Mycorrhization in vitro and in vivo of potato plantlets (Solanum tuberosum var. Alpha)
Ms.C. Kalyanne Fernández
Investigadora Agregada del departamento de Biofertilizantes y Nutrición de las Plantas, Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas (INCA), gaveta postal 1, San José de las Lajas, La Habana, Cuba, CP 32 700. E-mail: kalyanne@inca.edu.cu
RESUMEN
Las condiciones artificiales en las que se desarrollan las plantas obtenidas por micropropagación hacen que sean más susceptibles a la sequía durante el transplante. Los hongos micorrízicos arbusculares contribuyen a la supervivencia y el crecimiento de las plantas al reducir el estrés asociado con la nutrición, las relaciones con el agua, la estructura del suelo, el pH, las sales, los metales tóxicos y los patógenos, por lo que son considerados de extrema utilidad como inoculantes durante las diferentes fases de micropropagación de los cultivos. Teniendo en cuenta estos aspectos se realizó este trabajo, con el objetivo de evaluar la factibilidad de la inoculación micorrízica durante los estadios in vitro e in vivo del proceso de micropropagación del cultivo de la papa (Solanum tuberosum L var. Alfa). Para dar respuesta al trabajo, se estudió la inoculación micorrízica sobre plantas de papa en condiciones de crecimiento in vitro, empleando diferentes medios de cultivo (MS, M y un nuevo medio N), bajo un diseño completamente aleatorizado (DCA) y la inoculación de plantas de papa durante el transplante a fase adaptativa empleando tres especies del género Glomus y dos concentrados de especies de HMA (selva y desierto) sobre dos sustratos diferentes, utilizando un DCA bajo arreglo bifactorial. En el estudio in vitro se obtuvieron efectos positivos sobre las plantas inoculadas en el medio M, aun cuando quedó clara la necesidad de encontrar nuevos medios, nutricionalmente balanceados, que garanticen tanto el crecimiento de las plántulas como el establecimiento eficiente de la micorrización. Además, en la fase adaptativa se encontró una respuesta altamente positiva a la inoculación de las cepas, mostrando un comportamiento diferenciado en función de los sustratos, apreciable en todas las variables estudiadas (nutricionales, fúngicas y fisiológicas), lo cual demostró la factibilidad del uso de dichos microorganismos en este estadio de la micropropagación del cultivo.
Palabras clave: micorrizas arbusculares, inoculación, micropropagación, adaptación, Solanum tuberosum, medio de cultivo.
The artificial conditions under which micro-propagated plants develop make them more susceptible to drought when transplanted. Arbuscular mycorrhizal fungi contribute to plant growth and survival by reducing the stress associated to nutrition, water relations, soil structure, pH, salts, toxic metals and pathogens, so that they are considered extremely useful as inoculants during the different stages of plant micropropagation. Taking these aspects into account, this work was developed to evaluate the mycorrhizal inoculation feasibility during in vitro and in vivo stages of potato (Solanum tuberosum L var. Alfa) crop micropropagation process. Therefore, mycorrhizal inoculation was studied on potato plants under in vitro growing conditions, with different culture media (MS; M and a new medium N), with a randomized complete design (RCD) and potato plants inoculated, when transplanted to adaptation stage, by three single Glomus species and two concentrates of AMF species (forest and desert) on two different growth substrates using a bifactorial arranged RCD. Positive effects were obtained on in vitro plants inoculated in the M medium, even though it is evident to look for new nutritionally-balanced media that guarantee both plant growth and an efficient mycorrhizal establishment. Besides, at the adaptation stage, there was a highly positive strain inoculation response, showing a differentiated behaviour according to the substrates, which was appreciated in all variables studied (nutritional, fungal and physiological), so proving the feasibility of using such microorganisms at this potato micropropagation stage.
Key words: arbuscular mycorrhizae, inoculation, micropropagation, adaptation, Solanum tuberosum, culture media.
