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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Four in vitro-preserved potato species were studied for ten years, with the aim of determining if they kept their genetic stability when compared to those from the base collection remaining in the field. Species of both origins were morphologically described; isozymatic and molecular methods were used to evaluate if changes took place in the band patterns of in vitro-preserved species. The isozymatic systems, peroxidases, esterases, polyphenol oxidases and carbon anhydrase, and the AFLP molecular marker were employed. The four preserved species used were: Solanum schruteri Buk, Solanum dolichostigma Buk, Solanum jamesii Jorr and Solanum tuberosum L. Seedlings were preserved in a slow growth medium and sub-cultivated twice a year. The qualitative characters, yield and its components were evaluated, to determine if there were phenotypical changes among the species studied. Five primer combinations were used in the AFLP analysis. A t test of media comparison was made to yield and its components, to calculate if there were differences among accessions. There were not any remarkable phenotypical changes for the qualitative characters, yield and its components. Isozymatic systems did not detect changes in the band patterns, while AFLP analysis showed notable differences concerning band number; thus, it is concluded that genetic stability is not maintained in the different species studied during the preservation period evaluated.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><font size="4" face="Verdana"><strong>Determinaci&oacute;n de la estabilidad    gen&eacute;tica en cuatro especies del banco de germoplasma de papa en Cuba    conservadas <em>In Vitro</em><br />   </strong></font></p>     <p><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Determination of genetic stability in four species of    potato germplasm maintained in vitro in Cuba</font></strong></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"><br />   <strong>Dr.C. J. G. Castillo<sup>I</sup> y Ms.C. Dania Vargas<sup>I</sup>; Dra.C.    Ana Est&eacute;vez<sup>II</sup> y Dra.C. Mar&iacute;a M. Hern&aacute;ndez<sup>II</sup>,    Ms.C. J. L. Salom&oacute;n<sup>III</sup>, Aymara P&eacute;rez<sup>IV</sup>, Dr.C.    O. Borr&aacute;s-Hidalgo<sup>V</sup> y Dr.C. Y. L&oacute;pez<sup>V</sup> y Dr.C.    A. D. Arencibia<sup>VI</sup><br />   <br />   <br />   </strong>I Investigadores Agregados. E-mail: <a href="mailto:juanc@inca.edu.cu">juanc@inca.edu.cu</a><br />   II Investigadoras Titulares   <br />   III Investigador Auxiliar    <br />   IV Especialista del departamento de Gen&eacute;tica y Mejoramiento Vegetal,    Instituto Nacional de Ciencias Agr&iacute;colas (INCA), gaveta postal 1, San    Jos&eacute; de las Lajas, La Habana, CP 32700   <br />   V Investigadores del Centro de Ingenier&iacute;a Gen&eacute;tica y Biotecnolog&iacute;a    (CIGB)   <br />   VI Investigador del Instituto Nacional de Investigaciones de la Ca&ntilde;a    de Az&uacute;car (INICA), La Habana, Cuba</span></font> </p>     <p><font size="2" face="Verdana"><br />    </font> </p> <hr />     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>RESUMEN</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Se estudiaron cuatro especies de papa conservadas    <em>in vitro</em> durante diez a&ntilde;os, con el objetivo de determinar si    manten&iacute;an su estabilidad gen&eacute;tica al compararlas con las de la    colecci&oacute;n base mantenida en campo. Se realiz&oacute; una descripci&oacute;n    morfoagron&oacute;mica de las especies de ambas procedencias y se emplearon    m&eacute;todos isoenzim&aacute;ticos y moleculares, para saber si se produc&iacute;an    cambios en los patrones de bandas de las especies conservadas <em>in vitro</em>.    Se utilizaron los sistemas isoenzim&aacute;ticos peroxidasas, esterasas, polifenol    oxidasas y anhidrasa carb&oacute;nica, y el polimorfismo de longitud de fragmentos    amplificados (<em>AFLP</em>) como marcador molecular. Las cuatro especies conservadas    fueron:<em> Solanum schruteri </em>Buk<em>, Solanum dolichostigma </em>Buk<em>,    Solanum jamesii </em>Jorry<em> Solanum tuberosum </em>L<em>.