<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>0253-570X</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Revista de Salud Animal]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Rev Salud Anim.]]></abbrev-journal-title>
<issn>0253-570X</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S0253-570X2013000300006</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Detección de Mycobacterium avium paratuberculosis en caprinos ubicados en una zona semi-árida en el municipio de Tecozautla Hidalgo]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Detection of Mycobacterium avium paratuberculosis in goats from a semi-arid region in Tecozautla Hidalgo municipality]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Méndez Olvera]]></surname>
<given-names><![CDATA[Estela Teresita]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ramírez Lorenzo]]></surname>
<given-names><![CDATA[Ingrid Nerina]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Rojas Serranía]]></surname>
<given-names><![CDATA[Nora]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Olivares Orozco]]></surname>
<given-names><![CDATA[Javier Lorenzo]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Martínez Gómez]]></surname>
<given-names><![CDATA[Daniel]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Universidad Autónoma Metropolitana-Xochimilco Departamento de Producción Agrícola y Animal Laboratorio de Microbiología Agropecuaria]]></institution>
<addr-line><![CDATA[ ]]></addr-line>
<country>México D.F</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>12</month>
<year>2013</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>12</month>
<year>2013</year>
</pub-date>
<volume>35</volume>
<numero>3</numero>
<fpage>182</fpage>
<lpage>188</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S0253-570X2013000300006&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S0253-570X2013000300006&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S0253-570X2013000300006&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[La paratuberculosis o «Enfermedad de Johne» es una enfermedad infecciosa que afecta a los rumiantes domésticos principalmente ovinos, bovinos y caprinos. El agente etiológico de dicha enfermedad es Mycobacterium avium paratuberculosis (Map) y los principales signos de esta enfermedad son pérdida de peso y diarrea crónica, ocasionados como consecuencia de la enteritis granulomatosa producida por Map. Esta enfermedad ocasiona grandes pérdidas económicas en el sector pecuario. En Estados Unidos se estimó para el 2001, una pérdida anual de 150,000 millones de dólares; en México no hay estudios económicos de las pérdidas ocasionadas por esta enfermedad y son pocos los trabajos sobre la presencia del agente etiológico en distintas áreas. El objetivo de este trabajo fue identificar la presencia de Map en heces y muestras de suero de caprinos, utilizando técnicas de diagnóstico como PCR, ELISA y Tinción Ziehl-Neelsen (ZN). Se analizaron 139 muestras de heces y suero de diferentes hatos para la identificación de Map. Para la detección de Map por PCR se utilizaron dos pares de cebadores que detectan un segmento de la IS900, específica para Map. De las 139 muestras analizadas, siete de ellas fueron positivas por PCR, seis fueron positivas por la tinción ZN. En la prueba de ELISA cinco muestras resultaron positivas. Este trabajo es el primer reporte de la presencia de Map en Tecozautla Hidalgo y muestra la utilidad de las pruebas de diagnóstico molecular para establecer la presencia de agentes infecciosos que afectan la producción. También propone una nueva metodología de extracción de ADN de heces, la cual es compatible con métodos de detección basados en la técnica de PCR.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Paratuberculosis or «Johne's disease» is an infectious disease that affects domestic ruminants mainly sheep, cattle and goats. The etiologic agent of this disease is Mycobacterium avium paratuberculosis (Map). The main signs of this disease include weight loss and chronic diarrhea caused as a result of granulomatous enteritis caused by Map. This disease causes severe economic losses in the livestock sector. In the United States it was estimated for 2001, an annual loss of 150.000 million dollars; in Mexico, there are no economic studies of the losses caused by this disease and there are few studies on the presence of the etiologic agent in different areas. The aim of this study was to identify the presence of Map in feces and serum samples from goats, using diagnostic techniques such as PCR, ELISA and Ziehl-Neelsen stain (ZN). One hundred-thirty nine samples of feces and serum from different herds were analyzed to identify Map. For the detection of Map by PCR, two primer pairs detecting a segment of the IS900-specific Map were used. From the 139 samples tested, seven of them were positive by PCR and six by ZN staining. In the ELISA test, five were positive. This work is the first report about the presence of Map in Tecozautla Hidalgo, and shows the utility of molecular diagnostic tests to establish the presence of infectious agents affecting production. It also proposes a new methodology for extracting DNA from feces, which is compatible with detection methods based on PCR.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[Mycobacterium avium paratuberculosis]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[cabras]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[diagnóstico]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[PCR]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Mycobacterium avium paratuberculosis]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[goats]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[diagnostic]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[PCR]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>ART&Iacute;CULO    ORIGINAL</B></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="4">Detecci&oacute;n    de <I>Mycobacterium avium paratuberculosis</I> en caprinos ubicados en una zona    semi-&aacute;rida en el municipio de Tecozautla Hidalgo</font></B></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><font size="3">Detection    of <i>Mycobacterium avium paratuberculosis</i> in goats from a semi-arid region    in Tecozautla Hidalgo municipality </font></b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Estela Teresita    M&eacute;ndez Olvera, Ingrid Nerina Ram&iacute;rez Lorenzo, Nora Rojas Serran&iacute;a,    Javier Lorenzo Olivares Orozco, Daniel Mart&iacute;nez G&oacute;mez </b></font>    <B></B> </p>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Laboratorio de    Microbiolog&iacute;a Agropecuaria, Departamento de Producci&oacute;n Agr&iacute;cola    y Animal, Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana-Xochimilco. Calzada del    Hueso 1100 Colonia Villaquietud CP 04960 M&eacute;xico D.F. Correo electr&oacute;nico:    <U><a href="mailto:dmartin@correo.xoc.uam.mx">dmartin@correo.xoc.uam.mx</a></U>.