n p&eacute;lvica aguda y cr&oacute;nica, porcentajes  de positividad de 7,8 y 10,6 %, respectivamente.<SUP>19</SUP> En estos trabajos,  a pesar de que se eval&uacute;an un mayor n&uacute;mero de muestras, se detectan  porcentajes de positividad inferiores al que se identifica en el presente estudio.  </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">La diferencia reportada entre la  presente investigaci&oacute;n y los reportes anteriores pudiera estar relacionada  con la presencia de otros microorganismos, que podr&iacute;an ocasionar resultados  falsos positivos debido a que la mayor&iacute;a de las pruebas de diagn&oacute;stico  r&aacute;pido dise&ntilde;adas para la detecci&oacute;n de <I>C. trachomatis</I>  tienen un principio similar al de los ELISA (del ingl&eacute;s <I>Enzyme-Linked  Inmunoabsorbent Assay</I>), pues utilizan anticuerpos dirigidos contra el LPS  del g&eacute;nero <I>Chlamydia</I>, los que son similares a los de otras bacterias  gramnegativas.<SUP>8,20</SUP> Vale la pena se&ntilde;alar que, a pesar de haber  realizado una minuciosa b&uacute;squeda de citas bibliogr&aacute;ficas sobre la  aplicaci&oacute;n de este ensayo (Chlamy-check-1), esta discusi&oacute;n incluy&oacute;  los &uacute;nicos 3 trabajos recogidos en la literatura m&eacute;dica consultada.  </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Como las NAAT constituyen el m&eacute;todo  de referencia para el diagn&oacute;stico de<I> C. trachomatis</I>, en esta investigaci&oacute;n  se utilizaron 2 de estas t&eacute;cnicas, una RCP de pl&aacute;smido cr&iacute;ptico  y una RCP-TR comercial que fue utilizada como prueba de referencia. Con ambas  pruebas moleculares se obtuvieron resultados equivalentes y similares a los reportados  en estudios previos realizados en Cuba y en el mundo. <I>Kour&iacute; </I>y otros,  en el a&ntilde;o 2002, al estudiar por una RCP de MOMP, 60 mujeres seropositivas  al VIH y 60 seronegativas, obtienen una positividad de 10 y 6,6 %, respectivamente.<SUP>10</SUP>  As&iacute; como <I>Frontela</I> y otros (15,3 %), al evaluar 59 mujeres que ten&iacute;an  antecedentes de infertilidad mediante una t&eacute;cnica de RCP de pl&aacute;smido  cr&iacute;ptico.<SUP>16</SUP> Posteriormente, estos mismos autores reportan en  224 mujeres, en edad reproductiva, 6,9 % de positividad.<SUP>21</SUP> Por otro  lado, en la India, varios autores refieren porcentajes de positividad similares:  <I>Sood</I> y otros,<B> </B>utilizando una RCP de pl&aacute;smido cr&iacute;ptico  (9,3 %), as&iacute; como <I>Dwibedi</I> y otros, y <I>Pramanik</I> y otros,<B>  </B>empleando una<B> </B>RCP de MOMP (7 y 12,3 %), respectivamente.<SUP>22-24</SUP>  A su vez, la aplicaci&oacute;n previa de un sistema de control interno del material  gen&eacute;tico permiti&oacute; determinar la integridad de las muestras cl&iacute;nicas  procesadas y por tanto brind&oacute; una mayor confiabilidad de los resultados,  como fue referido previamente.<SUP>25</SUP> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P><font face="Verdana" size="2">A&uacute;n  m&aacute;s, la baja especificidad observada con la prueba r&aacute;pida (13 %),  al compararla con la prueba de referencia, reafirma lo planteado anteriormente  en relaci&oacute;n con que el ensayo Chlamy-check-1 est&aacute; dise&ntilde;ado  para la detecci&oacute;n del LPS de la pared bacteriana de <I>C. trachomatis</I>,  lo que constituye una de sus principales desventajas, pues podr&iacute;a estar  sujeto a reacciones cruzadas con los LPS presentes en otros microorganismos, fundamentalmente  en las bacterias gramnegativas e incluso, en otras especies dentro del propio  g&eacute;nero [8, 20]. La ocurrencia de resultados falsos positivos en el diagn&oacute;stico  de esta infecci&oacute;n, como en toda ITS, causa incertidumbre y discrepancia  entre los miembros de la pareja, as&iacute; como, se hace un uso indiscriminado  de los antibi&oacute;ticos y se contribuye al desarrollo de la resistencia antimicrobiana  con una implicaci&oacute;n econ&oacute;mica por gastos innecesarios en medicamentos.  </font>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2">Resulta de gran importancia contar  con m&eacute;todos diagn&oacute;sticos que proporcionen resultados confiables,  y que a su vez fortalezcan el diagn&oacute;stico microbiol&oacute;gico de la infecci&oacute;n  genital por <I>C. trachomatis</I> en Cuba, ya que esta infecci&oacute;n se asocia  a complicaciones que afectan la salud reproductiva de la mujer. En el presente  estudio se observaron diferencias entre los porcentajes de positividad detectados  con la prueba r&aacute;pida, y las t&eacute;cnicas de detecci&oacute;n de &aacute;cidos  nucleicos. Teniendo en consideraci&oacute;n la baja especificidad detectada con  la prueba r&aacute;pida (Chlamy-check-1), al compararla con la prueba de referencia  utilizada, sumado al hecho de que existen pocas investigaciones a nivel mundial  que emplean esta t&eacute;cnica, recomendamos que se realicen en el pa&iacute;s  estudios que eval&uacute;en la validez de esta prueba para el diagn&oacute;stico  de <I>C. trachomatis, </I>utilizando un mayor n&uacute;mero de muestras, ya que  esta es la principal limitaci&oacute;n de la presente investigaci&oacute;n. </font>      <P>&nbsp;     <P>     <P>     <P>     <P>     <P><font face="Verdana" size="2"><B><font size="3">REFERENCIAS  BIBLIOGR&Aacute;FICAS</font></B> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">1.  Gallo L, Entrocassi C, Corominas AI, Rodr&iacute;guez M. Distribution study of  <I>Chlamydia trachomatis</I> genotypes in symptomatic patients in Buenos Aires,  Argentina: association between genotype E and neonatal conjunctivitis. BMC Research  Notes. 2010;3:34.     </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">2. Arr&aacute;iz  N, Ginestre M, Castellano M, Perozo A, Urdaneta B. Detecci&oacute;n de <I>Chlamydia  trachomatis</I> en muestras de hisopado endocervical por inmunofluorescencia directa  y reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa. Rev Soc Ven Microbiol. 2006;26(1):14-8.      </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">3. Corbeto EL, Lugo R, Martr&oacute;  E, Falguera G, Ros R, Avecilla A, et al. Prevalencia de la infecci&oacute;n por  <I>C. trachomatis</I> y <I>N. gonhorroeae</I> y determinantes para su adquisici&oacute;n  en j&oacute;venes y adultos-j&oacute;venes en Catalu&ntilde;a. Enferm Infecc Microbiol  Clin. 2011;29(2):96-101.     </font>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">4. V&aacute;zquez  F, Lepe JA, Otero L, Blanco MA, Aznar J. Diagn&oacute;stico microbiol&oacute;gico  de las infecciones de transmisi&oacute;n sexual. Enferm Infecc Microbiol Clin.  2008;26(1):32-7.     </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">5. Mart&iacute;nez  MA. Diagn&oacute;stico microbiol&oacute;gico de las infecciones de transmisi&oacute;n  sexual (ITS). Rev Chil Infect. 2009;26(6):529-39.     </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">6.  Sachdeva P, Lal A, Sachdev D, Ali M, Mittal A, Saluja D. Comparison of an in-house  PCR assay, direct fluorescence assay and the Roche AMPLICOR <I>Chlamydia</I> <I>trachomatis</I>  kit for detection of <I>C. trachomatis</I>. J Med Microbiol. 