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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[COMPARACIÓN DE DOS MÉTODOS DE RECOLECCIÓN DE OVOCITOS INMADUROS PARA FERTILIZACIÓN in vitro FIV OBTENIDOS DE HEMBRAS Bubalus bubalis ENVIADAS A MATADERO]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[COMPARISON OF TWO RECOLLECTION METHODS OF IMMATURE OOCYTES FOR in vitro FERTILIZATION IVF DERIVED FROM Bubalus bubalis FEMALES SENT TO SLAUGHTER]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Cumulus-oocyte complexes (COCs) were extracted from buffalo ovaries (Bubalus bubalis) slaughtered in slaughterhouse. COCs were transported to the laboratory for six hours in 500 ml of saline solution at 29.1°C. COCs extraction was carried out between 2 and 8 mm of diameter using two methods, the follicular puncture (FP) with 18Gx1½ needle and surgical dissection (SD) of follicles using an ophthalmic micro-scalpel. In order to classify CCOs, the integrity of the cumulus layers and the oocytes cytoplasm characteristics were taken into account. The results showed significant differences of 99% in the average of COCs recovery and their quality when compared to FP and SD methods. By the FP method, the average of COCs recovery was of 28 and 2.7 COCs per ovary with quality obtained, which represents 20,43% of all oocytes recovered in this group. However, the SD method achieved an average of COCs recovery of 139 and 6.3 COCs per ovary, representing 59,4% of all oocytes recovered for this group. These results demonstrate that the SD method for COCs collection is more efficient than the FP method.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">    <b>Art&iacute;culo original</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="4">COMPARACI&Oacute;N    DE DOS M&Eacute;TODOS DE RECOLECCI&Oacute;N DE OVOCITOS INMADUROS PARA FERTILIZACI&Oacute;N    <I>in vitro</I> FIV OBTENIDOS DE HEMBRAS <I>Bubalus bubalis</I> ENVIADAS A MATADERO</font></B></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">COMPARISON    OF TWO RECOLLECTION METHODS OF IMMATURE OOCYTES FOR <i>in vitro </i>FERTILIZATION    IVF DERIVED FROM <i>Bubalus bubalis </i>FEMALES SENT TO SLAUGHTER </font></b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp; </p>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Mara Dunia Quintana*,    P.E.C. Campos*, P. Herrera*, C. Gallego**, E. Padr&oacute;n***</B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><I>*Universidad    Agraria de la Habana (UNAH). Facultad de Medicina Veterinaria. Departamento    Cl&iacute;nica. Autopista Nacional y Carretera de Tapaste, San Jos&eacute; de    las Lajas, Mayabeque, Cuba. Correo electr&oacute;nico: <U><a href="mailto:mdutra@isch.edu.cu">mdutra@isch.edu.cu</a></U>;    **Instituto de Ciencia Animal (ICA), Carretera Central km 47 1/2, San Jos&eacute;    de las Lajas, Mayabeque, Cuba; ***Empresa Pecuaria Gen&eacute;tica Bubalina    El Cangre, El Cangre km 6 1/2, G&uuml;ines, Mayabeque, Cuba </I></font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp;     <P>&nbsp; <hr noshade size="1">     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>RESUMEN</B></font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Con el objetivo    de comparar dos m&eacute;todos de recolecci&oacute;n de ovocitos inmaduros se    obtuvieron complejos c&uacute;mulos-ovocitos (CCO) a partir de ovarios de hembras    <I>Bubalus bubalis</I> sacrificadas en el matadero. El traslado se efectu&oacute;    en 500mL de soluci&oacute;n salina en un periodo de 6 horas. Se emplearon dos    t&eacute;cnicas para extraer los CCO de fol&iacute;culos entre 2 y 8mm de di&aacute;metro,    la punci&oacute;n folicular (PF) con agujas 18Gx1&#189; y la disecci&oacute;n    quir&uacute;rgica de los fol&iacute;culos superficiales (DF) utilizando un micro-escalpelo    oft&aacute;lmico. Para la clasificaci&oacute;n de los CCO se utiliz&oacute;    el criterio de la integridad de las capas de c&eacute;lulas del c&uacute;mulo    y las caracter&iacute;sticas del citoplasma del ovocito. Se obtiene como promedio    34.25 CCO por el m&eacute;todo de PF y 46.80 CCO por DF con diferencias significativas    de 99% de confianza entre ambos. Por el m&eacute;todo de PF se obtienen 28 CCO    calidad I, lo cual significa 20,43% del total para un promedio de 2.7CCO/ovario;    resultados inferiores a la t&eacute;cnica de DF en la que se obtuvieron 139    CCOde calidad I con 6.3 CCO/ovario representando el 59,4% del total de los ovocitos    recolectados. Utilizando el m&eacute;todo de DF se recolecta mayor cantidad    de CCO en cantidad y calidad que con el m&eacute;todo de PF. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Palabras clave:</b>    ovocitos; recolecci&oacute;n; m&eacute;todos; Bubalus bubalis.</font>  <hr noshade size="1">     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"></font> <b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">ABSTRACT</font>  </b>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Cumulus-oocyte    complexes (COCs) were extracted from buffalo ovaries (<I>Bubalus bubalis</I>)    slaughtered in slaughterhouse. COCs were transported to the laboratory for six    hours in 500 ml of saline solution at 29.1&#176;C. COCs extraction was carried    out between 2 and 8 mm of diameter using two methods, the follicular puncture    (FP) with 18Gx1&#189; needle and surgical dissection (SD) of follicles using    an ophthalmic micro-scalpel. In order to classify CCOs, the integrity of the    cumulus layers and the oocytes cytoplasm characteristics were taken into account.    The results showed significant differences of 99% in the average of COCs recovery    and their quality when compared to FP and SD methods. By the FP method, the    average of COCs recovery was of 28 and 2.7 COCs per ovary with quality obtained,    which represents 20,43% of all oocytes recovered in this group. However, the    SD method achieved an average of COCs recovery of 139 and 6.3 COCs per ovary,    representing 59,4% of all oocytes recovered for this group. These results demonstrate    that the SD method for COCs collection is more efficient than the FP method.</font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Key words:</b>    oocytes; collection; methods; Bubalus bubalis</font>.  <hr noshade size="1">     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></B></font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La <I>fertilizaci&oacute;n</I>    <I>in vitro (FIV)</I> es una metodolog&iacute;a que proporciona la posibilidad    de producir embriones gen&eacute;ticamente manipulados y luego transferirlos    (1). Por esta raz&oacute;n, se hace necesario conseguir una fuente alternativa    que permita la obtenci&oacute;n de ovocitos maduros y embriones a gran escala    disminuyendo el costo, y poder as&iacute; seguir avanzando en el desarrollo    de las biotecnolog&iacute;as de la reproducci&oacute;n. Una de las v&iacute;as    alternativas para la optimizaci&oacute;n de las t&eacute;cnicas de producci&oacute;n    <I>in vitro </I>es precisamente el empleo de ovarios de hembras enviadas a matadero    como una fuente m&aacute;s econ&oacute;mica para generar ovocitos maduros y    embriones. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Actualmente, los    m&eacute;todos propuestos para la obtenci&oacute;n de ovocitos del ganado bovino    son la aspiraci&oacute;n de los fol&iacute;culos antrales (2), la ruptura de    los fol&iacute;culos (3) y el seccionamiento continuo de los ovarios (4, 5).    Misra (6), plantea que la calidad de los ovocitos de b&uacute;falo depende en    gran medida del m&eacute;todo que se utiliza para la extracci&oacute;n. Por    tal motivo nos proponemos recolectar los ovocitos inmaduros obtenidos de ovarios    de hembras de <I>Bubalus bubalis</I> para la <I>FIV</I> en Cuba y comparar los    m&eacute;todos de punci&oacute;n folicular (PF) y la disecci&oacute;n folicular    (DF). </font>     <P>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">MATERIALES    Y M&Eacute;TODOS </font></B></font></p> <B>    <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Hembras donantes    </font> </B>      <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La matanza de las    hembras bufalinas se realiz&oacute; en el matadero Valle del Per&uacute; situado    en la provincia Mayabeque. Los animales ten&iacute;an 6&#177;0.84 a&ntilde;os    de edad y con un peso al momento del sacrificio de 500&#177; 65.0Kg Los ovarios    se extrajeron despu&eacute;s del decolado conjunto a la extracci&oacute;n de    todo el sistema reproductor. Se analizaron los dos ovarios los que fueron trasladados    al laboratorio en 500mL de soluci&oacute;n salina al 0.9% en un tiempo m&aacute;ximo    de 6 horas a 29<SUP>o</SUP>C en un frasco de cristal. Luego de un estudio biom&eacute;trico    en cuanto al largo, ancho y peso de los ovarios se procedi&oacute; a la extracci&oacute;n    de los complejos c&uacute;mulo- ovocito (CCO). Se emplearon dos m&eacute;todos    para extraer los CCO: </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1. La punci&oacute;n    folicular (PF) empleando una aguja hipod&eacute;rmica (18Gx1&#189; TERUMO) acoplada    a una jeringuilla pl&aacute;stica de 10 mL (HSW, Germany) previamente cargada    con 1mL de medio de cultivo 199 Hepes (SIGMA, M7528) enriquecido con 10% de    suero fetal bovino inactivado (SFBi, PAA), 100 UI/ml de penicilina, 0.1 mg/mL    de estreptomicina y 0.25 &#181;g/mL de anfotericina B (SIGMA, A5955). Se tom&oacute;    el ovario y se le introdujo la aguja por el polo libre del hilio aspirando de    una vez el mayor n&uacute;mero de fol&iacute;culos posibles entre 2 a 8mm &Oslash;.    Posteriormente el contenido extra&iacute;do fue depositado en un tubo c&oacute;nico    de 15 mL (COSTAR, USA) e incubado en un ba&ntilde;o t&eacute;rmico a 37&#176;C    por 10 minutos hasta su procesamiento. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2. La disecci&oacute;n    quir&uacute;rgica de los fol&iacute;culos (DF) utilizando un micro-escalpelo    oft&aacute;lmico. Cada ovario fue depositado en una placa Petri de 60 mm &Oslash;    (Greiner&#174;) y fijado con una pinza quir&uacute;rgica, posteriormente con    la ayuda del micro-escalpelo la pared de cada fol&iacute;culo visible fue seccionada    consiguiendo la expulsi&oacute;n del contenido folicular que se diluy&oacute;    en 10 mL de PBS (10% de SFBi, 100 UI/ml de penicilina, 0.1 mg/mL de estreptomicina    y 0.25 &#181;g/mL de anfotericina B (SIGMA, A5955) previamente depositado en    la placa. Terminados ambos m&eacute;todos los CCO son localizados bajo un estereoscopio    con 4x de magnificaci&oacute;n (Olympus, Japan) y su captura es realizada con    capilares. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para la evaluaci&oacute;n    de los CCO se tom&oacute; la escala de De Loos <I>et al. </I>(7), descrita para    el bovino, donde la primera categor&iacute;a se caracteriza por presentar ovocitos    con m&aacute;s de 5 capas compactas de c&eacute;lulas del c&uacute;mulo y un    citoplasma con granulaciones finas, densas y uniformes. Se toman como CCO de    buena calidad los que se encuentran en el grupo I y II-III, los de los grupos    V y desnudos no se consideran adecuados, por presentar poca o ninguna capa de    c&eacute;lulas del c&uacute;mulo, lo que repercute en la maduraci&oacute;n futura    del CCO y compromete la <I>FIV.</I> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los resultados    obtenidos en cuanto a la cantidad de ovocitos recolectados y los CCO de calidad    I, fueron analizados por el paquete estad&iacute;stico Statgraphic Plus 5.1    </font>     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">RESULTADOS    Y DISCUSI&Oacute;N</font></B></font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El m&eacute;todo    DF resulta m&aacute;s eficiente que el PF <a href="#t1">Tabla 1</a>, lo que    corrobora lo obtenido por Lornergan <I>et al.</I> (8) Whitesell <I>et al.</I>    (4) y Ohashi <I>et al.