INTRODUCCIÓN
La papa es el cultivo no cereal más importante para la alimentación y uno de los de mayor consumo a nivel mundial, formando parte de la dieta de más de un billón de personas (1). Se cultiva a gran escala en más de 130 países y los modos de propagación varían en función de los intereses de los productores, siendo la micropropagación una de las técnicas más empleadas con estos fines. Por lo general, la aplicación de estas técnicas tiene aún determinados problemas que limitan su uso generalizado y no garantizan totalmente las condiciones para el posterior desarrollo de las plántulas derivadas en ambientes naturales.
En la última década, se ha informado sobre el uso de microorganismos que habitan las plantas de manera natural, como una posible solución para incrementar la adaptación de las plántulas producidas in vitro (2, 3, 4).
Desde años recientes, la introducción de microorganismos beneficiosos como los Hongos Micorrizógenos Arbusculares (HMA) o las Rizobacterias Promotoras del Crecimiento Vegetal (3), obviamente ausentes en los cultivos axénicos, han incrementado el vigor y la sobrevivencia de gran variedad de cultivos como: fresa (Fragaria sp.), banano (Musa sp.), aguacate (Persea americana), piña (Annanas comosus), café (Coffea sp.), boniato (Ipomoea batata), agave (Agave sp.), etc. Los HMA juegan un rol importante en la nutrición de la mayoría de los cultivos (5) y contribuyen a la supervivencia y el crecimiento de las plantas, al reducir el estrés asociado con la nutrición, las relaciones con el agua (6), la estructura del suelo (7), el pH, las sales, los metales tóxicos y patógenos (8, 9). No obstante, en algunos casos, los efectos beneficiosos sobre el crecimiento solo se observan después que las plantas in vitro están totalmente aclimatadas.
MATERIALES Y MÉTODOS
Se realizaron dos experimentos que incluyeron la inoculación de plántulas de papa in vitro e in vivo (invernadero) empleando diferentes especies de HMA.
1. Inoculación en estadio de enraizamiento in vitro con esporas de Glomus clarumMaterial vegetal. Se utilizaron vitroplantas de papa en estadio de enraizamiento obtenidas por micropropagación (cultivo de cortes nodales) sobre el medio Murashige & Skoog (MS) (15), que tenían entre siete y 10 días de subcultivadas, un sistema radical poco desarrollado (entre tres y cinco raíces) y cuatro o seis hojas por planta.Establecimiento del cultivo dual. Se inocularon vitroplantas de papa con esporas germinadas de Glomus clarum sobre dos medios de cultivo (Tabla I): MS y N (medio nuevo diseñado con el propósito de garantizar el crecimiento y desarrollo de ambos organismos). Este medio estaba compuesto por una combinación de nutrientes de los medios MS y M (16) mezclado con vermiculita estéril en proporción 1:1 (v/v).Se sembraron tres plantas por frasco y se colocaron cinco frascos por tratamiento bajo un diseño completamente aleatorizado. Los tratamientos fueron los siguientes: -1-Medio N+HMA, -2-Medio N y -3-Medio MS (control). En una segunda fase de este experimento se incluyó en los tratamientos el medio M; en este caso se trabajó con igual número de plantas por tratamiento, los cuales se describen a continuación: -1-Medio N+HMA, -2-Medio N, -3-Medio M+HMA, -4-Medio M y -5-Medio MS (control). Las esporas previamente desinfectadas y germinadas se inocularon directamente sobre las raíces con una micropipeta Finnipipette® de 1000 µL a razón de 100 µL por planta, aportando entre 50 y 55 esporas por aplicación. Los frascos se colocaron en una cámara de crecimiento durante 35 días, con un fotoperíodo de 16 horas luz y 8 de oscuridad, 200-300 mE.m-2.seg-1 de iluminación y 20oC de temperatura. ]]> Tabla I. Composición química de los medios de cultivo empleados
El pH de los medios se ajustó a 5.5 antes de la esterilización
Leyenda: MS: Murashige & Skoog; M: Medio mínimo y N: Medio nuevo
Determinaciones realizadas.