</em> Las pl&aacute;ntulas    se conservaron en un medio de retardamiento del crecimiento y fueron sub-cultivadas    dos veces al a&ntilde;o. Se evaluaron los caracteres cualitativos, del rendimiento    y sus componentes, para determinar la existencia de cambios fenot&iacute;picos    en las especies estudiadas. En el an&aacute;lisis de <em>AFLP</em> se emplearon    cinco combinaciones de cebadores. Se realiz&oacute; una prueba t de comparaci&oacute;n    de medias al rendimiento y sus componentes, para calcular la existencia de diferencias    entre las accesiones. No se encontraron cambios fenot&iacute;picos notables    para los caracteres cualitativos, el rendimiento y sus componentes. Los sistemas    isoenzim&aacute;ticos no detectaron cambios en los patrones de bandas, mientras    que en el an&aacute;lisis de <em>AFLP</em>, los patrones de bandas de las plantas    conservadas <em>in vitro</em> mostraron diferencias marcadas en cuanto al n&uacute;mero    de bandas, por lo que se concluye que no se mantiene la estabilidad gen&eacute;tica    de las accesiones estudiadas en el tiempo de conservaci&oacute;n evaluado.</font>  </p>     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>Palabras clave: </strong>papa, germoplasma,    estabilidad gen&eacute;tica, marcadores moleculares</font>. </p> <hr />     <p><font size="2" face="Verdana"><strong>ABSTRACT</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Four <em>in vitro-</em>preserved potato species    were studied for ten years, with the aim of determining if they kept their genetic    stability when compared to those from the base collection remaining in the field.    Species of both origins were morphologically described; isozymatic and molecular    methods were used to evaluate if changes took place in the band patterns of    <em>in vitro-</em>preserved species. The isozymatic systems, peroxidases, esterases,    polyphenol oxidases and carbon anhydrase, and the AFLP molecular marker were    employed. The four preserved species used were: <em>Solanum schruteri</em> Buk,    <em>Solanum dolichostigma</em> Buk, <em>Solanum jamesii </em>Jorr and <em>Solanum    tuberosum</em> L. Seedlings were preserved in a slow growth medium and sub-cultivated    twice a year. The qualitative characters, yield and its components were evaluated,    to determine if there were phenotypical changes among the species studied. Five    primer combinations were used in the AFLP analysis. A t test of media comparison    was made to yield and its components, to calculate if there were differences    among accessions. There were not any remarkable phenotypical changes for the    qualitative characters, yield and its components. Isozymatic systems did not    detect changes in the band patterns, while AFLP analysis showed notable differences    concerning band number; thus, it is concluded that genetic stability is not    maintained in the different species studied during the preservation period evaluated.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"><strong>Keys words: </strong>potato, germplasm, genetic stability, molecular    markers.</font> </p> <hr />     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Hoy en d&iacute;a existe una mayor necesidad    de conservar los bancos de germoplasma fuera de su h&aacute;bitat natural para    su utilizaci&oacute;n y explotaci&oacute;n. Esto puede realizarse a trav&eacute;s    de las colecciones <em>in vitro</em> (1), las cuales tienen la ventaja sobre    el m&eacute;todo de conservaci&oacute;n tradicional, de reducir el riesgo de    la erosi&oacute;n gen&eacute;tica debido a desastres naturales, plagas y enfermedades.<br />   <br />   El cultivo de la papa se lleva a cabo mediante la propagaci&oacute;n vegetativa,    por lo cual se ve afectado seriamente por el ataque de pat&oacute;genos externos.    El establecimiento, el mantenimiento y la conservaci&oacute;n de los bancos    de germoplasma en este cultivo es de gran importancia, para los trabajos de    mejoramiento gen&eacute;tico, pues son el punto de partida para la obtenci&oacute;n    de nuevas variedades mejoradas, aunque durante este proceso pueden producirse    variaciones gen&eacute;ticas en los materiales gen&eacute;ticos conservados    (2).<br />   <br />   Estas variaciones pueden estudiarse mediante el uso de marcadores morfoagron&oacute;micos,    isoenzim&aacute;ticos y moleculares. Los primeros corresponden a los caracteres    morfol&oacute;gicos, que son importantes en la utilizaci&oacute;n de diferentes    genotipos (3). Los isoenzim&aacute;ticos posibilitan el estudio de la variaci&oacute;n    gen&eacute;tica y las similitudes o diferencias entre organismos al nivel de    su composici&oacute;n isoenzim&aacute;tica o proteica, independientemente del    efecto que puede ejercer el medio ambiente (4), y los moleculares, como el polimorfismo    de longitud de fragmentos amplificados (<em>AFLP</em>), han permitido detectar    un polimorfismo elevado entre diferentes especies de plantas, lo que los hace    adecuados para los estudios de biodiversidad (5), an&aacute;lisis de colecciones    de germoplasma (6) y la determinaci&oacute;n de la estabilidad gen&eacute;tica    de plantas regeneradas (7), entre otras.