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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[DISEÑO DE UN ENSAYO DE REACCIÓN EN CADENA DE LA POLIMERASA PARA LA DETECCIÓN DE Herpesvirus bovino tipo 1]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The design of a Polymerase Chain Reaction (PCR) assay for the detection of bovine herpesvirus type 1 (BHV-1) was described. This one was based on the amplification of a portion of the viral tk gene, for which different concentrations of primers, magnesium chloride and different annealing temperatures were tried. In addition, the parameters of analytical performance, sensitivity and specificity were evaluated with satisfactory results. Under the optimal conditions, the amplification of the band 202 pb expected was obtained, and the utility of the test for the identification of isolates was demonstrated.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Art&iacute;culo    original</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="4">DISE&Ntilde;O    DE UN ENSAYO DE REACCI&Oacute;N EN CADENA DE LA POLIMERASA PARA LA DETECCI&Oacute;N    DE <I>Herpesvirus bovino tipo 1</I> </font></B></font></p> <B>     <P>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">DESIGN    OF A POLYMERASE CHAIN REACTION ASSAY FOR THE DETECTION OF <i>bovine Herpesvirus    type 1</i></font><i> </i></b></font>     <P>     <P>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Majela Rodr&iacute;guez,    Mislay Avila, Heidy D&iacute;az de Arce y Maritza Barrera</font> </B>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I>Centro Nacional    de Sanidad Agropecuaria (CENSA), Apartado 10, San Jos&eacute; de las Lajas,    La Habana, Cuba. Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:majela@censa.edu.cu">majela@censa.edu.cu</a> </I></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>     <P> <hr noshade size="1">     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>RESUMEN</B></font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se describe el    dise&ntilde;o de un ensayo de reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR)    para la detecci&oacute;n de herpesvirus bovino tipo 1 (HVB-1). Este se bas&oacute;    en la amplificaci&oacute;n de una porci&oacute;n del gen <I>tk</I> viral, para    lo cual se ensayaron diferentes concentraciones de los cebadores, de cloruro    de magnesio y diferentes temperaturas de alineamiento. Adem&aacute;s, se evaluaron    los par&aacute;metros de desempe&ntilde;o anal&iacute;tico, sensibilidad y especificidad,    con resultados satisfactorios. Bajo las condiciones &oacute;ptimas se logr&oacute;    la amplificaci&oacute;n de la banda de 202 pb esperada y se demostr&oacute;    la utilidad del ensayo para la identificaci&oacute;n de aislados. </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Palabras clave:</b>    herpesvirus bovino tipo 1; diagn&oacute;stico; PCR.</font>  <hr noshade size="1">     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>ABSTRACT</b></font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">The design of a    Polymerase Chain Reaction (PCR) assay for the detection of bovine herpesvirus    type 1 (BHV-1) was described. This one was based on the amplification of a portion    of the viral <I>tk</I> gene, for which different concentrations of primers,    magnesium chloride and different annealing temperatures were tried. In addition,    the parameters of analytical performance, sensitivity and specificity were evaluated    with satisfactory results. Under the optimal conditions, the amplification of    the band 202 pb expected was obtained, and the utility of the test for the identification    of isolates was demonstrated. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Key words:</b>    bovine herpesvirus type 1; diagnosis; PCR</font>.  <hr noshade size="1">     <P>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></B></font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I>Herpesvirus    bovino tipo 1</I> es el agente causal de la rinotraqueitis infecciosa bovina    (IBR), una de las enfermedades que m&aacute;s incidencia tiene en los costos    de producci&oacute;n de los bovinos (2). Adem&aacute;s es el responsable de    otros s&iacute;ndromes cl&iacute;nicos, tales como vulvovaginitis pustular infecciosa    (en las hembras) o balanopostitis pustular infecciosa (en los machos), conjuntivitis,    aborto, enteritis e infecci&oacute;n sist&eacute;mica generalizada (13, 1, 16,    11). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Una de sus caracter&iacute;sticas    m&aacute;s importantes es que establece infecci&oacute;n latente en las neuronas    sensoriales del ganglio trig&eacute;mino o sacro e, incluso, en las tonsilas    (28, 12). Esto tiene una significativa importancia epizootiol&oacute;gica por    el peligro que representan los animales sin manifestaciones cl&iacute;nicas    y serol&oacute;gicamente negativos, pero que pueden liberar virus bajo condiciones    de estr&eacute;s y por tanto constituyen una fuente de infecci&oacute;n permanente    para otros animales. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En Cuba, el diagn&oacute;stico    de laboratorio de HVB-1 se realiza mediante el uso de m&eacute;todos cl&aacute;sicos    como la inmunofluorescencia e inmunoperoxidasa directas, el aislamiento viral    e identificaci&oacute;n posterior por seroneutralizaci&oacute;n viral y por    la detecci&oacute;n de anticuerpos espec&iacute;ficos en muestras de sueros    pareados o simples. Las t&eacute;cnicas inmunohistoqu&iacute;micas, aunque son    m&aacute;s r&aacute;pidas que el aislamiento viral se caracterizan por una menor    sensibilidad y especificidad, requieren de la presencia del ant&iacute;geno    viral en la c&eacute;lula intacta, la calidad de la muestra repercute en los    resultados y en ocasiones se basan en el uso de antisueros obtenidos contra    cepas heter&oacute;logas, lo cual no asegura que se detecten determinadas variaciones    antig&eacute;nicas del aislado problema (18). El aislamiento viral, por su parte,    requiere de facilidades de cultivo celular y mucho tiempo para la obtenci&oacute;n    de los resultados y las pruebas de seroconverci&oacute;n toman un m&iacute;nimo    de 14 a 21 d&iacute;as y pueden escapar de la detecci&oacute;n, animales persistentemente    infectados con bajos t&iacute;tulos de anticuerpos (15, 21). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Esto ha mostrado    la necesidad de acudir a m&eacute;todos de diagn&oacute;stico m&aacute;s r&aacute;pidos    y precisos que posibiliten tomar medidas efectivas para limitar la diseminaci&oacute;n    de la infecci&oacute;n a otros animales, reducir el riesgo inherente a una enfermedad    cl&iacute;nica no diagnosticada que pueda ser ex&oacute;tica o al uso indebido    de antibi&oacute;ticos en enfermedades mal diagnosticadas. La PCR se ha utilizado    con estos fines en la virolog&iacute;a veterinaria de forma general (4). Espec&iacute;ficamente    en el diagn&oacute;stico de HVB-1, esta t&eacute;cnica ha mostrado ser una herramienta    muy &uacute;til para la detecci&oacute;n en semen (23, 7) y otras muestras cl&iacute;nicas    (20, 25). La selecci&oacute;n del gen tk para la PCR, ha sido muy efectiva debido    a su importancia en la patogenisidad viral de todos los herpesvirus bovinos    (26). Su secuencia fue por primera vez determinada por Bello <I>et al.</I> (5)    y en la actualidad existen numerosas secuencias del mismo publicadas en bases    de datos de acceso libre. Apoyado en estas premisas se propuso como objetivo    del presente trabajo: dise&ntilde;ar un ensayo de PCR para la detecci&oacute;n    de HVB-1. </font>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">MATERIALES    Y M&Eacute;TODOS </font></B></font></p> <B>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Virus y C&eacute;lulas</font> </B>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se trabaj&oacute;    con la suspensi&oacute;n viral obtenida mediante la propagaci&oacute;n de la    cepa de HVB-1, E8, aislada en Cuba por Noda <I>et al.</I> (19) en un brote de    queratoconjuntivitis, a una multiplicidad de infecci&oacute;n de 1 DICT<SUB>50</SUB>/c&eacute;lula    en cultivos de la l&iacute;nea celular Madin-Darby Bovine Kidney (MDBK, ATCC    CCL 22, certificada libre de virus de la diarrea viral bovina). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Extracci&oacute;n    de ADN </B> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se procedi&oacute;    seg&uacute;n lo descrito por Sambrook <I>et al.</I> (22) con algunas modificaciones.    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se trataron 200    mL de suspensi&oacute;n viral (10<SUP>5.45</SUP> DICT<SUB>50</SUB>/mL) con duodecil    sulfato de sodio y proteinasa K a 1% y 0.2 mg/mL de concentraci&oacute;n final,    respectivamente, durante 1 hora a 56&#186;C<SUP> </SUP>en un ba&ntilde;o serol&oacute;gico.    