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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Uno de los problemas principales con la identificación de bacterias endófitas así como con los experimentos de inoculación de microorganismos, es la eliminación de bacterias de la superficie. La desinfección por métodos químicos ha sido una estrategia usualmente utilizada para estos fines. Debido a las características peculiares (superficie rugosa y aterciopelada) que presentan las semillas de arroz, resulta muy difícil lograr la total desinfección de estas y poco efectivos la mayoría de los métodos de desinfección descritos en la literatura. En este sentido, el trabajo se desarrolló con el objetivo de buscar una metodología eficiente de desinfección de semillas de arroz. Para ello se emplearon semillas de la variedad J-104 y se ensayaron cuatro protocolos de desinfección, que se basan en la utilización de diferentes soluciones de desinfección (cloramina T, hipoclorito de calcio y alcohol, entre otras), tiempos de exposición y combinaciones de las soluciones. Los resultados demuestran que con el protocolo de desinfección 4, utilizando hipoclorito de calcio en dos fases de desarrollo del cultivo, se logran los mejores resultados con elevados porcentajes de germinación y desinfección de las semillas, obteniéndose un método de desinfección eficiente, que podría ser utilizado desde el punto de vista práctico en estudios de interacción planta-microorganismos.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Obtenci&oacute;n    de un nuevo m&eacute;todo de desinfecci&oacute;n de semillas de arroz</strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">J. C. Garc&iacute;a<sup>I</sup>,    Dr.C. Annia Hern&aacute;ndez<sup>II</sup> , Yanelis Acebo<sup>III</sup>, Narovis    Rives<sup>IV</sup>    <br>       <br>   I Reserva Cient&iacute;fica del Laboratorio de Ecolog&iacute;a Microbiana    <br>       <br>   II Profesora Asistente     <br>       <br>   III </font></strong><strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    Especialista del departamento de Microbiolog&iacute;a, facultad de Biolog&iacute;a,    Universidad de La Habana    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   IV Investigadora del Laboratorio de Protecci&oacute;n de Plantas, Instituto    de Investigaciones del Arroz (IIA), km. 16 &frac12;, autopista Novia del Mediod&iacute;a,    Bauta, La Habana, Cuba. Email: <a href="mailto:narovis@fbio.uh.cu">narovis@fbio.uh.cu</a>    <br>   </font></strong></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ABSTRACT</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Removing bacteria    from seed surface is one of the main issues when identifying endophytic bacteria    as well as with microorganism-inoculating trials. Disinfection by chemical methods    has been a commonly used strategy with this goal. However, it is very hard to    fully disinfect rice seeds, due to its particular characteristics (rough and    velvety surface), so that most disinfection methods described by literature    are often useless. Therefore, this investigation was aimed at searching an efficient    rice seed disinfection methodology. Then, seeds from cv. J-104 were used and    four disinfection protocols were assessed by employing different disinfecting    solutions (chloramine T, calcium hypochlorite and alcohol, among others), exposure    times and solution combination. Results showed that by disinfection protocol    4, using calcium hypochlorite in two plant growth stages, the best germination    and disinfection rates were achieved, obtaining an efficient disinfection method,    which could be applied to plant-microorganism interaction studies, from the    practical point of view.