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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A simple cytochemical and quantitative method was developed to evaluate the adherence in polymorphonucelar neutrophil leucocytes. The cells were isolated by density gradient from peripheral blood of 47 volunteer donors that went to the Transfusions Service of "Dr. Luis Díaz Soto" Higher Institute of Military Medicine. The adhesive quality was amplified by the determination of total proteins by the method of Lowry, after incubating the phagocytes in plastic culture plates of 24 pits. The highest number of values was found between 6 and 10 mg/dL, which accounted for 70 % of the evaluated subjects. The combination of the culture plate as adhesion surface and the determination of proteins as a way to amplify this quality, is a novelty of the proposed method.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p>Instituto Superior de Medicina Militar &quot;Dr. Luis D&iacute;az Soto&quot;</p><h2>M&eacute;todo  citoqu&iacute;mico para evaluar adherencia en leucocitos polimorfonucleares neutr&oacute;filos</h2>    <p><a href="#cargo"><i>Lic.  Tatiana V&aacute;zquez Gonz&aacute;lez,<span class="superscript">1</span> Lic.  Jos&eacute; de la Paz Naranjo,<span class="superscript">2</span> Lic. Adriana  Sin Mayor,<span class="superscript">3</span> Dra. Edelis Castellanos Puerto<span class="superscript">4</span>  y T&eacute;c. Ana Rojas Moya<span class="superscript">5</span></i></a><i><span class="superscript"><a name="autor"></a></span></i></p><h4>Resumen</h4>    <p>Se  desarroll&oacute; un m&eacute;todo citoqu&iacute;mico cuantitativo y sencillo  para evaluar adherencia en leucocitos polimorfonucleares neutr&oacute;filos. Las  c&eacute;lulas fueron aisladas por gradiente de densidad a partir de sangre perif&eacute;rica  de 47 donantes voluntarios que acudieron al Servicio de Transfusiones del Instituto  Superior de Medicina Militar &#147;Dr. Luis D&iacute;az Soto&#148;. La cualidad  adhesiva se amplific&oacute; mediante la determinaci&oacute;n de prote&iacute;nas  totales por el m&eacute;todo de Lowry, luego de incubar los fagocitos en placas  pl&aacute;sticas de cultivo de 24 pozos. El mayor n&uacute;mero de valores se  encontr&oacute; entre 6 y 10 mg/dL, lo que represent&oacute; el 70 % de los sujetos  evaluados. La combinaci&oacute;n de la placa de cultivo como superficie de adhesi&oacute;n  y la determinaci&oacute;n de prote&iacute;nas como forma de amplificar esta cualidad,  constituye una novedad del m&eacute;todo propuesto.</p>    <p>DeCS: ADHERENCIA CELULAR;  TEST DE INHIBICION DE ADHERENCIA LEUCOCITICA/m&eacute;todos; TRANSFUSION SANGUINEA;  FAGOCITOSIS; HISTOCITOQUIMICA.</p>    <p>El ser humano est&aacute; expuesto a dis&iacute;miles  microorganismos pat&oacute;genos, cuya invasi&oacute;n y colonizaci&oacute;n originan  m&uacute;ltiples enfermedades, aunque no siempre logran este acometido gracias  a la acci&oacute;n del sistema inmunol&oacute;gico.</p>    <p>Entre estos mecanismos  efectores o de respuesta inespec&iacute;ficos se encuentra la fagocitosis, la  cual consiste en el reconocimiento, englobamiento, ingesti&oacute;n y destrucci&oacute;n  del agente extra&ntilde;o, por c&eacute;lulas especializadas llamadas fagocitos.</p>    <p>La  adherencia de estos fagocitos a trav&eacute;s de las mol&eacute;culas de adhesi&oacute;n  expresadas en su superficie, al endotelio vascular, despu&eacute;s de una se&ntilde;al  quimiot&aacute;xica constituye el primer evento de este proceso fagoc&iacute;tico.  