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En paralelo se    trataron 200 mL de un sobrenadante de c&eacute;lulas MDBK no infectadas como    control negativo. Se mezclaron con 200 mL de fenol saturado con Tris 1M pH 8.0    y se centrifugaron 5 min a 12000 rpm (Centr&iacute;fuga eppendorf 5415D). La    fase acuosa se mezcl&oacute; con 200 mL de cloroformo-isoamil alcohol (49:1    v/v) y se centrifug&oacute; a 12000 rpm durante 5 min. Se extrajo la fase superior,    el &aacute;cido nucleico se precipit&oacute; mediante la adici&oacute;n de 2    vol&uacute;menes de etanol absoluto fr&iacute;o y 1/10 del volumen de acetato    de sodio 3M pH 5.2 durante 2 horas a -80&#186;C y se centrifug&oacute; durante    15 min a 14000 rpm. Finalmente se lav&oacute; el precipitado con etanol al 70%,    se sec&oacute; al aire y se resuspendi&oacute; en 20 mL de TE 1X. La concentraci&oacute;n    y pureza se determinaron mediante un espectrofot&oacute;metro Ultrospec<SUP>&#174;</SUP>    2100 pro (Amersham Pharmacia Biotech) y se utilizaron cantidades entre 0.1 y    0.2 mg en el PCR. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Ensayo de PCR    </B></font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Cebadores:</b>    Se sintetizaron dos oligonucle&oacute;tidos nuevos, S21 5'GCGGGCCTGGTTGCGTACTAC3'    y A21 5'AGCAGATCTTCCGCGTTGATC3' correspondientes a los nucle&oacute;tidos 514-535    y 716-695, respectivamente, en el gen <I>tk</I> de HVB-1.1 (n&uacute;mero de    acceso al GenBank D00438 (17)). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Amplificaci&oacute;n:</B>    Los vol&uacute;menes y concentraciones finales de la reacci&oacute;n de PCR    que empleamos como base para la estandarizaci&oacute;n fueron las recomendadas    por el bolet&iacute;n t&eacute;cnico N&#186; 254 de la PCR Core System de Promega<SUP>&#174;</SUP>,    donde se establecen las siguientes pautas: tamp&oacute;n de reacci&oacute;n    de la Taq ADN polimerasa (50 mM KCl, 10 mM Tris-HCl pH 9.0 y 0.1% Triton<SUP>&#174;</SUP>    X-100), soluci&oacute;n de cloruro de magnesio (0.5-3 mM), mezcla de nucle&oacute;tidos    (0.2 mM cada uno), cebadores (0.1-1.0 &igrave;M), Taq ADN Polimerasa (1.25 U)    y completar con agua hasta un volumen final de 50 &igrave;L. Como control negativo    de la reacci&oacute;n se sustituy&oacute; el ADN molde por el mismo volumen    de agua libre de nucleasas (Promega). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las condiciones    iniciales de amplificaci&oacute;n del ADN en el termociclador MJ- Research <SUP>TM</SUP>,    las cuales hab&iacute;an sido utilizadas con &eacute;xito en el laboratorio    para otros cebadores, est&aacute;n descritas en la <a href="/img/revistas/rsa/v29n1/f0103107.gif">Tabla    1</a>. </font>      
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Algunas de las    variables y condiciones de partida fueron estandarizadas y en todos los casos    se realiz&oacute; un m&iacute;nimo de tres r&eacute;plicas por ensayo. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>An&aacute;lisis    del producto amplificado por PCR</B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El producto de    PCR con 1X de tamp&oacute;n de carga azul-naranja (Promega) fue analizado por    electroforesis en geles de agarosa al 2% te&ntilde;ido con bromuro de etidio    0,08 mg/mL. La corrida se realiz&oacute; en tamp&oacute;n TBE 0.5X a un voltaje    constante de 100 V por 30 min. Para determinar la talla aproximada del producto    fue incluido un patr&oacute;n de peso molecular 100pb DNA Ladder (Promega) con    un rango de tallas de 100-1500pb. Las bandas fueron visualizadas a una longitud    de onda de 312 nm y se fotografiaron con c&aacute;mara digital (Hewlett Packard    C6324 A) para recoger los resultados. Se tuvo en cuenta la intensidad de la    banda de amplificaci&oacute;n para seleccionar las condiciones &oacute;ptimas.    </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Determinaci&oacute;n    de la especificidad anal&iacute;tica de los cebadores</B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La especificidad    anal&iacute;tica se determin&oacute; mediante la evaluaci&oacute;n de diferentes    ADN moldes provenientes de: </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">- Cepa de HVB-2    donada gentilmente por el DrC. A. Bartha, Academia de Ciencias Veterinarias    de Hungr&iacute;a. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">- Cepa Misk/67    de adenovirus bovino 8 y cepa Sof&iacute;a de adenovirus bovino 9 donadas gentilmente    por Instituto de Phylaxia, Hungr&iacute;a. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">- Cepa del virus    de la enfermedad de Aujeszky: V208, aislada en Cuba por D&iacute;az <I>et al.</I>    (9). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Determinaci&oacute;n    del l&iacute;mite de detecci&oacute;n del ensayo</B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Con el prop&oacute;sito    de determinar el l&iacute;mite de detecci&oacute;n del ensayo se realiz&oacute;    una curva de diluciones de punto final en medio de cultivo celular, de la suspensi&oacute;n    viral de E8. A partir de estas diluciones se aisl&oacute; el ADN por el m&eacute;todo    antes descrito y se utiliz&oacute; como molde para el PCR donde se evaluaron    valores de 1, 5 y 8% de DMSO en la mezcla de reacci&oacute;n. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Identificaci&oacute;n    de aislados</B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los aislados fueron    obtenidos previamente a partir de exudados nasales de seis toros con signos    cl&iacute;nicos compatibles a la IBR y cuatro vacas utilizadas como controles    negativos. La identificaci&oacute;n se realiz&oacute; con la PCR dise&ntilde;ada    y mediante la inmunofluorescencia directa (IFD) con IgG de bovino contra la    cepa E8, conjugado con isotiocianato de fluoresce&iacute;na (1:16): obtenido    en el Laboratorio de Virolog&iacute;a Animal, Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria,    seg&uacute;n Delgado <I>et al.</I> (8) y Barrera (3). </font>     <P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">RESULTADOS    Y DISCUSI&Oacute;N</font></B> </font>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Con el m&eacute;todo    de extracci&oacute;n ensayado se obtuvieron valores de concentraci&oacute;n    de ADN total entre 50 y 70 mg/mL y la pureza, con relaci&oacute;n a la presencia    de prote&iacute;nas contaminantes, se mantuvo por encima de 2 en todos los casos,    lo que se corresponde con un elevado grado de pureza seg&uacute;n Sambrook <I>et    al.</I> (22). La calidad del material gen&eacute;tico obtenido result&oacute;    adecuada para el ensayo de PCR mediante el cual se obtuvo un producto amplificado    de 202 pb, talla esperada seg&uacute;n el dise&ntilde;o de los cebadores (<a href="#f1">Fig.    1</a>). </font>     <P><a name="f1"></a><img src="/img/revistas/rsa/v29n1/f0203107.gif" width="315" height="337">      
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El hecho de que    el genoma de los herpesvirus sea rico en GC (32-75%) (10), se tuvo en cuenta    para el dise&ntilde;o de cebadores que permitieron usar un rango de temperaturas    de alineamiento elevadas. Al evaluar las temperaturas 57, 60, 62 y 65&#176;C    se obtuvieron bandas de amplificaci&oacute;n de similar intensidad (<a href="#f2">Fig. 2</a>).    Con la temperatura de alineamiento de 68&#176;C, se obtuvo una banda de reducida    intensidad comparada con el resto. Esto se debe a que elevadas temperaturas    disminuyen la sensibilidad de la reacci&oacute;n (29). Se seleccion&oacute;    la temperatura de 65&#176;C porque se conoce que valores elevados minimizan    las uniones inespec&iacute;ficas de los cebadores y por tanto incrementan la    especificidad de la reacci&oacute;n (29), logr&aacute;ndose el mejor balance  entre sensibilidad y especificidad de uni&oacute;n de los cebadores.</font>     <P><a name="f2"></a><img src="/img/revistas/rsa/v29n1/f0303107.gif" width="329" height="347">     
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para seleccionar    la concentraci&oacute;n &oacute;ptima de cebadores en un ensayo de PCR, se recomienda    evaluar valores en un rango entre 0.1-1mM (22). La concentraci&oacute;n &oacute;ptima    obtenida en este trabajo fue de 0.6 mM, la cual se encuentra en el rango de    las recomendadas por la literatura. Las concentraciones m&aacute;s bajas resultaron    en poco producto de PCR, de forma similar ocurri&oacute; a concentraciones elevadas    (<a href="#f3">Fig. 3</a>). </font>     <P><a name="f3"></a><img src="/img/revistas/rsa/v29n1/f0403107.gif" width="324" height="321">     
