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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad antifúngica de la quitosana en el crecimiento micelial y esporulación del hongo Pyricularia grisea Sacc]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The work was made in the Plant Phytopathology Laboratory belonging to the Scientific and Technological Base Unit Base Los Palacios. The aims of this research was to evaluate the antifungal activity of four chitosan formulates Q (100, 500, 1000 mg.L-1) y chitosan and copper (QCu-100 mg.L-1) on the mycelial growth and in vitro sporulation rate of Pyricularia grisea Sacc fungus. Results showed that 1000 mg.L-1 chitosan and QCu-100 mg.L-1 had the greatest inhibitory effect on four day with 27 y 30 %, respectively. However fungal sporulation was inhibited in 100 % by el QCu, while Q 100 y Q 500 had inhibitory percentages between 80 y 96 % on center and peripheral zones respectively. In addition, Q-l000 mg.L-1 chitosan had not a noticeable effect on fungal sporulation.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Actividad    antif&uacute;ngica de la quitosana en el crecimiento micelial y esporulaci&oacute;n    del hongo Pyricularia grisea Sacc </strong></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Antifungal    activity of chitosan on mycelial growth and sporulation of the Pyricularia grisea    Sacc. fungus </font></strong></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><strong><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Anayza    Echevarr&iacute;a Hern&aacute;ndez, <sup>I</sup> Ariel Cruz Triana;<sup>II</sup>    Deyanira Rivero Gonz&aacute;les<sup>II </sup> y Aida T. Rodr&iacute;gues Pedroso;    <sup>II</sup> Miguel A. Ramirez Arrebato, <sup>III</sup> Regla M. C&aacute;rdenas    Travieso, IV</font></strong></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>I</sup>Especialista de    La Unidad Cient&iacute;fico Tecnol&oacute;gica de Base Los Palacios.    <br>   <sup>II</sup>Investigadores Agregados de La Unidad Cient&iacute;fico Tecnol&oacute;gica    de Base Los Palacios.    <br>   <sup>III</sup> Investigador Auxiliar de La Unidad Cient&iacute;fico Tecnol&oacute;gica    de Base Los Palacios.    <br>   <sup>IV</sup> Investigador Auxiliar del departamento de Gen&eacute;tica y Mejoramiento    Vegetal, Instituto Nacional de Ciencias Agr&iacute;colas, gaveta postal 1,     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   San Jos&eacute; de las Lajas, Mayabeque, CP 32 700.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESUMEN</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> El presente trabajo    se desarroll&oacute; en el laboratorio de Fitopatolog&iacute;a Vegetal de La    Unidad Cient&iacute;fico Tecnol&oacute;gica de Base Los Palacios. Con el objetivo    de estudiar la actividad antif&uacute;ngica de cuatro formulados de quitosana    Q (100, 500, 1000 mg.L-1) y quitosana + cobre (QCu-100 mg.L-1), en el crecimiento    micelial y esporulaci&oacute;n in vitro del hongo Pyricularia grisea Sacc. Los    resultados mostraron que solo la quitosana a la concentraci&oacute;n de 1000    mg.L-1 y QCu-100 mg.L-1 indujeron mayor efecto inhibitorio a los cuatro d&iacute;as    de la aplicaci&oacute;n, que result&oacute; ser de 27-30 %; no ocurri&oacute;    lo mismo en el caso de la esporulaci&oacute;n, que fue inhibida al 100 % por    el QCu, mientras que la quitosana a la concentraci&oacute;n de 100 y 500 mg.L-1    desarroll&oacute; porcentajes de inhibici&oacute;n comprendidos entre 80 y 96    % el centro y la periferia de la colonia, respectivamente. Adicionalmente, la    quitosana, con una concentraci&oacute;n mayor (1000 mg.L-1), no produjo un efecto    inhibitorio notable en la esporulaci&oacute;n.