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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[CONTENIDOS DE PROLINA, GLICINA BETAÍNA Y PROTEÍNAS SOLUBLES TOTALES EN 12 VARIEDADES CUBANAS DE TRIGO EN CONDICIONES SALINAS]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,del Instituto de Investigaciones Agropecuarias (IIA) Jorge Dimitrov  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Proline, glicine betaíne and total soluble protein contents were determined in 12 Cuban wheat varieties, of T. aestivum and T. durum species, growing under saline conditions. Thus, two experimental variants were conducted based on a concentrated nutrient solution. The first treatment became salty with NaCl to an electric conductivity of 8 dS.m-1 and the control treatment without applying NaCl. This test was performed under hidropony conditions and treatments were applied from sowing time until 45 days after seed germination, when determinations were recorded. Data obtained in the control and stress treatments were compared by t-student test for 5 and 1 % significant levels. As a result, an important increment of proline content was obtained in most varieties, the accumulation in foliage being bigger than in roots. Glicine betaíne content was highly significant just in wheat varieties of T. durum species. Total soluble protein content showed a rather variable behaviour, even among varieties from the same species; that is why it was not considered an efficient indicator of salinity tolerance. The varieties Cuba-C-204, INIFAT RM-36, INIFAT RM-37 and INIFAT RM-26 showed the highest proline accumulation.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>CONTENIDOS    DE PROLINA, GLICINA BETA&Iacute;NA Y PROTE&Iacute;NAS SOLUBLES TOTALES EN 12    VARIEDADES CUBANAS DE TRIGO EN CONDICIONES SALINAS</strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong><font size="3">Content    of proline, glycine betaine and soluble protein 12 TOTAL Cuban varieties of    wheat in saline conditions</font></strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>    <br>       <br>   Ms.C. L. Argentel<sup>I</sup>. E-mail: <a href="mailto:largentelm@udg.co.cu">largentelm@udg.co.cu</a>    y Ms.C. I. Fonseca<sup>I</sup>, Dr.C. L. M. Gonz&aacute;lez<sup>II</sup>, Dr.    D. R. L&oacute;pez<sup>III</sup>    <br>       <br>       <br>   </strong>I Profesores Auxiliares de la Universidad de Granma Bayamo       <br>   II Investigador y Profesor Titular del Instituto de Investigaciones Agropecuarias    (IIA) Jorge Dimitrov, Bayamo. Cuba       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   III Profesor e Investigador Titular del Centro de Investigaciones Biol&oacute;gicas    del Noreste, M&eacute;xico.    <br>   <strong> </strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>RESUMEN</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En este experimento    se determinaron los contenidos de prolina, glicina beta&iacute;na y prote&iacute;nas    solubles totales en 12 variedades cubanas de trigo, de las especies T. aestivum    y T. durum, cultivadas en condiciones salinas. Para ello se montaron dos variantes    experimentales basadas en una soluci&oacute;n nutritiva concentrada. El primer    tratamiento se saliniz&oacute; con NaCl a una conductividad el&eacute;ctrica    de 8 dS.m-1 y el tratamiento control sin aplicar NaCl. Este ensayo se realiz&oacute;    en condiciones de hidropon&iacute;a y los tratamientos se aplicaron desde el    momento de la siembra hasta los 45 d&iacute;as de germinadas las semillas, cuando    se realizaron las determinaciones. Los datos obtenidos en los tratamientos control    y de estr&eacute;s se compararon por la prueba de t-student para los niveles    de significaci&oacute;n del 5 y 1 %. Como resultado se obtuvo un significativo    incremento del contenido de prolina en la mayor&iacute;a de las