</font>      <P>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<P>&nbsp; <hr noshade size="1">     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>RESUMEN</B></font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La paratuberculosis    o &#171;Enfermedad de Johne&#187; es una enfermedad infecciosa que afecta a    los rumiantes dom&eacute;sticos principalmente ovinos, bovinos y caprinos. El    agente etiol&oacute;gico de dicha enfermedad es <I>Mycobacterium avium paratuberculosis    (Map) y </I>los principales signos de esta enfermedad son p&eacute;rdida de    peso y diarrea cr&oacute;nica, ocasionados como consecuencia de la enteritis    granulomatosa producida por <I>Map</I>. Esta enfermedad ocasiona grandes p&eacute;rdidas    econ&oacute;micas en el sector pecuario. En Estados Unidos se estim&oacute;    para el 2001, una p&eacute;rdida anual de 150,000 millones de d&oacute;lares;    en M&eacute;xico no hay estudios econ&oacute;micos de las p&eacute;rdidas ocasionadas    por esta enfermedad y son pocos los trabajos sobre la presencia del agente etiol&oacute;gico    en distintas &aacute;reas. El objetivo de este trabajo fue identificar la presencia    de <I>Map</I> en heces y muestras de suero de caprinos, utilizando t&eacute;cnicas    de diagn&oacute;stico como PCR, ELISA y Tinci&oacute;n Ziehl-Neelsen (ZN). Se    analizaron 139 muestras de heces y suero de diferentes hatos para la identificaci&oacute;n    de <I>Map</I>. Para la detecci&oacute;n de <I>Map</I> por PCR se utilizaron    dos pares de cebadores que detectan un segmento de la IS900, espec&iacute;fica    para <I>Map</I>. De las 139 muestras analizadas, siete de ellas fueron positivas    por PCR, seis fueron positivas por la tinci&oacute;n ZN. En la prueba de ELISA    cinco muestras resultaron positivas. Este trabajo es el primer reporte de la    presencia de <I>Map</I> en Tecozautla Hidalgo y muestra la utilidad de las pruebas    de diagn&oacute;stico molecular para establecer la presencia de agentes infecciosos    que afectan la producci&oacute;n. Tambi&eacute;n propone una nueva metodolog&iacute;a    de extracci&oacute;n de ADN de heces, la cual es compatible con m&eacute;todos    de detecci&oacute;n basados en la t&eacute;cnica de PCR. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Palabras clave:</B>    <I>Mycobacterium avium paratuberculosis</I>, cabras, diagn&oacute;stico, PCR.</font> <hr noshade size="1">     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>ABSTRACT</b></font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Paratuberculosis    or &#171;Johne's disease&#187; is an infectious disease that affects domestic    ruminants mainly sheep, cattle and goats. The etiologic agent of this disease    is <I>Mycobacterium avium paratuberculosis</I> <I>(Map)</I>. The main signs    of this disease include weight loss and chronic diarrhea caused as a result    of granulomatous enteritis caused by <I>Map</I>. This disease causes severe    economic losses in the livestock sector. In the United States it was estimated    for 2001, an annual loss of 150.000 million dollars; in Mexico, there are no    economic studies of the losses caused by this disease and there are few studies    on the presence of the etiologic agent in different areas. The aim of this study    was to identify the presence of <I>Map</I> in feces and serum samples from goats,    using diagnostic techniques such as PCR, ELISA and Ziehl-Neelsen stain (ZN).    One hundred-thirty nine samples of feces and serum from different herds were    analyzed to identify <I>Map</I>. For the detection of <I>Map</I> by PCR, two    primer pairs detecting a segment of the IS900-specific <I>Map</I> were used.    From the 139 samples tested, seven of them were positive by PCR and six by ZN    staining. In the ELISA test, five were positive. This work is the first report    about the presence of <I>Map</I> in Tecozautla Hidalgo, and shows the utility    of molecular diagnostic tests to establish the presence of infectious agents    affecting production. It also proposes a new methodology for extracting DNA    from feces, which is compatible with detection methods based on PCR. </font>  </p>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Key words:</B>    <I>Mycobacterium avium paratuberculosis</I>, goats, diagnostic, PCR. </font>  <hr noshade size="1">     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></B>    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La paratuberculosis    (PTB) o &#171;Enfermedad de Johne&#187;, es una enfermedad bacteriana producida    por <I>Mycobacterium avium paratuberculosis (Map)</I>, que afecta a rumiantes    dom&eacute;sticos y salvajes, principalmente bovinos, ovinos y caprinos. El    g&eacute;nero <I>Mycobacterium </I>agrupa bacilos &aacute;cido alcohol resistentes,    aer&oacute;bicos, no esporulados, no m&oacute;viles y desprovistos de c&aacute;psula    (1). <I>Mycobacterium avium paratuberculosis </I>causa enteritis y linfoadenitis    granulomatosa. La formaci&oacute;n de granulomas se observa principalmente en    n&oacute;dulos linf&aacute;ticos, pulmones, h&iacute;gado, intestinos, bazo,    pleura y peritoneo (1). La caracter&iacute;stica<B> </B>principal de la PTB    es la p&eacute;rdida de peso progresiva y la presencia de diarrea cr&oacute;nica    (1,2). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La paratuberculosis    tiene una distribuci&oacute;n mundial y actualmente se considera una enfermedad    emergente a pesar de su reconocimiento desde hace m&aacute;s de un siglo (3,    4, 5, 6,7).<B> </B>Esta enfermedad produce grandes p&eacute;rdidas econ&oacute;micas,    pero debido a que s&oacute;lo en algunas ocasiones existen manifestaciones cl&iacute;nicas,    su importancia ha sido subvalorada (1,4). En M&eacute;xico existen reportes    de paratuberculosis en ganado vacuno en el estado de Veracruz con un 13% de    incidencia. En el caso de ganado caprino se han reportado casos en distintos    estados de la Rep&uacute;blica, incluso se ha calculado una seroprevalencia    de 4.33% para el estado de Guanajuato, un 12% para Quer&eacute;taro y un 15%    para el estado de M&eacute;xico (8). No obstante, en varias zonas rurales no    existen reportes epidemiol&oacute;gicos, espec&iacute;ficamente para la zona    de estudio de este trabajo. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las lesiones intestinales    presentes en la paratuberculosis ovina y caprina se han clasificado en varios    tipos, con base en la distribuci&oacute;n de los granulomas y los grupos celulares    encontrados, de esta forma se describen tres subtipos (9). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El diagn&oacute;stico    de la paratuberculosis est&aacute; basado en la identificaci&oacute;n de <I>Map</I>    en muestras cl&iacute;nicas. De manera cl&aacute;sica el aislamiento se realiza    en medios de cultivo a los que se adiciona micobactina; sin embargo, en pocos    casos se logra el aislamiento del microorganismo (10). Tambi&eacute;n se han    empleado diferentes m&eacute;todos moleculares, los cuales ponen en evidencia    la presencia de ADN del microorganismo (11,12). En el diagn&oacute;stico molecular    de la paratuberculosis se han empleado diferentes t&eacute;cnicas basadas en    la amplificaci&oacute;n de la secuencia de inserci&oacute;n 900 (IS900) por    medio de la t&eacute;cnica de PCR, exitosa en la detecci&oacute;n de <I>Mycobacterium    avium paratuberculosis </I>(13,14,15,16). Otra prueba diagn&oacute;stica para    la paratuberculosis, es la prueba de ELISA para la detecci&oacute;n de anticuerpos    (13). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">No obstante, el    desarrollo de un gran n&uacute;mero de sistemas de diagn&oacute;stico los datos    epidemiol&oacute;gicos siguen siendo insuficientes. En este trabajo se emplearon    las pruebas de ELISA y PCR, as&iacute; como la tinci&oacute;n de Ziehl Neelsen    para establecer la presencia de <I>Map</I> en distintos hatos de caprinos ubicados    en una zona caprinocultora del estado de Hidalgo.</font>     <P>&nbsp;  <H1> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">MATERIALES    Y M&Eacute;TODOS</font></B> </font></H1>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Cepas</B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se emple&oacute;    una cepa de campo de <I>Mycobacterium avium paratuberculosis</I>, donada por    el Dr. Marco Antonio Santill&aacute;n del CENID Microbiolog&iacute;a INIFAP,    esta cepa fue utilizada como control positivo en el ensayo de PCR. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Muestras</B>    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">A finales del a&ntilde;o    2008, se colectaron 139 muestras de heces y sangre de caprinos de 1 a 3.5 a&ntilde;os    de edad en la comunidad La Mesilla, en el municipio de Tecozautla. Este municipio    se ubica en el Estado de Hidalgo, entre los paralelos 20&#176; 48&#180; de latitud,    -99&#176; 67&#180;&#160;de longitud, a una altitud de 1,890 msnm. En esta zona    se ubican productores de tipo rural con producciones con un bajo nivel de tecnificaci&oacute;n    con escasas pr&aacute;cticas de medicina preventiva y la producci&oacute;n caprina    es de tipo extensivo. Se trabajaron con 8 hatos diferentes, todos sospechosos    a <I>Map</I>. Las heces fueron colocadas en bolsas y las muestras de sangre    en tubos con vac&iacute;o sin anticoagulante. Despu&eacute;s de colectadas,    las muestras fueron colocadas en un termo con hielo para su conservaci&oacute;n    y posterior an&aacute;lisis en el Laboratorio de Microbiolog&iacute;a Agropecuaria    de la Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana Unidad Xochimilco. </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Tinci&oacute;n    Ziehl-Neelsen (ZN)</B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Todas las muestras    de heces fueron analizadas por medio de la tinci&oacute;n especial para &aacute;cido    alcohol resistente (17), la cual b&aacute;sicamente pone en evidencia la presencia    de bacilos &aacute;cidos alcohol-resistente, compatibles con <I>Map.</I> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Extracci&oacute;n    de ADN de muestras de heces</B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En un microtubo    se mezclaron cada una de las muestras de heces (200 mg), con 800 &#181;l de    soluci&oacute;n amortiguadora de fosfatos (1.9 mM NaH<SUB>2</SUB>PO<SUB>4</SUB>,    8.1 mM Na<SUB>2</SUB>HPO<SUB>4</SUB>, 154 mM NaCl) y se centrifugaron a 11 200    g durante 2 minutos. Los sobrenadantes fueron transferidos a tubos nuevos y    se les adicion&oacute; 500 &#181;l de soluci&oacute;n de lisis (5M Tiocianato    de Guanidina, 10% Sarkosyl), dejando reposar la mezcla 15 minutos en hielo.    Transcurrido este tiempo se adicion&oacute; 500 &#181;l de cloroformo y se mezcl&oacute;    por inversi&oacute;n varias veces. Posteriormente, los tubos fueron centrifugados    a 11 200 g por 2 minutos y el sobrenadante fue transferido a un tubo nuevo.    A este sobrenadante se le agreg&oacute; 10 &#181;l de poliacrilamida al 0.25%    (0.25% poliacrilamida, 40 mM Tris HCl pH 8.0, 20 mM Acetato de sodio, 1 mM EDTA    pH 8.0) y 400 &#181;l de isopropanol puro, el cual se mezcl&oacute; por inversi&oacute;n    siete veces. Los tubos fueron colocados en hielo durante 5 minutos y despu&eacute;s    se centrifugaron a 4&#176;C a 12 200 g durante 10 minutos. Finalmente el sobrenadante    fue retirado y la pastilla obtenida se sec&oacute; en una incubadora a 37&#176;C,    para agregar posteriormente 15 &#181;l de soluci&oacute;n TE (10mM Tris HCl    pH 8.0, 1 mM EDTA). El ADN obtenido fue visualizado por medio de electroforesis    en geles de agarosa al 0.8% te&ntilde;idos con bromuro de etidio (0.5 ug/ml)    y documentado mediante fotograf&iacute;a. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>PCR anidado    para la detecci&oacute;n de <I>Map</I></B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para la primer    amplificaci&oacute;n se emplearon los iniciadores externos IS 900-F (5' TGATCTGGA    CAATGACGGTTACGGA 3') e IS 900- R (5' CGCGGCACGGCTCTTGTT 3'), los cuales amplifican    un producto de 563 pb (18). La reacci&oacute;n de PCR conten&iacute;a: 45 &#181;l    de mezcla para PCR (22mM Tris-HCl pH 8.4, 1.65 mM MgCl<SUB>2</SUB>, 220 uM dGTP,    220 dATP, 220 uM dCTP, 220uM dTTP, 2 U de <I>Taq </I>polimerasa (Promega) 300    pM del primer IS900-F, 300 pM del primer IS900-R y 2 &#181;l de muestra de ADN.    Las condiciones de los ciclos de la PCR fueron: desnaturalizaci&oacute;n inicial    de 94&#176; C por 3 minutos, para continuar despu&eacute;s con 35 ciclos de    94&#176; C por 1 minuto, 56&#176; C por 1 minuto y 72&#176;C por 1 minuto. Para    la segunda amplificaci&oacute;n (PCR anidado) se tomaron 5 &#181;l del producto    amplificado y se agregaron a una nueva reacci&oacute;n de PCR, ahora con los    iniciadores internos IS 900-I-F (5' GCCGCGCTGCTGGAGTTGA 3') e IS 900-I-R (5'    AGCGTCTTTGGCGTCGGTCTTG 3'), los cuales generan un producto de 210 pb, las condiciones    de este ciclo de PCR fueron las mismas. Los productos obtenidos de esta segunda    amplificaci&oacute;n fueron visualizados mediante electroforesis en geles de    agarosa al 1% te&ntilde;idos en bromuro de etidio (18). </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>ELISA</B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Solo se utilizaron    los sueros de los animales pertenecientes al hato con amplificaciones positivas    para <I>Map</I>. Se emple&oacute; un sistema comercial &#171;Paratuberculosis    Screening Ab kit&#187; (IDEXX Laboratories, Inc., Westbrook, ME) (19) siguiendo    las especificaciones del fabricante, para la realizaci&oacute;n de la t&eacute;cnica.</font>     <P>&nbsp;  <H1> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">RESULTADOS</font></B>    </font></H1>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Extracci&oacute;n    de ADN de muestras de heces</B> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se realiz&oacute;    el procedimiento de extracci&oacute;n y visualizaci&oacute;n de ADN a las 139    muestras. De estas muestras, solo en 54 hubo presencia clara de ADN. En la (<a href="#f1">Figura    1</a>) se observa el ADN extra&iacute;do de algunas muestras, como se aprecia    en esta figura, el ADN obtenido muestra una ligera degradaci&oacute;n, la cual    no afect&oacute; el desarrollo de la t&eacute;cnica de PCR, tambi&eacute;n se    logr&oacute; apreciar en algunas muestras la presencia de ARN, lo cual es normal    dado el protocolo de extracci&oacute;n empleado.</font>      <P align="center"><img src="/img/revistas/rsa/v35n3/f0106313.gif" width="390" height="404">    <a name="f1"></a>     