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Palabras    clave:</strong> Pyricularia grisea, Oryza, arroz, quitosana.</font></p> <hr>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>ABSTRACT</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">The work was made    in the Plant Phytopathology Laboratory belonging to the Scientific and Technological    Base Unit Base Los Palacios. The aims of this research was to evaluate the antifungal    activity of four chitosan formulates Q (100, 500, 1000 mg.L-1) y chitosan and    copper (QCu-100 mg.L-1) on the mycelial growth and in vitro sporulation rate    of Pyricularia grisea Sacc fungus. Results showed that 1000 mg.L-1 chitosan    and QCu-100 mg.L-1 had the greatest inhibitory effect on four day with 27 y    30 %, respectively. However fungal sporulation was inhibited in 100 % by el    QCu, while Q 100 y Q 500 had inhibitory percentages between 80 y 96 % on center    and peripheral zones respectively. In addition, Q-l000 mg.L-1 chitosan had not    a noticeable effect on fungal sporulation.    <br>   </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Key words:    </strong>Pyricularia grisea, Oryza, rice, chitosan.</font></p> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>INTRODUCCI&Oacute;N</strong></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>   El arroz es considerado uno de los cereales de mayor preferencia en el consumo    mundial, lo que explica la importancia estrat&eacute;gica en su producci&oacute;n    para muchos pa&iacute;ses (1, 2). En Cuba constituye el producto b&aacute;sico    en la canasta familiar, con un consumo perc&aacute;pita de 69.5 kg.a&ntilde;o-1    (1, 2, 3); sin embargo, la producci&oacute;n nacional anual abastece menos del    50 % del consumo (4).     <br>   Entre los que limitan altas producciones del cultivo se destacan los bajos rendimientos,    los que no sobrepasan las 3.6 t.ha-1 (5), en lo cual las enfermedades fungosas    juegan un papel predominante.     <br>       <br>   La Piriculariosis, producida por el hongo Pyricularia grisea Sacc o Magnaporthe    grisea Herbert, es la enfermedad m&aacute;s devastadora en el cultivo del arroz,    con gran distribuci&oacute;n en el pa&iacute;s y en el mundo entero, llegando    a ocasionar p&eacute;rdidas superiores al 70 % del rendimiento agr&iacute;cola    (6, 7).    <br>   Dentro de las medidas t&eacute;cnicas del cultivo est&aacute;n incluidas las    aplicaciones foliares de fungicidas qu&iacute;micos en distintas fases de su    ciclo vegetativo, adem&aacute;s del tratamiento a la semilla (8); en este sentido,    los formulados a base de cobre, tienen la propiedad de actuar sobre las esporas    coagulando el protoplasma celular, encontr&aacute;ndose este elemento entre    los iones de metales pesados que act&uacute;an como elicitores qu&iacute;micos    (9, 10); no obstante, la enfermedad persiste en las &aacute;reas de siembra.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Es por eso que se trabaja en la b&uacute;squeda de productos bioactivos para    el control de la piriculariosis, que sean biodegradables, no t&oacute;xicos    para el hombre y animales, tengan elevada efectividad, bajo costo y no contaminen    el ambiente. En este sentido, diferentes estudios indican que la quitosana tiene    la potencialidad de inhibir el crecimiento micelial de numerosos hongos fitopat&oacute;genos    y de estimular los mecanismos de defensa de las plantas (11, 12, 13, 14).    <br>       <br>   Teniendo en cuenta lo antes planteado, se realiz&oacute; este trabajo con el    objetivo de estudiar la actividad antif&uacute;ngica de cuatro formulados de    quitosana en el crecimiento micelial y esporulaci&oacute;n de un aislamiento    monosp&oacute;rico del hongo Pyricularia grisea Sacc.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>   <font size="3"><strong>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</strong></font>    <br>       <br>   El trabajo fue conducido en el laboratorio de Fitopatolog&iacute;a Vegetal de    la Unidad Cient&iacute;fico Tecnol&oacute;gica de Base Los Palacios, perteneciente    al Instituto Nacional de Ciencias Agr&iacute;colas (INCA). Se utiliz&oacute;    un aislamiento monosp&oacute;rico del hongo Pyricularia grisea Sacc., obtenido    a partir de s&iacute;ntomas t&iacute;picos de la enfermedad sobre hojas de la    variedad de arroz J-104 colectadas en la UEB Agr&iacute;cola Caribe, perteneciente    al Complejo Agroindustrial Arrocero &laquo;Los Palacios&raquo;.     <br>       <br>   La quitosana (Q-63) se obtuvo a partir de la quitina de langosta, procedente    de los laboratorios farmac&eacute;uticos &laquo;Mario Mu&ntilde;oz&raquo; y    siguiendo la metodolog&iacute;a de obtenci&oacute;n propuesta (13, 15). El grado    de acetilaci&oacute;n fue del 63 % y polimerizaci&oacute;n de 278 (16, 17, 18,    19). Se utiliz&oacute; el sulfato de cobre a las mismas concentraciones que    la quitosana para comparar su efectividad como antif&uacute;ngico y tambi&eacute;n    se utiliz&oacute; la combinaci&oacute;n entre quitosana y sulfato de cobre.    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Efecto de los formulados de quitosana sobre el crecimiento micelial y la esporulaci&oacute;n    del hongo Pyricularia grisea    <br>       <br>   Para el montaje del experimento, se tomaron discos miceliales de 5 mm de di&aacute;metro    que se sumergieron durante 15 minutos en las disoluciones que aparecen en la    <a href="#t1">Tabla I</a>, coloc&aacute;ndose en el centro de cada placa Petri    con medio s&oacute;lido Agar Salvado de Arroz (ASA) (20, 21), pH-6, y se incubaron    a temperatura 26.&plusmn;20C, con alternancia de luz-oscuridad de 12 h.</font></p>     <p align="center"><a name="t1"></a></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><img src="/img/revistas/ctr/v33n3/t0111312.gif" width="338" height="196"></font></p>     
<p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Posteriormente,    se midi&oacute; el di&aacute;metro de las colonias a los cuatro, seis, ocho    y diez d&iacute;as con una regla graduada en mil&iacute;metros, rest&aacute;ndole    el di&aacute;metro del disco sembrado. A los 10 d&iacute;as se hizo el conteo    de la esporulaci&oacute;n marcando cuatro puntos en el centro y cuatro puntos    en la periferia. Luego, con la ayuda del microscopio &oacute;ptico, con aumento    de 400x, se observ&oacute; el n&uacute;mero de conidi&oacute;foros con conidios    presentes en cada punto. Para evaluar la esporulaci&oacute;n, se aplic&oacute;    la escala de cuatro grados (9), en la cual se reemplazaron los signos relativos    a los grados por n&uacute;meros (3). Se registr&oacute; adem&aacute;s, el color,    la forma y textura de la colonia (<a href="#t2">Tabla II</a>).