variedades,    siendo mayor la acumulaci&oacute;n en el follaje que en las ra&iacute;ces. El    contenido de glicina beta&iacute;na solo fue altamente significativo en las    variedades de trigo de la especie T. durum. El contenido de prote&iacute;nas    solubles totales present&oacute; un comportamiento muy variable, incluso entre    variedades de la misma especie, por lo que no se consider&oacute; un indicador    eficiente de tolerancia a la salinidad. Las variedades Cuba C-204, INIFAT RM-26,    INIFAT RM&#8211;37 e INIFAT RM-26 fueron las de mejor acumulaci&oacute;n de    prolina.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras    clave: </strong>prolina, glicina beta&iacute;na, prote&iacute;nas solubles totales,    trigo, salinidad.</font></p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>ABSTRACT</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Proline, glicine    beta&iacute;ne and total soluble protein contents were determined in 12 Cuban    wheat varieties, of T. aestivum and T. durum species, growing under saline conditions.    Thus, two experimental variants were conducted based on a concentrated nutrient    solution. The first treatment became salty with NaCl to an electric conductivity    of 8 dS.m-1 and the control treatment without applying NaCl. This test was performed    under hidropony conditions and treatments were applied from sowing time until    45 days after seed germination, when determinations were recorded. Data obtained    in the control and stress treatments were compared by t-student test for 5 and    1 % significant levels. As a result, an important increment of proline content    was obtained in most varieties, the accumulation in foliage being bigger than    in roots. Glicine beta&iacute;ne content was highly significant just in wheat    varieties of T. durum species. Total soluble protein content showed a rather    variable behaviour, even among varieties from the same species; that is why    it was not considered an efficient indicator of salinity tolerance. The varieties    Cuba-C-204, INIFAT RM&#8211;36, INIFAT RM&#8211;37 and INIFAT RM-26 showed the    highest proline accumulation.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Key words: </strong>proline, glicine beta&iacute;ne, total soluble proteins,    wheat, salinity.</font></p> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>   <font size="3"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  La mayor&iacute;a de las especies de cultivo consideradas glic&oacute;fitas    han desarrollado a lo largo del tiempo mecanismos de tolerancia a la salinidad.    De ah&iacute; se pueden diferenciar especies glic&oacute;fitas tolerantes, moderadamente    tolerantes y otras que no toleran la salinidad, que son clasificadas por susceptibles    (1). Actualmente, se trabaja por incrementar la tolerancia a la salinidad mediante    la introgresi&oacute;n de genes a partir de especies silvestres con tolerancia    a este tipo de estr&eacute;s, pero este proceso resulta extremadamente engorroso    y lento, lo que trae el riesgo de que cuando se obtenga una variedad, el nivel    de salinidad del suelo se haya incrementado, dado fundamentalmente por la significativa    velocidad de salinizaci&oacute;n de los suelos (2). Una de las t&eacute;cnicas    m&aacute;s adecuadas para la mitigaci&oacute;n de los efectos adversos de la    salinidad es la selecci&oacute;n de cultivares con tolerancia natural para este    car&aacute;cter (3).    <br>       <br>   Durante el estr&eacute;s salino las plantas activan diferentes mecanismos fisiol&oacute;gicos    para asegurar la homeostasis i&oacute;nica. Uno de ellos es el ajuste osm&oacute;tico.    