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>Tinci&oacute;n    Ziehl-Neelsen (ZN)</B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En el an&aacute;lisis    de las muestras por la tinci&oacute;n ZN, de las 139 muestras analizadas 6 fueron    positivas a la tinci&oacute;n, es decir se apreciaron bacilos &aacute;cido alcohol-resistentes    compatibles con <I>Map</I> (<a href="/img/revistas/rsa/v35n3/f0206313.jpg">Figura    2</a>, <a href="#t1">Tabla 1</a>). Para el hato A, las 4 muestras positivas    representan el 20%, mientras que para el hato D se observ&oacute; el 4% de muestras    positivas a la tinci&oacute;n, y por &uacute;ltimo en el hato H se obtuvo una    muestra positiva a la tinci&oacute;n, lo que representa el 8.3% del total del    hato. </font>      
<P align="center"><img src="/img/revistas/rsa/v35n3/t0106313.jpg" width="385" height="387">    <a name="t1"></a>      
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>PCR anidado</B>    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Previo a su empleo    con las muestras, la t&eacute;cnica de PCR fue estandarizada empleando ADN de    una cepa de <I>Map</I>. Este ADN fue empleado en todos los an&aacute;lisis como    control positivo. De todas las muestras analizadas, en 7 se obtuvieron resultados    positivos en la PCR anidado (<a href="#f3">Figura 3)</a>. Es de se&ntilde;alar    que estas 7 muestras fueron del hato A, coincidiendo con tres muestras positivas    a la tinci&oacute;n ZN y cinco a ELISA (<a href="#t1">Tabla 1</a>). Estas siete    muestras representan el 5.03% del total de las muestras; y el 35% del total    de muestras del hato 1, donde hubo una mayor frecuencia de muestras positivas    a <I>Map</I>. </font>      <P align="center"><img src="/img/revistas/rsa/v35n3/f0306313.gif" width="396" height="476">    <a name="f3"></a>     
<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B>An&aacute;lisis    de los sueros por ELISA</B> </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">S&oacute;lo se    analizaron los sueros de los hatos positivos a <I>Map</I> por PCR y tinci&oacute;n    de ZN, los resultados obtenidos se muestran en la <a href="#t2">Tabla 2</a>,    donde se incluyen valores de referencia negativos y positivos. Utilizando estos    datos se estableci&oacute; un punto de corte de 0.438, de acuerdo a lo propuesto    por Kurstak (20). Considerando este valor, las muestras A3, A18, A8, A11 y A16    fueron positivas. Para el caso de las muestras A11y A18 los resultados coinciden    con los obtenidos en la prueba de PCR.</font>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="center"><img src="/img/revistas/rsa/v35n3/t0206313.jpg" width="391" height="536">    <a name="t2"></a>     
<P>&nbsp;  <H1> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">DISCUSI&Oacute;N</font></B>    </font></H1>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La paratuberculosis    es una enfermedad infecciosa de distribuci&oacute;n mundial que afecta negativamente    a la producci&oacute;n pecuaria. En M&eacute;xico la situaci&oacute;n sobre    la incidencia de esta enfermedad es desconocida y son pocos los reportes que    se tienen en peque&ntilde;os rumiantes. En este trabajo se reporta la presencia    de <I>Map</I> en un hato caprino en Tecozautla, Hidalgo, siendo el primer reporte    de <I>Map</I> en esta &aacute;rea. Previamente Ch&aacute;vez <I>et al.</I> (8)    realizaron una b&uacute;squeda de este microorganismo utilizando diferentes    metodolog&iacute;as en un hato caprino localizado en el valle de M&eacute;xico.    Este trabajo de conjunto con el anterior constituyen los primeros reportes de    <I>Map </I>en caprinos. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para la determinaci&oacute;n    de la presencia de un agente infeccioso en una poblaci&oacute;n se han dise&ntilde;ado    distintas metodolog&iacute;as, l&oacute;gicamente la primera de ellas es el    aislamiento; sin embargo, para muchos microorganismos pat&oacute;genos, especialmente    los del g&eacute;nero <I>Mycobacterium </I>spp., el aislamiento es dif&iacute;cil    y representa un riesgo pues algunas especies dentro de este g&eacute;nero son    consideradas zoon&oacute;ticas (10,18). En este trabajo se utilizaron m&eacute;todos    directos e indirectos, en el primer caso se decidi&oacute; utilizar un m&eacute;todo    molecular basado en la t&eacute;cnica de PCR el cual pone en evidencia la presencia    de ADN en muestras cl&iacute;nicas. Este m&eacute;todo tiene la ventaja adem&aacute;s    de que al no trabajar directamente con el agente es un m&eacute;todo seguro.    Con esta metodolog&iacute;a se lograron identificar siete muestras positivas,    de un total de 139. Las muestras positivas eran de animales pertenecientes al    mismo hato, donde se estudiaron 20 muestras. Ch&aacute;vez <I>et al. </I>(8)    trabajando con un solo hato de 27 animales, lograron el aislamiento en 4 casos    y tardaron aproximadamente 14 semanas; en nuestro caso, la identificaci&oacute;n    de animales positivos solo requiri&oacute; dos d&iacute;as. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En este trabajo    tambi&eacute;n se presenta un nuevo protocolo de extracci&oacute;n de ADN a    partir de muestras de heces, este procedimiento utiliza Isotiocianato de guanidina    y permite extraer eficientemente &aacute;cidos nucleicos. Este m&eacute;todo    no hab&iacute;a sido utilizado antes, pues en varios de los trabajos donde se    emplean como muestras heces se utilizan sistemas comerciales que incrementan    el costo del an&aacute;lisis (21,22); sin embargo, en este caso el m&eacute;todo    desarrollado tiene un bajo costo. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La observaci&oacute;n    directa en muestras cl&iacute;nicas de microorganismos del g&eacute;nero <I>Mycobacterium</I>    (baciloscop&iacute;a) es otro m&eacute;todo de identificaci&oacute;n, el cual    aprovecha la capacidad de estas bacterias para retener el colorante primario,    a&uacute;n despu&eacute;s de la decoloraci&oacute;n con alcohol &aacute;cido,    situaci&oacute;n que solo los organismos &aacute;cido alcohol resistentes (AAR)    pueden mostrar, descartando otros g&eacute;neros bacterianos presentes en heces,    como bacilos gran negativos o positivos. Zimmer <I>et al.