</I> (9, 10) quienes realizaron una comparaci&oacute;n    entre ambos m&eacute;todos de extracci&oacute;n de ovocitos y reportaron que    con la aspiraci&oacute;n se obtienen menor cantidad de CCO que con la disecci&oacute;n    folicular, estos &uacute;ltimos plantean que por PF se aspiran menor cantidad    de fol&iacute;culos de 2 a 8mm de di&aacute;metro, mientras que el m&eacute;todo    de DF involucra una mayor proporci&oacute;n de la poblaci&oacute;n folicular    lo que condiciona la diferencia. No obstante, Whitesell <I>et al.</I> (4) reportan    una mayor tasa de desarrollo en embriones producidos por <I>FIV</I> de ovocitos    obtenidos por aspiraci&oacute;n con respecto al m&eacute;todo de disecci&oacute;n.    Este m&eacute;todo tiene la caracter&iacute;stica de ser m&aacute;s r&aacute;pido,    exponiendo a los CCO a condiciones ambientales (extrafoliculares) por menos    tiempo.</font>      <P align="center"><img src="/img/revistas/rsa/v34n1/t0108112.gif" width="326" height="178">    <a name="t1"></a>     
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para el m&eacute;todo    de DF se seleccionan fol&iacute;culos presentes en la corteza ov&aacute;rica    sin embargo, este m&eacute;todo consume m&aacute;s tiempo y es menos pr&aacute;ctico    si se desea trabajar con un n&uacute;mero elevado de ovarios (11, 12). Por tanto    para un trabajo extensivo se considera m&aacute;s recomendado la PF para no    comprometer resultados tales como la tasa de clivaje. </font>      <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En la <a href="#t2">Tabla    2</a> se muestran los diferentes grupos de CCO clasificados por la escala de    De Loos <i>et al</i>. (7) descrita para el bovino quienes evaluaron los mismos    en dependencia de la cantidad de c&eacute;lulas de c&uacute;mulo y las caracter&iacute;sticas    de homogeneidad del citoplasma, situando para el grupo de calidad I los que    presentaron m&aacute;s de 5 capas de c&eacute;lulas del c&uacute;mulo y granulaciones    finas y densas en el ooplasma. Se muestra que el m&eacute;todo de DF es m&aacute;s    efectivo respecto a la t&eacute;cnica de PF. A nivel mundial varios grupos de    trabajo han obtenido por el m&eacute;todo de PF desde 0.73 CCO/ovario (14) hasta    2.2 CCO/ovario (15). Los valores obtenidos en nuestra evaluaci&oacute;n son    ligeramente superiores a los de Ohashi <i>et al.</i> (9) y coinciden con Huang    <i>et al.</i> (12) quienes reportaron que el n&uacute;mero de ovocitos utilizable    por ovario es de 3.18&#177;2.89 en la especie bufalina.</font>      <p align="center"><img src="/img/revistas/rsa/v34n1/t0208112.gif" width="320" height="192">    <a name="t2"></a>     
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Leal <I>et al.    </I>(13) realizaron un ensayo de <I>fertilizaci&oacute;n</I> <I>in vitro</I>    en b&uacute;falo obteniendo 25.9% de calidad I, 30.7% de calidad II, 10.2% de    calidad III para un total entre II y III de 40.9% y desnudos un 18.6%. Es importante    resaltar que para nuestras condiciones se obtengan 20.43% CCO calidad I por    PF y 59.4% por DF ya que los CCO de calidad al fertilizarse pueden dar embriones    con caracter&iacute;sticas nucleares y citoplasm&aacute;ticas para ser vitrificados    (16) elemento que puede contribuir al mejoramiento gen&eacute;tico de la masa    bufalina en Cuba. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los resultados    de esta investigaci&oacute;n demuestran por pimera vez en nuestro pa&iacute;s    la superioridad del m&eacute;todo de DF con respecto al de PF para el desarrollo    de la FIV a partir de ovarios de hembras <I>Bubalus bubalis</I> enviadas a matadero    como fuente viable de ovocitos bufalinos. </font>     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">REFERENCIAS</font></B></font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1. Nandi S, Ravindranatha    BM, Gupta PSP, Sarma PV. Timing of sequential changes in cumulus cells and first    polar body extrusion during in-vitro maturation of buffalo oocytes. Theriogenology.    2002;57(3):1151-1159.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2. Gonz&aacute;lez    FR, Soto E, Landaeta A, Velarde JC, De Ondiz A. Delgado NJ. Recollection and    evaluation of oocytes from sacrified bovine crossbred ovaries. Rev cient. 