Por lo que cualquier alteraci&oacute;n de esta etapa repercute negativamente en  la fagocitosis en general.<span class="superscript">1-4</span></p>    <p>Es por lo  antes planteado que resulta de inter&eacute;s la evaluaci&oacute;n de la adherencia  en leucocitos polimorfonucleares neutr&oacute;filos (PMN) de pacientes con trastornos  en el mecanismo fagoc&iacute;tico en particular e inmunodeficiencias celulares  en general para un diagn&oacute;stico m&aacute;s preciso, y de gran utilidad cualquier  m&eacute;todo que permita alcanzar este objetivo.</p><h4>    <br> M&eacute;todos</h4>    <p><i>Muestra</i>.  A 47 donantes voluntarios de sangre, que acudieron al Servicio de Transfusiones  del Instituto Superior de Medicina Militar &#147; Dr. Luis D&iacute;az Soto&#148;  y que cumpl&iacute;an los criterios de inclusi&oacute;n siguientes: edad entre  16 y 40 a&ntilde;os y no haber recibido tratamiento con f&aacute;rmacos inmunomoduladores,  hemoterapia o ambos, en los &uacute;ltimos 6 meses, se les tom&oacute; muestras  de sangre venosa y se deposit&oacute; en tubos de ensayo pl&aacute;sticos que  conten&iacute;an heparina libre de preservo (50 UI/mL).</p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p><i>Aislamiento de  polimorfonucleares neutr&oacute;filos</i>. Sangre anticoagulada y diluida con  soluci&oacute;n salina fisiol&oacute;gica (SSF) volumen a volumen, se deposit&oacute;  sobre un gradiente Ficoll-Telebrix densidad (1,077 g/cm<span class="superscript">3</span>),  y se centrifug&oacute; a 1 500 r.p.m. durante 30 min. Los PMN as&iacute; aislados  se lavaron con SSF y se centrifugaron a 1 500 r.p.m. durante 5 min. Posteriormente  se sometieron a 2 <i>shocks</i> osm&oacute;ticos sucesivos con soluci&oacute;n  de cloruro de amonio (SCA), para eliminar los eritrocitos contaminantes. La SCA  entonces fue eliminada por 2 nuevos lavados con SSF y los PMN ajustados a la concentraci&oacute;n  de 4 x 10<span class="superscript">6</span> cel/mL de medio esencial m&iacute;nimo.  La viabilidad celular fue determinada por la t&eacute;cnica de exclusi&oacute;n  con Tripan azul.<span class="superscript">5</span></p>    <p><i>Ensayo de adherencia  celular</i>. Para el ensayo fueron empleadas placas pl&aacute;sticas de cultivo  de 24 pozos con fondo plano. Se deposit&oacute; 0,5 mL de la suspensi&oacute;n  celular en cada pozo e inmediatamente esta se incub&oacute; a 37 &deg;C, en atm&oacute;sfera  de humedad durante 30 min. Un control negativo (testigo sin c&eacute;lulas) fue  tambi&eacute;n incluido en el ensayo. Las c&eacute;lulas no adheridas, finalizado  el tiempo de incubaci&oacute;n, se eliminaron por lavados con SSF. Finalmente  se adicion&oacute; a cada pozo 0,25 mL de agua destilada fr&iacute;a, se agit&oacute;  vigorosamente para lograr el lisado de los PMN adheridos y se dej&oacute; reposar  durante 15 min a temperatura ambiente. El contenido de 2 pozos por muestra se  utiliz&oacute; para la cuantificaci&oacute;n de prote&iacute;nas. El m&eacute;todo  empleado fue el de Lowry, las determinaciones realizadas por duplicado y las concentraciones  informadas en miligramo por decilitro.