A los 35 días después de la inoculación se muestrearon 12 plantas por tratamiento, a las que se les realizaron las siguientes determinaciones: largo radical (cm), altura de la planta (cm), masas frescas foliar y radical (g), así como la concentración de clorofila total (µg de clorofila/g masa fresca) utilizando un espectrofotómetro UV visible (CARY 50) (17).
Además, se realizaron tinciones a las raicillas de las vitroplantas utilizando la técnica descrita por Elmeskaoui (18), modificada en este trabajo, al sustituir el colorante fuchina ácida por azul de tripano, para comprobar la presencia o no de colonización. 2. Inoculación con HMA de vitroplantas de papa en fase de adaptación En este experimento se inocularon vitroplantas aptas para el trasplante con tres cepas de hongos micorrizógenos (Glomus clarum, G. fasciculatum-Taxter-Gerdemann & Trappe emend. Walker & Koske y G. intraradices Schenck & Smith) procedentes del cepario del Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas (INCA) y dos concentrados de especies, uno de selva y otro de desierto, obtenidos en el laboratorio de Bioquímica Ecológica del Centro de Investigación y Estudios Avanzados del IPN (CINVESTAV, Unidad Irapuato, México). El inóculo simple empleado contaba con las siguientes características: G. clarum (140 esporas.g-1), G. fasciculatum (100 esporas.g-1) y G. intraradices (60 esporas.g-1). Se evaluaron asimismo dos sustratos diferentes, uno compuesto totalmente por musgo (Sunshine no. 3) y otro por una combinación del musgo mencionado y vermiculita en proporción 2:1 (v/v). El trasplante de las vitroplantas se hizo colocando una planta en macetas (2.5 L) y un total de 10 macetas por tratamiento.Tabla II. Efecto de la inoculación de Solanum tuberosum con G. clarum sobre las variables estudiadas a los 35 días
Leyenda: N: Medio nuevo; M: Medio mínimo y MS: Murashige y Skoog. Medias con letras desiguales en cada columna difieren entre sí significativamente para p≤0.05, según prueba de Tuckey
En dicho medio las plantas se desarrollaron adecuadamente (Figura 1a) y mostraron incrementos en la altura que oscilaron entre 47 y 54 %, comportamiento que fue similar en el resto de las variables.
Las plantas que crecieron en el medio N mostraron un crecimiento atrofiado y poco armónico, sobre todo en los tratamientos inoculados, con un marcado cambio de coloración, de verde a purpúreo, en la parte aérea de todas las plantas (Figura 1b). ]]>
La variación en la coloración de las plántulas se observó a partir de los 10 días después de inoculadas y apareció primeramente en el envés de las hojas, extendiéndose lentamente sobre estas hasta abarcar toda el área foliar, incluidos los tallos en algunos casos; a los 22 días de inoculadas las plantas, mostraban esta afección en todas sus hojas.
Las plantas que crecieron en el medio N sin inocular no mostraron variación en la coloración, aun cuando su crecimiento fue inhibido y su desarrollo muy retardado.
Al analizar el comportamiento de estas variables en el segundo experimento (Tabla II), se observó un efecto diferenciado de los medios de cultivo, inoculados o no, sobre el crecimiento de las plántulas de papa. Los medios MS y M+HMA ofrecieron condiciones favorables para el desarrollo de las plántulas, reflejado en los altos valores alcanzados por las variables estudiadas. De igual forma, las plantas que crecieron sobre el medio N presentaron un comportamiento similar al antes descrito, manifestando un efecto depresor sobre las variables estudiadas y valores de altura y masas frescas foliar y radical inferiores a las inoculadas sobre el medio M y a los controles sobre el MS. Al comparar los valores de clorofila total (Figura 2), obtenidos en ambos tratamientos (plantas micorrizadas y no micorrizadas), no se encontró efecto de estos sobre su comportamiento, reflejando valores estadísticamente no significativos en ambas repeticiones del experimento. 