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Algunos cebadores    funcionan de manera similar a varias concentraciones de Mg<SUP>2+</SUP> mientras    que otros pueden tener requerimientos muy espec&iacute;ficos. La pareja de cebadores    dise&ntilde;ada se ajusta al segundo caso, ya que a concentraciones superiores    a 1mM de cloruro de magnesio, disminuy&oacute; considerablemente la intensidad    de la banda y a 0.5 mM no se obtuvo amplificaci&oacute;n, por lo que el valor    &oacute;ptimo fue 1mM (<a href="#f4">Fig. 4</a>). </font>     <P><a name="f4"></a><img src="/img/revistas/rsa/v29n1/f0503107.gif" width="318" height="342">      
<P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En la <a href="#f5">Figura 5</a>,    se muestra la especificidad de los cebadores para detectar HVB-1. No ocurri&oacute;    amplificaci&oacute;n al evaluar herpesvirus heter&oacute;logos como HVB-2 o    el virus de la enfermedad de Aujeszky u otros virus bovinos de genoma ADN que    pudieran estar presentes en muestras de exudados oculares o nasales como los    adenovirus 8 y 9. S&oacute;lo se obtuvo producto amplificado para la cepa E8,    utilizada como control positivo de la reacci&oacute;n, lo cual indica que el    dise&ntilde;o de los cebadores es adecuado y que solamente identifican la regi&oacute;n    del gen <I>tk</I> de inter&eacute;s para el diagn&oacute;stico. </font>     <P><a name="f5"></a><img src="/img/revistas/rsa/v29n1/f0603107.gif" width="320" height="315">      
<P>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El l&iacute;mite    de detecci&oacute;n del ensayo de PCR fue de 2x10<SUP>2.45</SUP> DICT<SUB>50</SUB>/mL,    el cual mejor&oacute; ligeramente hasta 10<SUP>2.45</SUP> DICT<SUB>50</SUB>/mL    al a&ntilde;adir 5% de DMSO en la mezcla de reacci&oacute;n (<a href="#f6">Fig. 6</a>). Este reactivo    ha sido muy utilizado en el PCR de genomas con elevados contenidos de GC y estructuras    secundarias que pueden inhibir el alineamiento y extensi&oacute;n de los cebadores    (30 y 6). </font>       <P><a name="f6"></a><img src="/img/revistas/rsa/v29n1/f0703107.gif" width="632" height="388">       
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La literatura informa    que durante 7 d&iacute;as postinfecci&oacute;n se elimina gran cantidad de part&iacute;culas    virales por la secreci&oacute;n nasal (24), 10<SUP>7.75</SUP> DICT<SUB>50</SUB>/g    de mucosa, por lo que el l&iacute;mite de detecci&oacute;n obtenido, pudiera    ser suficiente para detectar HVB-1 en muestras cl&iacute;nicas. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Este ensayo fue    capaz de detectar el &aacute;cido nucleico viral en todos los aislados provenientes    de animales con signos cl&iacute;nicos compatibles con la IBR y el resto result&oacute;    negativo. Esto evidencia una mayor sensibilidad de la PCR desarrollada respecto    a la IFD que s&oacute;lo detect&oacute; dos de las muestras presuntamente positivas    (<a href="#t2">Tabla 2</a>). </font>     <P><a name="t2"></a><img src="/img/revistas/rsa/v29n1/f0803107.gif" width="323" height="264">     
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El comportamiento    de este par&aacute;metro concuerda con lo planteado por Wiedman <I>et al.</I>    (27); Yason <I>et al.</I> (30) y Moore <I>et al.</I> (18) y se debe a que la    PCR est&aacute; basada en la detecci&oacute;n del &aacute;cido nucleico (4),    no requiere que la muestra tenga una calidad &oacute;ptima y es capaz de detectar    virus en animales infectados latentemente (14).     <BR>       ]]></body>
<body><![CDATA[<BR>   Los resultados obtenidos confirman la utilidad del ensayo de PCR para la identificaci&oacute;n    de aislados, el cual se emplear&aacute; adem&aacute;s, en el diagn&oacute;stico    de HVB-1 a partir de muestras cl&iacute;nicas (exudados nasales y oculares,    semen importado, etc.) y para descartar la presencia de este agente en el esquema    de diagn&oacute;stico de las enfermedades vesiculares. Esto permitir&aacute;    la liberaci&oacute;n de la cuarentena de los animales o que se tomen las medidas    de control adecuadas en el menor tiempo posible y de esa forma evitar la diseminaci&oacute;n    de la enfermedad y contribuir a la disminuci&oacute;n de las p&eacute;rdidas    econ&oacute;micas. </font>     <P>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">REFERENCIAS</font></B>    </font>      <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1. Abinanti FR,    Plumer GH. 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