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t2"></a></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><img src="/img/revistas/ctr/v33n3/t0211312.gif" width="338" height="106"></font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con ayuda de una    c&aacute;mara de conteo SMIEC (XB-K-25), se determin&oacute; el n&uacute;mero    de esporas por tratamiento y se calcul&oacute; el porcentaje de inhibici&oacute;n    por la f&oacute;rmula:    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   % de inhibici&oacute;n = (1x tratado/control) x 100    <br>       <br>   Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o experimental completamente aleatorizado con    seis r&eacute;plicas. Los datos obtenidos se procesaron mediante un an&aacute;lisis    de varianza de clasificaci&oacute;n simple, los que fueron transformados seg&uacute;n    la f&oacute;rmula 2 arcosen &Ouml;% y las medias obtenidas se docimaron mediante    el test de rangos m&uacute;ltiples de Tukey, con un nivel de significaci&oacute;n    de 5 % de probabilidad de error.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <font size="3"><strong>RESULTADOS    Y DISCUSI&Oacute;N</strong></font>    <br>       <br>   Debido a que el hongo Pyricularia grisea posee alta diversidad gen&eacute;tica    (6) es necesario contar con cultivos monosp&oacute;ricos (desarrollados a partir    de una sola espora o conidio) que permitan lograr uniformidad gen&eacute;tica    en la colonia lo que a su vez asegura una alta precisi&oacute;n en los resultados    (9).     <br>       <br>   <strong>Efecto de los formulados de quitosana sobre el crecimiento micelial    del hongo Pyricularia grisea</strong>    <br>       ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Al observar los tratamientos evaluados en los porcentajes de inhibici&oacute;n    se puede apreciar que decrecieron a medida que transcurri&oacute; el tiempo    (<a href="#f1">Figura 1</a>). El sulfato de cobre a la concentraci&oacute;n    de 1000 mg.L-1 tuvo mayor inhibici&oacute;n del crecimiento micelial en todos    los d&iacute;as evaluados, con diferencias significativas para el resto de los    tratamientos, excepto a los seis d&iacute;as, que no hubo diferencias significativas    con QCu 100 mg.L-1. Sin embargo, de los tratamientos con quitosana, solo a la    concentraci&oacute;n de 1000 mg.L-1 hubo apreciable inhibici&oacute;n del crecimiento    micelial, alcanzando el m&aacute;ximo porcentaje a los cuatro d&iacute;as, sin    diferencias significativas con QCu 100 mg.L-1 a los cuatro y ocho d&iacute;as,    y diferenci&aacute;ndose de los dem&aacute;s tratamientos, que resultaron adem&aacute;s    muy bajos para ser considerados, de manera general, como antimicrobiano.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> En los &uacute;ltimos    10 d&iacute;as, los porcentajes de inhibici&oacute;n diferenciaron entre todos    los tratamientos, los que alcanzaron los menores valores. En la literatura consultada    al respecto, existen estudios que confirman la actividad antif&uacute;ngica    de la quitosana, a la concentraci&oacute;n, 1000 mg.L-1 sobre el hongo P. grisea    (14, 21, 22, 23, 26). Sin embargo, las diferencias obtenidas respecto a los    mayores porcentajes de inhibici&oacute;n en el crecimiento de este hongo, en    comparaci&oacute;n con los resultados de este trabajo, podr&iacute;an ser atribuidas    al modo de ensayo, medio de cultivo utilizado y a las caracter&iacute;sticas    fisiol&oacute;gicas de los aislamientos evaluados, como se refleja en trabajos    donde se han utilizado otros formulados de quitosana (16, 22, 23).    <br>       <br>   Otros estudios demostraron el efecto antimicrobiano de la quitosana, en los    14 hongos fitopat&oacute;genos m&aacute;s importantes del cultivo del arroz,    dentro de los cuales se encuentra Helminthosporium orysae y Rhizoctonia solani,    con porcentajes de inhibici&oacute;n del crecimiento de m&aacute;s de 50 y 80    % respectivamente (9, 21, 24, 25).     <br>       <br>   Una interpretaci&oacute;n de la poca efectividad antimicrobiana en P. grisea,    pudiera ser que en el caso de este pat&oacute;geno, la pared celular est&aacute;    constituida por quitina, b-1,3 glucano y &para;-heteropolisac&aacute;rido que    son polisac&aacute;ridos complejos y presentan adem&aacute;s varios az&uacute;cares    entre otros constituyentes qu&iacute;micos (14, 26). Teniendo en cuenta esto,    es probable que el comportamiento observado en la <a href="#f1">Figura 1</a>    sea motivado por la composici&oacute;n de la pared celular del hongo P. grisea,    ya que sus paredes est&aacute;n quitinizadas y constituyen una barrera natural,    que impide o dificulta la penetraci&oacute;n de cualquier sustancia (9, 27).    Por otro lado, estudios histoqu&iacute;micos demostraron que en algunos pat&oacute;genos    la actividad antif&uacute;ngica de la quitosana, es causada por la deposici&oacute;n    de las mol&eacute;culas dentro de la c&eacute;lula f&uacute;ngica inhibiendo    el crecimiento micelial5 (9, 22, 23, 25, 28).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="f1"></a>    <br>   </font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/ctr/v33n3/f0111312.gif" width="354" height="350"></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Como los estudios realizados por otros autores mostraron ausencia de correlaci&oacute;n    entre el crecimiento y esporulaci&oacute;n de Pyricularia grisea (9, 29), es    necesario confirmar si la quitosana afecta el proceso esporulativo que es, en    definitiva, el que reviste mayor importancia desde el punto de vista agr&iacute;cola,    pues la enfermedad se disemina a trav&eacute;s de estructuras reproductivas    denominadas conidios (6, 9).    <br>       <br>   Efecto de los formulados de quitosana sobre la esporulaci&oacute;n del hongo    Pyricularia grisea    <br>       <br>   Como se pudo comprobar (<a href="#f2">Figura 2</a>) algo diferente ocurre cuando    se eval&uacute;a el efecto de los productos en el porcentaje de inhibici&oacute;n    de la esporulaci&oacute;n.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="f2"></a></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><img src="/img/revistas/ctr/v33n3/f0211312.gif" width="368" height="318"></font></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Como se observa    en la <a href="#f2">Figura 2</a>, hubo inhibici&oacute;n total en los tratamientos    correspondientes a las distintas concentraciones de sulfato de cobre, lo que    hace evidente su efecto antif&uacute;ngico ante el hongo P. grisea (10, 14).    En cuanto a los formulados con quitosana, solo la QCu 100 mg.L-1, present&oacute;    los valores m&aacute;s elevados de inhibici&oacute;n en la esporulaci&oacute;n    (100 %) tanto en el centro como en la periferia de la colonia, sin diferencias    significativas con el Cu2SO4, indicando realmente mayor toxicidad durante el    efecto de este producto en el desarrollo ulterior del hongo, a partir de la    inoculaci&oacute;n (9, 20). No obstante, las concentraciones de quitosana 100    y 500 presentaron diferencias significativas entre ellas, con valores de inhibici&oacute;n    de la esporulaci&oacute;n entre 80 y 96 % en el centro y 68 y 85 % en la periferia.    En este caso la quitosana 100 fue la que alcanz&oacute; el valor m&aacute;s    elevado. Resultado que concuerda con estudios realizados (9, 17, 20), donde    se obtuvieron los mayores porcentajes de inhibici&oacute;n a esa concentraci&oacute;n.    