<br />   <br />   Las muestras conservadas <em>in vitro</em> en la colecci&oacute;n de germoplasma    de papa del INCA cuenta con 120 accesiones, las cuales se encuentran en medio    de conservaci&oacute;n desde hace m&aacute;s de una d&eacute;cada. El mantenimiento    de esta colecci&oacute;n es esencial, como resguardo de la colecci&oacute;n    de campo, pues permite la regeneraci&oacute;n de las muestras en caso de p&eacute;rdidas    o afectaciones sustanciales en la colecci&oacute;n de campo (8). Por tal motivo,    es importante conocer si durante el tiempo de conservaci&oacute;n se mantiene    la estabilidad gen&eacute;tica en los materiales conservados, de forma tal que    se garantice la integridad gen&eacute;tica de las accesiones.<br />   <br />   Es por ello que este trabajo estuvo encaminado a evaluar la estabilidad gen&eacute;tica    en accesiones, regeneradas a partir de la conservaci&oacute;n <em>in vitro</em>    del banco de papa en Cuba,mediante elempleo de marcadores morfoagron&oacute;micos,    isoenzim&aacute;ticos y moleculares.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">El trabajo se desarroll&oacute; en las instalaciones    del Instituto Nacional de Ciencias Agr&iacute;colas (INCA) y el Centro de Ingenier&iacute;a    Gen&eacute;tica y Biotecnolog&iacute;a (CIGB).<br />   <br />   Se estudiaron cuatro especies de papa conservadas <em>in vitro</em> por m&aacute;s    de diez a&ntilde;os, en medio de crecimiento m&iacute;nimo, realiz&aacute;ndole    dos subcultivos cada a&ntilde;o. Se tomaron cuatro vitropl&aacute;ntulas por    accesiones, que fueron adaptadas previamente y plantadas posteriormente en invernadero.    Los tub&eacute;rculos obtenidos se conservaron en c&aacute;maras refrigeradas,    conjuntamente con los tub&eacute;rculos originales de la colecci&oacute;n base,    los que se plantaron en macetas de 0,30x0,30 m en el invernadero de la sede    central del INCA y en macetas de 0,20x0,20 m en el CIGB durante dos a&ntilde;os.    Las atenciones culturales se realizaron de forma manual y el riego de forma    localizada. Las macetas conten&iacute;an una mezcla de suelo y materia org&aacute;nica    en proporci&oacute;n 2:1.<br />   <br />   Las especies de papa conservadas <em>in vitro</em>(MS+manitol) y cultivadas    en el campo fueron las siguientes: <em>Solanum schruteri</em> Buk, <em>Solanum    dolichostigma </em>Buk, <em>Solanum jamesii </em>Jorr y <em>Solanum tuberosum    </em>L. (var. 3-92-85).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><em>Evaluaci&oacute;n &nbsp;morfoagron&oacute;mica de las accesiones evaluadas.</em> Durante dos campa&ntilde;as, 2003-2004 y 2004-2005, se realiz&oacute; una descripci&oacute;n    morfoagron&oacute;mica detallada, para comprobar cambios visibles del fenotipo    de las accesiones seg&uacute;n la procedencia, utilizando los descriptores propuestos    por Huam&aacute;n y G&oacute;mez (9).<br />   <br />   <em>An&aacute;lisis isoenzim&aacute;ticos.</em> Estos se realizaron mediante    los sistemas peroxidasas, esterasas, anhidrasa carb&oacute;nica y polifenol    oxidasas, para los que se tomaron muestras de 1,5-3,0 g de tejido foliar fresco    de las hojas terminales a los 25 d&iacute;as de plantadas las accesiones en    macetas en el &aacute;rea central del INCA. Se hicieron las tinciones fotoqu&iacute;micas    para las enzimas peroxidasas, esterasas y polifenol oxidasas (10) y, en el caso    de la anhidrasa carb&oacute;nica, se utiliz&oacute; la metodolog&iacute;a propuesta    por Gonz&aacute;lez (11).<br />   <br />   <em>An&aacute;lisis molecular.</em> Se realiz&oacute; mediante el <em>AFLP</em>,    para el cual se tomaron muestras de 3 g de hojas j&oacute;venes de plantas de    las accesiones estudiadas, a los 25 d&iacute;as de plantadas en los invernaderos    del CIGB. Las muestras se liofilizaron en N l&iacute;quido y conservaron a -20oC.    El ADN gen&oacute;mico total de cada accesi&oacute;n se aisl&oacute; por el    m&eacute;todo de CTAB (12) y su calidad se comprob&oacute; por chequeo electrofor&eacute;tico    en geles de agarosa 0,8 %.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">  El an&aacute;lisis de AFLP sigui&oacute; la metodolog&iacute;a de Vos (13).    Los oligonucle&oacute;tidos se confeccionaron por el sintetizador de ADN <em>Milligen      Expedite </em>8909 (Millipore Corp. Bedford, MA, EE.UU.) en el CIGB. Se utilizaron    cinco combinaciones de cebadores<em> MseI+act-PstI+gcc, MseI+cga-PstI+aac, MseI+agc-PstI+aac,      MseI+cgg-PstI+cct y MseI+gac-PstI+agc.