Figura 2. Efecto de la inoculación con HMA sobre la concentración de clorofila
total de las plántulas desarrolladas sobre el medio N2.
Inoculación con HMA de vitroplantas de papa en fase de adaptación
Al realizar el análisis de Componentes Principales, se encontraron dos componentes que explicaron 53.85 y 20.23 % de la variabilidad total, respectivamente (Tabla III), para alcanzar una varianza acumulada de 74.08 %. La primera componente está caracterizada fundamentalmente por la colonización, densidad visual, tasa fotosintética, eficiencia en el uso del agua (EUA) y el contenido de magnesio foliar; mientras que en la segunda aparecen la masa seca total, el contenido de manganeso foliar y calcio. ]]>
Se debe destacar que, en este caso, se encuentran incluidas tanto las variables directamente relacionadas con la inoculación y el funcionamiento micorrízico como las dependientes de la inoculación e indicativas del crecimiento y el estado nutricional y fisiológico de las plantas.
En la Figura 3 puede apreciarse la formación de siete grupos: A, B, C, D, E, F, G. Se destacaron los grupos F y C, integrados por los tratamientos inoculados con las especies G. intraradices y G. fasciculatum sobre el sustrato 1, respectivamente, situados en el extremo derecho del cuadrante positivo. Cercano a estos se encuentra el grupo A, que incluye los tratamientos 4 y 5 inoculados con los concentrados de especies de selva y desierto, también en el sustrato 1, así como el tratamiento 8 producto de la inoculación de G. fasciculatum en el sustrato 2, compuesto por una combinación de la mezcla Sunshine no. 3 + vermiculita en proporción 2:1 (v/v). Luego se encuentra el grupo B, compuesto por la especie G. intraradices (9) y los concentrados de especies de selva y desierto (10, 11), todos sobre el sustrato 2. Por otra parte, se hallan los grupos D y E integrados por G. clarum en los sustratos 1 y 2, respectivamente. Finalmente y bastante alejado del resto de los grupos se ubica el grupo G, compuesto por los tratamientos controles en ambos sustratos.
El análisis multivariado permitió encontrar, de forma integral, un efecto positivo de la inoculación micorrízica sobre las plántulas de papa, dado por una conducta superior de los tratamientos micorrizados en relación con los testigos y donde se destacan los tratamientos en los que se emplearon las especies G. intraradices y G. fasciculatum en el sustrato 1 (grupos F y C, respectivamente), como los de mejor comportamiento. Es importante señalar, además, que la inoculación de cada cepa o concentrado de especies de HMA presentó los mayores efectos cuando las plantas crecieron precisamente en el sustrato 1.
Un comportamiento interesante fue el mostrado por G. fasciculatum (Figura 3), el cual además de ejercer sus mayores efectos sobre las plantas que se desarrollaron en el sustrato 1, presentó también un buen comportamiento en el sustrato 2 (grupo A-8-).
Como puede apreciarse en las Figuras 4 y 5, los análisis de varianza realizados a las variables que mostraron mayores coeficientes de correlación con las componentes y que consecuentemente estaban más relacionadas entre sí, corroboraron, en sentido general, los análisis previos realizados y dejaron claro el efecto diferenciado de las cepas y los sustratos, así como de la interacción entre ambos factores.En la Figura 4 se observa que el porcentaje de densidad visual no solo logró diferenciar mejor el efecto de los sustratos que el porcentaje de colonización, sino que también el ordenamiento de los mejores tratamientos basado en la docimación (G. intraradices-S1, G. fasciculatum-S1 y S2 y concentrado de selva-S1) mostró mayor similitud con el realizado por el análisis multivariado, que el obtenido con en el porcentaje de colonización (G. fasciculatum-S2, concentrado de selva-S1 y G. intraradices-S1).
