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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efectos de la aplicación de un análogo espirostánico de brasinoesteroides en vitroplantas de banano (Musa spp.) durante la fase de aclimatización]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effects of applying of brassinosteroids analog spirostanic in banano (Musa spp.)vitroplants during acclimatization phase]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The acclimatization of plants from the culture in vitro to ex vitro conditions is very important for bananas. This study was carried out at the National Institute of Agricultural Sciences and Plant-factory San Jose de las Lajas. The objective was to evaluate the effect of a brassinosteroids analog (ABr) applied during the acclimatization phase in some morpho-anatomics, physiological and cytogenetic characters in the vitroplants of 'FHIA-18' clone, obtained with the use of ABr consecutively in every phase of in vitro culture of this genotype. A mixture of organic matter and eutric compacted Red Ferralitic soil at a rate of 3:1 v/v was used as a substrate. At 45 days, survival percentage, total dry mass, soluble proteins content, stomatal density, stomatal length and the cuticle thickness was evaluated. As a result, vitroplants root immersion for 15 minutes before being planted and foliar spraying with ABr between 0.02-0.2 ?mol.L-1, 15 days after planting, increased plant survival by 11 % approximately compared to the control plants; and they presented bigger foliate area, dry mass and proteins content. It is informed for the first time that ABr stimulates the thickness growth in the cuticle and maintains constant the chromosomes number.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <strong>Comunicaci&oacute;n Corta</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>   <font size="4"><strong>Efectos de la aplicaci&oacute;n de un an&aacute;logo    espirost&aacute;nico de brasinoesteroides en vitroplantas de banano (Musa spp.)    durante la fase de aclimatizaci&oacute;n</strong></font></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><span style='font-family:Verdana'><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Effects    of applying of brassinosteroids analog spirostanic in banano (Musa spp.)vitroplants    during acclimatization phase</font></span></strong></p>     <p>&nbsp;</p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">      <p><font size="2"><strong>Ms. C. H. Izquierdo,<sup>I</sup> Dra. C. Miriam N&uacute;&ntilde;ez,<sup>I</sup>    <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Dra. C. Mar&iacute;a C. Gonz&aacute;lez,</font><sup>II</sup>    <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Ruth Proenza<sup>III</sup></font></strong>    <br>       <br>   <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>I</sup></font></font><font size="2">    Departamento de Fisiolog&iacute;a y Bioqu&iacute;mica Vegetal<font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">,    Instituto Nacional de Ciencias Agr&iacute;colas (INCA), gaveta postal 1, San    Jos&eacute; de las Lajas, Mayabeque, Cuba, C.P. 32700</font>    <br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2"><sup>II</sup></font></font><font size="2">    Investigadora Titular del departamento de Gen&eacute;tica y Mejoramiento Vegetal,    Instituto Nacional de Ciencias Agr&iacute;colas (INCA), gaveta postal 1, San    Jos&eacute; de las Lajas    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2"><sup>III</sup></font></font></font><font size="2">    Especialista de la Biof&aacute;brica Habana, carretera a Jamaica. Finca &#8220;El    Llano&#8221; Km. 2 &frac12; San Jos&eacute; de las Lajas, Mayabeque, Cuba, C.P.    32700    <br>   </font></p>     <p>&nbsp;</p> </font> <hr> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">      <p><font size="2"><strong>RESUMEN</strong>    <br>       <br>   La aclimatizaci&oacute;n de las plantas provenientes del cultivo in vitro, a    las condiciones ex vitro, es de gran importancia para los bananos. El trabajo    se desarroll&oacute; en el Instituto Nacional de Ciencias Agr&iacute;colas y    en la Biof&aacute;brica de San Jos&eacute; de las Lajas, con el objetivo de    evaluar el efecto que ejerce un an&aacute;logo de brasinoesteroides (ABr) aplicado    durante la fase de aclimatizaci&oacute;n en algunos caracteres morfoanat&oacute;micos,    fisiol&oacute;gicos y citogen&eacute;ticos en las vitroplantas de banano del    clon &#8216;FHIA-18&#8217; cuando las mismas se obtuvieron con el empleo del    ABr de forma consecutiva en todas las fase del cultivo in vitro de este genotipo.    