</I> (23) reportaron    en el a&ntilde;o 1999,<I> </I>que la prueba de tinci&oacute;n de Ziehl-Neelsen    tiene una sensibilidad del 49,3% en animales con signos cl&iacute;nicos y del    19,3% en animales subcl&iacute;nicos. Cabe aclarar en este punto que esta misma    prueba en cortes histol&oacute;gicos ha servido para establecer de manera contundente    la relaci&oacute;n de <I>Mycobacterium</I> spp. con el desarrollo de lesiones    granulomatosas en el intestino. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Por otra parte    Tripathi <I>et al. </I>(16) trabajando con muestras de intestino de cabras lograron    establecer una correlaci&oacute;n del 80% en muestras de intestino con lesiones    e histolog&iacute;a sugerentes a <I>Map</I> y amplificaci&oacute;n de la IS900    en la prueba de PCR. En este trabajo se mostr&oacute; la presencia de bacilos    AAR en 6 muestras de heces, considerando los datos anteriores podr&iacute;a    decirse que estos animales eran positivos a <I>Map</I>. De manera similar a    otros trabajos, los resultados obtenidos en la baciloscop&iacute;a se correlacionan    con los resultados obtenidos en la PCR. </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Whittington <I>et    al.</I> (24) reportaron que <I>Mycobacterium avium paratuberculosis</I> no puede    ser detectado mediante t&eacute;cnicas de aislamiento en animales con menos    de dos a&ntilde;os de edad que est&aacute;n infectados con la bacteria, ya que    eliminan niveles m&iacute;nimos de <I>Mycobacterium avium paratuberculosis</I>.    En este aspecto en el presente trabajo se obtuvieron siete muestras positivas    a <I>Mycobacterium</I> por la t&eacute;cnica de PCR en muestras de animales    menores de tres a&ntilde;os, estableciendo que esta t&eacute;cnica podr&iacute;a    utilizarse en animales j&oacute;venes, para diagnosticar la paratuberculosis.    </font>     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Finalmente, en    lo referente a los datos obtenidos en el ELISA, solo se analiz&oacute; el hato    positivo por PCR; en este hato la incidencia de paratuberculosis fue del 25%.    Sin embargo, existieron animales muy cercanos al punto de corte (20), los cuales    fueron negativos en este trabajo, por lo que el valor de incidencia podr&iacute;a    ser m&aacute;s alto. En este aspecto si bien la prueba serol&oacute;gica ELISA    tiene una sensibilidad m&aacute;s alta, es importante aclarar que existen tambi&eacute;n    distintos factores que interfieren en ella, como el estado del animal. Tripathi    <I>et al.</I> (16) estudiaron, mediante PCR y ELISA animales infectados, y encontraron    que para algunos casos, no hubo presencia de t&iacute;tulos altos, incluso algunos    eran negativos, lo que coincide con los resultados vistos en este trabajo. </font>      <P>&nbsp; <H1> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">CONCLUSIONES</font></B>    </font></H1>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se demostr&oacute;    la presencia de<I> Mycobacterium avium</I> <I>paratuberculosis</I> con la prueba    de diagn&oacute;stico de PCR basada en la detecci&oacute;n de la secuencia de    inserci&oacute;n IS900, la tinci&oacute;n de ZN y el ELISA, en un hato caprino    en Tecozautla, Hidalgo. Es necesario que se realicen m&aacute;s estudios en    diferentes &aacute;reas de M&eacute;xico para descartar o confirmar la presencia    de <I>Map</I>, ya que no existe la suficiente informaci&oacute;n con respecto    a <I>Map</I> en cabras.</font>     <P>&nbsp;     <P> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><B><font size="3">REFERENCIAS</font></B>    </font>      <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">1. Harris NB,      Barletta RG. <I>Mycobacterium avium</I> subsp. <I>paratuberculosis</I> in      Veterinary Medicine. Clin Microbiol Rev. 2001;14(3):489-512.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2. Villarino      MA, Scott HM, Jordan ER. Influence of parity at time of detection of serologic      antibodies to <I>Mycobacterium avium</I> subspecies <I>paratuberculosis</I>      on reduction in daily and lifetime milk production in Holstein cows. J Anim      Sci. 2011;89:267-276.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">3. Weigand PV,      Goethe R. Pathogenesis of <I>Mycobacterium avium</I> subspecies <I>paratuberculosis</I>      infections in ruminants: still more questions than answers. Microb Infect.      1999;1(13):1121-1127.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">4. Carslake D,      Grant W, Green Laura E, Cave J, Greaves J, Keeling M, et al. Endemic cattle      diseases: comparative epidemiology and governance. Phil Trans R Soc B. 2011;366:1975-1986.          </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">5. Fiorentino      MA, Gioffr&eacute; A, Cirone K, Morsella C, Alonso B, Delgado F, et al. First      isolation of <I>Mycobacterium avium</I> subsp. <I>paratuberculosis </I>in      a dairy goat in Argentina: Pathology and molecular characterization. Small      Rum Res. 2012;108(1-3):133-136.    &#160; </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">6. Maheshwari      A, Fakhruddin F, Tanwar RK, Chahar A, Singh AP. Seroprevalence of paratuberculosis      in goats in Bikaner. Vet Pract. 2012;13(1):28-29.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">7. Medeiros L,      Junior FG, Almeida AP, Lucena EA, Riet-Correa F. Paratuberculosis in goats      and sheep in the state of Paraiba. Pesquisa Veterinaria Brasileira. 2012;32(2):111-115.          </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">8. Ch&aacute;vez      GG, Trigo TF, Svastova P, Pavlik I. Identificaci&oacute;n del polimorfismo      gen&eacute;tico de aislamientos de <I>Mycobacterium avium paratuberculosis</I>      de caprinos del centro de M&eacute;xico. Vet Mex. 2004;35(1):72-82.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">9. Preziuso S,      Magi GE, Renzoni G. Detection of <I>Mycobacterium avium</I> subsp. <I>paratuberculosis</I>      in intestinal and mammary tissues and in lymph nodes of sheep with different      techniques and its relationship with enteric lesions. Small Rum Res. 2012;105:295-299.          </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">10.De Juan L&Agrave;J,      Romero B, Bezos J, Castellanos E, Aranaz A, et al. Comparison of Four Different      Culture Media for Isolation and Growth of Type II and Type I/III <I>Mycobacterium      avium</I> <I>paratuberculosis</I> Strains Isolated from Cattle and Goats.      Env Microb. 2006;72 (9):5927-5932.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">11.Hailat N,      Fayyad A, Ababneh M, Hananeh W, Rezig FE, Jaradat S. PCR- restriction endonuclease      analysis of <I>Mycobacterium avium</I> subsp. <I>paratuberculosis</I> isolates      from goats , sheep and cattle in Jordan. Comp Clin Pathol. 2012;21(5):755-760.          </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">12.Forde T, Kutz      S, de Buck J, Warren A, Ruckstuhl K, Pybus M, et al. Occurrence, diagnosis,      and strain typing of <I>Mycobacterium avium</I> subspecies <I>paratuberculosis</I>      infection in rocky mountain bighorn sheep (<I>Ovis canadensis canadensis</I>)      in southwestern Alberta. J Wildlife Dis. 2012;48(1):1-11.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">13.D&iacute;az      FO, Banda VR, Jaramillo LM, Arriaga CD, Gonz&aacute;lez DS, Estrada C. Identificaci&oacute;n      de bovinos portadores de <I>Mycobacterium bovis</I> aplicando t&eacute;cnicas      inmunol&oacute;gicas y moleculares. Vet Mex. 2003;34(1):13-26.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">14.Stanley EC,      Mole RJ, Smith RJ, Glenn SM, Barer MR, et al. Development of a New, Combined      Rapid Method Using Phage and PCR for Detection and Identification of Viable      <I>Mycobacterium paratuberculosis </I>Bacteria within 48 Hours. Appl Envir      Microb. 2007;73(6):1851-1857.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">15.Collins DM,      May De Zoete, Cavaignac SM.<I> Mycobacterium avium</I> <I>paratuberculosis</I>      Strains from Cattle and Sheep Can Be Distinguished by a PCR Test Based on      a Novel DNA Sequence Difference. J Clin Microb. 2002;40(12):4760-4762.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">16.Tripathi BN,      Periasamy S, Paliwal OP, Singh N. Comparison of IS900 tissue PCR, bacterial      culture, johnin and serological tests for diagnosis of naturally occurring      paratuberculosis in goats. Vet Microb. 2006;116:129-137.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">17.Carter GR.      Diagnostic procedures in veterinary bacteriology and mycology. 1984; 4th Edition,      Charles C Thomas Publisher, EUA.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">18.Erume J, Spergser      J, Rosengarten R. Rapid detection of <I>Mycobacterium avium</I> p<I>aratuberculosis</I>      from cattle and zoo animals by Nested PCR. African Health Sci. 2001;1(2):83-89.          </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">19.Collins MT,      Scott JW, Petrini KR, Collins JE, Schultz RD, Whitlock RH. Evaluation of Five      Antibody Detection Tests for Diagnosis of Bovine Paratuberculosis. Clin Diagn      Lab Immunol. 2005;12(6): 685-692.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">20.Kurstak E.      Enzyme Immunodiagnosis. 1986. Canada, Academic Press.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">21.Wells SJ,      Collins MT, Faaberg KS, Wees C, Tavornpanich S, Petrini KR, et al. Evaluation      of a Rapid Fecal PCR Test for Detection of <I>Mycobacterium avium</I> p<I>aratuberculosis</I>      in Dairy Cattle. Clinic Vac Immunol. 2006;13(10):1125-1130.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">22.Stabel JR,      Bannantine JP. Development of a Nested PCR Method Targeting a Unique Multicopy      Element, ISMap02, for Detection of <I>Mycobacterium avium</I> <I>paratuberculosis</I>      in Fecal Samples. J Clin Microb. 2005;43(9):4744-4750.     </font>       <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">23.Zimmer K,      Dr&auml;ger KG, Klawonn W, Hess RG. Contribution to the diagnosis of Johne's      disease in cattle. Comparative studies on the validity of Ziehl-Neelsen staining,      faecal culture and a commercially available DNA-Probe test in detecting <I>Mycobacterium      paratuberculosis</I> in faeces from cattle. Zentralbl Vet Med B. 1999;46(2):137-40.          </font>        <!-- ref --><P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">24.Whittington    RJ, Ian BM, Vanessa S, Grant IR, Juste R, Sevilla IA, et al. Culture Phenotypes    of Genomically and Geographically Diverse <I>Mycobacterium avium</I> subsp.    <I>paratuberculosis</I> Isolates from Different Hosts. Clin Microbiol. 2011;49(5):1822-1830.        </font>      <P>&nbsp;     <P>&nbsp;     <P><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Recibido: 4-5-2012.    <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Aceptado:    17-1-2013.</font>      ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Harris]]></surname>
<given-names><![CDATA[NB]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Barletta]]></surname>
<given-names><![CDATA[RG]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis in Veterinary Medicine]]></article-title>
<source><![CDATA[Clin Microbiol Rev]]></source>
<year>2001</year>
<volume>14</volume>
<numero>3</numero>
<issue>3</issue>
<page-range>489-512</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Villarino]]></surname>
<given-names><![CDATA[MA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Scott]]></surname>
<given-names><![CDATA[HM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jordan]]></surname>
<given-names><![CDATA[ER]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Influence of parity at time of detection of serologic antibodies to Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis on reduction in daily and lifetime milk production in Holstein cows]]></article-title>
<source><![CDATA[J Anim Sci]]></source>
<year>2011</year>
<volume>89</volume>
<page-range>267-276</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Weigand]]></surname>
<given-names><![CDATA[PV]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Goethe]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Pathogenesis of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis infections in ruminants: still more questions than answers]]></article-title>
<source><![CDATA[Microb Infect]]></source>
<year>1999</year>
<volume>1</volume>
<numero>13</numero>
<issue>13</issue>
<page-range>1121-1127</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Carslake]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Grant]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Green]]></surname>
<given-names><![CDATA[Laura E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cave]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Greaves]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Keeling]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Endemic cattle diseases: comparative epidemiology and governance]]></article-title>
<source><![CDATA[Phil Trans R Soc B]]></source>
<year>2011</year>
<volume>366</volume>
<page-range>1975-1986</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Fiorentino]]></surname>
<given-names><![CDATA[MA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Gioffré]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cirone]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Morsella]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Alonso]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Delgado]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[First isolation of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis in a dairy goat in Argentina: Pathology and molecular characterization]]></article-title>
<source><![CDATA[Small Rum Res]]></source>
<year>2012</year>
<volume>108</volume>
<numero>1-3</numero>
<issue>1-3</issue>