</em><br />   <br />   <em>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</em>s. Para el rendimiento y sus componentes    se realiz&oacute; una prueba t de comparaci&oacute;n de valores relacionados    mediante el paquete estad&iacute;stico SPSS versi&oacute;n 11.5 para Windows,    con el fin de determinar si exist&iacute;an diferencias significativas entre    las muestras seg&uacute;n su procedencia.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">  Para los an&aacute;lisis isoenzim&aacute;ticos y moleculares se evaluaron las    bandas de forma binaria, considerando el valor 0 como ausencia y 1 como presencia    de la banda. A partir de las matrices de los datos originales, se calcul&oacute;    la similitud gen&eacute;tica (<em>Genetic Similarity</em>, GSij) entre cada    par de accesiones, utilizando solo las bandas polim&oacute;rficas mediante el    paquete estad&iacute;stico <em>Ntsys-pc</em> 2.02i. Los agrupamientos se efectuaron    con el algoritmo <em>SAHN</em> (<em>Sequential Agglomerative Hierarchical and      Nested</em>) utilizando el &iacute;ndice de similitud (IS) de Jaccard. El m&eacute;todo    de agrupamiento empleado fue el de la media aritm&eacute;tica no ponderada (<em>UPGMA</em>-<em>Unweighted      pair-group method</em> <em>arithmetic average</em>). Las matrices de valor cofen&eacute;tico    se obtuvieron mediante el algoritmo <em>COPH</em> del paquete estad&iacute;stico    <em>Ntsys-pc</em> y comparadas con las matrices originales que se utilizaron    en los agrupamientos, de acuerdo con la prueba de correspondencia de Mantel    y empleando el algoritmo de comparaci&oacute;n <em>Mxcomp</em>. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><strong>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><em>Evaluaci&oacute;n morfoagron&oacute;mica    de las accesiones estudiadas. </em>En la <a href="#t1">Tabla I</a> se aprecia    que no existieron cambios significativos en cuanto al fenotipo. Los caracteres    cualitativos se mantuvieron inalterables y solo sufri&oacute; cambios el car&aacute;cter    n&uacute;mero de tallos por planta, que fue ligeramente superior en todos los    casos, cuando la especie proven&iacute;a de la colecci&oacute;n base con respecto    a las<em> in vitro</em>. Otro cambio notable fue el que se manifest&oacute;    en la intensidad de la floraci&oacute;n, que a excepci&oacute;n de la especie <em>Solanum schruteri</em>, fue mayor cuando las plantas proven&iacute;an de  la colecci&oacute;n base.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="t1" id="t1"></a><br />   <img src="/img/revistas/ctr/v31n3/t108310.gif" width="673" height="379" />    </font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana"><br />   Es importante tener en cuenta la estabilidad gen&eacute;tica de los caracteres    morfoagron&oacute;micos, pues en cualquier programa de mejoramiento puede ser    &uacute;til, cuando se quieren mantener inalterables caracteres de importancia    econ&oacute;mica (14) y se necesita mejorar un car&aacute;cter determinado (15).    En trabajos con h&iacute;bridos som&aacute;ticos de papa entre las especies    <em>S. tuberosum</em> L. (48x) y <em>S. brevidens</em> (24x) ha sido dif&iacute;cil    mantener la estabilidad de los caracteres morfoagron&oacute;micos, debido posiblemente    a p&eacute;rdidas de cromosomas en los procesos de regeneraci&oacute;n (16).<br />   <br />   En la <a href="#t2">Tabla II</a> se presentan los resultados de la prueba t    de comparaci&oacute;n de medias, efectuada para el rendimiento y sus componentes    en las cuatro especies estudiadas. Se observa, en la mayor&iacute;a de las especies,    un ligero incremento de los valores de los caracteres evaluados, cuando las    especies proven&iacute;an de la conservaci&oacute;n <em>in vitro</em>, en relaci&oacute;n    con las provenientes del campo, excepto para la especie <em>Solanum tuberosum</em>.    La <em>Solanum jamessi</em> no present&oacute; diferencias significativas para    ninguno de los caracteres evaluados, mientras que la <em>Solanum dolichostigma</em>    y <em>Solanum schruteri</em> mostraron diferencias significativas para el n&uacute;mero    de tub&eacute;rculos y la altura de la planta.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><br />   <a name="t2" id="t2"></a> <br />   <img src="/img/revistas/ctr/v31n3/t208310.gif" width="508" height="287" />    </font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana"><br />   La especie <em>Solanum tuberosum</em> present&oacute; diferencias altamente    significativas, para el n&uacute;mero de tub&eacute;rculos por planta, no as&iacute;    para el resto de los caracteres. Se ha podido constatar la estabilidad fenot&iacute;pica,    del rendimiento y sus componentes en el cultivo de la papa, al estudiar 12 clones    en condiciones de campo (17). En este mismo sentido, no se han encontrado cambios    fenot&iacute;picos notables en los componentes del rendimiento en plantas de    soja crioconservadas y no crioconservadas (18).