Se utiliz&oacute; como sustrato una mezcla de materia org&aacute;nica y suelo    del tipo Ferral&iacute;tico Rojo compactado e&uacute;trico en una relaci&oacute;n    3:1 v/v. A los 45 d&iacute;as, se evalu&oacute; el porcentaje de supervivencia,    el &aacute;rea foliar, la masa seca total, el contenido de prote&iacute;nas    solubles totales, la densidad y longitud de los estomas, as&iacute; como el    grosor de la cut&iacute;cula. Como resultado se obtuvo que la inmersi&oacute;n    de las ra&iacute;ces de las vitroplantas durante 15 minutos antes de su plantaci&oacute;n    y la aspersi&oacute;n foliar con el ABr a concentraciones que oscilaron entre    0.02-0.2 ?mol.L-1, 15 d&iacute;as despu&eacute;s de la plantaci&oacute;n, increment&oacute;    la supervivencia de las plantas en un 11 % aproximadamente con respecto a las    plantas del tratamiento control; y presentaron mayor &aacute;rea foliar, masa    seca, contenido de prote&iacute;nas y se inform&oacute; por primera vez que    el ABr estimul&oacute; el crecimiento en grosor de la cut&iacute;cula y mantiene    constante el n&uacute;mero de cromosomas. </font></p>     <p><font size="2"><strong>Palabras clave:</strong> cut&iacute;cula, cultivo ex    vitro, morfolog&iacute;a, n&uacute;mero de cromosomas, productos bioactivos.    <br>   </font></p> </font>  <hr> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">     <p><font size="2"><strong>ABSTRACT</strong>    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   The acclimatization of plants from the culture in vitro to ex vitro conditions    is very important for bananas. This study was carried out at the National Institute    of Agricultural Sciences and Plant-factory San Jose de las Lajas. The objective    was to evaluate the effect of a brassinosteroids analog (ABr) applied during    the acclimatization phase in some morpho-anatomics, physiological and cytogenetic    characters in the vitroplants of 'FHIA-18' clone, obtained with the use of ABr    consecutively in every phase of in vitro culture of this genotype. A mixture    of organic matter and eutric compacted Red Ferralitic soil at a rate of 3:1    v/v was used as a substrate. At 45 days, survival percentage, total dry mass,    soluble proteins content, stomatal density, stomatal length and the cuticle    thickness was evaluated. As a result, vitroplants root immersion for 15 minutes    before being planted and foliar spraying with ABr between 0.02-0.2 ?mol.L-1,    15 days after planting, increased plant survival by 11 % approximately compared    to the control plants; and they presented bigger foliate area, dry mass and    proteins content. It is informed for the first time that ABr stimulates the    thickness growth in the cuticle and maintains constant the chromosomes number.    <br>       <br>   <strong>Key words:</strong> cuticle, ex vitro cultivation, morphology, chromosome    number, bioactive products.</font></p> </font>  <hr> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">      <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2"><strong><font size="3">INTRODUCCI&Oacute;N</font></strong>    <br>       <br>       <br>   Una vez finalizada la propagaci&oacute;n in vitro de las pl&aacute;ntulas es    imprescindible la adaptaci&oacute;n de las mismas a las condiciones ambientales    ex vitro no controladas, tanto en casa de cultivo como en condiciones campo;    esta fase se conoce como aclimatizaci&oacute;n. Las plantas deben adaptarse    desde el punto de vista morfol&oacute;gico y fisiol&oacute;gico despu&eacute;s    de su transferencia del cultivo in vitro a las condiciones ex vitro, es decir    que cambian su metabolismo heterotr&oacute;fico o mixotr&oacute;fico al aut&oacute;trofo    (1, 2).    