<page-range>133-136</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<label>6</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Maheshwari]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fakhruddin]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Tanwar]]></surname>
<given-names><![CDATA[RK]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Chahar]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Singh]]></surname>
<given-names><![CDATA[AP]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Seroprevalence of paratuberculosis in goats in Bikaner]]></article-title>
<source><![CDATA[Vet Pract]]></source>
<year>2012</year>
<volume>13</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>28-29</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<label>7</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Medeiros]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Junior]]></surname>
<given-names><![CDATA[FG]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Almeida]]></surname>
<given-names><![CDATA[AP]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Lucena]]></surname>
<given-names><![CDATA[EA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Riet-Correa]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Paratuberculosis in goats and sheep in the state of Paraiba]]></article-title>
<source><![CDATA[Pesquisa Veterinaria Brasileira]]></source>
<year>2012</year>
<volume>32</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>111-115</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<label>8</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Chávez]]></surname>
<given-names><![CDATA[GG]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Trigo]]></surname>
<given-names><![CDATA[TF]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Svastova]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pavlik]]></surname>
<given-names><![CDATA[I]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Identificación del polimorfismo genético de aislamientos de Mycobacterium avium paratuberculosis de caprinos del centro de México]]></article-title>
<source><![CDATA[Vet Mex]]></source>
<year>2004</year>
<volume>35</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>72-82</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<label>9</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Preziuso]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Magi]]></surname>
<given-names><![CDATA[GE]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Renzoni]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Detection of Mycobacterium avium subsp: paratuberculosis in intestinal and mammary tissues and in lymph nodes of sheep with different techniques and its relationship with enteric lesions]]></article-title>
<source><![CDATA[Small Rum Res]]></source>
<year>2012</year>
<volume>105</volume>
<page-range>295-299</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<label>10</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[De Juan]]></surname>
<given-names><![CDATA[LÀJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Romero]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bezos]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Castellanos]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Aranaz]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Comparison of Four Different Culture Media for Isolation and Growth of Type II and Type I/III Mycobacterium avium paratuberculosis Strains Isolated from Cattle and Goats]]></article-title>
<source><![CDATA[Env Microb]]></source>
<year>2006</year>
<volume>72</volume>
<numero>9</numero>
<issue>9</issue>
<page-range>5927-5932</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<label>11</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Hailat]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fayyad]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ababneh]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hananeh]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rezig]]></surname>
<given-names><![CDATA[FE]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jaradat]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[PCR- restriction endonuclease analysis of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis isolates from goats , sheep and cattle in Jordan]]></article-title>
<source><![CDATA[Comp Clin Pathol]]></source>
<year>2012</year>
<volume>21</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>755-760</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<label>12</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Forde]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Kutz]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[de Buck]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Warren]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ruckstuhl]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pybus]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Occurrence, diagnosis, and strain typing of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis infection in rocky mountain bighorn sheep (Ovis canadensis canadensis) in southwestern Alberta]]></article-title>
<source><![CDATA[J Wildlife Dis]]></source>
<year>2012</year>
<volume>48</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>1-11</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<label>13</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Díaz]]></surname>
<given-names><![CDATA[FO]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Banda]]></surname>
<given-names><![CDATA[VR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jaramillo]]></surname>
<given-names><![CDATA[LM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Arriaga]]></surname>
<given-names><![CDATA[CD]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[González]]></surname>
<given-names><![CDATA[DS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Estrada]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Identificación de bovinos portadores de Mycobacterium bovis aplicando técnicas inmunológicas y moleculares]]></article-title>
<source><![CDATA[Vet Mex]]></source>
<year>2003</year>
<volume>34</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>13-26</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<label>14</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Stanley]]></surname>
<given-names><![CDATA[EC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mole]]></surname>
<given-names><![CDATA[RJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Smith]]></surname>
<given-names><![CDATA[RJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Glenn]]></surname>
<given-names><![CDATA[SM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Barer]]></surname>
<given-names><![CDATA[MR]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Development of a New, Combined Rapid Method Using Phage and PCR for Detection and Identification of Viable Mycobacterium paratuberculosis Bacteria within 48 Hours]]></article-title>
<source><![CDATA[Appl Envir Microb]]></source>
<year>2007</year>
<volume>73</volume>
<numero>6</numero>
<issue>6</issue>