<br />   <br />   <em>An&aacute;lisis isoenzim&aacute;tico. </em>En la <a href="#f1">Figura 1</a>    se presentan los patrones isoenzim&aacute;ticos evaluados para el an&aacute;lisis    del comportamiento de la estabilidad gen&eacute;tica de las cuatro especies    estudiadas. Como se aprecia en ella, se mantuvieron los patrones de bandas id&eacute;nticos    para cada par de muestras de cada accesi&oacute;n. Los sistemas peroxidasas    y esterasas fueron los de mayor n&uacute;mero de bandas para ambas procedencias.    Estos sistemas fueron, adem&aacute;s, los m&aacute;s polim&oacute;rficos y los    que presentaron los mayores niveles de tinci&oacute;n y grosor de las bandas;    no obstante, la intensidad de tinci&oacute;n y el grosor de las bandas no es    un indicador exacto de equivalencia gen&eacute;tica (19), pues ello depende,    en gran medida, del tipo de material vegetal (20) y la concentraci&oacute;n    de las muestras (21).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><br />   <a name="f1" id="f1"></a> <br />   <img src="/img/revistas/ctr/v31n3/f108310.gif" width="364" height="371" />    </font></p>     
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<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"><br />   El alto polimorfismo de los sistemas esterasas y peroxidasas se ha manifestado    al estudiar las progenies provenientes de cuatro cruces intraespec&iacute;fcos    de papa en el programa de mejoramiento cubano (22). En este mismo sentido, se    ha encontrado tambi&eacute;n un elevado polimorfismo gen&eacute;tico de estos    dos sistemas isoenzim&aacute;ticos, al estudiar la estabilidad gen&eacute;tica    de callos de papa conservados <em>in vitro</em> (2).<br />   <br />   La anhidrasa carb&oacute;nica, por su parte, manifest&oacute; un bajo polimorfismo,    ya que present&oacute; el mayor n&uacute;mero de bandas comunes y no reflej&oacute;    diferencias entre los patrones de bandas de las plantas de ambas procedencias.    Resultados similares ya han sido informados por otros que encontraron para este    sistema un marcado monomorfismo en callos de papa, utilizando diferentes concentraciones    de Pectimorf (22). El sistema polifenol oxidasas, por su parte, reflej&oacute;    el menor n&uacute;mero de bandas y, por tanto, el menor polimorfismo. Este sistema    ha sido empleado con &eacute;xito en los estudios de tolerancia al calor en    tomate (23).<br />   <br />   En la <a href="#f2">Figura 2</a> se observa el dendrograma formado a partir    de las bandas polim&oacute;rficas en los cuatro sistemas isoenzim&aacute;ticos    realizados. Se obtuvieron coeficientes de similitud del 100 % para las accesiones    de ambas procedencias, lo que demuestra que los sistemas isoenzim&aacute;ticos    utilizados no detectaron cambios en los patrones de bandas en las accesiones    conservadas. En la colecci&oacute;n de yuca del CIAT, no se encontraron variaciones    detectables en los patrones de bandas de plantas procedentes <em>in vitro</em>    y de la colecci&oacute;n base durante diez a&ntilde;os de estudio; utilizando    diferentes sistemas isoenzim&aacute;ticos (24). Ya se han utilizado las t&eacute;cnicas    isoenzim&aacute;ticas, para detectar estabilidad en los materiales conservados    <em>in vitro</em> con resultados exitosos (2, 25). Sin embargo, es importante    aplicar t&eacute;cnicas m&aacute;s novedosas y avanzadas que complementen estos    resultados.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><br />   <a name="f2" id="f2"></a> <br />   <img src="/img/revistas/ctr/v31n3/f208310.gif" width="508" height="244" />    </font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana"><br />   Las diferencias observadas en los patrones de bandas de las muestras evaluadas    pudieran deberse a que las pl&aacute;ntulas se conservaron en un medio de crecimiento    m&iacute;nimo, que conten&iacute;a sustancias retardadoras del crecimiento (manitol),    como parte de los componentes del medio de cultivo, en el cual permanecieron    durante largo tiempo. Se ha comprobado que el uso de retardadores del crecimiento    puede producir cambios morfol&oacute;gicos, provocar la formaci&oacute;n de    callos, vitrificaci&oacute;n o generar mutaciones en las plantas conservadas,    lo cual atenta contra su estabilidad gen&eacute;tica (26). Se ha informado,    adem&aacute;s, la utilizaci&oacute;n de un nuevo producto retardador del crecimiento    con resultados alentadores y que no produce, hasta el momento, variaciones gen&eacute;ticas    detectables en los materiales <em>in vitro</em>, aunque el tiempo evaluado fue    de 16 meses y utilizaron para el estudio marcadores <em>RAPD</em> (27).