Ante el inminente aumento en la concentraci&oacute;n de Na+ y Cl-1 en el suelo,    la planta garantiza disminuir el potencial osm&oacute;tico y, en consecuencia,    el h&iacute;drico en las c&eacute;lulas de los diferentes &oacute;rganos, evitando    la toxicidad i&oacute;nica y la interferencia en la asimilaci&oacute;n de cationes    importantes, por lo que se induce a nivel de gen la s&iacute;ntesis de compuestos    org&aacute;nicos osm&oacute;ticamente activos entre ellos la prolina, glicina-beta&iacute;na    y se modifica el metabolismo proteico (2). Muchos de los osmolitos y prote&iacute;nas    de estr&eacute;s tienen funciones espec&iacute;ficas bien descritas y otros    probablemente desintoxican las plantas de agentes estresantes o las previenen    de posibles da&ntilde;os en su estructura (4). En algunos &oacute;rganos de    las plantas, ciertas sustancias como la prolina, beta&iacute;na, glicina beta&iacute;na,    varios carbohidratos y prote&iacute;nas, como la osmotina, se sintetizan y ello    ha sido empleado como un patr&oacute;n importante para la selecci&oacute;n de    genotipos tolerantes a este tipo de estr&eacute;s (5, 6), por lo que su estudio    en el germoplasma disponible en condiciones de salinidad puede emplearse, conjuntamente    con otros indicadores fisiol&oacute;gicos y bioqu&iacute;micos, para la identificaci&oacute;n    de tolerancia al estr&eacute;s salino.    <br>       <br>   En la presente investigaci&oacute;n se exponen algunos de los resultados en    este sentido, en un germoplasma de trigo conformado por variedades cubanas,    las cuales est&aacute;n siendo objeto de investigaci&oacute;n y cultivo en condiciones    salinas en la regi&oacute;n oriental de Cuba, donde otras especies muestran  susceptibilidad a la salinidad del suelo.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>   <font size="3"><strong>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</strong></font></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  Las variedades se establecieron en condiciones de hidropon&iacute;a, en el invernadero    del laboratorio de Fisiolog&iacute;a Vegetal, Centro de Investigaciones Biol&oacute;gicas    del Noroeste, M&eacute;xico, Unidad &#8220;Guerrero Negro&#8221;, con el objetivo    de determinar el comportamiento de las variedades en el nivel cr&iacute;tico    de salinidad encontrado, tomando como criterios de selecci&oacute;n algunos    indicadores del r&eacute;gimen h&iacute;drico y osm&oacute;tico.    <br>       <br>   Se conformaron flotadores rectangulares de poliespuma de 30x20 cm (7) y se seccionaron    en cuatro partes con una superficie de 15x8.5 cm, donde se establecieron 20    semillas por cada secci&oacute;n, que se ubicaron de forma alineada para un    total de 80 semillas por variedad. Al fondo de los flotadores se coloc&oacute;    una malla pl&aacute;stica con orificios de 4mm2. Los flotadores se ubicaron    en bandejas pl&aacute;sticas rectangulares transparentes de 50x39 cm, cubiertas    con papel aluminio para evitar la entrada lateral de luz. En cada bandeja se    establecieron dos variedades. La siembra se hizo a las 7:00 a.m. Se a&ntilde;adi&oacute;    un volumen inicial de cinco litros de soluciones, hasta completar un volumen    final de 18 litros, que conformaron los tratamientos. Los flotadores se mantuvieron    plenamente sobre el agua y se emplearon varillas de suspensi&oacute;n, para    evitar la hiperhidricidad en las semillas. La aireaci&oacute;n de las soluciones,    en cada bandeja, se realiz&oacute; con bombas aireadoras (Mellin 2,8), que distribu&iacute;an    el aire a cada bandeja con mangueras pl&aacute;sticas transparentes de 3 mm    de di&aacute;metro. Las variedades empleadas en el estudio se describen en la  <a href="#t1">Tabla I</a>.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>   <strong><a name="t1"></a></strong>     <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v31n4/t109410.gif" width="476" height="306">    </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> </font></p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">      