<page-range>1851-1857</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<label>15</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Collins]]></surname>
<given-names><![CDATA[DM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[May De]]></surname>
<given-names><![CDATA[Zoete]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cavaignac]]></surname>
<given-names><![CDATA[SM]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Mycobacterium avium paratuberculosis Strains from Cattle and Sheep Can Be Distinguished by a PCR Test Based on a Novel DNA Sequence Difference]]></article-title>
<source><![CDATA[J Clin Microb]]></source>
<year>2002</year>
<volume>40</volume>
<numero>12</numero>
<issue>12</issue>
<page-range>4760-4762</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<label>16</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Tripathi]]></surname>
<given-names><![CDATA[BN]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Periasamy]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Paliwal]]></surname>
<given-names><![CDATA[OP]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Singh]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Comparison of IS900 tissue PCR, bacterial culture, johnin and serological tests for diagnosis of naturally occurring paratuberculosis in goats]]></article-title>
<source><![CDATA[Vet Microb]]></source>
<year>2006</year>
<volume>116</volume>
<page-range>129-137</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<label>17</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Carter]]></surname>
<given-names><![CDATA[GR]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Diagnostic procedures in veterinary bacteriology and mycology]]></source>
<year>1984</year>
<edition>4th</edition>
<publisher-name><![CDATA[Charles C Thomas Publisher]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<label>18</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Erume]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Spergser]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Rosengarten]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Rapid detection of Mycobacterium avium paratuberculosis from cattle and zoo animals by Nested PCR]]></article-title>
<source><![CDATA[African Health Sci]]></source>
<year>2001</year>
<volume>1</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>83-89</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<label>19</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Collins]]></surname>
<given-names><![CDATA[MT]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Scott]]></surname>
<given-names><![CDATA[JW]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Petrini]]></surname>
<given-names><![CDATA[KR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Collins]]></surname>
<given-names><![CDATA[JE]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Schultz]]></surname>
<given-names><![CDATA[RD]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Whitlock]]></surname>
<given-names><![CDATA[RH]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evaluation of Five Antibody Detection Tests for Diagnosis of Bovine Paratuberculosis]]></article-title>
<source><![CDATA[Clin Diagn Lab Immunol]]></source>
<year>2005</year>
<volume>12</volume>
<numero>6</numero>
<issue>6</issue>
<page-range>685-692</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<label>20</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Kurstak]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Enzyme Immunodiagnosis]]></source>
<year>1986</year>
<publisher-loc><![CDATA[Canada ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Academic Press]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B21">
<label>21</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Wells]]></surname>
<given-names><![CDATA[SJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Collins]]></surname>
<given-names><![CDATA[MT]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Faaberg]]></surname>
<given-names><![CDATA[KS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Wees]]></surname>
<given-names><![CDATA[C]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Tavornpanich]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Petrini]]></surname>
<given-names><![CDATA[KR]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evaluation of a Rapid Fecal PCR Test for Detection of Mycobacterium avium paratuberculosis in Dairy Cattle]]></article-title>
<source><![CDATA[Clinic Vac Immunol]]></source>
<year>2006</year>
<volume>13</volume>
<numero>10</numero>
<issue>10</issue>
<page-range>1125-1130</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B22">
<label>22</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Stabel]]></surname>
<given-names><![CDATA[JR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bannantine]]></surname>
<given-names><![CDATA[JP]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Development of a Nested PCR Method Targeting a Unique Multicopy Element, ISMap02, for Detection of Mycobacterium avium paratuberculosis in Fecal Samples]]></article-title>
<source><![CDATA[J Clin Microb]]></source>
<year>2005</year>
<volume>43</volume>
<numero>9</numero>
<issue>9</issue>
<page-range>4744-4750</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B23">
<label>23</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Zimmer]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dräger]]></surname>
<given-names><![CDATA[KG]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Klawonn]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hess]]></surname>
<given-names><![CDATA[RG]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Contribution to the diagnosis of Johne's disease in cattle: Comparative studies on the validity of Ziehl-Neelsen staining, faecal culture and a commercially available DNA-Probe test in detecting Mycobacterium paratuberculosis in faeces from cattle]]></article-title>
<source><![CDATA[Zentralbl Vet Med B]]></source>
<year>1999</year>
<volume>46</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>137-40</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B24">
<label>24</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Whittington]]></surname>
<given-names><![CDATA[RJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ian]]></surname>
<given-names><![CDATA[BM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vanessa]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Grant]]></surname>
<given-names><![CDATA[IR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Juste]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sevilla]]></surname>
<given-names><![CDATA[IA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Culture Phenotypes of Genomically and Geographically Diverse Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis Isolates from Different Hosts]]></article-title>
<source><![CDATA[Clin Microbiol]]></source>
<year>2011</year>
<volume>49</volume>
<numero>5</numero>
<issue>5</issue>
<page-range>1822-1830</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