De igual forma que en las variables antes explicadas, los mayores valores de tasa fotosintética se encuentran en los tratamientos inoculados, los cuales muestran respuestas diferenciadas en función de las cepas empleadas y los sustratos (Figura 5); en este caso, el tratamiento 2 (G. fasciculatum-S1) es el que presenta el mayor valor. En el caso de la EUA, no se observan grandes diferencias entre los distintos tratamientos; sin embargo, sus valores sí son superiores a los de los controles en ambos sustratos.
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Figura 4. Efecto de la aplicación de diferentes inoculantes micorrízicos y sustratos sobre plántulas de papa expresado en las variables fúngicas Colonización (A) y Densidad Visual (B)
Leyenda: 1 y 7: G. clarum; 2 y 8: G. fasciculatum; 3 y 9: G. intraradices; 4 y 10: Selva; 5 y 11: Desierto y 6 y 12: Controles Sustrato 1: Sunshine # 3 Sustrato 2: Sunshine # 3 + Vermiculita (2:1) Barras con letras desiguales difieren entre si significativamente para p≤ 0.05 según Test de Tuckey Como consecuencia de la integración de los métodos multivariados y análisis de varianza realizados a las variables que mayor influencia ejercieron sobre la conducta de los tratamientos, se obtuvo que las cepas y los concentrados de especies empleados se comportaron de la siguiente forma: G. intraradices-S1>G fasciculatum-S1>G. fasciculatum-S2 y concentrados de especies de selva y desierto ambos en el sustrato 1 (Sunshine no. 3).
Figura 5. Efecto de la aplicación de diferentes inoculantes micorrízicos y sustratos sobre plántulas de papa expresado en las variables fisiológicas tasa fotosintética (A) y eficiencia en el uso del agua (B). Leyenda: G. clar.=G. clarum; G. fasc.= G. fasciculatum; G. intr.= G. intraradices; Des.= Desierto y Cont.= Control
Sustrato 1: Sunshine # 3 Sustrato 2: Sunshine # 3 + Vermiculita (2:1) Barras con letras desiguales difieren entre si significativamente para p≤ 0.05 según Test de Tuckey
Discusión
Algunos actualmente emplean el sistema de cultivo tripartita (18, 26, 27), para establecer la micorrización durante el estadio in vitro de la micropropagación de las plantas, utilizando como inóculo el cultivo de raíces transformadas o no, previamente inoculadas con hongos micorrizógenos; sin embargo, el principal reto de este estudio fue poder lograr la micorrización de plantas completas en condiciones in vitro utilizando esporas germinadas como propágulos, teniendo en cuenta las dificultades que presentan estos hongos para desarrollarse en medios de cultivo y la falta de autotrofia de las plantas en estas condiciones.
La definición de los medios de cultivo adecuados para el desarrollo exitoso de ambos organismos es una de las etapas más críticas del proceso y depende en gran medida de las especies utilizadas en cada caso.
Bioensayos realizados previamente a la ejecución de este experimento (datos no incluidos en el documento), en el cual se inocularon plántulas de papa en el medio de propagación MS, sugirieron claramente la necesidad de realizar un cambio de medio antes del establecimiento del cultivo dual, aspecto ya informado anteriormente (18, 26, 27), al no garantizarse el crecimiento adecuado del hongo en estas condiciones, pues este medio contiene altas concentraciones de sulfato de sodio, fósforo y sacarosa, las cuales influyen negativamente sobre el establecimiento micorrízico in vitro. Esto fue corroborado por Bressan (28), quien al inocular embriones de boniato (Ipomoea batata) con esporas de Glomus etunicatum sobre diferentes medios de cultivo (MS y White), encontró respuestas diferenciadas de la colonización en función de las concentraciones de nutrientes en los medios y comprobó que cuando se adicionaba sacarosa (3 %) al medio, se producía un efecto depresor sobre el crecimiento hifal y la colonización radical.