<span class="superscript">6</span></p>    <p><i>Curva  de calibraci&oacute;n</i>. Fue obtenida por ploteo de 5 concentraciones diferentes  de una soluci&oacute;n de alb&uacute;mina de suero bovino (Merck) y calculada  la ecuaci&oacute;n de la recta por el m&eacute;todo de los m&iacute;nimos cuadrados,  a partir de un triplicado de la curva. Esta &uacute;ltima se utiliz&oacute; para  el c&aacute;lculo, por interpolaci&oacute;n, de las concentraciones proteicas  de las muestras ensayadas. </p>    <p><i>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</i>. Los  datos obtenidos se procesaron de forma automatizada a trav&eacute;s del paquete  estad&iacute;stico STADISTICA. El nivel de significaci&oacute;n se fij&oacute;  en una p <font face="Symbol">&pound;</font> 0,05.</p><h4>    <br> Resultados</h4>    <p>Se  encontraron concentraciones de prote&iacute;nas entre 2 y 16 mg/dL, con un pico  m&aacute;ximo del recorrido de la variable en 8 mg/dL. Al realizar la prueba de  Shapiro Wilk se encontr&oacute; que esta variable cumple con una distribuci&oacute;n  normal, con un nivel de confiabilidad estad&iacute;stica del 95 %.</p>    <p>La curva  de calibraci&oacute;n obtenida fue lineal en el recorrido de valores ploteados  y el coeficiente de correlaci&oacute;n (r) de 0,997. Adem&aacute;s se encontr&oacute;  una relaci&oacute;n coeficiente de variaci&oacute;n en condiciones de rutina/coeficiente  de variaci&oacute;n en condiciones &oacute;ptimas menor que 2. Valores estos de  calidad aceptados metodol&oacute;gicamente para ensayos fotom&eacute;tricos.<span class="superscript">7</span></p><h4>    <br>  Discusi&oacute;n</h4>    <p>En ensayos realizados <i>in vitro</i> se ha informado  que los PMN de individuos con deficiencias en la adhesi&oacute;n tienden a mostrar  p&eacute;rdida de la habilidad para adherirse a la superficie del pl&aacute;stico.  Esto se relaciona <i>in vivo</i> con una disminuci&oacute;n de la capacidad de  los fagocitos para difundir a la zona del da&ntilde;o, formar seud&oacute;podos  y por consiguiente fagocitar las part&iacute;culas extra&ntilde;as. Adem&aacute;s  la literatura informa una correlaci&oacute;n directa entre los ensayos automatizados  que miden cantidad de c&eacute;lulas con los que determinan la concentraci&oacute;n  proteica, aspectos estos tenidos tambi&eacute;n en cuenta para desarrollar este  proceder.<span class="superscript">8-11</span></p>    <p>Basados en estos hallazgos  se emple&oacute; la placa de cultivo pl&aacute;stica de 24 pozos como superficie  de adhesi&oacute;n y se combin&oacute;, para la amplificaci&oacute;n de esta cualidad  celular, con la determinaci&oacute;n de prote&iacute;nas, que aunque ya informados  por otros autores no hab&iacute;an sido antes tenidas en cuenta en el mismo ensayo,  lo que constituye una novedad introducida en el m&eacute;todo.</p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>En general  se puede concluir que el m&eacute;todo propuesto aparece fundamentado en la literatura  cient&iacute;fica, es ventajoso con prop&oacute;sitos diagn&oacute;stico y de  seguimiento de la evoluci&oacute;n, y no requiere de equipos ni reactivos especiales.    <br>  </p><h4>Summary</h4>    <p>A simple cytochemical and quantitative method was developed  to evaluate the adherence in polymorphonucelar neutrophil leucocytes. The cells  were isolated by density gradient from peripheral blood of 47 volunteer donors  that went to the Transfusions Service of &#147;Dr. Luis D&iacute;az Soto&#148;  Higher Institute of Military Medicine. The adhesive quality was amplified by the  determination of total proteins by the method of Lowry, after incubating the phagocytes  in plastic culture plates of 24 pits. The highest number of values was found between  6 and 10 mg/dL, which accounted for 70 % of the evaluated subjects. The combination  of the culture plate as adhesion surface and the determination of proteins as  a way to amplify this quality, is a novelty of the proposed method.