2009;58:867-73.     </font>      <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">7. Mart&iacute;nez MA. Diagn&oacute;stico  microbiol&oacute;gico de <I>Chlamydia trachomatis</I>: </font><font face="Verdana" size="2">Estado  actual de un problema. Rev Chil Infect. 2001;18(4):275-84.     </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">8.  Centers for Disease Control and Prevention. Screening Tests to Detect Chlamydia  trachomatis and Neisseria gonorrhoeae Infections. Morbidity and Mortality Weekly  Report. MMWR. 2002;51(RR-15):1-40.     </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">9.  Montenegro AG. Diagn&oacute;stico de infecciones genitales por <I>Chlamydia trachomatis</I>:  utilidad de la Reacci&oacute;n en Cadena de la Polimerasa (RCP) y el aislamiento  en cultivos celulares [tesis para optar por el t&iacute;tulo de Especialista de  Primer Grado en Microbiolog&iacute;a]. Ciudad de la Habana: IPK; 1993.     </font>      <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">10. Kour&iacute; V, Cartaya J, Rodr&iacute;guez  MF, Mune M, Soto Y, Resik S, et al. Prevalence of <I>Chlamydia trachomatis </I>in  Human immunodeficiency Virus-infected women in Cuba. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2002;13(2):52-5.      </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">11. Van Dommelen L, Van Tiel FH,  Ouburg S, Brouwers EEHG, Terporten PHW, Savelkoul PHM, et al. Alarmingly poor  performance in <I>Chlamydia trachomatis</I> point-of-care testing. Sex Transm  Infect. 2010;86:355-9.     </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">12. Bandea  C, Koumans EH, Sawyer MK, Dover J, O'Connor A, Papp JR, et al. Evaluation of the  Rapid BioStar Optical Immunoassay for Detection of Chlamydia trachomatis in Adolescent  Women. J Clin Microbiol. 2009;47(1):215-6.     </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">13.  Yin YP, Peeling RW, Chen XS, Gong KL, Zhou H, Gu WM, et al. Clinic-based evaluation  of Clearview <I>Chlamydia </I>MF for detection of <I>Chlamydia trachomatis</I>  in vaginal and cervical specimens from women at high risk in China. Sex Transm  Infect. 2006;82 Suppl 5:33-7.     </font>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">14.  Schmitz M, Scheungraber C, Herrmanna J, Teller K, Gajdab M, Runnebauma IB, et  al. Quantitative multiplex PCR assay for the detection of the seven clinically  most relevant high-risk HPV types. J Clin Virol. 2009;44:302-7.     </font>     <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">15.  Claas HCJ, Wagenvoort JHT, Niesters HGM, Tio TT, Van Rijsoort-Vos JH, Quint WGV.  Diagnostic Value of the Polymerase Chain Reaction for <I>Chlamydia </I>Detection  as Determined in a Follow-Up Study. J Clin Microbiol. 1991;29(1):42-5.     </font>      <P>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">16. Frontela M, Amores I, Yepe S, Kour&iacute;  V, Fereira R, Mallea L. Detecci&oacute;n de <I>Chlamydia trachomatis</I> en muestras  de exudado endocervical por la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa. Rev  Cubana Endocrinol. 2002;13(2):135-43.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana" size="2">17.  Ortiz CE, Hechavarr&iacute;a CE, Ley M, &Aacute;lvarez G, Hern&aacute;ndez Y.  Estudio de <I>Chlamydia trachomatis</I>, <I>Ureaplasma urealyticum</I> y <I>Mycoplasma  hominis</I> en pacientes inf&eacute;rtiles y abortadoras habituales. Rev Cubana  de Obstet Ginecol. 2010;36(4)573-84.     </font>     ]]></body>
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