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   El banano (Musa spp.), es uno de los cultivos de mayor consumo. Su producci&oacute;n    mundial se estima en m&aacute;s de 245 400 toneladas m&eacute;tricas (3); sin    embargo, presenta diferentes problem&aacute;ticas tales como: las afectaciones    por diferentes enfermedades fitopat&oacute;genas y el porte alto de las plantas    sobre todo en las regiones tropicales y subtropicales, que son desvastadas por    los fen&oacute;menos climatol&oacute;gicos, como los ciclones (4, 5), entre    otras. Aunque la micropropagaci&oacute;n contribuye a solucionar algunos de    los problemas anteriores, la misma tambi&eacute;n tiene sus limitantes como    son: el bajo coeficiente de multiplicaci&oacute;n, alto porcentaje de fenolizaci&oacute;n    de los explantes, los niveles de ploidia cuando los subcultivos son prolongados    y una baja supervivencia durante la aclimatizaci&oacute;n de las plantas, que    es la fase final de cualquier protocolo de regeneraci&oacute;n de plantas, adem&aacute;s    de la influencia del genotipo (6, 7).    <br>       <br>   Los brasinoesteroides son hormonas esteroidales de las plantas esenciales para    su normal crecimiento y desarrollo (8, 9). Sin embargo, su respuesta depende    de la estructura de la cadena carbonada (en el caso de los an&aacute;logos),    de la especie y de la variedad de planta de que se trate. En la actualidad se    emplean los an&aacute;logos de brasinoesteroides sintetizados en Cuba para mejorar    la propagaci&oacute;n in vitro y la aclimatizaci&oacute;n de los cultivos (10),    ya que se consideran sustancias antiestr&eacute;s (10, 11). Por lo que su empleo    en todas las fases del cultivo in vitro y su posterior utilizaci&oacute;n en    la fase de aclimatizaci&oacute;n pudiera resultar beneficioso para mejorar la    supervivencia de las plantas.    <br>       <br>   Se emplean los an&aacute;logos de brasinoesteroides (ABr), en una u otra fase    de la micropropagaci&oacute;n de los pl&aacute;tanos y bananos (10, 12); sin    embargo, no se ha estudiado hasta el momento el efecto que provocan en la morfog&eacute;nesis,    la fisiolog&iacute;a y anatom&iacute;a de las plantas que se obtienen cuando    los mismos se utilizan de forma consecutiva en todos los medios de cultivo en    la fase in vitro, as&iacute; como la influencia de la inmersi&oacute;n de la    ra&iacute;ces y la posterior aspersi&oacute;n foliar a las plantas en las condiciones    ex vitro y si el ABr induce o no variabilidad gen&eacute;tica.    <br>       <br>   El trabajo se realiz&oacute; con el objetivo de evaluar el efecto que ejerce    un an&aacute;logo de brasinoesteroides (ABr) aplicado durante la fase de aclimatizaci&oacute;n    en algunos caracteres morfoanat&oacute;micos, fisiol&oacute;gicos y citogen&eacute;ticos    en las vitroplantas de banano del clon &#8216;FHIA-18&#8217; cuando las mismas    se obtuvieron con el empleo del ABr de forma consecutiva en todas las fase del    cultivo in vitro de este genotipo.</font></p>     <p><font size="2">    <br>   <font size="3"><strong>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</strong></font>    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   El trabajo se realiz&oacute; en el Instituto Nacional de Ciencias Agr&iacute;colas    y en la Biof&aacute;brica de San Jos&eacute; de las Lajas, provincia de Mayabeque.    <br>   Para la aclimatizaci&oacute;n se emple&oacute; como material vegetal, vitroplantas    procedentes de la fase de enraizamiento in vitro del clon &#8216;FHIA-18&#8217;    (AAAB), que es uno de los h&iacute;bridos que m&aacute;s se cultiva en el pa&iacute;s.    Las mismas se obtuvieron con la utilizaci&oacute;n del an&aacute;logo de brasinoesteroides    (ABr) en todas las fases de propagaci&oacute;n in vitro (establecimiento, multiplicaci&oacute;n    y enraizamiento).    <br>       <br>   </font><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>La aclimatización se realizó según    la metodología establecida (13). Las vitroplantas se plantaron en bandejas de    polieturano de 70 alvéolos (cepellones), que contenían un sustrato compuesto    por materia orgánica (cachaza) y suelo Ferralítico Rojo compactado éutrico (14),    en una proporción 3:1 v/v, al que se le garantizó el riego por nebulización    en los primeros 10 días, para lograr una alta humedad relativa (95-100 %). Para    el sombreo se utilizó una malla negra (70 % de reducción de luz solar). Las    características químicas del sustrato se muestran en la <a href="http://img/revistas/ctr/v33n1/t0111112.gif">Tabla    I</a>.