<br />   <br />   En el germoplasma de papa de Filipinas, en un monitoreo realizado en el banco    de conservaci&oacute;n <em>in vitro</em>, durante un per&iacute;odo entre dos    y 10 a&ntilde;os, se encontraron unas 311 variedades de papa, 13 de ellas con    variaciones gen&eacute;ticas detectables por m&eacute;todos isoenzim&aacute;ticos    y moleculares (28). Tambi&eacute;n se ha detectado variaci&oacute;n gen&eacute;tica,    al analizar la estabilidad de 22 variedades de ca&ntilde;a de az&uacute;car    conservadas <em>in vitro,</em> donde una de ellas result&oacute; diferente en    cuanto a la resistencia a la roya de la ca&ntilde;a (29). Sin embargo, no se    ha detectado variaci&oacute;n gen&eacute;tica en variedades de boniato conservadas    en campo e <em>in vitro</em> durante diez a&ntilde;os, utilizando <em>AFLP</em>    y microsat&eacute;lites, aunque se sugiere que la no detecci&oacute;n de variabilidad    gen&eacute;tica en los materiales conservados<em> in vitro</em> no asegura que    los genotipos analizados sean gen&eacute;ticamente estables; pues los cambios    a nivel molecular pueden tener efectos delet&eacute;reos no detectables (30).    <br />   <br />   Al analizar el dendrograma formado a partir de las bandas polim&oacute;rficas    obtenidas mediante los marcadores <em>AFLP</em> en las cinco combinaciones de    cebadores (<a href="#f3">Figura 3</a>), utilizando el &iacute;ndice de Jaccard    (z= 0,78), se observ&oacute; que tanto las especies provenientes del cultivo    <em>in vitro</em> como las de la colecci&oacute;n base poseen &iacute;ndices    de similitud cercanos entre ellos, pero no es de 1 (100 %). Los IS entre los    patrones de banda de cada accesi&oacute;n fueron altos, llegando a ser de un    93 % para las especies <em>S. schruteri</em>, <em>S. dolichostigma</em> y <em>S.    tuberosum,</em> mientras que para la especie <em>S. schruteri,</em> el &iacute;ndice    de similitud fue de alrededor del 90 %.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><br />   <a name="f3" id="f3"></a> <br />   <img src="/img/revistas/ctr/v31n3/f308310.gif" width="487" height="267" />    </font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana"><br />   La t&eacute;cnica de <em>AFLP</em> logr&oacute; detectar los cambios que se    produjeron a nivel de ADN y que no fueron detectados a nivel isoenzim&aacute;tico.    Estudios recientes confirman la eficiencia de esta t&eacute;cnica y otras de    marcadores moleculares, en la determinaci&oacute;n de la estabilidad gen&eacute;tica    en plantas de papa derivadas de cultivo<em> in vitro</em> (31, 32), as&iacute;    como en otros cultivos (33, 34).<br />   <br />   Los resultados permitieron determinar que no se mantiene la estabilidad gen&eacute;tica    de las accesiones estudiadas; por tanto, se sugiere la utilizaci&oacute;n de    nuevos retardadores del crecimiento, como el sorbitol y acimidol, que se han    empleado con &eacute;xito en la conservaci&oacute;n a mediano plazo del germoplasma    de papa a nivel mundial.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><br />   <span class="style3"><font size="3"><strong>REFERENCIAS</strong></font></span></font>  <ol>       <li><font size="2" face="Verdana">Gepts, P. Plant genetic resources conservation      and utilization: The accomplishments and future of a societal insurance policy.      <em>Crop Sci</em>., 2006, vol. 46, p. 2278&ndash;2292.<br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Lara, R. M.; Florido, M.; Plana, D.; Mor&eacute;,      O.; Gonz&aacute;lez, M. E.; &Aacute;lvarez, M. y Hern&aacute;ndez M. M. Isoenzymatic      analisys for detecting <em>in vitro</em> variability and/or stability of economically      important crops. <em>Cultivos Tropicales</em>, 2003, vol. 24, no. 3, p. 39-47.      <br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Franco, T. L. e Hidalgo, R. (eds.). An&aacute;lisis      estad&iacute;stico de datos de caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica de      recursos fitogen&eacute;ticos. Bolet&iacute;n t&eacute;cnico no. 8, Instituto      Internacional de Recursos Fitogen&eacute;ticos (IPGRI), Cali, Colombia. 2003,      89 p.<br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Iglesias, L. Estudio de la variabilidad morfoagron&oacute;mica      y bioqu&iacute;mica en soya (<em>Glycine max</em> L. Merrill). Tesis de Grado      (Dr. en Ciencias Agron&oacute;micas). INCA. La Habana. 1986, 232 p. <br />     </font></li>       ]]></body>