Sin embargo, la Q-1000 mg.L-1 desarroll&oacute; menor inhibici&oacute;n (inferior    a 30 %) que el resto de los tratamientos, lo que se puede atribuir a que a esta    concentraci&oacute;n la viscosidad de la quitosana dificulta su penetraci&oacute;n    al interior de las c&eacute;lulas f&uacute;ngicas y por tanto su efecto es menor    (9, 20).     <br>       <br>   Una presentaci&oacute;n de la distribuci&oacute;n de la esporulaci&oacute;n    en los diferentes tratamientos (<a href="#t3">Tabla III</a>), se pudo establecer    que en los tratamientos correspondientes a Q-1000 mg.L-1 y el control (agua),    la esporulaci&oacute;n fue grado 3, que representa en la escala, mucha esporulaci&oacute;n    (6-9 conidi&oacute;foros con conidios), posteriormente la Q-100 mg.L-1 y Q-500    mg.L-1 obtuvieron grado 1 representando poca esporulaci&oacute;n en el centro    de la colonia (1-2 conidi&oacute;foros con conidios), mientras que en la periferia    esta result&oacute; ser de grado medio (4-5 conidi&oacute;foros con conidios).    Esto se explica probablemente con una de las hip&oacute;tesis sugeridas en investigaciones    citadas (25), donde se plantea que la quitosana a bajas concentraciones es capaz    de penetrar en la c&eacute;lula f&uacute;ngica e interactuar con el ADN, causando    desorden en su estructura, as&iacute; como inhibici&oacute;n en la s&iacute;ntesis    de ARNm y prote&iacute;nas, afectando como consecuencia el proceso esporulativo    (9, 27). Las concentraciones de sulfato de cobre (Cu2SO4) no presentaron esporulaci&oacute;n.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t3"></a>    <br>   </font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/ctr/v33n3/t0311312.gif" width="360" height="228"></p>     
<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br>   Haciendo una caracterizaci&oacute;n morfol&oacute;gica de las colonias del hongo,    en los diferentes tratamientos, los resultados experimentales demostraron que    las caracter&iacute;sticas culturales de las colonias de P. grisea var&iacute;an    de acuerdo con el medio de cultivo empleado como son: color, crecimiento de    los bordes de la colonia y penetraci&oacute;n en el sustrato, adem&aacute;s    que el hongo necesita medios de cultivo elaborados a partir de infusiones de    &oacute;rganos vegetales del arroz para obtener buen crecimiento y desarrollo,    por lo que se plantea que el micelio en cultivo puede ser a&eacute;reo o sumergido,    hialino, carmelitoso, verde oliv&aacute;ceo o negruzco, ramificado (30).    <br>       <br>   Por otro lado se comprob&oacute; que las quitosanas en sus diferentes concentraciones    y adem&aacute;s el QCu no indujeron variaciones en la morfolog&iacute;a de las    colonias de P. grisea crecidas en medios Agar Salvado de arroz (<a href="#t4">Tabla    IV</a>), lo que evidencia que en este estudio el hongo present&oacute; estabilidad    en las caracter&iacute;sticas culturales propias del aislamiento seleccionado.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t4"></a></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><img src="/img/revistas/ctr/v33n3/t0411312.gif" width="348" height="224"></font></p>     
<p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <strong>CONCLUSIONES</strong>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>       <br>   De manera general, atendiendo a los resultados podemos inferir que la quitosana    en bajas concentraciones (Q-100 mg.L-1) no causa un efecto letal, en el crecimiento    micelial del hongo, resultado que coincide con el de otros autores (9, 27).    