1992;1:22-24.        </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">3. King W, Yadav    BR, Xu K, Picard P, Sirad L, Verini Suplizi A. editors. The sex ratios of bovine    embrios produced in vitro. Therigenology. 1991;36(5):779-788.     </font>      <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">4. Whitesell DR,    Hill KG, Miller DR, Jones AL, Wilson JM. In vitro embryo production from oocytes    recovered from excised ovaries of terminally ill cows. Theriogenology. 1992;37(1):322.        </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">5. Misra AK. Advances    in embryo technology in water buffaloes. 7th World Buffalo Congress 20-23 October    2004, Makati Shangri Hotel Ayala Avenue, Makati city, Philippines. Abst. 2004.        </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">6. Vergos F, Kinis    A, Lonergan P, Sharif H, Gallagher H, Gordon I. Effect of recovery method on    the yield of embryos after <I>in vitro</I> maturation and fertilization of the    bovine follicles oocyte. J Reprod Fert Abst. 1990;6:68.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">7. De Loos FAM,    Jeunken M, Zeinstra E, Bevers MM. Structural aspects of bovine maturation in    vitro. Mol Reprod. 1992;31:208-214.    <BR>       <BR>   </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">8. Lonergan P,    Sharif H, Monagan P, Wahid H, Gallagher A, Gordon I. The effect of recovery    method on the types of fameless oocytes obtained for in vitro maturation. Theriogenology.    1991;35(1):231.     </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">9. Ohashi OM, Miranda    MS, Dantas JK, Santos SSD, Sousa JS. La transferencia de embriones y <I>la</I>    fertilizaci&oacute;n in <I>vitro</I> en el programa de b&uacute;falo de la Amazon&iacute;a    En: 1er Simposio de America Buffalo, <I>Actas.</I> 2002;p. 217-224. Bel&eacute;m.        </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">10.Ohashi OM, Miranda    MS, Sousa JS, Sousa AJO, Cordeiro MS, Biondi CF. Produ&ccedil;&atilde;o in vitro    de embri&atilde;o bubalino. La producci&oacute;n in vitro de embriones de b&uacute;falo.    Revista Brasileira Reproducci&oacute;n Animal. 2003;27:103-108.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">11.Boni R. In-vitro    production in bovine and buffalo species. Buffalo J. 1994;2(89):147-160.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">12.Das GK, Jain    GC, Solanki DN, Tripathi VN. Efficacy of various collection methods for oocyte    retrieval in buffalo. Theriogenology. 1996;46:1403-1410.     </font>      <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">13.Huang Fenxiang,    Pang Chunying, Zhang Xiufang editors. In vitro fertilization and subsequent    Embryo development using oocytes derived from abattoir ovaries in different    seasons in buffalo. China Animal Husbandry &amp; Veterinary Medicine. 2008;35:76-78.        </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">14.Neglia G, Gasparrini    B, Caracciolo di Brienza V, Di Palo R, Campanile G., editors. First pregnancies    established from vitrified Blastocysts entirely produced <I>in-vitro</I> in    mediterranian Italian buffalo cows (<I>Bubalus bubalis</I>). Theriogenology.    2003; p 374.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">15.Leal LS, Moya-Ara&uacute;jo    CF, Fernandes CB, Martins LR, Landim-Alvarenga FC, Oba E. Evaluation of recovery,    quality and <I>in vitro </I>nuclear maturation of oocytes obtained from Buffalo    and Bovine Ovaries. 9no Congreso de b&uacute;falo, Argentina 2010.     </font>     <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">16.Totey SM, Singh    G, Taneja H, Pawshe CH, Talwar GP. Maduraci&oacute;n <I>in vitro,</I> la fertilizaci&oacute;n    y el desarrollo folicular de los ovocitos de b&uacute;falo <I>(Bubalus bubalis).</I>    J Reprod Fert<I>.</I> 1992;95:597-607.    </font>     <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>(Recibido 20-1-2011;    Aceptado 10-1-2012)</B></font>       ]]></body><back>
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