<body><![CDATA[<li><font size="2" face="Verdana">Vetel&auml;inen, M.; Gammelgard, E. y Valkonen,      J. P. T. Diversity of nordic landrace potatoes (<em>Solanum tuberosum</em>      L.) revealed by AFLPs and morphological characters. <em>Genetic Resources      and Crop Evolution</em>, 2005, vol. 52, no. 8, p. 1072-1077.<br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Negi, M. S. V.; Sabharwal, S. R. y Lakshmikumaran,      M. Utility of AFLP markers for the assessment of genetic diversity within      <em>Brassica nigra</em> germplasm. <em>Plant Breeding</em>, 2004, vol. 123,      no. 1, p. 13-19. Sharma, S. K.; Glenn, J. B.; Mark, O. W. y Millam, S. Stability      of potato (<em>Solanum tuberosum</em> L.) plants regenerated via somatic embryos,      axillary bud-proliferated shoots, microtubers and true potato seeds: a comparative      phenotypic, cytogenetic and molecular assessment. <em>Revista Planta</em>.      Article On line, 2005. <br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Est&eacute;vez, A.; Gonz&aacute;lez, M. E.;      Castillo, J.; Salom&oacute;n, J. L.; Cordero, M.; Ort&iacute;z, U. y Hern&aacute;ndez,      M. Informe final proyecto PNCT Evaluaci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n      morfobot&aacute;nica y bioqu&iacute;mica del germoplasma cubano de papa. Cod.      015-00023. INCA. 2003, 92 p. <br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Huam&aacute;n, Z. y G&oacute;mez, R. Descriptores      de papa para la caracterizaci&oacute;n b&aacute;sica de colecciones nacionales.      Edici&oacute;n actualizada. Centro Internacional de la Papa (CIP), Lima. 1994,      10 p. <br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Iglesias, L. Utilizaci&oacute;n de marcadores      bioqu&iacute;micos y moleculares en el mejoramiento gen&eacute;tico de la      papa. <em>Cultivos Tropicales</em>, 1994, vol. 15, no. 2, p. 106-121. <br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Gonz&aacute;lez, C. Comportamiento gen&eacute;tico      bioquimicos de la lima persa SRA-58 (<em>Citrus latifolia</em>) sobre diferentes      patrones en Cuba. (Tesis de Doctorado). UH. 1989.<br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Dellaporta, S. L.; Wood, J. y Hichs, J. B.      A plant molecular DNA minipreparation, versi&oacute;n II. <em>Plant Mol. Biol.      Rep</em>., 1993, vol. 1, p. 19-21.<br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Vos, P.; Hogers, R.; Bleeker, M.; Reijans,      M.; Lee, T. van de; Hornes, M.; Fritjers, A.; Pot, J.; Kuiper, M. y Zabeau,      M. AFLP: a new technique for DNA fingerprinting. <em>Nucleic Acids Research</em>,      1995, vol. 23, no. 21, p. 4407-4414. <br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Ortiz, R. y Golmirzaie, A. M. Genetic parameters      for agronomic characteristics. I. Early and intermediate breeding populations      of true potato seed. <em>Hereditas</em>, 2003, vol. 139, no. 2, p. 212&ndash;216.      <br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Liu, J., Liu, L., Hou, N., Zhang, A. y Liu,      C. Genetic diversity of wheat gene pool of recurrent selection assessed by      microsatellite markers and morphological traits. <em>Euphytica</em>, 2007,      vol. 155, no. 1-2, p. 249-258. <br />     </font></li>       ]]></body>
<body><![CDATA[<li><font size="2" face="Verdana">Preiszner, J.; Feh&eacute;r, A.; Veisz, O.;      Sutka, J. y Dudits, D. Characterization of morphological variation and cold      resistance in interspecific somatic hybrids between potato (<em>Solanum tuberosum</em>      L.) and S. brevidens. <em>Euphytica</em>, 1991, vol. 57, no. 1, p. 137-49.<br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Gonz&aacute;lez, M. E.; Est&eacute;vez, A.;      Castillo, J.; Salom&oacute;n, J. L.; Varela, M.; Ortiz, U. y Ortiz, E. Utilizaci&oacute;n      del m&eacute;todo biplot en los an&aacute;lisis de estabilidad genot&iacute;pica      en el cultivo de la papa. <em>Cultivos Tropicales</em>, 2003, vol. 24, no.      1, p. 81-84.<br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Ort&iacute;z, R.; Fe, C. de la; Cornide, M.      T. y Rodr&iacute;guez, A. Estabilidad varietal de la ca&ntilde;a de az&uacute;car      procedente de meristemos crioconservados. <em>Cultivos Tropicales</em>, 2000,      vol. 21, no. 2, p. 17-19.<br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Barta, J.; Curn, V. y Divis, J. Study of biochemical      variability of potato cultivar by soluble proteins, isoesterase and isoperoxidase      electrophoretic patterns. <em>Plant Soil Environment</em>, 2003, vol. 49,      no. 5, p. 230-236. </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Nezih, M. The peroxidase enzyme activity of      some vegetables and its resistance to heat. <em>Journal of the Science of      Food and Agriculture</em>, 2006, vol. 36, no. 9, p. 877-880.