No comport&aacute;ndose de la misma forma en la esporulaci&oacute;n, donde los    valores de inhibici&oacute;n estuvieron por encima del 70 %, y teniendo en cuenta    que el hongo en el campo se disemina por los conidios, la aplicaci&oacute;n    de las formulaciones a base de quitosana en bajas concentraciones, pudiera atribuir    a la reducci&oacute;n del in&oacute;culo inicial de la enfermedad.     <br>       <br>   Otro tratamiento que tuvo un buen comportamiento en la esporulaci&oacute;n,    fue el formulado de QCu 100 mg.L-1, por su efecto inhibitorio (100 %), pero    teniendo en cuenta que el cobre (Cu2) es un metal pesado, su utilizaci&oacute;n    aumentar&iacute;a la acumulaci&oacute;n del mismo en el suelo y por consiguiente    afectar&iacute;a la productividad del cultivo, no debe ser considerado como    otra alternativa de manejo para el control de este pat&oacute;geno.</font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="3"><strong>REFERENCIAS</strong></font>    <br>       <!-- ref --><br>   1. FAO. Perspectivas de cosechas y situaci&oacute;n alimentaria [En l&iacute;nea].    2009. Consultado diciembre 2010. Disponible en: <a href="http://www.fao.org/docrep/014/al980s/al980s00.pdf" target="_blank">www.fao.org/docrep/014/al980s/al980s00.pdf</a>    <br>       <!-- ref --><br>   2. FAO. Perspectivas de cosechas y situaci&oacute;n alimentaria [En l&iacute;nea].    2010. Consultado en diciembre 2011. Disponible en: <a href="http://www.fao.org/docrep/013/al972s/al972s00.pdf" target="_blank">www.fao.org/docrep/013/al972s/al972s00.pdf</a>.    <br>       <!-- ref --><br>   3. Instituto de Investigaciones del Arroz. Normas T&eacute;cnicas para el consumo    del arroz. Sancti Sp&iacute;ritus. Ministerio de la Agricultura. Cuba. 2009.    <br>       <!-- ref --><br>   4. Mart&iacute;nez, B.; Reyes, Y. e Infante, D. Enfermedades Fungosas de importancia    [En l&iacute;nea]. 2009. Consultado Diciembre 2010. Disponible en: <a href="http://www.Agrytec.com-Copyright/" target="_blank">www.Agrytec.com-Copyright/</a>.    <br>       <!-- ref --><br>   5. Instituto de Investigaciones del Arroz. Instructivo t&eacute;cnico del cultivo    de arroz. Ministerio de la Agricultura. Cuba. 2008.    <br>       <!-- ref --><br>   6. C&aacute;rdenas, R. M.; P&eacute;rez, N.; Cristo, E.; Gonz&aacute;lez M.    C. y Fabr&eacute;, L. Monitoreo de la Piriculariosis (Pyricularia grisea Sacc.)    en el cultivo del arroz (Oryza sativa Lin). Fitosanidad, 2007, vol. 11, no.    1, p. 41-42.    <br>       <!-- ref --><br>   7. Proyecto de Colaboraci&oacute;n Europeo. Obtener arroz m&aacute;s resistente    a enfermedades [En l&iacute;nea]. 2009. Consultado diciembre 2010. Disponible    en: <a href="http://www.adn.es/local/valencia/20090507/NWS-1789-UPV-enfermedades-resistente-proyecto-colaboraci%F3n" target="_blank">www.adn.es/local/valencia/20090507/NWS-1789-UPV-enfermedades-resistente-proyecto-colaboraci&oacute;n</a>.    <br>       <!-- ref --><br>   8. Rivero, D.; Cruz, A. T.; Mart&iacute;nez, B.; Ram&iacute;rez, M. A. y Rodr&iacute;guez,    A. T. Actividad antif&uacute;ngica in vitro de la quitosana Sigma frente a hongos    fitopat&oacute;genos causantes del manchado del grano en el cultivo de arroz    (Oryza sativa L.). Fitosanidad, 2009, vol. 13, no. 2.    <br>       <!-- ref --><br>   9. C&aacute;rdenas, R. M.; Ram&iacute;rez, M. A.; Rodr&iacute;guez, Aida T.    y Gonz&aacute;lez, L. M. Efecto de los derivados de quitina y su combinaci&oacute;n    con sulfato de cobre en el comportamiento del crecimiento micelial y esporulaci&oacute;n    de un aislamiento monosp&oacute;rico del hongo Pyricularia grisea Sacc. Cultivos    Tropicales, 2004, vol. 25, no. 4, p. 89-93.    <br>       <!-- ref --><br>   10. Robinson-Lora, M. A. y Brennan, R. A. Efficient metal removal and neutralization    of acid mine drainage by crab-shell chitin under batch and continuous-flow conditions.    