]]> El crecimiento atrofiado de las plantas crecidas en medio N pudo haber sido provocado por la interacción entre los componentes del nuevo medio y la vermiculita presente. Como es conocido, las vermiculitas son arcillas con capacidad de intercambio catiónico extremadamente alta (100-260 meq.100 g-1) y se expanden y contraen con gran facilidad, secuestrando gran número de iones entre sus capas (29), lo cual pudo haber ocurrido en este caso al reaccionar con el agar presente en el medio y provocar que los iones quedaran atrapados, ocasionando la indisponibilidad de los nutrientes.Por otra parte, en presencia de pH ácido, como es el caso (5.5), algunas cantidades de Al3+ y Fe3+, que forman parte de las arcillas, pasan a solución y pueden reaccionar con el escaso fósforo presente en el medio N, el cual contenía una baja concentración de macronutrientes y en especial de este elemento, formando fosfatos insolubles de hierro y aluminio y que, indudablemente, disminuyeron aún más la concentración de fósforo a disposición de las plántulas en crecimiento.
El empleo de vermiculita para tales fines ya ha sido informado (32), los que estudiaron la respuesta de embriones somáticos de boniato a la micorrización con esporas germinadas de Glomus etunicatum,colocando los embriones previamente inoculados en tubos que contenían, además de medio White, una mezcla de vermiculita + arena estéril. En contraste con los resultados presentados en este trabajo, ellos reportaron un efecto estimulador de la micorrización sobre el desarrollo de los embriones inoculados, debido probablemente a que los componentes presentes en el medio White, mucho más rico, no resultaron limitantes para las plantas al interactuar con la vermiculita.
Además de este efecto sobre el crecimiento de las plantas, se encontró un marcado cambio de coloración solo en los tratamientos inoculados con el HMA. Por las características que presentó la afección, no parece estar relacionada con ninguna deficiencia nutricional simple, pues las variaciones de color observadas y el estado de las plantas no coinciden con ninguno de los síntomas provocados por el déficit individual de los elementos esenciales en el cultivo de la papa (33). No obstante, si bien esta modificación pudiera atribuirse a deficiencias de fósforo por la presencia de coloración purpúrea en las hojas y el hecho de ser encontrada como sintomatología típica en otros cultivos como la col (Brassica oleracea) y el colinabo (Brassica napus), no se reporta en el caso específico de la papa (33, 34).
Otros se refirieron a los efectos que provoca la deficiencia nutricional de cada elemento de forma independiente (35), pero no informaron sobre los síntomas que podrían ocasionar la ausencia o el déficit de más de uno de ellos, de lo cual indudablemente pueden resultar patrones más complejos y no ajustarse exactamente a los síntomas individuales.
La marcada reducción del crecimiento y la delgadez de los tallos sí pudiera ser atribuida a la falta de fósforo principalmente y, en consecuencia, se pronuncian los que señalan que la deficiencia de este elemento en plantas de papa podría ocasionar el crecimiento reducido, los tallos delgados y el oscurecimiento de las hojas (33, 35).
Por otra parte, las determinaciones de clorofila a, b y total realizadas a las plantas micorrizadas en el medio N y a sus homólogas sin micorrizar, tampoco arrojaron resultados que relacionaran la presencia de esta coloración con algún efecto producido sobre este pigmento, en especial por acción de la micorrización. De acuerdo con los resultados (Tabla II) y la información consultada, se considera como muy probable que se trate de una deficiencia múltiple de elementos, lo cual ocasiona, indudablemente, una sintomatología más compleja.