</font></li>       <li><font size="2" face="Verdana"><a>Lara-Cabrera</a>, S. y Spooner, D. M. Taxonomy      of North and Central American diploid wild potato (<em>Solanum</em> sect.      <em>Petota, Solanaceae</em>) species: AFLP data. <em>Amer. Jour. of Pot. Research</em>,      2004, vol. 81, no. 1, p. 71-76.<br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Castillo, J. G. Estimaci&oacute;n de la variabilidad      gen&eacute;tica en poblaciones h&iacute;bridas de papa (<em>Solanum tuberosum</em>      L.). Tesis de Maestr&iacute;a. INCA. La Habana, Cuba. 2000, 72 p.<br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Thipyapong, P., Melkonian, J., Wolfe, D. W.      y Steffensa, J. C. Suppression of polyphenol oxidases increases stress tolerance      in tomato. <em>Plant Science</em>, 2004, vol. 67, no. 4, p. 693-703. <br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Reed, B. M.; Engelmann, F.; Dulloo, M. E.      y Engels, J. M. M. Technical guidelines for the management of field and <em>in      vitro</em> germplasm collections. IPGRI, Roma Italia. 2004, 106 p. <br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Kaneko, Y.; Yano, H.; Bang, S. W. y Matsuzawa,      Y. Genetic stability and maintenance of <em>Raphanus sativus</em> lines with      an added <em>Brassica rapa</em> chromosome. <em>Plant Breeding</em>, 2003,      vol. 122, no. 3, p. 239-245. </font><br />   </li>   <font size="2" face="Verdana"> </font><font size="2" face="Verdana">        ]]></body>
<body><![CDATA[<li> Golmirzaie, A. y Toledo, J. Non-cryogenic long-term germplasm storage.      En: Hall, R. (Ed.). Methods in Molecular Biology. Vol. 111. Plant Cell Culture      Protocols. Humana Press. Netherlands, 1998, p. 95-101.Sarkar, D.; Swarup,      K.; Chakrabarti, S. y Naik, P. Low-growth conservation of potato microplants:      efficacy of ancymidol for long-term storage <em>in vitro. Euphytica</em>,      20 01, vol. 117, no. 2, p. 133-142.</li>   </font>    <li><font size="2" face="Verdana">Zamora, A. B. y Paet, C. N. <em>In vitro</em>      gene bank activities at the institute of plant breeding. College of Agriculture,      University of the Philippines at Los Ba&ntilde;os. En: Management of field      and <em>in vitro</em> germplasm collections. F. Engelman ed. 15-20 January,      IPGRI, Roma Italia. 1999, p. 76-84.<br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Victoria, J. L y Guzm&aacute;n, M. L. Sugar      cane <em>in vitro</em> culture in Colombia. En: Management of field and <em>in      vitro</em> germplasm collections. F. Engelman ed. 15-20 January, 1996, IPGRI,      Roma Italia. 1999, p. 88-89. <br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Jarret, L. J. y Towill, L. E. Maintenance      of sweet potato germplasm in the S-9 germplasm collection in Griffin, Georia,      USA. En: Management of field and in vitro germplasm collections. F. Engelman      ed. 104-109 January, IPGRI, Roma Italia. 1999, p. 76-84.<br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Mandolina, G.; De Marco, S.; Faeti, V.; Bagatta,      M.; Carboni, A. y Ranalli, P. Stability of fingerprints of <em>Solanum tuberosum</em>      plants derived from conventional tubers and vitrotubers. <em>Plant Breeding</em>,      2007, vol. 115, no. 6, p. 439&ndash;444. <br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Chimot, V. P., Swarup, K. C, Pattanayak, D.      Molecular analysis of cytoplasm type in Indian potato varieties. <em>Euphytica</em>,      2007, vol. 162, no. 1, p. 69-80.<br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Legesse, B. W.; Myburg, A. A.; Pixley, K.      V.; Twumasi-Afriyie, S. y Botha, A. M. Relationship between hybrid performance      and AFLP based genetic distance in highland maize inbred lines. <em>Euphytica</em>,      2007, vol. 162, no. 3, p. 313-323. <br />     </font></li>       <li><font size="2" face="Verdana">Sorkheh, K.; Shiran, B.; Gradziel, T. M.;      Epperson, B. K.; Mart&iacute;nez-G&oacute;mez, P. y Asadi, E. AFLP as a tool      for molecular characterization of almond germplasm: genetic diversity among      cultivated genotypes and related wild species of almond, and its relationships      with agronomic traits. <em>Euphytica</em>, 2007, vol. 156, no. 3, p. 327-344.</font></li>     </ol>     <p>&nbsp;</p> <font size="2" face="Verdana"><strong>Recibido: 9 de julio de 2009</strong></font><strong><font size="2" face="Verdana"><br /> Aceptado: 19 de mayo de 2010</font></strong>      ]]></body>
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