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Key words:    rice, seed, methods, disinfection</strong></font></p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESUMEN</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Uno de los problemas    principales con la identificaci&oacute;n de bacterias end&oacute;fitas as&iacute;    como con los experimentos de inoculaci&oacute;n de microorganismos, es la eliminaci&oacute;n    de bacterias de la superficie. La desinfecci&oacute;n por m&eacute;todos qu&iacute;micos    ha sido una estrategia usualmente utilizada para estos fines. Debido a las caracter&iacute;sticas    peculiares (superficie rugosa y aterciopelada) que presentan las semillas de    arroz, resulta muy dif&iacute;cil lograr la total desinfecci&oacute;n de estas    y poco efectivos la mayor&iacute;a de los m&eacute;todos de desinfecci&oacute;n    descritos en la literatura. En este sentido, el trabajo se desarroll&oacute;    con el objetivo de buscar una metodolog&iacute;a eficiente de desinfecci&oacute;n    de semillas de arroz. Para ello se emplearon semillas de la variedad J-104 y    se ensayaron cuatro protocolos de desinfecci&oacute;n, que se basan en la utilizaci&oacute;n    de diferentes soluciones de desinfecci&oacute;n (cloramina T, hipoclorito de    calcio y alcohol, entre otras), tiempos de exposici&oacute;n y combinaciones    de las soluciones. Los resultados demuestran que con el protocolo de desinfecci&oacute;n    4, utilizando hipoclorito de calcio en dos fases de desarrollo del cultivo,    se logran los mejores resultados con elevados porcentajes de germinaci&oacute;n    y desinfecci&oacute;n de las semillas, obteni&eacute;ndose un m&eacute;todo    de desinfecci&oacute;n eficiente, que podr&iacute;a ser utilizado desde el punto    de vista pr&aacute;ctico en estudios de interacci&oacute;n planta-microorganismos.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras    clave: arroz, semillas, m&eacute;todos, desinfecci&oacute;n</strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>   El arroz es cultivado por el hombre desde hace m&aacute;s de 7000 a&ntilde;os.    Dentro del g&eacute;nero Oryza, oriundo del continente asi&aacute;tico, se encuentran    aproximadamente 19 especies de plantas, siendo el arroz com&uacute;n (Oryza    sativa L.) la especie m&aacute;s importante para la alimentaci&oacute;n humana,    aunque tambi&eacute;n se utiliza O. glaberrima (1).    <br>   El consumo anual de arroz a nivel internacional alcanza los 410 millones de    toneladas. En el 2003 se produjeron en el mundo 354 millones de toneladas de    arroz para el consumo humano y, en el caso de Cuba, se obtuvo 300 000 toneladas,    lo que constituy&oacute; una producci&oacute;n r&eacute;cord (2). Por la importancia    que tiene la producci&oacute;n de alimentos a nivel mundial, para satisfacer    las necesidades de una poblaci&oacute;n en crecimiento acelerado, se reclama    la acci&oacute;n conjunta de agricultores e investigadores, para buscar alternativas    que beneficien el desarrollo del cultivo y su productividad, sin afectaciones    para el medio ambiente. La aplicaci&oacute;n de inoculantes microbianos podr&iacute;a    constituir una de estas alternativas por sus efectos beneficiosos para las plantas    y los ecosistemas (3, 4).    <br>   Se han encontrado diferentes g&eacute;neros bacterianos asociados al cultivo    del arroz y numerosos autores han dedicado sus estudios al respecto. Dentro    de los principales se encuentran Azospirillum (4, 5), Herbaspirillum (6, 7),    Pseudomonas, Burkholderia, Azotobacter y Bacillus (8, 9). Sin embargo, los estudios    de interacci&oacute;n planta-microorganismos as&iacute; como los resultados    de la aplicaci&oacute;n de productos biol&oacute;gicos en la agricultura han    sido variables, lo que podr&iacute;a estar relacionado con poblaciones microbianas    asociadas a la semilla que interfieran en los resultados.    <br>   La semilla de arroz es muy rugosa y aterciopelada (1), caracter&iacute;sticas    peculiares que la diferencian de otras semillas lisas como las del ma&iacute;z,    por lo que resulta muy dif&iacute;cil lograr una desinfecci&oacute;n eficiente    de ellas.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   La desinfecci&oacute;n por m&eacute;todos qu&iacute;micos ha sido una estrategia    usualmente utilizada, emple&aacute;ndose dis&iacute;miles compuestos, ensayados    a diferentes concentraciones y en ocasiones combinados unos con otros, entre    los que se pueden citar al hipoclorito de sodio, hipoclorito de calcio, cloruro    de mercurio y cloramina T (10, 11, 12).     <br>   Sin embargo, los microorganismos que viven end&oacute;fitos en la ra&iacute;z    no pueden ser eliminados por estas metodolog&iacute;as y son pocos los estudios    relacionados con este aspecto. Debido a los resultados tan variables que se    han obtenido con la utilizaci&oacute;n de los diferentes m&eacute;todos de desinfecci&oacute;n    y que en muchas investigaciones este proceso constituye un paso inicial del    que depende, en ocasiones, el &eacute;xito de los experimentos, se hace necesario    obtener una metodolog&iacute;a eficaz para la desinfecci&oacute;n de las semillas    que permita garantizar la obtenci&oacute;n de resultados confiables.    <br>   En este sentido, este trabajo tiene como objetivo la b&uacute;squeda de una    metodolog&iacute;a eficiente de desinfecci&oacute;n de semillas de arroz.    <br>   </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="3"><strong>MATERIALES    Y M&Eacute;TODOS</strong></font></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>   Material vegetal. En este estudio se utilizaron semillas de arroz (Oryza sativa    L.) de la variedad J-104, que es una de las variedades comerciales que se emplean    actualmente en el pa&iacute;s, tanto en el sector especializado como en el no    especializado o popular; adem&aacute;s, ha constituido un patr&oacute;n a partir    de la que se han obtenido nuevas variedades de arroz (13). Estas fueron suministradas    por el Instituto de Investigaciones del Arroz (IIA) y conservadas a 4&deg;C    hasta su posterior utilizaci&oacute;n.     <br>   M&eacute;todos de desinfecci&oacute;n de semillas de arroz. A partir de semillas    de arroz de la variedad en estudio, se utilizaron diferentes m&eacute;todos    de desinfecci&oacute;n, con vistas a seleccionar el m&aacute;s eficiente. En    todos los protocolos se colocaron 100 semillas por 200 mL de las diferentes    soluciones de desinfecci&oacute;n. A continuaci&oacute;n se describe de forma    independiente cada uno de los protocolos de trabajo ensayados:    <br>   1. Las semillas fueron sumergidas durante cinco minutos en una soluci&oacute;n    de Tween 80 (500 &micro;L.200 mL-1). Posteriormente se colocaron un minuto en    etanol al 70&nbsp;% y 10&nbsp;minutos en soluci&oacute;n de hipoclorito de calcio    al 5&nbsp;% con Tween 80 (500 &micro;L.200 mL-1), la que fue preparada seg&uacute;n    metodolog&iacute;a descrita (14). Finalmente se realizaron cuatro lavados sucesivos    con agua destilada est&eacute;ril (dos minutos por lavado).     <br>   2. En este protocolo se utiliz&oacute; como soluci&oacute;n de desinfecci&oacute;n    la cloramina T al 1 %. Para ello, las semillas fueron colocadas en la soluci&oacute;n    de desinfecci&oacute;n durante 20 minutos y agitadas de forma continua mediante    el uso de un agitador (Genie 2). Posteriormente se lavaron cuatro veces con    agua destilada est&eacute;ril (dos minutos por lavado).     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   3. Las semillas fueron desinfectadas mediante la combinaci&oacute;n de las soluciones    de desinfecci&oacute;n de hipoclorito de calcio y cloramina T, seg&uacute;n    se describe en los protocolos de desinfecci&oacute;n 1 y 2. Primero se aplic&oacute;    el protocolo de desinfecci&oacute;n 1 y posterior al &uacute;ltimo lavado con    agua destilada est&eacute;ril se procedi&oacute; a la aplicaci&oacute;n del    protocolo de desinfecci&oacute;n 2.     <br>   4. Se desarroll&oacute; utilizando hipoclorito de calcio descrito en el protocolo    de desinfecci&oacute;n 1, pero se aument&oacute; el tiempo de exposici&oacute;n    a 20 minutos y se realiz&oacute; en dos fases de desarrollo del cultivo, aplic&aacute;ndose    nuevamente a las semillas ya germinadas. Las semillas germinadas y desinfectadas    se colocaron en tubos con medio MS (Murashige y Skoog, por sus siglas en ingl&eacute;s)    y se incubaron a 300C durante siete d&iacute;as para verificar la eficiencia    del m&eacute;todo utilizado.    <br>   Determinaci&oacute;n del porcentaje de desinfecci&oacute;n de las semillas.    En los cuatro protocolos estudiados, las semillas previamente desinfectadas    se colocaron en placas de Petri con medio MS, a raz&oacute;n de 20 semillas    por placa y cinco repeticiones por tratamiento (m&eacute;todos de desinfecci&oacute;n).    