Cuando se analizan los resultados, la segunda fase del experimento, en el cual se introduce el medio M como sustrato para ambos organismos, se observa nuevamente el efecto diferenciado de los tratamientos sobre el desarrollo de las plántulas, aunque se aprecia un efecto positivo de la inoculación sobre las plantas que crecieron sobre este medio.
Precisamente, la mayoría de las publicaciones (12, 18, 26, 27), en las que se informan efectos positivos de la micorrización sobre vitroplantas, se refieren a cultivos tripartitas establecidos sobre el medio M, en los que se emplean cultivos de raíces (transformadas o no) sobre las cuales se desarrolla previamente la colonización micorrízica.
Sin embargo, resulta extremadamente interesante destacar el efecto beneficioso de la micorrización puesto de manifiesto en esta fase, en la cual las plantas de papa micorrizadas alcanzaron valores en las variables estudiadas, similares a los controles sobre el medio MS y mostraron una mayor relación raíz/tallo, a pesar de los bajos contenidos nutricionales que caracterizan el medio M (12).
]]> Los efectos encontrados in vitro pueden asociarse a los efectos nutricionales favorables vinculados con la asociación simbiótica e informados in vivo, aunque también puede verse reflejado un efecto hormonal y/o fisiológico de las especies micorrízicas sobre las plantas que colonizan.Los resultados coinciden con los reportados anteriormente (18), que encontraron efectos estimuladores de la micorrización sobre plántulas de fresa, expresados en una mayor altura y el largo radical de las plantas inoculadas, así como una reducción del potencial osmótico, lo cual podría representar una importante condición preadaptativa para enfrentar el déficit hídrico, que encuentran al ser transferidas a la fase de aclimatización, al aumentar en cierto grado la hidratación de las hojas.
Por otra parte, la introducción de HMA como inoculante en la fase adaptativa de la micropropagación de plantas ha tomado auge en los últimos años, involucrando un gran número de cultivos de interés económico (12).
Desde el punto de vista de un manejo eficiente de los HMA, en este y en cualquiera de los otros sistemas de cultivo en que se aplican, uno de los aspectos decisivos resulta la dependencia que existe entre la eficiencia de los hongos micorrizógenos y la riqueza nutricional del sustrato, definida por sus componentes. Indiscutiblemente, el empleo de este sustrato permitió no solo el exitoso desarrollo y establecimiento de la asociación micorrízica, expresado en cada una de las variables estudiadas, sino que también garantizó, conjuntamente con la micorrización, el adecuado crecimiento y la adaptación de las plántulas.
La efectividad de las cepas de HMA está ligada a la riqueza del sustrato, por lo que el hecho de que las cepas utilizadas presentaran un mayor efecto en los tratamientos sin vermiculita sugiere o indica que la disminución de los nutrientes provocada por la mezcla con este sustrato limitó en alguna medida el suministro de nutrimentos para las plantas micorrizadas, originando un comportamiento diferenciado de las cepas en función del sustrato empleado: Glomus intraradices (sustrato 1)>G. fasciculatum (sustrato 1)>G. fasciculatum (sustrato 2)>concentrado de especies de selva y desierto (sustrato 1).
De forma general, la micorrización resulta eficiente cuando las plantas se desarrollan en condiciones de suministro subóptimo de nutrientes con respecto a plantas no micorrizadas (36, 37, 38), de manera que exista una ganancia neta para la planta con esta asociación y que la energía y los productos del metabolismo de la planta, que son utilizados para el desarrollo de la micorriza, sean largamente retribuidos a través de los incrementos en absorción y en la tasa de crecimiento neto (39).Dentro de las especies pertenecientes al Orden Glomales, existen marcadas diferencias en cuanto a su distribución en los ecosistemas y a la eficiencia de sus mecanismos de colonización (40). Precisamente, las especies que pertenecen al género Glomus poseen, de manera general, un amplio rango de distribución funcional, predominando en ecosistemas de alta y media fertilidad, en los cuales resultan extremadamente eficientes y competitivas (39, 40).