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Tratamientos. Estos    consistieron en la aplicaci&oacute;n de dos soluciones nutritivas, que se describen    a continuaci&oacute;n:</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  T1: tratamiento salino: soluci&oacute;n nutritiva (8) salinizada a base de NaCl    con una conductividad el&eacute;ctrica de 8 dS.m-1    <br>   T2: tratamiento control: soluci&oacute;n nutritiva (9), siguiendo las exigencias    nutricionales del cultivo, con una conductividad el&eacute;ctrica de 0,36 dS.m-1.    <br>   Las soluciones nutritivas de los dos tratamientos establecidos se ajustaron    a un pH de 6.0 empleando el medidor PH 40S. La conductividad el&eacute;ctrica    se midi&oacute; por un conduct&iacute;metro MQ-EC.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   Los tratamientos se dispusieron mediante un arreglo experimental completamente    aleatorizado. Cada variedad se repiti&oacute; cuatro veces en ambos tratamientos.    <br>       <br>   Variables evaluadas</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  Contenido de prolina. Se midi&oacute; de acuerdo con el m&eacute;todo descrito    (10). Una masa de 0.50 g de tejido foliar tomada al azar de la parte media a    las 10:00 a.m. en cada &oacute;rgano evaluado, replicada cuatro veces, se congel&oacute;    en nitr&oacute;geno l&iacute;quido y homogeniz&oacute; con &aacute;cido sulfosalic&iacute;lico    (3 %). El residuo se separ&oacute; por centrifugaci&oacute;n a 13000 revoluciones    durante 10 min. Luego, 500,0 &micro;L del extracto se hicieron reaccionar con    500,0 &micro;L de &aacute;cido ac&eacute;tico glacial y 500,0 &micro;L de ninhidrina    a 100&ordm;C por una hora. La reacci&oacute;n se detuvo en ba&ntilde;o con hielo.    El complejo crom&oacute;foro-prolina se extrajo con 1,0 mL de tolueno. La prolina    se cuantific&oacute; en un espectrofot&oacute;metro Hewlett Packard 8452 a 520    nm, usando L-prolina para la curva de calibraci&oacute;n.    <br>       <br>   Contenido de glicina beta&iacute;na. Este contenido foliar (GB) se determin&oacute;    siguiendo el m&eacute;todo descrito (11). En las 12 variedades una masa de 2    g de follaje de 15 plantas, de la parte media del follaje, tomadas al azar en    cada tratamiento, fue finamente molida y agitada mec&aacute;nicamente con 20    mL de agua deionizada durante 24 h a una temperatura de 25&deg;C. Posteriormente,    las muestras se filtraron y el filtrado se diluy&oacute; a 1:1 con 2 N H SO.    Las al&iacute;cuotas se almacenaron a 4&deg;C durante 16 h; posteriormente,    se centrifugaron a 10000 rpm durante 15 min a una temperatura de 0&deg;C. El    sobrenadante se separ&oacute; suavemente con un capilar de cristal. Los cristales    se disolvieron en 9 mL de 1,2-dicloroetano. Despu&eacute;s de 2 h de reposo,    se midi&oacute; la absorbancia a 365 nm, en un espectrofot&oacute;metro Hewlett    Packard 8452, utilizando Glic&iacute;n betainato ionizado (GBI) para la curva    de calibraci&oacute;n.    <br>       <br>   Contenido de prote&iacute;nas solubles totales. Una muestra de 1.0 g de material    fresco finamente cortado se deposit&oacute; en un mortero y se macer&oacute;.    La extracci&oacute;n se realiz&oacute; con 40,0 mL de una soluci&oacute;n buffer    de fosfato a pH 6.86, preparado a partir de fosfato de potasio, soluci&oacute;n    que se adicion&oacute; lentamente mientras se efectuaba la extracci&oacute;n.    El extracto se decant&oacute; en tubos de centrifugaci&oacute;n de 50 mL y se    centrifug&oacute; a 10000 rpm durante 7 min. Finalmente, la soluci&oacute;n    sobrenadante separada se trasvas&oacute; a matraces volum&eacute;tricos de 50    mL. Se emple&oacute; papel filtro no. 3 en el filtrado, para prevenir la transferencia    de residuos. Se agreg&oacute; un volumen de 0.25 mL del reactivo Folin-Ciocalteu    diluido (concentraci&oacute;n &aacute;cida 1M). El contenido de prote&iacute;nas    solubles totales se cuantific&oacute; mediante fotometr&iacute;a de absorci&oacute;n    en un espectrofot&oacute;metro Hewlett Packard 8452, a una longitud de onda    de 750 nm.