Bioresource technology, 2009, vol. 100, no. 21, p. 5063-5071.    <br>       <!-- ref --><br>   11. Rodr&iacute;guez, A. T. Efecto de derivados de quitina en la inducci&oacute;n    de mecanismos defensivos y en la protecci&oacute;n del arroz contra Pyricularia    grisea. [Tesis de maestr&iacute;a] Universidad Agraria de La Habana, 2003. P.75    <br>       <!-- ref --><br>   12. Rodr&iacute;guez, A. T.; Ram&iacute;rez, M. A.; C&aacute;rdenas, R. M.;    Hern&aacute;ndez, A. N.; Vel&aacute;squez, M. G. y Bautista, S. Induction of    defense response of Oryza sativa L. against Pyricularia grisea (Cooke) Sacc.    by treating seeds with chitosan and hydrolyzed chitosan. 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Selecci&oacute;n de variedades de arroz (Oryza sativa    L.) resistentes a la Piriculariosis (Pyricularia grisea) usando m&eacute;todos    tradicionales y biot&eacute;cnol&oacute;gicos. [Informe Final, PTCT 0122]. CITMA,    Pinar del R&iacute;o. 2003. p. 47    <br>       <!-- ref --><br>   21. Fabregat, M. Aspectos bioecol&oacute;gicos y control de Pyricularia grisea    en el arroz. [Tesis de grado]. UNAH, 1984.    <br>       <!-- ref --><br>   22. Ram&iacute;rez, M. A.; Rodr&iacute;guez, A. T.; Alfonso, L. y Peniche, C.    Chitin and its derivatives as biopolymers with potential agricultural applications.    Biotecnolog&iacute;a Aplicada, 2010, vol. 27, no. 4, p. 270-276.    <br>       <!-- ref --><br>   23. Ram&iacute;rez, M. A.; Rodr&iacute;guez, A. T.; Alfonso, L.; Alfonso, J.    A.; Azocar, J. A.; V&aacute;zquez, Y. Peniche, C. Composici&oacute;n qu&iacute;mica    y elementos trazas en subproductos de exoesqueletos de langosta Panulirus argus    con posible uso agr&iacute;cola. 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Revista Protecci&oacute;n Vegetal, 2006, vol. 21, no. 2, p. 90-94.    <br>       <!-- ref --><br>   27. Bautista-Ba&ntilde;os, S.; Hern&aacute;ndez-Lauzardo, A. N.; Vel&aacute;squez    del Valle, M. G.; Hern&aacute;ndez-L&oacute;pez, M.; Ait Barka, E.; Bosquez-Molina,    E. y Wilson, C. L. Chitosan a potencial natural compound to control pre-and    postharvest diseases of horticultural commodities. Crop Proteccion, 2006, vol.    2, p. 108-118.    <br>       <!-- ref --><br>   28. Echevarr&iacute;a, A. Estudio de la actividad antif&uacute;ngica de la quitosana    en el crecimiento y esporulaci&oacute;n in vitro del hongo Pyricularia grisea    Sacc. [Tesis de grado]. Universidad Hermanos Sa&iacute;z Montes de Oca. Pinar    de R&iacute;o. 2003, p. 42.    <br>       <!-- ref --><br>   29. Ktial, J. C. y Randhawa, N. S. Micronutrientes. Boletin FAO Fertilizantes    y nutrici&oacute;n vegetal. Organizaci&oacute;n de las naciones unidas para    la agricultura y la alimentaci&oacute;n. Roma, 1986.    <br>       <!-- ref --><br>   30. Mellegard, H.; From, C.; Christensen, B. E. y Granum, P. E. Inhibition of    Bacillus cereus spore outgrowth and multiplication by chitosan. International    Journal of Food Microbiology, 2011, vol. 149, no. 3, p. 218-225.    </font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido: 1 de    noviembre de 2010    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Aceptado: 2 de mayo de 2012</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><em>Anayza Echevarr&iacute;a    Hern&aacute;ndez</em>, Especialista de La Unidad Cient&iacute;fico Tecnol&oacute;gica    de Base Los Palacios. Email: <a href="mailto:aechevarria@inca.edu.cu">aechevarria@inca.edu.cu</a></font></p>      ]]></body><back>
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