</span></p> </font>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Se empleó un tratamiento    control sin aplicación del ABr y tres tratamientos en los que se realizó la    inmersión de las raíces de las vitroplantas en el ABr (masa molar es de 446,606    g.mol-1) y 15 días después de la plantación se asperjaron con el análogo a las    concentraciones de 0.02; 0.1 y 0.2 ?mol.L-1; la aspersión se realizó a razón    de 2 mL por vitroplanta.     <br>       <br>   A los 45 días, se evaluó: el porcentaje de supervivencia (35 plantas), el área    foliar (20 plantas) la masa seca total (5 plantas) y el contenido de proteínas    solubles totales (15).     <br>       <br>   Para el estudio anatómico se tomó la última hoja completamente extendida (de    la base del pseudotallo hacia el ápice) y de la zona central (sin incluir la    nervadura) se cortó una porción de 1 cm2 aproximadamente y se les realizaron    cortes transversales a mano alzada con una cuchilla de afeitar ASTRA. Todo el    procedimiento se realizó según lo informado en la literatura (16, 17).    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   La densidad estomática se determinó en cinco plantas, para lo cual se contó    la cantidad de estomas por ambas superficies foliares (adaxial y abaxial), el    conteo se realizó a través del ocular micrométrico del microscopio que tenía    un aumento de 40 x, la longitud de los estomas y el grosor de la cutícula, se    midieron de forma similar a la anterior. En todos los casos se realizaron 25    mediciones.     <br>       <br>   Para el estudio del cariotipo se utilizaron raíces de aproximadamente un centímetro    de longitud y se siguió el procedimiento descrito por Román (18). Se realizó    el conteo de los cromosomas a cinco plantas por tratamiento y se contaron 25    células por planta al inicio (cero días) y final (45 días) de la aclimatización,    para lo cual se empleó un microscopio óptico Olympus con cámara fotográfica    Canon acoplada. Las mejores metafases se fotografiaron con un objetivo de 100    x y la lente de la cámara con un ocular de 10 x.    <br>       <br>   En el experimento se empleó un diseño completamente aleatorizado, se repitió    dos veces y se utilizó en cada caso, como dato primario, la media de ambas repeticiones    para cada tratamiento experimental. El porcentaje de supervivencia se estudió    a través del análisis de las diferencias entre proporciones, para el resto de    las variables se realizó un Análisis de Varianza (ANOVA) de clasificación simple    para el análisis de los datos y las medias se compararon según la Prueba de    Tukey al 95 %. Para el procesamiento de los mismos se utilizó el paquete estadístico    STATGRAPHICS Plus versión 5.0 para Windows.</span></p>     <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>    <br>   </span><strong><span style='font-family:Verdana'>RESULTADOS Y DISCUSIÓN</span></strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>    <br>       <br>       <br>   El porcentaje de sobrevivencia es un indicador muy importante en la fase de    aclimatización, pues de él depende la cantidad de plantas que pueden llevarse    a vivero y posteriormente al campo. La <a   href="http://img/revistas/ctr/v33n1/f0111112.gif">Figura 1</a> muestra los resultados:    como se puede apreciar las plantas del tratamiento 4 &#091;I + A.- ABr (0.2    ?mol.L-1)&#093; alcanzaron los mejores resultados, ya que incrementaron    su supervivencia en 11 % (96.65 %) aproximadamente con respecto a las plantas    del tratamiento control.</span></p> <span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Rodríguez    y col. (19), en la aclimatización de plantas de papaya (Carica papaya cv. 'Maradol    roja') obtuvieron un supervivencia entre 80-82 %, en Tuberaria major (Willk.)    