</p>    <p>Subject  headings: CELL ADHESION; LEUCOCYTE ADHERENCE INHIBITION TEST/methods; BLOOD TRANSFUSION;  PHAGOCYTOSIS; HYSTOCYTOCHEMISTRY.</p><h4>Referencias bibliogr&aacute;ficas</h4><ol>      <!-- ref --><li> Allen LAH, Aderem A. Mechanisms of phagocytosis. Cur Opin Immunol 1996;8:36-40.</li>    <!-- ref --><li>  Etzioni A. Adhesion molecule deficiencies and their clinical significance. Cell  Adhes Common 1994;2:257-60.</li>    <!-- ref --><li> Gresham HD, Graham IL, Anderson DC, Brown  EJ. Leukocyte adhesion deficient (LAD) neutrophils fail to amplify phagocytic  function in response to stimulation: evidence for CD 11b/CD18 -dependent and -independent  mechanisms of phagocytosis. J Clin Invest 1991;88:588-97.</li>    <!-- ref --><li> Brown EJ, Lindberg  FP. Leukocyte adhesion molecules in host defense against infection. Ann Med 1996;28:201-8.</li>    <!-- ref --><li>  Ruth BB, Forrester FT. Basic Laboratory Techniques in Cell Culture. Atlanta: Public  Health Service; 1981:125.</li>    <!-- ref --><li> Henry RJ, Cannon DC, Winkelman JW. Qu&iacute;mica  cl&iacute;nica. Bases y t&eacute;cnicas. Barcelona: Editorial Jims; 1980:325.</li>    <!-- ref --><li>  Pascual CM, Torres WY. Control de calidad en bioqu&iacute;mica cl&iacute;nica.  La Habana: Editorial Ciencias M&eacute;dicas; 1989:44.</li>    <!-- ref --><li> Etzioni A. Adhesion  molecule deficiencies and their clinical significance. Cell Adhes Cummun 1994;2:257-60.</li>    <!-- ref --><li>  Stepniewicz W, Tchorzewski H, Luciak M. Factors influencing human leukocyte adherence  in vitro. Folia Haematol Int Mag Klin Morphol Blutforsch 1983;110(3):373-9.</li>    <!-- ref --><li>  Santini GF, Battisti S, De Paoli P, Villalta D, Borean M, Basaglia G. A method  for the determination of the adherence of granuocytes to microtitre plates. J  Imunol Methods 1987;100(1-2):153-6.</li>    <!-- ref --><li> Abal AM, Fekete B. A simple methods  to evaluate leukocyte adherence and adherence inhibition in tubes. Acta Med Acad  Sci Hung 1982;39(3-4):155-60.</li>    </ol>    <p>Recibido: 29 de agosto del 2000. Aprobado:  13 de septiembre del 2000.    <br> Lic. <i>Tatiana V&aacute;zquez Gonz&aacute;lez</i>.  Instituto Superior de Medicina Militar &#147;Dr. Luis D&iacute;az Soto&#148;.  Avenida Monumental, Habana del Este, CP 11700, Ciudad de La Habana, Cuba.    <br>  </p>    <p><span class="superscript"><a href="#autor">1</a></span><a href="#autor">  Licenciada en Bioqu&iacute;mica. Aspirante a Investigadora.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <span class="superscript"><b>2</b></span>  Licenciado en Bioqu&iacute;mica. Investigador Agregado.    <br> <span class="superscript"><b>3</b></span>  Licenciada en Biolog&iacute;a. Aspirante a Investigadora.    <br> <span class="superscript"><b>4</b></span>  Especialista del I Grado en Inmunolog&iacute;a B&aacute;sica y Cl&iacute;nica.    <br>  <span class="superscript"><b>5</b></span> T&eacute;cnica en Investigaciones Bioqu&iacute;micas.    <br>  </a><a name="cargo"></a> </p>      ]]></body><back>
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