En estudios realizados en posturas de cafeto sobre diferentes tipos de suelos y combinaciones de sustratos empleando gran número de cepas de HMA (39, 40) se encontró, igualmente, que en cualquiera de los suelos estudiados los mejores efectos sobre el crecimiento de las plantas estuvieron relacionados con las cepas pertenecientes al género Glomus y que también el efecto de las cepas individuales fue mayor en relación con los concentrados de especies (41).
Por otra parte, las variables fúngicas de porcentajes de colonización y densidad visual reflejaron ampliamente el comportamiento micorrízico; no obstante, la segunda logró realizar una mejor diferenciación del efecto de los sustratos, lo cual resulta lógico si tenemos en cuenta que la colonización cuantifica solamente la presencia del hongo en la raíz y no su intensidad.
Resulta de gran importancia el papel que pueden jugar estos microorganismos sobre el estado fisiológico y nutricional de las plantas colonizadas (42, 43). Su impacto en este sistema de cultivo responde a su capacidad de colonizar ampliamente el sistema radical, participando activamente en la absorción de los diferentes nutrientes (macro y micronutrientes) y el agua.
Por cada metro de raíz colonizada se producen entre 7 y 250 m de hifas externas de HMA (43), dependiendo de la especie implicada y las condiciones de crecimiento.Primeramente, existen evidencias de que la fotosíntesis puede ser regulada por la fortaleza de los sumideros o sitios de consumo, como determinadas estructuras de almacén, frutos u otros órganos (52). Un segundo mecanismo puede ser a través de incrementos en la nutrición de la planta, mediante lo cual el hongo puede incrementar la tasa fotosintética de su hospedero.
]]> En relación con el fósforo específicamente, se plantea que los niveles de Pi citoplasmático en la hojas regulan la exportación del carbono y, por tanto, la fotosíntesis a través del translocador de triosa -P/Pi que se encuentra en la membrana cloroplástica. Los bajos niveles de Pi permiten reconstituir el almidón en los cloroplastos, lo cual puede disminuir la tasa fotosintética (51). Por otra parte, las relaciones con el agua también pueden verse afectadas a causa de la colonización micorrízica, al presentar las plantas micorrizadas mayores valores de conductancia estomática y potencial de agua de las hojas en condiciones de estrés (50). Las hifas son capaces de absorber agua a potenciales más bajos que los pelos radicales, lo que provoca una mayor absorción del agua y, por tanto, que las plantas micorrizadas tengan mayores tasas fotosintéticas y contenidos de agua que las no micorrizadas.Los mecanismos involucrados aún no están totalmente dilucidados; no obstante, las hipótesis elaboradas al respecto relacionan diferentes aspectos, como son: efectos indirectos a partir de incrementos en la absorción de P; aumentos en la toma de agua a través de los sistemas micorrizados, ya sea por incrementos en la conductividad hidráulica de la raíz o por variación de su arquitectura; modificaciones bioquímicas en la regulación del agua en la planta hospedera por cambios en las señales hormonales o una inducción de respuestas osmorreguladoras de las plantas inoculadas comparadas con los controles (26, 50).En los estudios de inoculación ex vitro, las plantas de papa mostraron una alta respuesta a la inoculación con las diferentes cepas y los concentrados de especies de HMA dependientes de los sustratos empleados. Los mejores tratamientos de micorrización fueron los siguientes: G. intraradices y G fasciculatum, en el sustrato 1, seguidos por G. fasciculatum en el sustrato 2 y los concentrados de especies de selva y desierto en el sustrato 1.
El efecto positivo de la inoculación micorrízica se expresó a través de incrementos en la colonización y densidad visual, así como en el resto de las variables estudiadas, tanto fisiológicas como nutricionales y de crecimiento.REFERENCIAS
Recibido: 3 de noviembre de 2009
Aceptado: 18 de diciembre de 2009