Se incubaron a 300C durante 96 horas. El porcentaje de desinfecci&oacute;n de    las semillas se determin&oacute; a trav&eacute;s del conteo de semillas sin    contaminaci&oacute;n a las 24, 48, 72 y 96 horas, siguiendo la metodolog&iacute;a    descrita (15).    <br>   Determinaci&oacute;n del porcentaje de germinaci&oacute;n de las semillas. Se    evalu&oacute; el porcentaje de germinaci&oacute;n para determinar si los m&eacute;todos    utilizados no afectaron la actividad biol&oacute;gica de la semilla. Para ello,    las semillas previamente desinfectadas se colocaron en c&aacute;maras h&uacute;medas,    formadas por placas de Petri de 100 mm de di&aacute;metro con papel de filtro    Whatman &reg; est&eacute;ril dentro, humedecido con 2mL de agua destilada est&eacute;ril.    Se colocaron 20 semillas por placa y cinco repeticiones por tratamiento. Las    placas se incubaron a 300C. Se realiz&oacute; el conteo de semillas germinadas    en diferentes per&iacute;odos de emergencia (24, 48, 72 y 96 horas) y se determin&oacute;    el porcentaje de germinaci&oacute;n (16).     <br>   Porcentaje de pureza de las pl&aacute;ntulas crecidas en tubos de cultivo con    medio MS. Se determin&oacute; la aparici&oacute;n de contaminaciones microbianas    en los tubos sembrados a partir de semillas previamente desinfectadas y germinadas    (mediante la aplicaci&oacute;n del protocolo de desinfecci&oacute;n 4) durante    siete d&iacute;as. Se determin&oacute; el porcentaje de pureza (15).    <br>   An&aacute;lisis estad&iacute;sticos. Todos los experimentos se repitieron tres    veces. A los datos se les determinaron los intervalos de confianza de la media    para p&lt;0.05 y el tama&ntilde;o de muestra (n) correspondiente. Los datos    fueron analizados mediante el programa Statistica para Windows versi&oacute;n    6.0.    <br>   </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong><font size="3">RESULTADOS    Y DISCUSI&Oacute;N</font></strong>    <br>   </font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En esta investigaci&oacute;n    se estudiaron varios m&eacute;todos de desinfecci&oacute;n de semillas de arroz    de la variedad J-104 basados en el empleo de diferentes soluciones de desinfecci&oacute;n,    aplicadas de forma independiente o combinadas, seleccion&aacute;ndose la soluci&oacute;n    de desinfecci&oacute;n de hipoclorito de calcio como la m&aacute;s eficaz. El    protocolo 4 donde se aplic&oacute; esta soluci&oacute;n en dos momentos diferentes    es el m&aacute;s eficiente para estos fines (Figura 1).    <br>       <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v29n4/f0108408.gif" width="706" height="306">        
<br>       <br>   En la Figura 1 se muestra el porcentaje de semillas desinfectadas al aplicarse    los diferentes protocolos de desinfecci&oacute;n. Luego de realizarse el an&aacute;lisis    estad&iacute;stico de los datos, se encontraron diferencias significativas entre    los tratamientos, lo que podr&iacute;a estar dado por el tipo de soluci&oacute;n    desinfectante que se utiliza, el tiempo de exposici&oacute;n, la cantidad y    el tipo de microorganismos que se encuentran asociados o viven como end&oacute;fitos    en el cultivo del arroz.    <br>   En todos los bioensayos se demostr&oacute; que el protocolo de desinfecci&oacute;n    aplicado logr&oacute; eliminar los microorganismos presentes en la superficie    de la semilla, lo que se denota por los altos grados de pureza mostrados en    la fase inicial (Figura 1). Sin embargo, cuando comienza el proceso de germinaci&oacute;n    aparecen contaminantes bacterianos en el medio de cultivo, lo que indica la    presencia de microorganismos end&oacute;fitos, corrobor&aacute;ndose la presencia    de estos microorganismos en las semillas de arroz de la variedad J-104 y la    imposibilidad de eliminarlos a trav&eacute;s de la aplicaci&oacute;n de estas    metodolog&iacute;as (Figura 1). Estos resultados se corresponden con los informados    en un estudio con diferentes variedades de arroz (17).    <br>   En los &uacute;ltimos a&ntilde;os, las investigaciones sobre la comunidad microbiana    end&oacute;fita, se han centrado en especies de bacterias con capacidad para    fijar nitr&oacute;geno molecular en plantas de inter&eacute;s agr&iacute;cola,    por la importancia que esto tiene en la nutrici&oacute;n nitrogenada de los    cultivos y se han publicado numerosos trabajos relacionados con la comunidad    end&oacute;fita en gram&iacute;neas (18, 19, 20).    <br>   En la variedad en estudio se ha informado la presencia de microorganismos end&oacute;fitos    fijadores de nitr&oacute;geno, que desempe&ntilde;an un papel fundamental en    el desarrollo y la productividad del cultivo con la consecuente reducci&oacute;n    de fertilizantes qu&iacute;micos (21). Estos microorganismos podr&iacute;an    estar presentes en la semilla, comenzar a liberarse como parte del efecto espermosfera    (22) y constituir poblaciones microbianas que crecen como contaminantes en los    medios de cultivos sint&eacute;ticos utilizados para la producci&oacute;n de    plantas por v&iacute;a biotecnol&oacute;gica y para estudios de interacci&oacute;n    planta-microorganismos, como es el caso del medio MS.     <br>   Se ha considerado que las bacterias end&oacute;fitas podr&iacute;an tener algunas    ventajas competitivas sobre las rizosf&eacute;ricas, ya que la disponibilidad    de nutrientes es mayor en el interior de las plantas y el n&uacute;mero de microorganismos    end&oacute;fitos es menor que el de los rizosf&eacute;ricos (23). Adem&aacute;s,    las bacterias end&oacute;fitas se encuentran mejor protegidas de las condiciones    adversas que se presentan en el medio ambiente y de los procesos de desinfecci&oacute;n    que las rizosf&eacute;ricas (10, 24).    <br>   Es importante destacar que los productos desinfectantes no afectaron la actividad    biol&oacute;gica de la semilla, lo que se demuestra a trav&eacute;s de los altos    porcentajes de germinaci&oacute;n obtenidos (Figura 2).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v29n4/f0208408.gif" width="691" height="393">        
<br>       <br>   De modo general, este par&aacute;metro se increment&oacute; a partir de las    24 horas, con su m&aacute;ximo a las 96 horas de incubaci&oacute;n de las semillas,    momento en que se alcanzan porcentajes de germinaci&oacute;n superiores al 80    %. No obstante, se debe se&ntilde;alar que en los resultados de los protocolos    de desinfecci&oacute;n 1 y 4, se encontr&oacute; retardo en la germinaci&oacute;n    de las semillas, lo que se super&oacute; despu&eacute;s de las 48 horas. Esto    podr&iacute;a indicar un probable efecto del hipoclorito de calcio (uno de los    mejores desinfectantes conocidos, capaz de eliminar bacterias, levaduras, hongos,    esporas e incluso virus) en esta fase de desarrollo del cultivo, que se pudiera    relacionar con la eficiencia en la eliminaci&oacute;n de las poblaciones epif&iacute;ticas    presentes en la superficie de las semillas y que probablemente desempe&ntilde;an    un papel fundamental en su germinaci&oacute;n.    <br>   En este sentido, se ha se&ntilde;alado que el hipoclorito de calcio tiene un    marcado efecto en la eliminaci&oacute;n de bacterias, ya que a concentraciones    micromolares es posible reducir significativamente las poblaciones bacterianas.    Los m&eacute;todos basados en su utilizaci&oacute;n se emplean para la desinfecci&oacute;n    de semillas en estudios que involucran pat&oacute;genos portados en ellas, controles    biol&oacute;gicos y end&oacute;fitos (12). A pesar de esto, se conoce poco sobre    el mecanismo exacto por el que el hipoclorito elimina a las bacterias (25).        <br>   Seg&uacute;n la metodolog&iacute;a utilizada, cuando se realiza una segunda    aplicaci&oacute;n del desinfectante seleccionado (hipoclorito de calcio) aumenta    la eficiencia, logr&aacute;ndose disminuir significativamente las poblaciones    de microorganismos end&oacute;fitos. Este procedimiento es el que se realiza    en el protocolo 4, cuyos resultados se muestran en la Figura 3.    <br>       <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v29n4/f0308408.gif" width="761" height="372">        