</font></p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Contenido de prolina.    Este se increment&oacute; significativamente en las plantas sometidas al medio    salino en todas las variedades estudiadas, existiendo una amplia variabilidad    en los resultados. En las variedades Cuba-C-204, INIFAT RM-30, INIFAT RM-36    e INIFAT RM-26, los valores del contenido de prolina en las ra&iacute;ces se    incrementaron en 10&plusmn;1.42 mg.g-1 mf, siendo estas las variedades que m&aacute;s    acumularon. Similar comportamiento se present&oacute; en el follaje, con un    incremento superior a los 20 mg.g-1 mf en las vainas y superior a 30 mg.g-1    mf en las hojas. Las variedades INIFAT RM-31, TH 24 N, INCA TD 18 e INCA TD    16 E presentaron el menor incremento del contenido de prolina en el medio salino    con un promedio de 3&plusmn;0.37 mg.g-1 mf (<a href="#t2">Tabla II</a>). Este    incremento en las variedades pudo haber tenido lugar para realizar el ajuste    osm&oacute;tico en funci&oacute;n de este compuesto osm&oacute;ticamente activo,    con vistas a mantener el potencial osm&oacute;tico y, en consecuencia, el h&iacute;drico    a un nivel muy bajo, que permitiera absorber el agua en condiciones de estr&eacute;s    salino. Entre todas las variedades, INIFAT RM-36 e INIFAT RM-26 fueron las que    m&aacute;s prolina acumularon.</font></p>     <p align="center"><a name="t2"></a>    <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v31n4/t209410.gif" width="599" height="338"></p>     
<p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las    variedades que toleran ciertos niveles de salinidad, al ser sometidas a condiciones    salinas despu&eacute;s de la germinaci&oacute;n, realizan un r&aacute;pido ajuste    osm&oacute;tico, generalmente en funci&oacute;n de compuestos org&aacute;nicos    (prolina y glicina beta&iacute;na) y as&iacute; reducen el potencial h&iacute;drico    celular. Paralelamente, reducen la conductividad hidr&aacute;ulica de las ra&iacute;ces    y sus membranas, para evitar la entrada de iones t&oacute;xicos; por ello, el    crecimiento inicial en algunas especies se retarda (12). Una vez lograda la    homeostasis, se puede restablecer el crecimiento (13).    <br>       <br>   Se ha sugerido que la prolina participa en m&uacute;ltiples roles en la tolerancia    de las plantas al estr&eacute;s, actuando como mediador del ajuste osm&oacute;tico    (7, 14), estabilizador de prote&iacute;nas y membranas, inductor de genes relacionados    con la tolerancia al ajuste osm&oacute;tico mediante mecanismos de regulaci&oacute;n    g&eacute;nica (15), fuente de carbono y nitr&oacute;geno f&aacute;cilmente disponible    en la rehidrataci&oacute;n celular (16), fuente de equivalentes de reducci&oacute;n    del catabolismo de prolina, para sostener la fosforilaci&oacute;n oxidativa    y generaci&oacute;n de ATP durante la recuperaci&oacute;n del estr&eacute;s.    Adem&aacute;s, ayuda al control de la acidosis del citosol y puede mantener    la relaci&oacute;n NADH/NAD+ a valores compatibles con el metabolismo (13),    y ayuda a las c&eacute;lulas a superar la tensi&oacute;n oxidativa -cosechador    de especies reactivas de ox&iacute;geno- (14). En muchas especies de cereales    como en trigo T. aestivum y cebada, en condiciones de estr&eacute;s salino,    la acumulaci&oacute;n de prolina ha sido atribuida a un aumento de su bios&iacute;ntesis    (17), debido a la inducci&oacute;n de la actividad de la enzima &quot;1&#8211;pirrolina-5-carboxilasa    sintetasa (P5CS) y la alta concentraci&oacute;n de &aacute;cido glut&aacute;mico    (18).    <br>       <br>   En un estudio realizado al analizar 30 cultivares de Triticum aestivum L. sometidos    a estr&eacute;s salino, el contenido de prolina en hojas aument&oacute; 15.2    veces en 19 cultivares considerados como tolerantes a sales, mientras que en    los cultivares moderadamente tolerantes aument&oacute; 7.8 veces y en un cultivar    considerado susceptible se encontr&oacute; un aumento de prolina solo de 5.4    veces en relaci&oacute;n con el control, cuando se aplic&oacute; una concentraci&oacute;n    de NaCl de 16 dS.m-1, adem&aacute;s de que en las variedades de mayor acumulaci&oacute;n    de prolina fueron las de mayor ajuste osm&oacute;tico (14). Un comportamiento    similar se ha obtenido en otras especies como el ma&iacute;z (16).    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   La obtenci&oacute;n de plantas gen&eacute;ticamente modificadas con mayor capacidad    de acumulaci&oacute;n de compuestos org&aacute;nicos con funci&oacute;n protectora:    prolina, beta&iacute;na y glicina beta&iacute;na, ha resultado en fenotipos    con mayor tolerancia a salinidad (17). La modificaci&oacute;n de otros factores:    mol&eacute;culas se&ntilde;al, factores de transcripci&oacute;n, etc., tambi&eacute;n    tiene efecto en la respuesta de la planta y son objetivos promisorios en la    b&uacute;squeda de tolerancia por el efecto pleiotr&oacute;pico que tienes sobre    los genes y prote&iacute;nas de estr&eacute;s (18).    <br>       <br>   Sin embargo, se ha planteado que el aumento de prolina es solamente uno de los    factores que ayuda a las c&eacute;lulas a mantener el bajo potencial osm&oacute;tico    y, en consecuencia, el potencial h&iacute;drico, mientras que otros procesos    deben llevarse a cabo para aumentar la habilidad de las plantas, a fin de tolerar    la deficiencia fisiol&oacute;gica de agua y vencer el estr&eacute;s osm&oacute;tico,    para sostener su crecimiento y desarrollo mediante la s&iacute;ntesis de otros    compuestos osm&oacute;ticamente activos como la glicina beta&iacute;na y las    prote&iacute;nas solubles totales (16).    <br>       <br>   Contenido foliar de glicina beta&iacute;na. Este se increment&oacute; significativamente    en el follaje de la mayor&iacute;a de las variedades en el tratamiento salino,    pero su incremento medio general solo fue de 2,3 mg.g-1 ms respecto a los valores    obtenidos en el tratamiento control (<a href="#f1">Figura 1</a>). Un elemento    significativo en el estudio realizado fue que las variedades de T. durum acumularon    m&aacute;s glicina beta&iacute;na que las de trigo harinero y su incremento    ascendi&oacute; a m&aacute;s de 10 mg.g-1 ms en el follaje; sin embargo, estas    variedades de trigo duro fueron las que menos prolina acumularon. Actualmente,    se han obtenido variedades de T. durum que sintetizan m&aacute;s glicina beta&iacute;na    que prolina y han mostrado mayor tolerancia a la salinidad (19).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>       <br>   <strong><a name="f1"></a></strong>     <br>   <img src="/img/revistas/ctr/v31n4/f109410.gif" width="603" height="278">    </font></p>     
<p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   En muchas especies de un g&eacute;nero determinado responden de manera muy diferente    a la salinidad por su capacidad de s&iacute;ntesis, acumulaci&oacute;n de compuestos    osm&oacute;ticamente activos y ajuste osm&oacute;tico. Es algo dif&iacute;cil    asegurar que en tales condiciones se acumula solo un tipo de compuesto osm&oacute;ticamente    activo (20, 21). Dentro de los compuestos org&aacute;nicos que generalmente    se sintetizan a nivel celular para el ajuste osm&oacute;tico en condiciones    de salinidad o sequ&iacute;a, se encuentran la glicina beta&iacute;na y prolina,    siendo este &uacute;ltimo amino&aacute;cido el de mayor contribuci&oacute;n    a la adaptaci&oacute;n de vegetales a estos tipos de estr&eacute;s abi&oacute;ticos    (22, 23).    <br>       <br>   Contenido de prote&iacute;nas solubles totales. Este se increment&oacute; significativamente    en algunas variedades en el medio salino respecto al control, mientras que en    otras disminuy&oacute; (<a href="#f2">Figura 2</a>). En algunas variedades de    la especie T. aestivum se produjo una disminuci&oacute;n del contenido de prote&iacute;nas    solubles totales, probablemente para elevar la concentraci&oacute;n de amino&aacute;cidos    libres en el citosol y as&iacute; disminuir su potencial h&iacute;drico y mantener    la entrada de agua. En este caso, INIFAT RM-36, INIFAT RM-26, INIFAT RM-30,    INIFAT RM-37 y Cuba-C-204 e INCA TH 24 N fueron las variedades con disminuciones    m&aacute;s significativas. En las variedades de la especie T. durum INCA TD    16 E e INCA TD 18 y las de T. aestivum INIFAT RM-29, INIFAT RM-31, INIFAT RM-32,    el contenido de prote&iacute;nas solubles totales se increment&oacute;.    <br>       <br>   En condiciones de salinidad, en muchas especies de cereales, primeramente se    produce un incremento del contenido de prote&iacute;nas solubles totales, pero    estos valores van descendiendo debido a la actividad de las proteasas, para    emplear los amino&aacute;cidos en el recambio proteico, como fuente de energ&iacute;a,    fuente carbonada o nitrogenada, adem&aacute;s de emplear, en un primer paso,    los amino&aacute;cidos para el incremento de la concentraci&oacute;n de compuestos    osm&oacute;ticamente activos y as&iacute; asegurar la disminuci&oacute;n del    potencial osm&oacute;tico y, en consecuencia, el potencial h&iacute;drico celular    (24). Este proceso quiz&aacute;s fue el que se produjo en las variedades estudiadas.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>   <a name="f2"></a> </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <img src="/img/revistas/ctr/v31n4/f209410.gif" width="647" height="287"></font></p>     
<p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>   En trigo se ha planteado que existen dos mecanismos de tolerancia a la salinidad    en funci&oacute;n del metabolismo proteico: en un primer momento se produce    un incremento significativo del contenido de prote&iacute;nas solubles y estos    valores pueden mantenerse en dependencia de las necesidades energ&eacute;ticas    y osm&oacute;ticas de la planta. En un segundo momento, fundamentalmente en    variedades m&aacute;s sensibles, se produce de inmediato una significativa prote&oacute;lisis    para elevar la concentraci&oacute;n de solutos en el citosol y mantener el potencial    h&iacute;drico en valores inferiores al del suelo, asegurando la entrada de    agua. Las especies y variedades que no incluyen sodio y, por consiguiente, no    se produce interferencia en la asimilaci&oacute;n de potasio, degradan m&aacute;s    r&aacute;pidamente las prote&iacute;nas que las incluyentes (25).    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   Los resultados del presente estudio contribuyen a la evaluaci&oacute;n de la    tolerancia a la salinidad en el germoplasma de trigo que se emplea en Cuba y    ofrecen un elemento importante sobre el funcionamiento vegetal en condiciones    adversas como la salinidad de los suelos, visto en funci&oacute;n de modificaciones    fisiol&oacute;gicas y bioqu&iacute;micas que garantizan el metabolismo celular    y macrosc&oacute;picamente la productividad.</font></p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  Actualmente, el comportamiento de estas y otras variables fisiol&oacute;gicas,    bioqu&iacute;micas y agron&oacute;micas est&aacute;n siendo objeto de estudio,    para la introducci&oacute;n y validaci&oacute;n de variedades tolerantes a la    salinidad en la regi&oacute;n oriental de Cuba (26), asegurando un acercamiento    a la rentabilidad de los suelos salinos y el incremento de la biodiversidad    de especies en ecosistemas fr&aacute;giles y degradados.    <br> </font></p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>REFERENCIAS</strong></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">  1. 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Effects of salt stress on growth,    mineral nutrition and proline accumulation in relation to osmotic adjustment    in rice (Oryza sativa L.) cultivars differing in salinity resistance. Plant    Growth Regul., 1996, vol. 19, p. 207-218.    <br>       <!-- ref --><br>   10. Bates, L. S., Waldren, R. P., Tear, I. D. Rapid determination of free proline    for water stress studies. Plant Soil, 1973, vol. 39, p. 205-207.    <br>       <!-- ref --><br>   11. Grieve, C. M. y Grattan, S. R. Rapid assay for determination of water-soluble    quaternary ammonium compounds. Plant Soil, 1983, vol. 70, p. 303-307.    <br>       <!-- ref --><br>   12. Meloni, D. A., Oliva, M. A., Ruiz, H. A., Mart&iacute;nez, C. A. Contribution    of proline and inorganic solutes to osmotic adjustment in cotton under salt    stress. J. Plant Nutr., 2001, vol. 24, p. 599-612.    <br>       <!-- ref --><br>   13. Yancey, P. H., Clark, M. E., Hand, S. C., Bowlus, R. D., Somero, G. N. Living    with water stress: evolution of osmolyte systems. Science, 1982, vol. 217, p.    1214-1222.    <br>       <!-- ref --><br>   14. Flowers, T. J. y Yeo, A. R. Ion relations of plants under drought and salinity.    En: Australian Journal of Scientific Research. Melbourne. 1986, 75 &#8211; 91    p.    <br>       <!-- ref --><br>   15. Wyn J y Gorham, J. Physiological effects of salinity: scope for genetic    improvement 177-201. En: Improvement and management of winter cereals under    temperature, drought and salinity stresses. Proceeding of the International    Symposium October, 1983, Cordoba, Spain.    <br>       <!-- ref --><br>   16. Liu J. H., Inoue, H. y Moriguchi, T. Salt stress-mediated changes in free    proline and expression of genes responsible its biosynthesis in wheats. Environmental    and Experimental Botany, 2008, vol. 62, p. 28-35.    <br>       <!-- ref --><br>   17. Jacovy, B. Production of wheat along the wold. En: Booklet of plant and    crop stress. Edited by Pessarakli M. Ed. Marcel Dekker, Inc., Nueva York. EUA.    2008, 52&#8211;67 p.    <br>       <!-- ref --><br>   18. Hasegawa, P. M., Bressan, R. A., Zhu, J-K, Bohnert, H. J. Plant cellular    and molecular responses to high salinity. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol.    Biol., 2000, vol. 51, p. 463-499.    <br>       <!-- ref --><br>   19. Hasegawa, P. Differential gene expression for glicine beta&iacute;ne and    prroline content on wheat mutants. Plant J., 2004, vol. 30, p. 529-539.    <br>       <!-- ref --><br>   20. Gilliham, M. The regulation of anion loading to the maize root xylem. Plant    Physiol., 2005, vol. 137, p. 819-828.    <br>       <!-- ref --><br>   21. Hill, A. Osmolite accumulation-salinity tolerance. J. Membrane Biol., 2004,    vol. 197, p. 1-32.    <br>       <!-- ref --><br>   22. Kavi Kishor, P. B. 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Evaluaci&oacute;n de la tolerancia a la    salinidad en estadios tempranos y finales del desarrollo en triticales (X triticum  secale). Cultivos Tropicales, 2010, vol. 31, no. 1, p. 47-52.    </font></p>     <p>&nbsp;</p> </font>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><SPAN lang="EN-US"><font size="2">Recibido: </font></SPAN><font size="2"><SPAN lang="EN-US">17 de   mayo de 2009</SPAN>    <br> Aceptado: 28   de septiembre de 2010</font></font></p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">     ]]></body>
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