P. Silva y Rozeira, que es una planta que se encuentra cerca de las costas de    Portugal, se obtuvo un 97% de supervivencia seis semanas después del trasplante    (20), Wu et al. (21), informaron más de un 90 % de supervivencia de las plantas    de genotipo de plátano 'Baxi Xiangjiao' (grupo AAA) durante la fase de aclimatación,    así mismo Scaranari et al. (22) alcanzaron buenos resultados en la aclimatización    de plántulas de banano del clon Gran Enano. También pude existir una activación    de la biosíntesis de los brasinoesteroides cuando se aplican exógenamente en    las plantas e influyen en la supervivencia de las mismas y por consiguiente    en su crecimiento y desarrollo.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br> Hubo diferencias estadísticas entre los tratamientos en cuanto al área foliar,  la masa seca y el contenido de proteínas solubles totales (<a href="http://img/revistas/ctr/v33n1/t0211112.gif">Tabla  II</a>), excepto entre los tratamientos 1 y 2 en el área foliar.</span>     <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Como se puede apreciar en    la tabla anterior el área foliar osciló entre 3.06-3.54 cm2 y los mejores resultados    los obtuvieron las plantas del tratamiento cuatro &#091;ABr (0.2 mmol.L-1)&#093;,    al igual que en el caso de la masa seca y el contenido de proteínas. Otros autores    también informan que han alcanzado buenos resultados cuando han evaluado estos    y otros parámetros morfológicos, fisiológicos y bioquímicos con la utilización    de un análogo de brasinoesteroides en la fase in vitro y la posterior evaluación    de su efecto residual en la fase de aclimatización en un clon de plátano macho    (23), así mismo también han informado buenos resultados cuando utilizan los    brasinoesteroides (24, 25), ya que atenúan el estrés tanto biótico o abiótico.    <br>       <br>   La utilización de este nuevo regulador del crecimiento (ABr) en todas las fases    del cultivo in vitro (establecimiento, multiplicación y enraizamiento) y con    posterioridad en la fase ex vitro, sugiere que las plántulas acumularon mayor    biomasa durante la fase in vitro, que las condicionó favorablemente para sobrevivir    al estrés provocado por el cambio a las condiciones ex vitro, lo que coincide    también con lo informado por Aragón y col. (7), que plantean que el éxito de    la aclimatización en los plátanos, depende de que las plantas puedan pasar de    las condiciones heterotróficas o mixotróficas (mezcla de autotróficas con heterotróficas)    al autotrofismo, proceso que está relacionado con las reservas que obtienen    las plántulas durante la fase in vitro.    <br>       <br>   Los resultados que se relacionan con la densidad estomática, longitud de los    estomas y grosor de la cutícula se presentan en la <a href="http://img/revistas/ctr/v33n1/t0311112.gif">Tabla    III</a>. Como se puede observar no hubo diferencias significativas en cuanto    a la densidad y longitud de los estomas entre las plantas de los diferentes    tratamientos, sin embargo si hubo diferencias estadísticas en el grosor de la    cutícula entre las plantas de los diferentes tratamientos. </span></p>     <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>El agua es la sustancia    más abundante en los tejidos vegetales. Sin embargo las partes aéreas de las    plantas presentan una mala economía de la misma, ya que del total de agua que    absorben por la raíz (100%) retienen una pequeña porción, que la emplean fundamentalmente    en la fotosíntesis (1-2 %) y pierden en forma de vapor por la transpiración    entre el 98-99 % del total (26). La cutícula cubre las células epidérmicas,    formando un límite entre la planta y su ambiente exterior; representa una barrera    primaria, que minimiza la pérdida de agua y de solutos y, protege la planta    contra el estrés biótico y abiótico, pero también puede actuar en varios procesos    que se relacionan con la delimitación de órganos, la formación de tricomas y    estomas (27). El incremento de la resistencia a Botrytis cinerea (Pers.) en    plantas mutantes de Arabidopsis se relacionó con el crecimiento de la cutícula    (28, 29).     <br>       <br>   En estudios de campo en que se utilizaron los híbridos 'FHIA-01', 'FHIA-02'    y 'FHIA-03' el grosor de la cutícula por la cara adaxial osciló entre 2,38-2,81    &#956; m, el grosor de la epidermis adaxial, osciló entre 10,92-12,45 &#956;m    (30). Si se considera que el hongo causante de la sigatoka penetra principalmente    vía estomática, una baja densidad de los mismos como la presentan los híbridos    FHIA, así como un mayor grosor de la cutícula en etapas tempranas del crecimiento    de las plantas (fase de aclimatización) podrían considerarse factores de gran    importancia y pudieran ser entre otros, los responsables del mayor grado de    resistencia a la enfermedad presentado por los mismos.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   La densidad estomática, que es de 1:3 en la relación ADA/ABA y la longitud de    los estomas es superior en la cara ABA con respecto a la ADA (31). Las hojas    son anfiestomáticas, al igual que las de Ocimum basilicum (18). Estos caracteres    están fijados genéticamente en las diferentes especies y por lo general no varían,    por lo que es una característica deseable en la propagación de este genotipo    de banano con el empleo de ABr.    <br>       <br>   Con respecto al análisis del cariotipo se mantuvo constante el número de cromosomas    2n = 4x = 44 (tetraploides) (<a href="http://img/revistas/ctr/v33n1/f0211112.gif">Figura    2</a>).</span></p>     <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>    <br>   En Passiflora cincinnata Mast. durante el proceso de embriogénesis somática    (32) y en el mantenimiento in vitro de líneas de germoplasma de Scutellaria    baicalensis Georgi (Huangqin) (33), mostraron que en todos los casos se mantuvo    constante el número de cromosomas. Así mismo, Román (18), no encontró variabilidad    en el número de cromosomas al caracterizar genotipos diploides, triploides y    tetraploides de plátanos y bananos.    <br>       <br>   Los resultados de este trabajo muestran que el ABr no provocó cambios en el    número de cromosomas de las plantas de banano del clon 'FHIA-18' en la fase    de aclimatización mediante la inmersión de las raíces y la posterior aspersión    foliar a las plantas; y el mismo pudo contribuir a mejorar los procesos de transporte    y absorción de nutrientes por la planta, por lo que esta sustancia además de    ejercer un efecto positivo en el crecimiento y desarrollo, interviene en el    engrosamiento de la cutícula sin cambios en el número de cromosomas.    <br>       <br>   La importancia de estos resultados consiste en que facilitan los estudios del    número cromosómico en el género Musa, aspecto de gran significación para su    caracterización y como método para evaluar el comportamiento de la estabilidad    y variabilidad genética en cuanto al número cromosómico en plantas de esta especie    regeneradas por vías tradicionales y biotecnológicas cuando se utiliza un nuevo    regulador del crecimiento vegetal como el análogo de brasinoesteroides.</span><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"></font></p> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> </font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p></p>     <p><font size="3"><strong><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">REFERENCIAS</font></strong><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"></font></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>       <br>   1.- Rodr&iacute;guez, A.; Posada-P&eacute;rez, L.; G&oacute;mez, R.; Reyes,    M. y Tejeda, M. 2009. Aclimatizaci&oacute;n de plantas de Carica papaya var.    'Maradol roja' obtenidas por embriog&eacute;nesis som&aacute;tica Biotecnolog&iacute;a    Vegetal 9 (2): 91-97.     <br>       <!-- ref --><br>   2.- Chac&oacute;n, A. G.; G&oacute;mez, L.; Torres, S. y Sabor&iacute;o, F.    2005. Aclimatizaci&oacute;n de pl&aacute;ntulas de yamp&iacute; (Dioscorea trifida)    y &ntilde;ame (D. alata) producidas in vitro. Agronom&iacute;a Costarricense    29 (3): 47-58.    <br>       <!-- ref --><br>   3.- FAOSTAT. 2010. http://apps,fao.org/cgi-bin/nph-db.pl?Subset=agriculture.    Fecha de Consulta: 2 de febrero del 2011.    <br>       <!-- ref --><br>   4.- P&eacute;rez, J. 2009. Enfermedades de banano y pl&aacute;tano: An&aacute;lisis    retrospectivo y perspectivas. Producci&oacute;n Agropecuaria 2 (1): 11-18.    <br>       <!-- ref --><br>   5.- Orellana, P.; Berm&uacute;dez, I.; Garc&iacute;a, L. y Veit&iacute;a, N.    2002. Evaluation of the agronomic characteristics of plantain hybrids (Musa    spp.). InfoMusa 11 (1): 34-35.    <br>       <!-- ref --><br>   6.- Azofeifa, A. 2009. Problemas de oxidaci&oacute;n y oscurecimiento de explantes    cultivados in vitro. Agron. Mesoam. 20 (1): 153-175.    <br>       <!-- ref --><br>   7.- Arag&oacute;n, C.; Carvalho, L.; Gonz&aacute;lez, J.; Escalona, M. y Amancio,    S. 2010. Ex vitro acclimatization of plantain plantlets micropropagated in temporary    immersion bioreactor. Biol. Plantarum 54 (2): 237-244.    <br>       <!-- ref --><br>   8.- Bellarmino, A. 2007. Genes involved in brassinosteroids&#8217;s metabolism    and signal transduction pathways. Brazilian Archives of Biology and Technology    50 (4): 605-618.    <br>       <!-- ref --><br>   9.- Ali, B.; Hayat, S.; Fariduddin, Q. y Ahmad, A. 2008. 24-Epibrassinolide    protects against the stress generated by salinity and nickel in Brassica juncea.    Chemosphere 72:1387&#8211;1392.    <br>       <!-- ref --><br>   10.- Gonz&aacute;lez-Olmedo, J. L.; C&oacute;rdova A.; Arag&oacute;n, C. E.;    Pina, D.; Rivas, M. y Rodr&iacute;guez, R. 2005. Effect of an analogue of brassinosteroid    on FHIA-18 plantlets exposed to thermal stress InfoMusa 14 (1): 18-20.    <br>       <!-- ref --><br>   11.- Li, J. y Jin, H. 2007. Regulation of brassinosteroid signalling. Trends    Plant Sci. 12: 37-41.    <br>       <!-- ref --><br>   12.- H&eacute;ctor, E.; Torres, A.; Algoe, S.; Caba&ntilde;as, M. y L&oacute;pez,    A. 2007. Propagaci&oacute;n in vitro del pl&aacute;tano macho (Musa sp. AAB)    clon 'Sobrino' con los bioestimulantes cubanos BB-6 y Biostan como sustitutos    de los reguladores del crecimiento. Cult. Trop. 28 (1): 13-18.    <br>       <br>   13.- Anon, J. Fase IV. 2003. Adaptaci&oacute;n o aclimatizaci&oacute;n a las    condiciones ambientales. pp.    <br>   18-20. En: Instructivo t&eacute;cnico para la micropropagaci&oacute;n de pl&aacute;tanos    y bananos. Cap&iacute;tulo 8. Empresa de semillas, La Habana, Cuba., p. 3-9.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   14.- Cuba. MINAG. 1999. Nueva versi&oacute;n de clasificaci&oacute;n gen&eacute;tica    de los suelos de Cuba.     <br>   Instituto de Suelos. Ministerio de la Agricultura. La Habana. Agrinfor, 64 p.    <br>       <!-- ref --><br>   15.- Kumar, N.; Krishnamoorthy, V.; Nalina, L. y Soorianathasundhareom, K. 2002.    Nuevo factor para estimasr el &aacute;rea foliar total en banano. Infomusa 11    (2): 42-43.    <br>       <!-- ref --><br>   16.- Vidal, M. del C.; Vargas, T. E. y Garc&iacute;a, E. 2000. Estudios anat&oacute;micos    y morfol&oacute;gicos de la iniciaci&oacute;n de embriones som&aacute;ticos    obtenidos a partir de &aacute;pices meristem&aacute;ticos de Musa sp. Acta Cient&iacute;fica    Venezolana 51: 78 -83.    <br>       <!-- ref --><br>   17.- Sam, O.; De la Luz, M. y Barroso, L. 2002. Caracterizaci&oacute;n anat&oacute;mica    de las hojas de albahaca (Ocimum basilicum L.). Cultivos Tropicales 23 (2):    39-42.    <br>       <!-- ref --><br>   18.- Rom&aacute;n, M. I. 2004. Estudio de la diversidad gen&eacute;tica en accesiones    de bananos y pl&aacute;tanos (Musa spp.) en Cuba. Tesis presentada en opci&oacute;n    al T&iacute;tulo de Doctor en Ciencias Biol&oacute;gicas. Facultad de Biolog&iacute;a.    UH. 127 pp.    <br>       <!-- ref --><br>   19.- Rodr&iacute;guez, A.; Posada-P&eacute;rez, L.; G&oacute;mez, R.; Reyes,    M. y Tejeda, M. 2009. Aclimatizaci&oacute;n de plantas de Carica papaya var.    'Maradol roja' obtenidas por embriog&eacute;nesis som&aacute;tica. Biotec. Veg.    9 (2): 91-97.    <br>       <!-- ref --><br>   20.- Goncalves, S.; Fernandes, L. y Romano, A. 2010. High-frequency in vitro    propagation of the endangered species Tuberaria major. Plant Cell Tiss. Organ    Cult. 101:359-363.    <br>       <!-- ref --><br>   21.- Wu, Y.; Ganjun, Y.; Yang, H.; Zhou, B. y Zeng, J. 2005. Basal medium with    modified nitrogen source and other factors influence the rooting of banana.    HortScience 40 (2): 45-48.    <br>       <!-- ref --><br>   22.- Scaranari, C.; Martins, P. A. y Mazzafera, P. 2009. Shading and periods    of acclimatization of micropropagated banana plantlets cv. Grande Naine. Sci.    Agric. 66: 331-337.    <br>       <!-- ref --><br>   23.