<br>       <br>   En este trabajo se han empleado diferentes soluciones para la desinfecci&oacute;n    de las semillas de arroz, ensayadas solas y combinando unas con otras. Otros    tambi&eacute;n han utilizado el hipoclorito de calcio y la cloramina T para    estos fines (11, 12, 13). Sin embargo, en ninguno de estos trabajos se ha logrado    eliminar completamente las poblaciones de microorganismos presentes en la semilla,    obteni&eacute;ndose resultados similares en todos los protocolos de desinfecci&oacute;n    estudiados.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Existen otras metodolog&iacute;as que se utilizan para la desinfecci&oacute;n    de semillas, basadas en el uso de antibi&oacute;ticos como el &aacute;cido nalid&iacute;xico    y la rifampicina. Sin embargo, es mejor tratar las semillas con desinfectantes    para evitar da&ntilde;os a la planta y a los microorganismos que sean inoculados,    dados por la aparici&oacute;n de posibles variaciones gen&eacute;ticas en la    planta y en las poblaciones microbianas que se encuentran asociadas a ellas,    las que podr&iacute;an ser potencialmente eficientes en la estimulaci&oacute;n    del crecimiento vegetal y biocontrol de pat&oacute;genos que afectan al cultivo    (10, 26, 27).    <br>   Con esta investigaci&oacute;n se logra una nueva metodolog&iacute;a para la    obtenci&oacute;n de plantas de arroz en condiciones ax&eacute;nicas, que puede    ser utilizada en la biotecnolog&iacute;a agr&iacute;cola, con &eacute;nfasis    en estudios de interacci&oacute;n planta-microorganismos. La aplicaci&oacute;n    de esta metodolog&iacute;a logra eliminar la totalidad de los microorganismos    que viven en la superficie de la semilla y un alto porcentaje de los end&oacute;fitos,    y con ello reducir el error experimental.     <br>   </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="3"><strong>REFERENCIAS</strong></font>    <br>   </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. Arregoc&eacute;s,    O.; Rosero, M. y Gonz&aacute;lez, J. Gu&iacute;a de estudio: Morfolog&iacute;a    de la planta de arroz. Cali:Centro Internacional de Agricultura Tropical, 2005.    <!-- ref --><br>   2. Polo, V. M. El arroz y sus leyendas. Consultado [1-10-2008]. Disponible en:    &lt;<a href="http://saludparalavida.sld.cu">http://saludparalavida.sld.cu</a>&gt;.    <!-- ref --><br>   3. Postma, J.; Montanari, M. y van den Boogert, P. H. J. F. 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Endophytic colonization and plant nitrogen fixation    by a Herbaspirillum sp. isolated from wild rice species. Appl. Environ. Microbiol.,    2001, vol. 67, p. 5285-5293.    <!-- ref --><br>   8. Radwan, T.; Mohamed, Z. K. y Reis, V. M. Efeito da inocula&ccedil;&atilde;o    de Azospirillum e Herbaspirillum na produ&ccedil;&atilde;o de compostos ind&oacute;licos    em pl&acirc;ntulas de milho e arroz. Pesq. Agropec. Bras., Bras&iacute;lia,    2004, vol. 39, p. 987-994.    <!-- ref --><br>   9. Hern&aacute;ndez, A.; Rives, N. y Heydrich, M. Caracterizaci&oacute;n de    la comunidad microbiana y end&oacute;fita asociada al cultivo del arroz variedad    J-104. En: Congreso Cient&iacute;fico del INCA (14: 2004, nov 9-12, La Habana).    Memorias. CD-ROM. Instituto Nacional de Ciencias Agr&iacute;colas.    <!-- ref --><br>   10. Rives, R. N.; Acebo, G. Y. y Hern&aacute;ndez, A. R. Bacterias promotoras    del crecimiento vegetal en el cultivo del arroz (Oryza sativa L.). 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Vel&aacute;squez, E.; Rojas, M.; Lorite, M. J.; Rivas, R.; Zurdo-Pi&ntilde;eiro,    J. L.; Heydrich, M. y Bedmar, E. J. Genetic diversity of endophytic bacteria    which could be found in the apoplastic sap of the medullary parenchym of the    stem of healthy sugarcane plants. Journal of Basic Microbiology, 2008.    <!-- ref --><br>   20. Mu&ntilde;iz, O.; Castro, R.; Biart, M. y Urquiaga, S. Contribuci&oacute;n    de los microorganismos nativos del suelo a la nutrici&oacute;n nitrogenada de    seis variedades de arroz irrigado. En: Congreso Internacional del Arroz, Memorias    [CD-ROM]. Instituto de Investigaciones del Arroz (3:2005:La Habana), 2005.    <!-- ref --><br>   21. Hern&aacute;ndez, A. N.; Hern&aacute;ndez, A. y Heydrich, M. Selecci&oacute;n    de rizobacterias asociadas al cultivo del ma&iacute;z. Cultivos Tropicales,    1995, vol. 16, no. 3, p. 5-8.    <!-- ref --><br>   22. James, E. K.; Gyaneshwar, P.; Mathan, N.; Barraquio, W. L.; Pallavolu, M.    R.; Ianetta, P. 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