- H&eacute;ctor, E.; Torres, A.; Algoe, S.; Caba&ntilde;as, M. y L&oacute;pez,    A. 2007. Propagaci&oacute;n in vitro del pl&aacute;tano macho (Musa sp. AAB)    clon 'Sobrino' con los bioestinulantes cubanos BB-6 y Biostan como sustituto    de los reguladores del crecimiento. Cultivos Tropicales 28 (1): 13-18.    <br>       <!-- ref --><br>   24.- Bajguz, A. y Hayat, S. 2009. Effects of brassinosteroids on the plant responses    to environmental stresses. Plant Physiology and Biochemistry 47: 1&#8211;8.    <br>       <br>   25.- Kagale, S.; Divi, U. K., Krochko, J. E.; Keller, W. A. y Krishna, P. 2007.    Brassinosteroid     <br>   confers tolerance in Arabidopsis thaliana and Brassica napus to a range of abiotic    stresses Planta 225: 353&#8211;364.    <br>       <!-- ref --><br>   26.- Turner, D. W.; Fortescue, J. A. y Thomas, D. S. 2007. Environmental physiology    of the bananas (Musa spp.). Braz. J. Plant Physiol. 19(4):463-484.    <br>       <br>   27.- Riederer, M. 2006. Introduction: biology of the plant cuticle. En: Biology    of the plant cuticle. M&uuml;ller, R. M. (Ed.). pp 1-10. Oxford, UK: Blackwell    Publishing.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   28.- Bessire, M.; Chassot, C.; Jacquat, A. C.; Humphry, M.; Borel, S.; MacDonald-Comber,    J.; M&eacute;traux, J. P. y Nawrath, C. 2007. A permeable cuticle in Arabidopsis    leads to a strong resistance to Botrytis cinerea. EMBO J. 26: 2158-2168.    <br>       <!-- ref --><br>   29.- Chassot, C.; Nawrath, C. y M&eacute;traux, J. P. 2007. Cuticular defects    lead to full immunity to a major plant pathogen. Plant J. 49: 972-980.    <br>       <!-- ref --><br>   30.- Valerio, R.; Lindorf, H. y Garc&iacute;a, E. 2002. Anatom&iacute;a foliar    comparada de ocho cultivares de banano con relaci&oacute;n a la resistencia    o susceptibilidad a la Sigatoka (amarilla y negra). Agron. Trop. 52 (4): 507-522.    <br>       <!-- ref --><br>   31.- Sandoval, J. A. y Miller, L. 1999. Anatom&iacute;a y morfolog&iacute;a    de la planta de banano (Musa AAA). CORBANA 24 (51): 43-60.    <br>       <!-- ref --><br>   32.- Lopes, D.; de Almeida, B.; Facio, L.; Salabert, J. M.; Lemes, M. y Campos,    W. 2010. Ploidy stability of somatic embryogenesis-derived Passiflora cincinnata    Mast. plants as assessed by flow cytometry. Plant Cell Tiss. Organ Cult. 103:    71-79.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><br>   33.- Alan, A. R.; Zeng, H.; Assani, A.; Shi. W. I.; Mcrae, H. E.; Murch, S.    J. y Saxena, P. K. 2007. Assessment of genetic stability of the germplasm lines    of medicinal plant Scutellaria baicalensis Georgi (Huangqin) in long-term, in    vitro maintained cultures. Plant Cell Rep. 26: 1345-1355.    </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Recibido </span></strong><strong></strong><strong><span style='font-size: 10.0pt;font-family:Verdana'>26/09/2010</span></strong><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>, aceptado </span></strong><strong></strong><strong><span style='font-size: 10.0pt;font-family:Verdana'>17/02/2012</span></strong></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2"><em>Ms. C.    H. Izquierdo</em>, Investigador Auxiliar del departamento de Fisiolog&iacute;a    y Bioqu&iacute;mica Vegetal, Instituto Nacional de Ciencias Agr&iacute;colas    (INCA), gaveta postal 1, San Jos&eacute; de las Lajas, </font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Mayabeque,    Cuba, C.P. 32700</font></font></font><font size="2">. Email: <a href="mailto:hioviedo@inca.edu.cu">hioviedo@inca.edu.cu</a></font></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>   </font></p>      ]]></body><back>
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<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
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<surname><![CDATA[Rodríguez]]></surname>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Aclimatización de plantas de Carica papaya var: 'Maradol roja' obtenidas por embriogénesis somática]]></article-title>
<source><![CDATA[Biotecnología Vegetal]]></source>
<year>2009</year>
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<page-range>91-97</page-range></nlm-citation>
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